CN113151212A

CN113151212A - 一种右旋糖酐蔗糖酶及其制备方法和应用

Info

Publication number: CN113151212A
Application number: CN202110591075.1A
Authority: CN
Inventors: 马江锋; 姜岷; 王寅竹; 吴昊; 董维亮
Original assignee: Nanjing Tech University
Current assignee: Nanjing Tech University
Priority date: 2021-05-28
Filing date: 2021-05-28
Publication date: 2021-07-23

Abstract

本发明公开了一种右旋糖酐蔗糖酶及其制备方法和应用，属于基因工程领域。本发明根据肠膜明串珠菌右旋糖酐蔗糖酶编码基因序列，利用易错PCR合成方法获得了右旋糖酐蔗糖酶突变体，突变后的序列核酸序列如SEQ ID NO.2所示。进一步优化大肠杆菌表达系统对该所述突变的右旋糖酐蔗糖酶编码基因进行高效分泌表达，获得右旋糖酐蔗糖酶突变体，其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。与野生酶相比，突变的右旋糖酐蔗糖酶可催化获得单一分子量区间的微分子量右旋糖酐。

Description

一种右旋糖酐蔗糖酶及其制备方法和应用

技术领域

本发明属于酶制备领域，具体涉及一种右旋糖酐蔗糖酶及其制备方法和应用。

背景技术

右旋糖酐(dextran，dex)又叫α右旋糖酐，是葡萄糖单元经脱水后所构成的高分子多糖化合物。微分子右旋糖酐能改善微循环，消除血管内红细胞聚集，防止血栓形成及渗透利尿的作用，可用于治疗急性失血性休克、心肌梗塞、脑血栓、脑供不足、周围血管病及防止弥散性血管内凝血和肾功能衰竭等功效。微分子量右旋糖酐主要存在以下缺陷：(1)目前双酶法或多酶法生产微分子量右旋糖酐成本高、纯化困难，需要两步才能完成(2)胞内表达的蛋白质易在菌体内形成包涵体，且纯化前还需要经过耗时且成本较高的细胞破碎步骤。因此，构建右旋糖酐蔗糖酶突变体的大肠杆菌高效分泌表达菌株能一步催化生产微分子量右旋糖酐，同时解决该酶胞内表达时存在的问题。

发明内容

本发明通过对右旋糖酐蔗糖酶氨基酸序列进行突变改造，再在其编码基因上连接分泌表达信号肽，以利于其在大肠杆菌中实现分泌表达，从而高效快速地获得可生产单一分子量(4000～5000)右旋糖酐的右旋糖酐蔗糖酶。

本发明的第一个目的是提供一种右旋糖酐蔗糖酶，具体为一种催化生产微分子量右旋糖酐的右旋糖酐蔗糖酶突变体DexT1，其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。

本发明的第二个目的是提供上述右旋糖酐蔗糖酶的编码基因，所述编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。

本发明的第三个目的是提供上述右旋糖酐蔗糖酶的编码基因的分泌表达信号肽，所述分泌表达信号肽氨基酸序列如SEQ ID NO.3所示，所述信号肽编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。

本发明的第四目的是提供一种含有上述右旋糖酐蔗糖酶编码基因以及信号肽编码基因的重组载体。

优选的，所述重组载体所用的表达载体为pET28a(+)。

本发明的第五目的是提供一种基因工程菌，以大肠杆菌BL21为宿主细胞，通过载体表达连接上述右旋糖酐蔗糖酶编码基因以及信号肽编码基因。

本发明的第六目的是提供上述右旋糖酐蔗糖酶的制备方法，步骤如下：将右旋糖酐蔗糖酶及其分泌表达信号肽的编码基因和表达载体pET28a(+)相连接，并将连接产物转化至大肠杆菌BL21，获得重组菌株；培养重组菌株，诱导重组突变内右旋糖酐蔗糖酶的表达；离心获得含权利要求1所述右旋糖酐蔗糖酶的酶液；对酶进行活性测定。

本发明的有益技术效果是：与一般右旋糖酐蔗糖酶相比，右旋糖酐蔗糖酶突变体DexT1可以直接一步酶催化生产分子量在4000～5000之间的右旋糖酐，且催化较为稳定，分子量分布较为集中，免去了先催化生成高分子量右旋糖酐再水解生产微分子量右旋糖酐的步骤，同时在右旋糖酐蔗糖酶的N端加入DsbAT信号肽实现了右旋糖酐蔗糖酶在胞外的高效分泌，。本发明的突变右旋糖酐蔗糖酶DexT1可应用于药物行业等生物技术领域。

附图说明

图1 DsbAT-DexT1的PCR扩增结果。

图2工程菌pET28a-DsbAT-DexT1菌落PCR结果

图3质粒pET28a-DsbAT-DexT1的构建。

图4质粒pET28a-DsbAT-DexT1双酶切鉴定结果。

图5发酵上清液酶活检测。

图6产物右旋糖酐的GPC图谱。

具体实施方式

下面将结合本发明实施例中的附图，对本发明实施例中的技术方案进行完整的描述，显然，所描述的实施例仅是本发明一部分实施例。基于本发明的实施例，本领域的普通技术人员在没有作出创造性劳动的前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明的保护范围。

实验试剂和材料

1.菌株及载体：大肠杆菌E.coli BL21(DE3)和表达载体pET28a由南京工业大学提供，该材料也可通过商业途径购买。

2.酶类及其他生化试剂：DNA聚合酶及dNTP购自南京诺唯赞生物科技股份有限公司，其他都为国产试剂(均可从普通生化试剂公司买到)

3.培养基：LB培养基：Peptone 10g/L，Yeast extract 5g/L，NaCl 10g/L，蒸馏水溶解。固体培养基在此基础上加2％(w/v)琼脂。

说明：以下实施例中未作具体说明的分子生物学实验方法，均参照《分子克隆实验指南》(第三版)一书中所列具体方法实行，或按照试剂盒和产品说明书进行。

实施例1所述右旋糖酐蔗糖酶的编码基因的分泌表达信号肽

本发明中所提供的的信号肽其核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示，其是对信号肽DsbA信号肽进行改造而得来。该信号肽的N区使用的是信号肽DsbA的前三个氨基酸残基MKKK，中间H区序列为DsbA的疏水序列穿插强疏水性氨基酸亮氨酸和异亮氨酸IWLLALGLVLALAFI，C区使用的是DsbA的后四个氨基酸残基SASA。此信号肽序列通过化学合成或PCR的方法获得，经过signalP4.1对其可用性进行分析。

此信号肽片段长度较短，故通过引物自连合成得到该片段，同时在下游引物中加入DexT1的同源臂序列，反应条件：预变性95℃，3min；变性95℃，15s，退火63℃，15s；延伸72℃，15s；33个循环；彻底延伸72℃，5min。DexT1胞外酶活达到1U/ml，相对于原始出发菌种效果明显。

扩增体系：

DsbAT上游引物：5’-ATGGATGAAAAAAAAAATTTGGCTGCTGGCTCTGGGTCTGGTACTGGCC-3’

DsbAT下游引物：

5’-GGCTTTTTCAAAGCTTGCCATTGCGCTTGCGGAGATGAACGCCAGGGCCAGTACCAGACCC-3’

实施例2本发明所述右旋糖酐蔗糖酶的构建

以来源于柑橘明串珠菌NRRL B-1299的基因组为模板，设计含有EcoRI和SalI的突变体引物，利用overlap PCR扩增得到含突变基因的质粒。PCR扩增产物经1％琼脂糖凝胶电泳检验测定后回收。对质粒pET28a用EcoRI和SalI进行双酶切线性化处理，并纯化回收。PCR产物和线性化的质粒用一步克隆的方法做连接反应，体系如下：DexT1纯化产物3μL，线性化pET28a质粒4μL，CE buffer4μL，ExnaseII2μL，去离子水7μL，于37℃下反应30分钟，构建重组质粒pET28a-DexT1。取所得纯化产物10μL与大肠杆菌DH5α感受态混合，置于冰上30min，于42℃下热击90s，迅速置于冰上5min。将上步所得的感受态细胞加入至900μL LB培养基中，在37℃180rpm下活化50min。12000rpm离心1min，弃部分上清，留100μL左右活化后感受态细胞μL均匀涂布于含有100mg/L的卡那霉素LB固体培养基平板上，37℃培养箱静置过夜，挑取平板上的单菌落接种于5mL LB培养基中，于37℃180rpm条件下过夜培养，经基因测序确定扩增结果后提取质粒备用。

DexT1上游引物:5’-ATGGGTCGCGGATCCGAATTCATGGCAAGCTTTGAAAAAGC-3’

DexT1下游引物:

5’-TGCGGCCGCAAGCTTGTCGACTTTTGCCATCGTACCATCGTT-3’

实施例3右旋糖酐蔗糖酶突变体的表达

将DsbAT片段与DexT1片段通过overlap进行连接。以前期构建的DexT1-pET28a质粒为模板进行PCR扩增得到DexT1片段。反应条件：预变性95℃，3min；变性95℃，15s，退火52℃，15s；延伸72℃，4min；33个循环；彻底延伸72℃，5min。扩增体系：

DexT1片段引物设计中，在下游引物加入带有SalI的同源臂。

DsbAT上游引物：

5’-ATGGGTCGCGGATCCGAATTCATGGGTCGCGGATCCGAATTC-3’

DexT1下游引物：

5’-TGCGGCCGCAAGCTTGTCGACTTTTGCCATCGTACCATCGTT-3’

PCR扩增产物与线性化载体质粒用一步克隆方法进行连接反应，体系如下：DsbAT-DexT1纯化产物3μL，线性化pET28a质粒4μL，CE buffer 4μL，ExnaseII2μL，去离子水7μL，于37℃下反应30分钟，构建重组质粒pET28a-DsbAT-DexT1。取所得纯化产物10μL与大肠杆菌DH5α感受态混合，置于冰上30min，于42℃下热击90s，迅速置于冰上5min。将上步所得的感受态细胞加入至900μL LB培养基中，在37℃180rpm下活化50min。12000rpm离心1min，弃部分上清，留100μL左右活化后感受态细胞μL均匀涂布于含有100mg/L的卡那霉素LB固体培养基平板上，37℃培养箱静置过夜，挑取平板上的单菌落接种于5mL LB培养基中，于37℃180rpm条件下过夜培养。

提取上述构建的分泌表达质粒pET28a-DsbAT-DexT1，进行PCR验证，最后在37℃下使用DNA限制性内切酶EcoRI和SalI对pET28a-DsbAT-DexT1分泌表达质粒进行双酶切，酶切5h后对酶切产物进行核酸电泳检测确认。随后将PCR产物进行纯化，使用无菌水进行最终洗脱，将纯化产物化转至大肠杆菌BL21(DE3)中，转化液涂布于LB平板中37℃培养12h，长出的单菌落为表达菌株。挑取单菌落接种至5mL LB培养基中37℃200rpm下培养12h，再进一步接种到200mL LB培养基中扩大培养，当菌液OD600长至0.6～0.8时，加入0.1mM IPTG诱导培养24h。

实施例4右旋糖酐蔗糖酶突变体表达酶活性的测定

发酵结束后，离心取上清液，取1mL和测量酶活用的酶活反应体系2.5mL混合反应30min，反应后加入定量DNS试剂，煮沸5min，使用分光光度计在540nm波长下测量，代入果糖标准曲线计算反应后果糖含量，判断酶活。

酶活反应体系为：乙酸钠1.46g/L，氯化钙0.05g/L，蔗糖120g/L，用20％盐酸调节pH至5.5。

酶活力的定义：在一定条件下，每分钟催化1umol蔗糖反应生成果糖所需要的酶量为1个酶活单位，用1U表示。酶活检测结果如图5所示。

实施案例5酶催化产物分子量变化的测定

将离心后上清以1：4的体积比与蔗糖反应体系混合，蔗糖反应体系配制方法为：蔗糖240g/L，乙酸钠0.73g/L，氯化钙0.025g/L，体系pH为5.5。在30℃下反应2h。反应结束后使用凝胶渗透色谱法(GPC)测量溶液中右旋糖酐的平均分子量，利用HPLC，以ΜLtrahydrogel250Column为色谱柱配备示差折光检测器检测，ddH₂O为流动相，进行色谱检测。如图6所示，GPC测得反应体系中右旋糖酐分子量主要集中在4000-5000。

序列表

<110> 南京工业大学

<120> 一种右旋糖酐蔗糖酶及其制备方法和应用

<160> 4

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 1267

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 1

Phe Glu Lys Ala Pro Asp Ser Val Ile Thr Gly Gly Arg Tyr Ser Leu

1 5 10 15

Lys Asp Gly Tyr Tyr Val Tyr Leu Asp Lys Gln Gly Lys Gln Val Val

20 25 30

Gly Pro Lys Asn Ile Asp Asn His Leu Gln Tyr Phe Asp Glu Thr Thr

35 40 45

Gly Lys Gln Val Lys Gly Asp Phe Arg Ser Val Asn Gly Lys Arg Ile

50 55 60

Tyr Phe Asn Ala Asn Leu Gly Tyr Ala Asp Asp Tyr Thr Thr Asp Val

65 70 75 80

Ala Gly Lys Leu Val Gly Tyr Asp Ser Asn Gly Asn Gln Val Lys Ala

85 90 95

Gly Tyr Val Thr Asn Ser Gln Gly Lys Thr Tyr Tyr Phe Asn Asn Gln

100 105 110

Gly Glu Ala Ile Ile Gly Leu Lys Thr Asp Asn Asn Lys Thr Gln Tyr

115 120 125

Phe Gly Pro Asp Gly Ala Gln Val Lys Gly Ala Phe Gln Gln Val Asn

130 135 140

Gly Lys Asn Ile Tyr Phe Asp Ala Gln Thr Gly Tyr Ala Arg Gln Asn

145 150 155 160

Val Gly Phe Leu Asp Gly Thr Ala Lys Gly Phe Asp Glu Gln Gly Asn

165 170 175

Gln Ile Lys Ser Gly Ile Ala Thr Asp Leu Ser Gly Asn Val Tyr Tyr

180 185 190

Phe Asp Ala Ser Gly Lys Met Leu Thr Gly Val Gln Asn Ile Asp Gly

195 200 205

Lys Lys Tyr Tyr Phe Asp Glu Gln Gly His Arg Arg Arg Asn Tyr Ala

210 215 220

Gly Val Phe Asn Asn Glu Phe Ile Tyr Phe Gly Leu Asp Gly Val Gly

225 230 235 240

Gln Ser Ala Ile Glu Tyr Gln Phe Glu Lys Gly Leu Thr Ser Gln Asn

245 250 255

Ser Val Ala Thr Ser His Asn Ala Ala Lys Ser Tyr Asp Thr Lys Ser

260 265 270

Phe Thr Asn Val Asp Gly Phe Leu Thr Ala Asn Ser Trp Tyr Arg Pro

275 280 285

Thr Asp Ile Leu Arg Asn Gly Thr Lys Trp Glu Pro Ser Thr Glu Thr

290 295 300

Asp Phe Arg Pro Leu Leu Met Thr Trp Trp Pro Asp Lys Glu Val Gln

305 310 315 320

Ala Asn Tyr Leu Asn Tyr Met Ser Ala Leu Gly Leu Gly Asp Gln Lys

325 330 335

Ile Tyr Thr Gly Ala Ser Ser Gln Leu Asp Leu Asn Asn Ala Ala Leu

340 345 350

Ile Val Gln Glu Ala Ile Glu Lys Lys Ile Ser Leu Glu Lys Ser Thr

355 360 365

Lys Trp Leu Asp Asp Ser Ile Lys Ser Phe Ile Lys Ser Lys Arg Lys

370 375 380

Asp Ile Gln Gly Asn Leu Val Asp Thr Asn Pro Gly Trp Thr Ile Asp

385 390 395 400

Ser Glu Thr Gly Ser Thr Asn His Leu Gln Asn Gly Ala Phe Ile Phe

405 410 415

Thr Asn Ser Pro Leu Val Pro Glu Ala Asn Ala Ala Glu Gly Asn Arg

420 425 430

Leu Ile Asn Arg Thr Pro Ser Gln Gln Thr Gly Asn His Ile Ser Tyr

435 440 445

Ala Ser Gln Pro Tyr Ser Gly Asp Asp Trp Gly Tyr Glu Leu Leu Leu

450 455 460

Gly Asn Asp Val Asp Asn Ser Asn Pro Ile Val Gln Ala Glu Gln Leu

465 470 475 480

Asn Trp Ile His Tyr Leu Met Asn Phe Gly Thr Ile Thr Ala Pro Gln

485 490 495

Asp Pro Asp Ala His Leu Ala Asn Phe Asp Ser Ile Arg Ile Asp Ala

500 505 510

Val Asp Asn Val Asp Ala Asp Leu Leu Gln Ile Ala Gly Asp Tyr Phe

515 520 525

Lys Ala Ala Tyr Gln Val Gly Glu Asn Asp Lys Asn Ala Asn Gln His

530 535 540

Ile His Ile Leu Glu Asp Trp Ser Pro Asn Asp Val Trp Tyr Asn Gln

545 550 555 560

Gln Val Asn Gly Asn Ser Gln Leu Thr Met Asp Ala Thr Met Gln Asn

565 570 575

Gln Leu Leu Ala Ser Leu Thr Arg Pro Ile Thr Ser Arg Asp Ser Met

580 585 590

Lys Ser Phe Thr Lys Asp Ala Leu Leu Val His Arg Thr Ala Asp Asn

595 600 605

Ser Tyr Asn Gln Ala Val Pro Asn Tyr Ser Phe Ile Arg Ala His Asp

610 615 620

Ser Glu Val Gln Thr Ile Ile Ala Lys Ile Ile Ser Asp Lys His Pro

625 630 635 640

Asp Leu Tyr Pro Thr Val Asp Lys Ala Leu Leu Ala Lys Asp Ser Ala

645 650 655

Leu Tyr Asp Glu Ala Phe Thr Glu Tyr Asn Ala Asp Met Gln Lys Ile

660 665 670

Ser Ser Gln Lys Gln Tyr Thr His Asn Asn Met Pro Ser Ala Tyr Ala

675 680 685

Ile Leu Leu Thr Asn Lys Asp Thr Val Pro Arg Val Tyr Tyr Gly Asp

690 695 700

Leu Phe Thr Asp Asn Gly Glu Tyr Met Ala Asn Lys Thr Pro Tyr Tyr

705 710 715 720

Asp Ala Ile Thr Ser Leu Leu Thr Ala Arg Thr Lys Phe Val Ser Gly

725 730 735

Gly Gln Ser Leu Ser Val Asp Lys Asn Asp Val Leu Thr Ser Val Arg

740 745 750

Tyr Gly Lys Gly Ala Leu Ser Ala Thr Asp Asn Gly Ser Ser Asp Thr

755 760 765

Arg Asn Gln Gly Ile Gly Val Ile Val Ser Asn Asn Pro Asn Leu Asp

770 775 780

Leu Asn Asn Asp Lys Val Thr Leu Ser Met Gly Ile Ser His Ala His

785 790 795 800

Gln Ala Tyr Arg Pro Leu Leu Leu Thr Asn Ser Gln Gly Ile Val Ala

805 810 815

Tyr Ala Thr Asp Ser Glu Val Pro Gln Asn Leu Tyr Lys Thr Thr Asn

820 825 830

Asp Lys Gly Glu Leu Thr Phe Asp Ala Ser Glu Ile Lys Gly Tyr Asp

835 840 845

Thr Val Gln Thr Ser Gly Tyr Leu Ala Val Trp Val Pro Val Gly Ala

850 855 860

Ser Asp Glu Gln Asp Ala Arg Thr Ile Ala Ser Thr Glu Lys Asn Asn

865 870 875 880

Gly Asn Ser Val Tyr His Ser Asn Ala Ala Leu Asp Ser Gln Leu Ile

885 890 895

Tyr Glu Gly Phe Ser Asn Phe Gln Thr Val Pro Ser Lys Asn Ala Ser

900 905 910

Ala Asp Glu Tyr Ala Asn Val Ile Ile Ala Lys His Ala Ala Asp Phe

915 920 925

Asn Lys Trp Gly Val Thr Ser Phe Gln Met Ala Pro Gln Tyr Arg Ser

930 935 940

Ser Thr Asp Gly Ser Phe Leu Asp Ala Val Asp Thr Val Gln Asn Gly

945 950 955 960

Tyr Ala Phe Thr Asp Arg Tyr Asp Leu Gly Phe Asn Ala Ala Asp Gly

965 970 975

Ser Lys Asn Pro Thr Lys Tyr Gly Thr Asp Glu Asp Leu Arg Asn Ala

980 985 990

Ile Lys Ser Leu His Ala Gln Lys Thr Tyr Asp Gly Ser Ser Ile Gln

995 1000 1005

Val Met Ala Asp Phe Val Pro Asp Gln Leu Tyr Asn Met Pro Leu Glu

1010 1015 1020

Gln Ala Val Ser Val Ile Arg Thr Asp Lys Tyr Gly Val Asn Ser Glu

1025 1030 1035 1040

Asn Pro Asp Ile Gln Asn Ile Ile Tyr Ala Ala Asn Ile Lys Ser Ser

1045 1050 1055

Gly Thr Asp Tyr Gln Ser Ile Tyr Gly Gly Lys Tyr Leu Ala Glu Leu

1060 1065 1070

Gln Lys Asn Pro Leu Phe Lys Ser Leu Phe Asp Arg Ile Gln Ile Ser

1075 1080 1085

Thr Lys Lys Thr Ile Asp Pro Asn Thr Arg Ile Thr Gln Trp Ser Ala

1090 1095 1100

Lys Tyr Phe Asn Gly Ser Asn Ile Gln Gly Lys Gly Ile Asn Tyr Val

1105 1110 1115 1120

Leu Lys Asp Trp Ala Ser Asn Lys Tyr Phe Asn Val Ser Ser Asn Asp

1125 1130 1135

Asp Met Tyr Ser Arg Leu Pro Lys Gln Leu Met Asn Gln Glu Ser Asn

1140 1145 1150

Thr Gly Phe Ile Val Asp Asp Ile Gly Val Lys Tyr Tyr Ser Ile Ser

1155 1160 1165

Gly Tyr Gln Ala Lys Asn Thr Phe Val Glu Asp Gly Asn Gly Glu Trp

1170 1175 1180

Tyr Tyr Phe Asp Asn Asp Gly Tyr Met Val Lys Ser Thr Glu Glu Ser

1185 1190 1195 1200

Gly Pro Leu Arg Thr Val Asn Ala Ser Ser Lys Lys Tyr Tyr Ile Leu

1205 1210 1215

Pro Asn Gly Val Glu Ile Arg Asn Ser Phe Gly Gln Asp Ile Gln Gly

1220 1225 1230

Asn Thr Tyr Tyr Phe Asp Ala Arg Gly Glu Met Val Thr Ser Gln Tyr

1235 1240 1245

Ile Ser Asp Asp Thr Gln Asn Ile Tyr Tyr Phe Asn Asn Asp Gly Thr

1250 1255 1260

Met Ala Lys

1265

<210> 2

<211> 3810

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

tttgaaaaag cgccggattc tgtccctgaa actatcactg gcggccgcta ttccctgaag 60

gacggctact acgtttacct ggataaacaa ggtaaacagg tggtgggtcc gaaaaacatc 120

gacaaccatc tgcagtactt cgacgaaacc actggtaaac aggttaaagg cgacttccgc 180

tccgttaacg gtaaacgtat ctattttaac gcgaacctgg gctacgcgga cgactacact 240

accgacgttg cgggcaagct ggtgggctac gacagcaacg gtaaccaggt gaaagcaggc 300

tacgtgacca actctcaggg taaaacctac tactttaaca accagggtga agctatcatt 360

ggcctgaaga ccgataacaa caaaactcag tattttggtc cggacggtgc gcaggttaaa 420

ggtgcattcc agcaggtaaa cggcaaaaac atttacttcg acgctcaaac cggctacgcg 480

cgtcagaacg ttggcttcct ggacggtacg gcaaagggtt ttgacgaaca gggcaaccag 540

atcaaatctg gtattgcgac ggacctgtcc ggtaacgttt attatttcga tgcttccggt 600

aagatgctga ctggtgtgca gaacatcgac ggcaaaaaat attacttcga cgaacaaggt 660

caccgccgtc gtaactatgc aggtgttttc aacaacgaat tcatctattt cggtctggat 720

ggtgttggcc agtccgccat cgaataccag ttcgaaaaag gtctgaccag ccagaacagc 780

gtggccacta gccacaacgc cgctaagtcc tatgatacca aatccttcac caatgttgat 840

ggcttcctga ccgccaactc ctggtaccgt ccgaccgata tcctgcgtaa cggcactaaa 900

tgggaaccgt ctactgagac cgattttcgt ccgctgctga tgacttggtg gccggataaa 960

gaagtccagg cgaactatct gaactacatg agcgcgctgg gcctgggtga tcagaaaatc 1020

tacaccggtg catcttccca gctggacctg aacaacgctg ctctgatcgt ccaggaagcc 1080

atcgagaaaa aaatctctct ggaaaagagc accaagtggc tggacgacag catcaaatct 1140

ttcattaaaa gcaaacgtaa ggacattcag ggtaacctgg tagatactaa tccgggctgg 1200

accatcgact ccgaaactgg ctctactaac cacctgcaga acggtgcttt catctttacc 1260

aactctccgc tggtgcctga agctaacgcc gctgaaggta atcgtctgat taaccgtacc 1320

ccgtctcagc agactggtaa ccacatcagc tacgcttctc agccgtactc cggtgatgat 1380

tggggctacg aactgctgct gggcaatgac gtggataaca gcaacccgat cgttcaggcc 1440

gagcagctga actggattca ctacctgatg aacttcggca ccatcacggc accacaggat 1500

cctgatgcgc acctggccaa cttcgacagc attcgtatcg acgcagtgga taacgttgat 1560

gcggatctgc tgcagatcgc aggtgattac ttcaaagctg cttaccaggt aggtgaaaac 1620

gacaaaaacg ccaaccaaca cattcacatc ctggaagatt ggtctccgaa cgacgtctgg 1680

tacaaccagc aagtaaacgg caattctcag ctgaccatgg acgcaaccat gcagaaccag 1740

ctgctggcct ccctgacgcg tccgatcact tctcgtgaca gcatgaagtc ttttactaaa 1800

gatgccctgc tggtccaccg taccgcagac aactcctaca accaggcagt tccgaactac 1860

agctttatcc gcgcccacga ttccgaagtt cagacgatta tcgctaaaat tatcagcgac 1920

aaacatccgg acctgtaccc gaccgtggac aaagctctgc tggcgaaaga ctccgctctg 1980

tacgatgaag ctttcaccga gtataacgcg gatatgcaga aaatcagcag ccagaaacag 2040

tacacccata ataacatgcc ttctgcttac gcgatcctgc tgactaacaa ggacaccgtc 2100

ccgcgtgtat actacggtga cctgttcact gataacggtg aatatatggc caacaaaacc 2160

ccttactacg atgccattac tagcctgctg acggcgcgta ccaaattcgt tagcggcggt 2220

cagtccctga gcgtggataa aaatgacgtt ctgacctctg tccgttacgg taaaggtgca 2280

ctgtctgcga ccgacaacgg ttcctccgat acccgtaacc agggcatcgg tgtaattgtt 2340

tccaacaacc caaacctgga cctgaacaac gacaaagtta ccctgtctat gggtatctct 2400

cacgcgcatc aggcctatcg tccgctgctg ctgaccaact ctcagggcat tgtggcctac 2460

gcaaccgatt ccgaagtgcc gcagaacctg tacaaaacca cgaacgacaa aggcgaactg 2520

accttcgatg cctccgaaat caaaggctac gatacggtcc agacgtctgg ctatctggca 2580

gtttgggtcc cagtgggcgc ttctgacgaa caggacgcac gcactattgc atccacggaa 2640

aaaaacaacg gcaatagcgt ttaccactct aacgcggctc tggatagcca actgatttac 2700

gaaggtttca gcaacttcca gaccgttccg tctaaaaacg cgagcgcgga cgaatacgca 2760

aacgttatca ttgcgaaaca tgctgcggac ttcaataaat ggggtgttac cagcttccag 2820

atggcaccgc agtaccgttc tagcaccgac ggctctttcc tggacgccgt agatactgtt 2880

cagaacggct acgcgttcac cgatcgttac gacctgggct tcaacgcggc ggatggttcc 2940

aaaaacccga ctaaatacgg cacggacgag gacctgcgta acgcaattaa atctctgcat 3000

gcgcagaaaa cttatgatgg ctctagcatc caggtcatgg ctgattttgt tccggaccag 3060

ctgtacaaca tgccgctgga acaggcagtg tctgtgatcc gcaccgataa gtacggcgtt 3120

aattccgaga acccggacat tcagaatatc atttacgcag ctaatatcaa aagctccggt 3180

actgactacc agagcattta cggtggcaaa tacctggcag aactgcagaa aaacccgctg 3240

ttcaagtccc tgttcgatcg tattcagatt agcactaaaa aaaccatcga ccctaatact 3300

cgcattaccc agtggtccgc gaagtacttc aacggcagca atatccaggg caagggtatc 3360

aattacgttc tgaaagactg ggctagcaac aaatatttca atgttagctc taacgacgac 3420

atgtatagcc gtctgccgaa acaactgatg aaccaggagt ccaacactgg cttcatcgtg 3480

gacgacattg gcgtaaaata ttactctatt agcggttacc aagcgaaaaa caccttcgtg 3540

gaggatggca acggtgaatg gtactacttc gacaatgatg gttacatggt aaaatctacc 3600

gaagaatctg gtccactgcg taccgttaac gcctctagca aaaaatacta catcctgcca 3660

aacggtgttg aaatccgtaa ctctttcggc caggacatcc agggtaacac ttattacttc 3720

gatgcacgcg gcgagatggt gacttcccag tacatttctg acgatacgca gaacatctac 3780

tacttcaaca acgacggtac catggctaaa 3810

<210> 3

<211> 23

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

Met Lys Lys Lys Ile Trp Leu Leu Ala Leu Gly Leu Val Leu Ala Leu

1 5 10 15

Ala Phe Ile Ser Ala Ser Ala

20

<210> 4

<211> 69

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

atgaaaaaaa agatctggct gctggctctg ggcctggttc tggcgctggc cttcatcagc 60

gcttccgcg 69

Claims

1.一种右旋糖酐蔗糖酶，具体为一种催化生产微分子量右旋糖酐的右旋糖酐蔗糖酶突变体DexT1，其特征在于：所述右旋糖酐蔗糖酶氨基酸序列如SEQ ID NO：1所示。

2.权利要求1所述右旋糖酐蔗糖酶的编码基因，其特征在于：所述编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO：2所示。

3.权利要求2所述右旋糖酐蔗糖酶的编码基因的分泌表达信号肽，其特征在于：所述分泌表达信号肽氨基酸序列如SEQ ID NO.3所示。

4.根据权利要求3所述的分泌表达信号肽，其特征在于：所述信号肽编码基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示。

5.一种重组载体，其特征在于：含有权利要求2所述右旋糖酐蔗糖酶编码基因以及权利要求4所述信号肽编码基因。

6.一种基因工程菌，其特征在于：以大肠杆菌BL21为宿主细胞，通过载体表达连接含有权利要求5所述重组载体。

7.权利要求1所述右旋糖酐蔗糖酶的制备方法，其特征在于：步骤如下：将右旋糖酐蔗糖酶及其分泌表达信号肽的编码基因与表达载体pET28a(+)相连接，并将连接产物转化至大肠杆菌BL21，获得重组菌株；培养重组菌株，诱导重组突变内右旋糖酐蔗糖酶的表达；离心获得含权利要求1所述右旋糖酐蔗糖酶的酶液。