CN113004387A - 一种绵羊角角蛋白、其制备方法、其药物组合物及用途 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种绵羊角角蛋白、其制备方法、其药物组合物及用途。具体公开了一种绵羊角角蛋白,其制备方法是通过将绵羊角去塞、干燥、粉碎、提取和纯化,提取出角蛋白。含有该角蛋白和药学上可接受的载体或赋形剂的药物组合物。其药理实验表明本发明的绵羊角角蛋白在体内具有较好的解热、镇痛、抗惊厥、镇咳、祛痰、降血压、抗炎、抗病毒活性。

Description

一种绵羊角角蛋白、其制备方法、其药物组合物及用途
技术领域
本发明涉及一种绵羊角角蛋白,其制备方法,含有该角蛋白的药物组合物,以及该角蛋白和所述药物组合物在制备解热、镇痛、抗惊厥、镇咳、祛痰、降血压、抗炎、抗病毒药物中的应用。
背景技术
绵羊角为牛科(Bovidae)动物绵羊属(Ovis)绵羊(OvisariesLinnaeus) 的角。功能主治在《全国中草药汇编》中描述为滋补强壮,清热明目。通过文献史料比较发现,绵羊角的功能主治与濒危动物药羚羊角存在一定的区别,与有明确记载及中药复方制剂中能够替代羚羊角的山羊角也存在一定的差别。在《中国药典》中明确记载,羚羊角的功能主治为平肝息风,清肝明目,散血解毒。用于肝风内动,惊痫抽搐,妊娠子痫,高热痉厥,癫痫发狂,头痛眩晕,目赤翳障,温毒发斑,痈肿疮毒。而山羊角功能主治在《本草新编》中描述为专活死血,磨山羊角一分,入酒中送下;在《医林纂要》中描述为功用近羚羊角;且在《中国药典》中药成方制剂中已将石斛夜光丸、金振口服液等品种中的羚羊角替代为山羊角,表明了山羊角与羚羊角功能主治的相似性。但是,通过现代研究,发现绵羊角同样具有羚羊角所体现的部分药理作用,以此为绵羊角替代羚羊角,丰富替代角类品种奠定了基础。因此对于绵羊角的研究,尤其是对于起主要作用的角蛋白类成分的研究值得深入探索和开发,以保证绵羊角在临床应用中的安全性、方便性、资源可持续性及功能多用性。在此基础上,我们对绵羊角角蛋白进行提取纯化,制备出绵羊角角蛋白,为后续的开发利用奠定基础。
发明内容
本发明解决的技术问题是提供一类绵羊角角蛋白、其制备方法,药物组合物和应用。
为解决本发明的技术问题,本发明提供了如下的技术方案:
本发明技术方案的第一方面是提供了一种绵羊角角蛋白的制备方法,包括:
方法一:
称量粉碎或切块后的绵羊角用溶剂提取,得到提取液,提取液经干燥后得到绵羊角角蛋白,其中所述的溶剂选自纯水。优选的绵羊角原药材是去塞、洗净后粉碎或切块的绵羊角。最优选的绵羊角经去塞、洗净、干燥后并粉碎过100目筛,以增大与溶剂的接触面积,提高提取效率。
进一步的,称量粉碎或切块后的绵羊角,以每千克绵羊角用3~10 升的纯水,优选为5~8升,更优选为5~6升;提取2~5次,优选为3次;每次2~8h,优选为3~5h;合并提取液,干燥后得到绵羊角角蛋白;提取可以在静态或动态下进行,优选在动态条件下,例如搅拌或超声。
方法二:
称量粉碎或切块后的绵羊角用纯水提取后,取药渣再用溶剂提取,得到提取液;提取液经纯化、干燥后得绵羊角角蛋白;其中溶剂选自无机盐的水溶液;优选的无机盐的水溶液中的无机盐包括尿素、亚硫酸氢钠、十二烷基硫酸钠其中的一种或任选的两种或三种试剂的混合物或其中加入一定量的蛋白酶抑制剂。
进一步的,称量粉碎或切块后的绵羊角用纯水提取后,取药渣再用无机盐的水溶液提取,按每千克药渣使用的无机盐水溶液为5~100 升纯水,优选为30~70升,更优选为40~50升;尿素10~25千克,优选为8~20千克,更优选为12~15千克;亚硫酸氢钠1~5千克,优选为2~4千克,更优选为2~3千克;十二烷基硫酸钠0.25~2千克,优选为0.5~1.5千克,更优选为0.75~1千克;蛋白酶抑制剂0~0.5升,优选为0~0.1升计算,25~85℃下,优选为50~80℃,更优选为65~75℃;还原提取3~24h,提取液经离心过滤后,得到的提取液经纯化、干燥后即得绵羊角角蛋白;提取可以在静态或动态下进行,优选在动态条件下,例如搅拌或者超声提取。
进一步的,上述步骤得到的提取液需经过透析、膜超滤或盐析的纯化方法,其中透析方法中,将提取液置于透析袋中,透析袋的截留分子量为3500-14000Da,优选为3500-5000Da;将装有提取液的透析袋放置于装有纯水的容器中,提取液的体积与纯水的体积比是1:20~60,优选为1:40~50;换水间隔时间为6~12h,优选为8~10h;换水5~10次,优选为6~8次,透析完成后回收透析袋中的截留液,干燥,即得绵羊角角蛋白。
进一步的,对上述步骤得到的绵羊角角蛋白,测定其蛋白质的种类及含量,其中蛋白质Q0VD04的含量为5.00~15.00%;Q14818的含量为2.00~25.00%;A5PJJ1的含量为1.00~15.00%;F1MXG6的含量为 10.00~30.00%;F1MC11的含量为1.00~10.00%;G3X7V4的含量为 0.10~5.00%;M0QVY0的含量为1.00~10.00%;Q08D91的含量为 1.00~10.00%;A0A140T867的含量为0.00~5.00%;F1N362的含量为 1.00~10.00%;E1B898的含量为1.00~15.00%;F1M198的含量为 1.00~10.00%;Q5XQN5的含量为1.00~15.00%。
本发明技术方案的第二方面是提供了第一方面所述包括方法一、方法二的两种绵羊角角蛋白制备方法制备得到的绵羊角角蛋白,以及两种制备方法制备得到的绵羊角角蛋白的混合物。所述的两种制备方法制备得到的绵羊角角蛋白的混合物也为本发明所述的绵羊角角蛋白,本发明中统一均称之为绵羊角角蛋白。
本发明技术方案的第三方面是提供了一种药物组合物,所述的组合物包含作为有效成分的第二方面所述的绵羊角角蛋白及药学上可接受的载体或赋形剂。
本发明所述的药物组合物可根据本领域公知的方法制备。用于此目的时,如果需要,可将本发明绵羊角角蛋白与一种或多种固体或液体药物赋形剂和/或辅剂结合,制成可作为人药或兽药使用的适当的施用形式或剂量形式。
本发明绵羊角角蛋白或含有它的药物组合物可以单位剂量形式给药,给药途径可为肠道或非肠道,如口服、肌肉、皮下、鼻腔、口腔粘膜、眼、肺、皮肤、阴道、腹膜、直肠等,优选口服给药。
给药剂型可以是液体剂型、固体剂型或半固体剂型。液体剂型可以是溶液剂(包括真溶液和胶体溶液)、乳剂(包括水包油型、油包水型和复乳)、混悬剂、注射剂(包括水针剂、粉针剂和输液)、滴眼剂、滴鼻剂、洗剂和搽剂等。固体剂型可以是片剂(包括普通片、肠溶片、含片、分散片、咀嚼片、泡腾片、口腔崩解片)、胶囊剂(包括硬胶囊、软胶囊、肠溶胶囊)、颗粒剂、散剂、微丸、滴丸、栓剂、膜剂、贴片、气(粉)雾剂、喷雾剂等;半固体剂型可以是软膏剂、凝胶剂、糊剂等。
本发明绵羊角角蛋白可以制成普通制剂、也可以是缓释制剂、控释制剂、靶向制剂及各种微粒给药系统。
为了将单位给药剂型制成片剂,可以广泛使用本领域公知的各种赋形剂,包括稀释剂、黏合剂、润湿剂、崩解剂、润滑剂、助流剂。稀释剂可以是淀粉、糊精、蔗糖、葡萄糖、乳糖、甘露醇、山梨醇、木糖醇、微晶纤维素、硫酸钙、磷酸氢钙、碳酸钙等;湿润剂可以是水、乙醇、异丙醇等;粘合剂可以是淀粉浆、糊精、糖浆、蜂蜜、葡萄糖溶液、微晶纤维素、阿拉伯胶浆、明胶浆、羧甲基纤维素钠、甲基纤维素、羟丙基甲基纤维素、乙基纤维素、丙烯酸树脂、卡波姆、聚乙烯吡咯烷酮、聚乙二丙醇等;崩解剂可以是干淀粉、微晶纤维素、低取代羟丙基纤维素、交联聚乙烯吡咯烷酮、交联羧甲基纤维素钠、羧甲基淀粉钠、碳酸氢钠与构椽酸、碳酸钙、聚氧乙烯山梨糖醇脂肪酸酯、十二烷基磺酸钠;润滑剂和助流剂可以是滑石粉、二氧化硅、硬脂酸盐、酒石酸、液体石蜡、聚乙二醇等。
还可以将片剂进一步制成包衣片,例如糖包衣片、薄膜包衣片、肠溶包衣片,或双层片和多层片。
为了将给药单元制成丸剂,可以广泛使用本领域公知的各种载体。关于载体的例子是,例如稀释剂与吸收剂,如葡萄糖、乳糖、淀粉、可可脂、氢化植物油、聚乙烯吡咯烷酮、月桂酸聚乙二醇甘油酯、高岭土、滑石粉等;粘合剂,如阿拉伯胶、黄菩胶、明胶、乙醇、蜂蜜、液糖、米糊或面糊等;崩解剂,如琼脂粉、干燥淀粉、海藻酸盐、十二烷基磺酸钠、甲基纤维素、乙基纤维素等。
为了将给药单元制成栓剂,可以广泛使用本领域公知的各种载体。关于载体的例子是,例如聚乙二醇、卵磷脂、可可脂、高级醇、高级醇的酯、明胶、半合成甘油酯等。
为了将给药单元制成胶囊,将绵羊角角蛋白或含有绵羊角角蛋白的药物组合物与上述的各种载体混合,并将由此得到的混合物置于硬的明胶胶囊或软胶囊中。也可将有效成分本发明绵羊角角蛋白制成微囊剂,混悬于水性介质中形成混悬剂,亦可装入硬胶囊中应用。
例如,将本发明绵羊角角蛋白制成溶液剂、混悬剂溶液剂、乳剂、冻干粉针剂,这种制剂可以是含水或非水的,可含一种和/或多种药效学上可接受的载体、稀释剂、粘合剂、润滑剂、防腐剂、表面活性剂或分散剂。如稀释剂可选自水、乙醇、聚乙二醇、l,3-丙二醇、乙氧基化的异硬脂醇、多氧化的异硬脂醇、聚氧乙烯山梨醇脂肪酸酯等。另外,为了制备等渗注射液,可以向注射用制剂中添加适量的氯化钠、葡萄糖或甘油,此外,还可以添加常规的助溶剂、缓冲剂、pH调节剂等。这些辅料是本领域常用的。
此外,如需要,也可以向药物制剂中添加着色剂、防腐剂、香料、矫味剂、甜味剂或其它材料。
为达到用药目的,增强治疗效果,本发明的绵羊角角蛋白或药物组合物可用任何公知的给药方法给药。
本发明绵羊角角蛋白药物组合物的给药剂量取决于许多因素,例如所要预防或治疗疾病的性质和严重程度,患者或动物的性别、年龄、体重、性格及个体反应,给药途径、给药次数、治疗目的,因此本发明的治疗剂量可以有大范围的变化。一般来讲,本发明中药学成分的使用剂量是本领域技术人员公知的。可以根据本发明绵羊角角蛋白组合物中最后的制剂中所含有的实际药物数量,加以适当的调整,以达到其治疗有效量的要求,完成本发明的预防或治疗目的。本发明绵羊角角蛋白的每天的合适剂量范围:本发明的绵羊角角蛋白的用量为 0.01~500mg/Kg体重,优选为0.5~100mg/Kg体重,更优选为1~50 mg/Kg体重,最优选为2~30mg/Kg体重。上述剂量可以单一剂量形式或分成几个,例如二、三或四个剂量形式给药,这取决于给药医生的临床经验以及包括运用其它治疗手段的给药方案。每一种治疗所需总剂量可分成多次或按一次剂量给药。本发明的绵羊角角蛋白或药物组合物可单独服用,或与其他治疗药物或对症药物合并使用并调整剂量。
本发明技术方案的第四方面是提供了第二方面所述绵羊角角蛋白或第三方面所述药物组合物在制备解热、镇痛、抗惊厥、镇咳、祛痰、降血压、抗炎、抗病毒药物中的应用。
本发明具有的技术优势为:
1、为纯天然成分。
2、动物体内模型研究表明其具有明显的解热、镇痛、抗惊厥、镇咳、祛痰、降血压、抗炎、抗病毒活性。
3、药材易得,提取工艺简单,适合大规模工业化生产。
附图说明
图1:绵羊角角蛋白的制备流程图。
具体实施方式
下面的实施例用来进一步说明本发明,但这并不意味着对本发明的任何限制。
实施例1:绵羊角角蛋白的制备方法
称量去塞、清洗、晾干后的绵羊角,粉碎,过100目筛,用6倍量纯水室温搅拌提取3次,提取时间分别为5h,4h和3h,离心,合并提取液,干燥后得到绵羊角角蛋白1-1。纯水提取后的药渣2g中加入纯水30ml,尿素9g,亚硫酸氢钠2g,十二烷基硫酸钠0.45g,75℃下超声提取3h,离心,即得绵羊角角蛋白提取液,提取液置于截留分子量为3500Da的透析袋中,透析过程中提取液与水的比为1:50,每隔10h 换水一次,换水8次后,回收透析袋中的绵羊角角蛋白截留液,冷冻干燥,即得绵羊角角蛋白1-2;对所得的绵羊角角蛋白测定蛋白质的种类及含量,其中蛋白质Q0VD04的含量为11.93%;Q14818的含量为 19.36%;A5PJJ1的含量为2.64%;F1MXG6的含量为22.75%%;F1MC11 的含量为2.02%;G3X7V4的含量为0.42%;M0QVY0的含量为4.55%; Q08D91的含量为2.22%;F1N362的含量为1.82%;E1B898的含量为5.60%;F1M198的含量为2.50%;Q5XQN5的含量为5.01%。提取纯化的流程图见附图1。
实施例2:绵羊角角蛋白的制备方法
称量去塞、清洗、晾干后的绵羊角,粉碎,过100目筛,用6倍量纯水室温搅拌提取3次,提取时间分别为5h,4h和3h,离心,合并提取液,干燥后得到绵羊角角蛋白2-1。纯水提取后的药渣2g中加入纯水30ml,尿素9g,亚硫酸氢钠2g,十二烷基硫酸钠0.45g,蛋白酶抑制剂0.3ml,75℃下超声提取3h,离心,即得绵羊角角蛋白提取液,提取液置于截留分子量为3500Da的透析袋中,透析过程中提取液与水的比为1:50,每隔10h换水一次,换水8次后,回收透析袋中的绵羊角角蛋白截留液,冷冻干燥,即得绵羊角角蛋白2-2;对所得的绵羊角角蛋白测定蛋白质的种类及含量,其中蛋白质Q0VD04的含量为 11.80%;Q14818的含量为4.53%;A5PJJ1的含量为7.57%;F1MXG6 的含量为23.16%;F1MC11的含量为3.71%;G3X7V4的含量为0.44%; M0QVY0的含量为3.41%;Q08D91的含量为3.74%;A0A140T867的含量为0.23%;F1N362的含量为1.86%;E1B898的含量为9.45%; F1M198的含量为4.16%;Q5XQN5的含量为7.55%。提取纯化的流程图见附图1。
药理实验
实施例1:绵羊角角蛋白对LPS诱导SD大鼠发热模型的药效研究
动物:雄性SD大鼠
药品与试剂:脂多糖、阿司匹林、不同批次绵羊角角蛋白(S-1:绵羊角角蛋白的制备方法实施例一绵羊角角蛋白1-2;S-2:绵羊角角蛋白的制备方法实施例二绵羊角角蛋白2-2;)
实验方法:实验动物在实验环境(温度22℃±2℃,相对湿度50%±2%)中适应1天后,分别于早8:00及15:00预适应测量肛温操作,实验前12h禁食不禁水,测定肛温前让动物排空粪便。每次测温前电子体温计探头涂抹凡士林,插入大鼠直肠2cm(可在2cm处标记,确保每次插入深度一致),待读数稳定以后记录体温值;腹腔注射脂多糖复制大鼠发热模型:造模前测大鼠体温,筛选出体温在36.2℃-37.3℃的合格大鼠,随机分组,每组8只。口服给予阿司匹林及不同剂量绵羊角角蛋白样品后立即腹腔注射脂多糖(20ug/kg、2ml/kg),正常对照组腹腔注射等体积生理盐水,2h后开始监测大鼠体温,共监测8h。
实验分组:正常对照组;脂多糖发热模型组;阿司匹林:300mg/kg 组;绵羊角角蛋白样品:10mg/kg组、50mg/kg组。
数据统计:根据实验当天测量的各时间点体温值,计算各组大鼠体温均值、标准差及标准误,应用TTEST将各组数据进行组间比较, P<0.05认为有显著性差异。
实验结果(详见表1-1、1-2):
1、腹腔注射20ug/kg脂多糖可成功诱导大鼠体温升高,模型组大鼠在造模2h、4h、6h、8h体温明显升高,与正常组比较,P<0.05,有统计学差异,模型稳定。
2、阳性工具药阿司匹林组在造模2h、4h、6h、8h均可以有效抑制模型大鼠体温升高,与模型组比较,P<0.05,有统计学差异,阳性工具药表现较稳定。
3、绵羊角角蛋白样品S-1 10mg/kg,S-1 50mg/kg在造模后2h均可以有效降低模型大鼠体温,S-2 50mg/kg组在造模后2h及4h可明显降低模型大鼠体温,持续降温作用时间较长,与模型组比较,P<0.05,有统计学差异。
表1-1不同剂量绵羊角角蛋白样品对LPS诱导大鼠发热模型的影响
Figure BDA0002326556260000091
与模型组比较:#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001;与正常对照组比较:***P<0.001
表1-2不同剂量绵羊角角蛋白样品对LPS诱导大鼠发热模型的影响
Figure BDA0002326556260000092
与模型组比较:#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001;与正常对照组比较:***P<0.001
实验例2:绵羊角角蛋白样品对对酵母诱导SD大鼠发热模型的药效研究
动物:雄性SD大鼠
药品及试剂:酵母菌,阿司匹林,不同批次绵羊角角蛋白(S-1:绵羊角角蛋白的制备方法实施例一绵羊角角蛋白1-2;S-2:绵羊角角蛋白的制备方法实施例二绵羊角角蛋白2-2;)
实验方法:实验动物的准备:实验动物在实验环境(温度22℃±2℃,相对湿度50%±2%)中适应1天后,分别于早8:00及15:00进行预适应测量肛温操作,实验前12h禁食不禁水,测定肛温前让动物排空粪便。每次测温前电子体温计探头涂抹凡士林,插入大鼠直肠2cm(可在2cm处标记,确保每次插入深度一致),待读数稳定以后记录体温值。皮下注射干酵母复制大鼠发热模型:造模前测大鼠体温,筛选出体温在36.2℃-37.3℃的合格大鼠,随机分组,每组8只。口服给予阿司匹林、不同剂量绵羊角角蛋白样品后立即皮下注射20%酵母菌混悬液(10ml/kg),正常对照组皮下注射等体积生理盐水,2h后开始监测大鼠体温,此后每间隔2h监测体温1 次,共监测8h。
实验分组:正常对照组;酵母菌发热模型组;阿司匹林:300mg/kg 组;绵羊角角蛋白样品:10mg/kg组、50mg/kg组。
数据统计:根据实验当天测量的各时间点体温值,计算各组大鼠体温均值、标准差及标准误,应用TTEST将各组数据进行组间比较, P<0.05认为有显著性差异。
实验结果(详见表2-1、2-2):
1、模型组大鼠在造模2h、4h、6h、8h体温明显升高,与正常组比较, P<0.05,有统计学差异,模型建立成功且稳定可靠。
2、阳性工具药阿司匹林组在造模4h、6h、8h均可以有效抑制模型大鼠体温升高,与模型组比较,P<0.05,有统计学意义,阳性工具药阿司匹林表现稳定。
3、绵羊角角蛋白样品在造模后均可不同程度抑制模型大鼠体温升高, 其中S-150mg/kg组在造模后6h及8h均可有效抑制模型大鼠体温升高, S-2 10mg/kg组,S-2 50mg/kg组,在造模后4h均可有效抑制模型大鼠体温升高,且与模型组比较,P<0.05,具有统计学意义。
表2-1不同剂量绵羊角角蛋白样品对酵母菌诱导大鼠发热模型的影响
Figure BDA0002326556260000111
与模型组比较:#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001;与正常对照组比较:***P<0.001
表2-2不同剂量绵羊角角蛋白样品对酵母菌诱导大鼠发热模型的影响
Figure BDA0002326556260000112
与模型组比较:#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001;与正常对照组比较:***P<0.001
实验例3:绵羊角角蛋白对对ICR小鼠醋酸扭体的药效研究
动物:ICR小鼠雌性
药品与试剂:阿司匹林、生理盐水、冰醋酸、不同批次绵羊角角蛋白(S-1:绵羊角角蛋白的制备方法实施例一绵羊角角蛋白1-2;S-2:绵羊角角蛋白的制备方法实施例二绵羊角角蛋白2-2;)
实验方法:实验动物适应环境1天后,提前1h分别口服给予阿司匹林300mg/kg、绵羊角角蛋白样品50mg/kg、200mg/kg,给药体积为10ml/kg;而后腹腔注射0.6%醋酸溶液,观察15分钟内动物出现扭体潜伏期(秒)及次数。
实验分组:模型组;阿司匹林:300mg/kg组;绵羊角角蛋白样品: 50mg/kg组、200mg/kg组。
数据统计:所有组别数据计算均值及标准误,应用TTEST,与模型组比较,P<0.05认为有统计学差异。
实验结果(详见表3-1、3-2):
1、阿司匹林300mg/kg组可明显后延扭体潜伏期和减少扭体次数,具有一定的镇痛作用,与模型组比较,P<0.05,有统计学意义。
2、绵羊角角蛋白样品中S-2 50mg/kg组,S-2 200mg/kg组表现出一定的减少小鼠扭体次数作用,且与模型组比较,P<0.05,有统计学意义。
表3-1不同剂量绵羊角角蛋白样品对ICR小鼠醋酸扭体实验的影响
组别 N 体重(克) 扭体潜伏期(秒) 扭体次数(次)
模型组 14 24.0±0.2 232.5±19.3 21.6±3.1
阿司匹林300mg/kg 14 23.7±0.2 361.1±36.1** 8.0±1.4***
S-1 50mg/kg 12 23.8±0.2 236.3±18.0 13.7±2.5
S-1 200mg/kg 12 23.7±0.2 210.5±17.7 19.7±2.9
与模型组比较:*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001
表3-2不同剂量绵羊角角蛋白样品对ICR小鼠醋酸扭体实验的影响
Figure BDA0002326556260000121
Figure BDA0002326556260000131
与模型组比较:*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001
实验例4:绵羊角角蛋白样品对对热板实验中ICR小鼠疼痛阈值的药效研究
动物:ICR小鼠雌性
药品与试剂:加巴喷丁、不同批次绵羊角角蛋白(S-1:绵羊角角蛋白的制备方法实施例一绵羊角角蛋白1-2;S-2:绵羊角角蛋白的制备方法实施例二绵羊角角蛋白2-2;)
实验方法:动物适应实验环境1天后,将ICR小鼠进行痛阈值筛选(热板温度设定55℃±0.2℃),选择痛阈值在10S-30S之间的作为合格小鼠,随机分组,每组10只,称重并做苦味酸标记。15:00口服给予阳性工具药加巴喷丁(300mg/kg,10ml/kg)、绵羊角角蛋白样品(50mg/kg、200mg/kg,10ml/kg)。第二天9:00称重后再次口服给予加巴喷丁及绵羊角角蛋白样品(剂量同第一天),1h后开始进行痛阈值测量,共监测给药后1h、2h、3h三个时间点。
实验分组:模型组;加巴喷丁:300mg/kg组;绵羊角角蛋白样品: 50mg/kg组、200mg/kg组。
数据统计:将所得每组数据计算各组小鼠痛阈值均值、标准差及标准误,应用TTEST将各组痛阈值与正常组痛阈值进行组间比较,P<0.05 认为有显著性差异。
实验结果(详见表4-1、4-2):
1、加巴喷丁300mg/kg组给药后1h、2h及3h均能不同程度增高ICR 小鼠痛阈值,与模型组比较,P<0.05,有统计学意义。
2、绵羊角角蛋白样品中S-1 50mg/kg组在给药后3h均可明显增高ICR 小鼠痛阈值,且与模型组比较,P<0.05,有统计学意义。
表4-1不同剂量绵羊角角蛋白样品对ICR小鼠疼痛阈值的影响
Figure BDA0002326556260000141
与模型组比较:*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001
表4-2不同剂量绵羊角角蛋白样品对对ICR小鼠疼痛阈值的影响
Figure BDA0002326556260000142
与模型组比较:*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001
实验例5:绵羊角角蛋白样品对对戊四唑(PTZ)致小鼠癫痫的药效研究
动物:ICR小鼠雄性
药品与试剂:瑞替加滨、不同批次绵羊角角蛋白(S-1:绵羊角角蛋白的制备方法实施例一绵羊角角蛋白1-2;S-2:绵羊角角蛋白的制备方法实施例二绵羊角角蛋白2-2;)
实验方法:模型制备及给药,造模前1天下午给药一次,造模当天灌胃受试药后1h腹腔注射PLO-225mg/kg(造模剂),阳性药在造模前20min给药一次即可。注射PLO后持续观察30min;观察指标:①癫痫发作情况:Ⅱ级~IV级发作时间;②死亡时间;发作级别:参照Racine分级标准:0级:没有任何反应;I级:表现为面部肌肉或是嘴角的抽动;Ⅱ级:可以点头;Ⅲ级:一侧肢体抽搐;IV级:强直或全身肢体抽搐;V级:癫痫全面大发作(全身强直性惊厥发作)。
实验分组:模型组;瑞替加滨:70mg/kg组;瑞替加滨:60mg/kg 组;绵羊角角蛋白样品:50mg/kg组、200mg/kg组。
数据统计:统计实验中各组小鼠IV级发作及死亡例数;Ⅱ级、Ⅲ级及IV级潜伏期,未发作至IV级的小鼠潜伏期记作最大值1800s。例数统计用卡方检验统计。潜伏期计算均值及标准误,应用TTEST,将模型组与其他各组进行组间比,P<0.05认为有显著性差异。
实验结果(详见表5-1、5-2;表6-1、6-2):
1、在绵羊角角蛋白S-1样品对PTZ致小鼠癫痫实验中,模型组Ⅳ级发作率为90%。80只小鼠有2只死亡。阳性药可以显著延长小鼠Ⅲ级癫痫发作潜伏期,并且90%抑制癫痫Ⅳ级发作。在绵羊角角蛋白S-2样品对PTZ致小鼠癫痫实验中,模型组IV级发作率为100%。110只小鼠有5只死亡。阳性药可以抑制癫痫IV级发作率,并显著延长小鼠Ⅲ级, IV级癫痫发作潜伏期。说明造模成功。
2、在癫痫Ⅲ级潜伏期比较中,S-1 200mg/kg组,S-2 50mg/kg组,S-2 200mg/kg组能有效抑制癫痫Ⅲ级发作率,且与模型组比较P<0.05,具有统计学差异。在癫痫IV级发作潜伏期比较中,S-2 200mg/kg组能有效抑制癫痫IV级发作率,且与模型组比较P<0.05,具有统计学差异。
表5-1绵羊角角蛋白样品对PTZ致小鼠癫痫实验-例数统计
组别 N IV级例数 IV级发作率 死亡例数 死亡率
模型组 10 9 90% 0 0
瑞替加滨70mg/kg 10 1** 10%** 0 0
S-1-50mg/kg 10 7 70% 0 0
S-1-200mg/kg 10 9 90% 0 0
与模型组比较:*P<0.05,**P<0.01
表5-2绵羊角角蛋白样品对PTZ致小鼠癫痫实验-例数统计
组别 N IV级例数 IV级发作率 死亡例数 死亡率
模型组 10 10 100% 0 0
瑞替加滨60mg/kg 10 6 60% 0 0
S-2 50mg/kg 10 10 100% 1 10%
S-2 200mg/kg 10 7 70% 0 0
与模型组比较:*P<0.05,**P<0.01
表6-1绵羊角角蛋白样品对PTZ致小鼠癫痫实验-Ⅲ级及IV级癫痫发作潜伏期(mean±SEM)
组别 Ⅲ级发作潜伏期(s) IV级发作潜伏期(s)
模型组 67±4 180±86
瑞替加滨70mg/kg 93±6** 825±79**
S-1 50mg/kg 72±7 341±129
S-1 200mg/kg 78±3* 195±84
与模型组比较:*P<0.05,**P<0.01
表6-2绵羊角角蛋白样品对PTZ致小鼠癫痫实验-Ⅲ级及IV级癫痫发作潜伏期(mean±SEM)
组别 Ⅲ级发作潜伏期(s) Ⅳ级发作潜伏期(s)
模型组 58±2 137±27
瑞替加滨60mg/kg 80±8* 446±127*
S-2-50mg/kg 75±7* 127±31
S-2-200mg/kg 81±7** 416±120*
与模型组比较:*P<0.05,**P<0.01
实验例6:绵羊角角蛋白样品对小鼠酚红排泄法祛痰的药效研究
动物:ICR小鼠,雄性
药品与试剂:沐舒坦(盐酸氨溴索片)、苯酚红、碳酸氢钠、不同批次绵羊角角蛋白(S-1:绵羊角角蛋白的制备方法实施例一绵羊角角蛋白1-2;S-2:绵羊角角蛋白的制备方法实施例二绵羊角角蛋白2-2;)
实验方法:动物于实验前16h禁食不禁水。按分组口服给予沐舒坦及不同剂量绵羊角角蛋白药物(给药体积10ml/kg),溶剂对照组给予等量体积蒸馏水,1h后腹腔注射2.5%酚红溶液,30min后脱颈处死小鼠,取自甲状软骨下至气管分支前一段气管,将气管放入3ml5%NaHCO3溶液静置3h,取上清1ml,3000rpm离心5min后,546nm 处测量并记录吸光度。根据酚红的标准曲线计算出酚红的排泄量。
实验分组:溶剂对照组;沐舒坦:30mg/kg组;绵羊角角蛋白样品: 20mg/kg组、50mg/kg组。
数据统计:分别记录口服给药时间点,2.5%酚红溶液腹腔注射时间点,取气管时间点;酶标仪546nm处测量得到各组样本吸光度,根据酚红的标准曲线计算出酚红的排泄量。各组数据计算均值及标准误,应用TTEST,将溶剂对照组与其他各组进行组间比,P<0.05认为有显著性差异。
实验结果(详见表7-1、7-2):
1、沐舒坦30mg/kg组与溶剂对照组比较,酚红排泄量明显升高,P<0.05,具有统计学意义。
2、绵羊角角蛋白样品S-1 50mg/kg组,S-2 50mg/kg组与溶剂对照组比较,酚红排泄量明显升高,P<0.05,具有统计学意义。
表7-1口服绵羊角角蛋白样品对小鼠酚红排泄法祛痰药效实验(X±SEM)
Figure BDA0002326556260000171
Figure BDA0002326556260000181
与溶剂对照组比较:*P<0.05,与溶剂对照组比较:**P<0.01
表7-2口服绵羊角角蛋白样品对小鼠酚红排泄法祛痰药效实验(X±SEM)
组别 N 酚红排泄量(g/ml) P
溶剂对照组 10 0.497±0.030 ---
沐舒坦30mg/kg 10 0.792±0.089** 0.006
S-2 20mg/kg 10 0.649±0.101 0.168
S-2 50mg/kg 10 0.741±0.074** 0.007
与溶剂对照组比较:*P<0.05,与溶剂对照组比较:**P<0.01
实验例7:绵羊角角蛋白样品对小鼠氨水引咳法镇咳的药效研究
动物:ICR小鼠雄性
药品与试剂:氢溴酸右美沙芬、氨水、0.2%CMC-Na、不同批次绵羊角角蛋白(S-1:绵羊角角蛋白的制备方法实施例一绵羊角角蛋白1-2; S-2:绵羊角角蛋白的制备方法实施例二绵羊角角蛋白2-2;)
实验方法:按分组口服给予右美沙芬及不同剂量绵羊角角蛋白药物(给药体积10ml/kg),溶剂对照组给予等量体积蒸馏水,1h后放入密封盒内,通雾化10%浓度氨水10秒钟,然后观察和记录小鼠的咳嗽潜伏期和2min内咳嗽次数。
实验分组:溶剂对照组;右美沙芬:15mg/kg组;绵羊角角蛋白样品:20mg/kg组、50mg/kg组。
数据统计:分别记录口服给药时间点,雾化实验时间点,小鼠的咳嗽潜伏期和2min内咳嗽次数。咳嗽潜伏期是指雾化氨水开始时间至发生咳嗽所需的秒数。小鼠咳嗽表现以其腹肌收缩(缩胸),同时张大嘴为准。各组数据计算均值及标准误,应用TTEST,将模型组与其他各组进行组间比,P<0.05认为有显著性差异。
实验结果(详见表8-1、8-2):
1、右美沙芬组与溶剂对照组在潜伏期和咳嗽次数上比较,有明显的改善作用,P<0.05,具有统计学意义。
2、绵羊角角蛋白样品S-1 20mg/kg组,S-1 50mg/kg组,S-2 50mg/kg 组,在潜伏期上与溶剂对照组比较,有明显的改善作用,P<0.05,具有统计学意义;S-1 20mg/kg组,S-150mg/kg组,S-2 20mg/kg组,S-2 50mg/kg组,在咳嗽次数上与溶剂对照组比较,有明显改善作用,P<0.05,具有统计学意义。
表8-1口服绵羊角角蛋白对小鼠氨水引咳法的镇咳药效实验(X±SEM)
组别 N 体重 潜伏期 P 咳嗽次数 P
溶剂对照组 10 24.4±0.2 22.2±2.4 --- 73.2±4.5 ---
右美沙芬15mg/kg 10 24.2±0.2 33.2±3.0 0.007** 40.3±4.7 0.001**
S-1 20mg/kg 10 23.8±0.2 34.0±3.5 0.009** 47.6±6.8 0.004**
S-1 50mg/kg 10 24.0±0.2 35.2±3.4 0.004** 48.7±5.7 0.002**
与溶剂对照组比较:*P<0.05,与溶剂对照组比较:**P<0.01
表8-2口服绵羊角角蛋白对小鼠氨水引咳法的镇咳药效实验(X±SEM)
组别 N 潜伏期 P 咳嗽次数 P
溶剂对照组 9 24.0±3.2 --- 67.4±3.1 ---
右美沙芬15mg/kg 9 35.1±2.9* 0.020 34.6±4.1** 0.001
S-2 20mg/kg 9 26.7±2.7 0.535 50.6±3.7** 0.003
S-2 50mg/kg 9 34.6±3.3* 0.037 51.1±6.1* 0.029
与溶剂对照组比较:*P<0.05,与溶剂对照组比较:**P<0.01 。

Claims (12)

1.一种绵羊角角蛋白的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:称量粉碎或切块后的绵羊角用溶剂提取,得到提取液,提取液经干燥后得到绵羊角角蛋白,其中所述的溶剂选自纯水。
2.根据权利要求1的制备方法,其特征在于,所述的方法包括如下步骤:称量粉碎或切块后的绵羊角,以每千克绵羊角用3~10升的纯水提取2~5次,每次2~8h,合并提取液,干燥后得到绵羊角角蛋白。
3.一种绵羊角角蛋白的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:称量粉碎或切块后的绵羊角用纯水提取后,取药渣再用溶剂提取,得到提取液;提取液经纯化、干燥后得绵羊角角蛋白;其中所述的溶剂选自无机盐的水溶液。
4.根据权利要求3的制备方法,其特征在于,所述无机盐的水溶液中的无机盐包括尿素、亚硫酸氢钠、十二烷基硫酸钠其中的一种或任选的两种或三种试剂的混合物。
5.根据权利要求3的制备方法,其特征在于,所述的无机盐的水溶液中可以加入一定量的蛋白酶抑制剂。
6.根据权利要求3的制备方法,其特征在于,所述的方法包括如下步骤:称量粉碎或切块后的绵羊角用纯水提取后,取药渣再用无机盐的水溶液提取,按每千克药渣使用的无机盐水溶液为5~100升纯水、尿素10~25千克、亚硫酸氢钠1~5千克、十二烷基硫酸钠0.25~2千克、蛋白酶抑制剂0~0.5升计算,25~85℃下还原提取3~24h,提取液经离心过滤后,得到的提取液经纯化、干燥后即得绵羊角角蛋白。
7.根据权利要求3的制备方法,其特征在于,所述制备方法中纯化的方法包括透析、膜超滤、盐析。
8.根据权利要求7的制备方法,其特征在于,所述的透析方法包括如下步骤:绵羊角角蛋白提取液置于透析袋中,并放置于装有纯水的容器中进行透析纯化除盐,绵羊角角蛋白提取液的体积与纯水的体积比是1:20~60,换水间隔时间为6~12h,换水5~10次后,回收透析袋中的截留液,干燥,即得绵羊角角蛋白。
9.根据权利要求3-8任一项的制备方法,其特征在于,对得到的绵羊角角蛋白,测定其蛋白质的种类及含量,其中蛋白质Q0VD04的含量为0.00~30.00%;Q14818的含量为0.00~30.00%;A5PJJ1的含量为0.00~30.00%;F1MXG6的含量为0.00~50.00%;F1MC11的含量为0.00~20.00%;G3X7V4的含量为0.00~20.00%;M0QVY0的含量为0.00~20.00%;Q08D91的含量为0.00~20.00%;A0A140T867的含量为0.00~20.00%;F1N362的含量为0.00~20.00%;E1B898的含量为0.00~20.00%;F1M198的含量为0.00~20.00%;Q5XQN5的含量为0.00~20.00%。
10.根据权利要求1~2任一项所述制备方法或权利要求3~9任一项所述制备方法得到的绵羊角角蛋白,以及权利要求1~2任一项所述制备方法或权利要求3~9任一项所述制备方法制备得到的绵羊角角蛋白的混合物。
11.一种药物组合物,其特征在于,包含作为有效成分的权利要求10所述的绵羊角角蛋白及药学上可接受的载体或赋形剂。
12.权利要求10所述的绵羊角角蛋白或权利要求11所述的药物组合物在制备解热、镇痛、抗惊厥、镇咳、祛痰、降血压、抗炎、抗病毒药物中的应用。
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