CN112931764A - 一种基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法,所述紫花苜蓿花朵花色苷的提取方法为:取紫花苜蓿新鲜花朵,在‑60~‑48℃冷冻干燥后粉碎过筛,以体积浓度为40%~80%的乙醇水溶液为提取液,按液料比20~40mL/g,用200~400W超声辅助,在55~75℃提取15~35分钟,提取物经盐酸调节pH=1.5~2、低温高速离心、上清液真空抽滤干制,获得花色苷。将花色苷按料液比为0.04~0.06g/mL溶解于蒸馏水中,以麦芽糊精和黄原胶质量比10~30:1的水溶液作壁材溶剂,两者按体积比为1:4~5混合,经搅拌、冷冻干燥制得微胶囊。本发明花色苷提取方法简单,条件温和,容易操作,制得的微胶囊品质优良,性能稳定,保质期长,适合扩大生产。

Description

一种基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法
技术领域
本发明属于食品制作领域,具体涉及一种基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法。
背景技术
紫花苜蓿原产于亚洲,如今广泛种植于世界各地,是世界种植面积第一的牧草,紫花苜蓿是一种多年生优质的豆科饲草作物,其所具有的产量高、品质好、适用性广等优良特性,被誉为“牧草之王”。我国西部、中部和华北地区大面积种植,资源丰富。紫花苜蓿花朵中富含花色苷。花色苷是花青素和糖以糖苷键连接而成的化合物,主要存在于植物的果实、花朵、茎、叶等部位,可赋予植物红色、紫色和蓝色等绚丽的颜色,是一种天然的水溶性色素。近年来国内外对其进行了广泛的研究,具有抗氧化、抗炎等保健功能。据报道,温度、光照等条件影响花色苷稳定性,造成花色苷的应用局限。微胶囊化是一种将活性成分包埋在特定壁材中的技术,目的是提高活性物质的稳定性,延长物质的保存期。
发明内容
本发明的目的是提供一种提取方法简单,条件温和,紫花苜蓿花朵花色苷的得率高,微胶囊包埋率高、品质优良、性能稳定、保质期长的基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法。
针对上述目的,本发明基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法由下述步骤组成:
1、取紫花苜蓿新鲜花朵,在-60~-48℃冷冻干燥32~48小时,粉碎过60~80目筛,以体积浓度为40%~80%的乙醇水溶液为提取液,超声辅助提取,提取物经盐酸调节pH=1.5~2、离心、上清液真空抽滤干制,获得花色苷。
2、将步骤1获得的花色苷溶解于蒸馏水中,配制成0.04~0.06g/mL的花色苷水溶液;以麦芽糊精和黄原胶质量比10~30:1的混合物为溶质,配制成质量浓度为4~6%的水溶液作为壁材溶液;将所述花色苷水溶液与壁材溶液按体积比为1:4~5混合,经搅拌、冷冻干燥制得花色苷微胶囊。
上述步骤1中,优选按液料比20~40mL/g,用200~400W超声辅助,在55~75℃提取15~35分钟。
上述步骤1中,进一步优选按液料比30~35mL/g,用250~300W超声辅助,在65~70℃提取25~30分钟。
上述步骤1中,优选以体积浓度为60%~70%的乙醇水溶液为提取液。
上述步骤2中,优选以麦芽糊精和黄原胶质量比25~30:1的混合物为溶质,配制成质量浓度为5%的水溶液作为壁材溶液。
上述步骤2中,进一步优选将步骤1获得的花色苷溶解于蒸馏水中,配制成0.05g/mL的花色苷水溶液,所述花色苷水溶液与壁材溶液按体积比为1:4混合。
本发明的有益效果如下:
本发明以紫花苜蓿花朵为原料,采用超声辅助乙醇提取法对紫花苜蓿中的花色苷进行提取,通过响应面法优化提取工艺,并对花色苷进行微胶囊化处理,以提高紫花苜蓿花朵中花色苷的稳定性和贮藏期。本发明提取方法简单,条件温和,容易操作,在本发明提取条件下,所得提取物中紫花苜蓿花朵花色苷的得率显著提高,制得的花色苷微胶囊包埋率高,品质优良,性能稳定,保质期长,适合扩大生产。
附图说明
图1是液料比对提取物中花色苷含量的影响。
图2是乙醇浓度对提取物中花色苷含的影响。
图3是提取温度对提取物中花色苷含的影响。
图4是提取时间对提取物中花色苷含的影响。
具体实施方式
下面结合附图和实施例对本发明进一步详细说明,但本发明的保护范围不仅限于这些实施例。
实施例1
1、采摘新鲜紫花苜蓿花,去梗,于-60℃下真空冷冻干燥32小时,粉碎过40目筛,制得紫花苜蓿花粉末;准确称取紫花苜蓿花粉末,按液料比31mL/g加入体积浓度为60%的乙醇水溶液中,在功率为250W超声辅助下65℃提取25分钟,提取物经盐酸调节pH=1.5,4℃8000r/min离心10min,上清液真空抽滤干制,获得紫花苜蓿花朵花色苷,得率1.58mg/g。
2、将1.0g步骤1获得的花色苷溶解于20mL蒸馏水中,配制成0.05g/mL的花色苷水溶液;以麦芽糊精和黄原胶质量比30:1的混合物为溶质,配制成质量浓度为5%的水溶液作为壁材溶液;将20mL花色苷水溶液与80mL壁材溶液混合,经搅拌、冷冻干燥制得花色苷微胶囊,包埋率98.3%。
实施例2
1、采摘新鲜紫花苜蓿花,去梗,于-60℃下真空冷冻干燥32小时,粉碎过40目筛,制得紫花苜蓿花粉末;准确称取紫花苜蓿花粉末,按液料比35mL/g加入体积浓度为70%的乙醇水溶液中,在功率为300W超声辅助下70℃提取30分钟,提取物经盐酸调节pH=1.5,4℃8000r/min离心10min,上清液真空抽滤干制,获得紫花苜蓿花朵花色苷。
2、将1.0g步骤1获得的花色苷溶解于20mL蒸馏水中,配制成0.05g/mL的花色苷水溶液;以麦芽糊精和黄原胶质量比25:1的混合物为溶质,配制成质量浓度为5%的水溶液作为壁材溶液;将20mL花色苷水溶液与80mL壁材溶液混合,经搅拌、冷冻干燥制得花色苷微胶囊。
实施例3
1、采摘新鲜紫花苜蓿花,去梗,于-60℃下真空冷冻干燥48小时,粉碎过60目筛,制得紫花苜蓿花粉末;准确称取紫花苜蓿花粉末,按液料比40mL/g加入体积浓度为50%的乙醇水溶液中,在功率为250W超声辅助下60℃提取25分钟,提取物经盐酸调节pH=1.5,4℃8000r/min离心10min,上清液真空抽滤干制,获得紫花苜蓿花朵花色苷。
2、将1.0g步骤1获得的花色苷溶解于20mL蒸馏水中,配制成0.05g/mL的花色苷水溶液;以麦芽糊精和黄原胶质量比30:1的混合物为溶质,配制成质量浓度为5%的水溶液作为壁材溶液;将20mL花色苷水溶液与100mL壁材溶液混合,经搅拌、冷冻干燥制得花色苷微胶囊。
为了确定本发明的工艺条件,发明人进行了大量的实验室研究实验,具体实验情况如下:
试验材料:紫花苜蓿花朵,产自陕西省临潼市;麦芽糊精、黄原胶和阿拉伯胶均为食品级,购自西安市晶博化学试剂公司;无水乙醇、乙酸钠、醋酸、盐酸、氯化钾均为分析纯,购自西安市晶博化学试剂公司。
仪器与设备:LGJ-25C型真空冷冻干燥机,产自北京四环科学仪器厂;UV300型紫外可见分光光度计,产自上海仪迈仪器科技有限公司;PHS-3E型pH计,产自上海仪电科学仪器股份有限公司;TGL-16gR型高速冷冻离心机,产自上海安亭科学仪器厂;Quanta 200型环境扫描电子显微镜,产自FEI公司;D8 Advance型粉末X射线衍射仪,产自德国布鲁克公司;NS800型分光色差仪,产自深圳市三恩时科技有限公司;QL-866型旋涡混合器,产自江苏海门其林贝尔仪器制造有限公司;108Auto108C型金铂碳溅射仪,产自英国Cressington公司;Q1000DSC+LNCS+FACS Q600SDT型热分析系统,产自美国TA公司。
花色苷得率的测量方法:采用pH示差法测量花色苷得率,分别取1mL提取物加入8mL 0.025mol/L的氯化钾缓冲液(pH 1.0)和1.0mL 0.4mol/L的乙酸钠缓冲液(pH 4.5),振荡摇匀,室温条件下避光放置30min,以蒸馏水为空白对照,在520nm和700nm波长下测定其吸光度,计算公式如下:
Figure BDA0002939198870000041
其中,A=A1-A2,A1为pH=1.0时样品在520mn处与700mn处的吸光度的差值,A2为pH=4.5时样品在520mn处与700mn处的吸光度的差值;M为矢车菊-3-葡萄糖苷的相对分子质量(449.2g/mol);D为样品的稀释倍数;V为提取物总体积(mL);ε为矢车菊-3-葡萄糖苷的消光系数(26900L/cm/mg);m为紫花苜蓿花粉末的质量(g);L为光程(cm)。
微胶囊包埋率测定方法:①总花色苷含量(TAC)测定:准确称量100mg微胶囊,加入1mL蒸馏水,在旋涡混合器中充分混合1min,放入超声清洗机内水浴20min,加入10mL乙醇提取5min,过滤,按上述花色苷得率的测定方法测定滤液中总花色苷含量。②表面花色苷含量(SAC)测定:准确称量100mg微胶囊,与10mL乙醇混合,在旋涡混合器中混合10s,3000r/min离心3min,取上清液,过滤,按上述花色苷得率的测定方法测定滤液中表面花色苷含量。微胶囊包埋率(EE)计算公式:
Figure BDA0002939198870000042
1、提取紫花苜蓿花色苷
(1)液料比单因素试验:准确称量0.1g紫花苜蓿花粉末,以体积浓度为60%的乙醇水溶液为提取剂,提取温度60℃,提取时间30分钟,分别研究液料比为20、25、30、35、40mL/g对提取物中花色苷含量的影响,结果见图1。
(2)乙醇浓度单因素试验:准确称量0.1g紫花苜蓿花粉末,按液料比20mL/g,提取温度60℃,提取时间30分钟,分别研究乙醇浓度为40%、50%、60%、70%、80%对提取物中花色苷含量的影响,结果见图2。
(3)提取温度单因素试验:准确称量0.1g紫花苜蓿花粉,按液料比20mL/g,乙醇体积浓度60%,提取时间30分钟,分别研究提取温度为55、60、65、70、75℃对提取物中花色苷含量的影响,结果见图3。
(4)提取时间单因素试验:准确称量0.1g紫花苜蓿花粉,按液料比20mL/g,乙醇体积浓度60%,提取温度60℃,分别研究提取时间为15、20、25、30、35分钟对提取物中花色苷含量的影响,结果见图4。
(5)响应面法优化提取试验:利用Box-Behnken中心组合试验设计原理,以乙醇为提取剂在上述单因素试验的基础上,选择液料比(A)、乙醇浓度(B)、提取温度(C)和提取时间(D)进行四因素三水平响应面优化试验设计,结果见表1。
表1响应面优化提取试验设计及结果分析
Figure BDA0002939198870000051
Figure BDA0002939198870000061
由表1可见,按照本发明的提取方法,当液料比为31mL/g,乙醇体积浓度为60%,提取时间为25分钟,提取温度为65℃时,所得紫花苜蓿花朵花色苷得率达1.586±0.03mg/g,提取效果显著优于其他条件的提取效果。
2、紫花苜蓿花色苷微胶囊化
麦芽糊精(M)与黄原胶(H)按质量比10:1、20:1、30:1进行配比后作为溶质,制成质量浓度为5%的水溶液,于4℃充分水合24小时作为壁材溶液。准确称取1g紫花苜蓿花色苷,室温下溶解于20mL蒸馏水中;在花色苷水溶液中加入80mL充分水合的壁材溶液,在旋涡混合器中3000r/min充分混合5分钟,之后转至培养皿预冻后冷冻干燥,制得花色苷微胶囊。结果见表2。
表2紫花苜蓿花色苷微胶囊包埋率与色差分析表
Figure BDA0002939198870000062
注:表征a*代表了样品的红绿程度,其值为正时样品为红色,为负时样品为绿色;L为样品的亮度;b*为黄蓝度;c为色度;h°为色相角。
从表2可以看出,麦芽糊精与黄原胶按质量比30:1进行配比,包埋率98.3%,包埋效果最好。

Claims (6)

1.一种基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法,其特征在于所述方法由下述步骤组成:
(1)取紫花苜蓿新鲜花朵,在-60~-48℃冷冻干燥32~48小时,粉碎过40~80目筛,以体积浓度为40%~80%的乙醇水溶液为提取液,超声辅助提取,提取物经盐酸调节pH=1.5~2、离心、上清液真空抽滤干制,获得花色苷;
(2)将步骤(1)获得的花色苷溶解于蒸馏水中,配制成0.04~0.06g/mL的花色苷水溶液;以麦芽糊精和黄原胶质量比10~30:1的混合物为溶质,配制成质量浓度为4%~6%的水溶液作为壁材溶液;将所述花色苷水溶液与壁材溶液按体积比为1:4~5混合,经搅拌、冷冻干燥制得花色苷微胶囊。
2.根据权利要求1所述的基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法,其特征在于:步骤(1)中,按液料比20~40mL/g,用200~400W超声辅助,在55~75℃提取15~35分钟。
3.根据权利要求2所述的基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法,其特征在于:步骤(1)中,按液料比30~35mL/g,用250~300W超声辅助,在65~70℃提取25~30分钟。
4.根据权利要求3所述的基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法,其特征在于:步骤(1)中,以体积浓度为60%~70%的乙醇水溶液为提取液。
5.根据权利要求1所述的基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法,其特征在于:步骤(2)中,以麦芽糊精和黄原胶质量比25~30:1的混合物为溶质,配制成质量浓度为5%的水溶液作为壁材溶液。
6.根据权利要求5所述的基于紫花苜蓿花朵花色苷的微胶囊制作方法,其特征在于:步骤(2)中,将步骤(1)获得的花色苷溶解于蒸馏水中,配制成0.05g/mL的花色苷水溶液,所述花色苷水溶液与壁材溶液按体积比为1:4混合。
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