CN112646851B - 一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法 - Google Patents

一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN112646851B
CN112646851B CN201910958989.XA CN201910958989A CN112646851B CN 112646851 B CN112646851 B CN 112646851B CN 201910958989 A CN201910958989 A CN 201910958989A CN 112646851 B CN112646851 B CN 112646851B
Authority
CN
China
Prior art keywords
enzyme
reaction
nicotinamide mononucleotide
prpp
ions
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201910958989.XA
Other languages
English (en)
Other versions
CN112646851A (zh
Inventor
刘珊珊
秦永发
尹延明
周稳文
乔春鑫
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Anhui Gute Biotechnology Co ltd
Original Assignee
Anhui Gute Biotechnology Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Anhui Gute Biotechnology Co ltd filed Critical Anhui Gute Biotechnology Co ltd
Priority to CN201910958989.XA priority Critical patent/CN112646851B/zh
Publication of CN112646851A publication Critical patent/CN112646851A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN112646851B publication Critical patent/CN112646851B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28N-glycosides
    • C12P19/30Nucleotides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/52Genes encoding for enzymes or proenzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/1048Glycosyltransferases (2.4)
    • C12N9/1077Pentosyltransferases (2.4.2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/12Transferases (2.) transferring phosphorus containing groups, e.g. kinases (2.7)
    • C12N9/1229Phosphotransferases with a phosphate group as acceptor (2.7.4)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/93Ligases (6)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y204/00Glycosyltransferases (2.4)
    • C12Y204/02Pentosyltransferases (2.4.2)
    • C12Y204/02007Adenine phosphoribosyltransferase (2.4.2.7)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y204/00Glycosyltransferases (2.4)
    • C12Y204/02Pentosyltransferases (2.4.2)
    • C12Y204/02019Nicotinate-nucleotide diphosphorylase (carboxylating) (2.4.2.19)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y207/00Transferases transferring phosphorus-containing groups (2.7)
    • C12Y207/04Phosphotransferases with a phosphate group as acceptor (2.7.4)
    • C12Y207/04023Ribose 1,5-bisphosphate phosphokinase (2.7.4.23)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y603/00Ligases forming carbon-nitrogen bonds (6.3)
    • C12Y603/01Acid-ammonia (or amine)ligases (amide synthases)(6.3.1)
    • C12Y603/01005NAD+ synthase (6.3.1.5)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y603/00Ligases forming carbon-nitrogen bonds (6.3)
    • C12Y603/04Other carbon-nitrogen ligases (6.3.4)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种酶法快速制备β‑烟酰胺单核苷酸的方法,以PRPP为原料,在此基础上添加烟酸和/或喹啉酸、铵离子、ATP、镁离子和/或锰离子以形成反应体系,该反应体系在EC 6.3.4.21酶和EC 6.3.1.5酶催化下,或在EC 2.4.2.19酶和EC 6.3.1.5酶催化下,或在EC 6.3.4.21酶、EC 6.3.1.5酶以及EC 2.4.2.19酶的催化下发生反应,快速制得β‑烟酰胺单核苷酸。本发明与化工法和混合法相比较,合成工艺稳定而迅速,整个过程无有机溶剂等污染物添加,绿色环保,且生产安全;与其它酶法生产方法相比,反应速度快、转化率高,生产成本低,底物范围广。

Description

一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法
技术领域
本发明涉及生物技术领域,特别涉及一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法。
背景技术
β-烟酰胺单核苷酸,简称NMN,分子量334.22。研究表明,其对人体细胞修复,减缓衰老有重要的作用。近年来,Science、Nature、Cell等期刊刊登了多篇NMN功效研究的文章,哈佛大学实验更是证实补充NMN可将哺乳动物寿命延长30%以上,因此,NMN被看作是“长生不老药”,倍受保健品药品市场的追捧。但是目前NMN市场价格偏高,最便宜的国产制品价格约为每9000毫克1500元,进口制品价格更高,无法使普通百姓真正获益。
现有的NMN生产方法有化工法、酶促法以及两者相结合的方法。化工法是目前生产NMN的主流方法,但是生产过程复杂,中间体较多且稳定性差,纯化过程中有机溶剂污染较严重,另外,某些底物,如三氯氧磷有强腐蚀性、遇水易爆炸,因此,化工法有生产成本高、污染大且存在大量隐患等缺点。化工和酶法相结合的方法(以下称混合法)是先化工法合成烟酰胺核糖(NR,由于其没有酶促反应直接合成的方法,因此只能化工法合成),再加入核糖基烟酰胺激酶(EC 2.7.1.22),利用三磷酸腺苷(ATP)作为能量和磷酸供体一步合成NMN。该方法看似简单,但是NR化工合成也较复杂,污染物多,且总成本并不比化工合成NMN低,因此应用于工业化生产前景不佳。新兴的酶促法主要是利用烟酰胺磷酸核糖转移酶(NAMPT,EC2.4.2.12),在有ATP和镁离子的环境中,催化磷酸核糖焦磷酸(PRPP)和烟酰胺(Nam)生成NMN,但是NAMPT被证实是限速酶(rate-limiting enzyme),在物质合成过程中起到控制反应速度的作用,且对其产生抑制作用的物质较多,因此,利用该酶进行的反应,反应速度相对缓慢,且底物转化率相对较低。
发明内容
本发明提供了一种酶法制备β-烟酰胺单核苷酸(NMN)的方法,该方法不使用限速的EC 2.4.2.12酶,而使用其它高效酶进行反应,通过该方法可快速制备NMN,速度快,转化率高,并使其生产成本大大降低。
本发明所要解决的技术问题是通过以下技术方案来实现的:
一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法,所述方法是以PRPP为原料,在此基础上添加烟酸和/或喹啉酸、铵离子、ATP、镁离子和/或锰离子以形成反应体系,该反应体系在EC 6.3.4.21酶和EC 6.3.1.5酶的共同催化下,或在EC 2.4.2.19酶和EC 6.3.1.5酶的共同催化下,或在EC 6.3.4.21酶、EC 2.4.2.19酶以及EC 6.3.1.5酶的共同催化下发生化学反应,快速制备得到β-烟酰胺单核苷酸。也就是说EC 6.3.1.5酶是反应必须酶,EC6.3.4.21酶和EC 2.4.2.19酶可以任选其中一种与EC 6.3.1.5酶搭配起催化反应,当然也可以使用EC 6.3.4.21酶、EC 2.4.2.19酶两者一起再与EC 6.3.1.5酶配合一起催化反应。
优选地,上述技术方案中,所述PRPP是以腺苷酸(AMP)为原料,在EC 2.4.2.7酶的催化下,或在EC 2.4.2.57酶和EC 2.7.4.23两种酶的共同催化下,或在EC 2.4.2.7酶、EC2.4.2.57酶和EC 2.7.4.23三种酶共同催化下发生化学反应,快速制备得到的。也就是说,本发明并不是直接以PRPP为原料,而是通过在原反应体系中添加AMP和各种酶的反应直接生成PRPP,生成的PRPP在反应罐中直接用于反应。
优选地,上述技术方案中,所述AMP是以腺苷(Ado)为原料,在EC 2.7.1.20酶的催化下发生化学反应,制备得到的。也就是说,本发明并不是直接以PRPP为原料,而是通过在原反应体系中加入Ado和各种酶的反应,先生成AMP,再利用AMP和各种酶的反应直接生成PRPP,生成的PRPP在反应罐中直接用于反应。
也就是说,本申请的PRPP优选是以腺苷酸为原料经催化制得,而腺苷酸优选以腺苷为原料制得。当然,本发明并不以此为限,本领域技术人员可根据需要选择其他方式制备PRPP。当然,使用本发明的整体的制备方法能够实现快速、无污染、低成本、高转化地获得目的产物,同时生产中消耗的酶量少,更适用于工业生产。优选地,上述技术方案中,无论反应是从PRPP直接开始,还是以AMP或Ado开始,反应体系中均还包括钠离子和/或钾离子、Tris和/或磷酸根离子,所述体系反应的pH值为5.0-9.0,优选6.0-8.0;反应的温度20℃-50℃,优选30℃-45℃。
优选地,上述技术方案中,无论反应是从PRPP直接开始,还是以AMP或Ado开始,若非偶联ATP再生进行反应,反应体系中还包括ATP,所述反应的pH值为5.0-9.0,优选6.0-8.0;反应的温度20℃-50℃,优选30℃-45℃。反应体系未偶联ATP再生酶的反应中,各物质的添加量为:烟酸10-150mM和/或喹啉酸10-150mM、ATP 10-150mM、AMP 10-200mM(以AMP开始则需要添加)、腺苷10-200mM(以腺苷开始则需要添加)、镁离子10-150mM和/或锰离子10-100mM、铵离子10-500mM。除上述外,还可添加钠离子0-500mM和/或钾离子0-500mM、Tris 0-100mM和/或磷酸根0-100mM。
优选地,上述技术方案中,无论反应是从PRPP直接开始,还是以AMP或Ado开始,该方法均可还包括偶联ATP再生体系进行循环反应,所述循环反应的反应体系中还包括多聚磷酸盐以及EC 2.7.4.3酶、EC2.7.4.1酶和EC 2.7.4.B2酶的一种或多种。反应体系偶联ATP再生酶的反应中,ATP添加量可为0mM,AMP添加量可为0mM,多聚磷酸盐(以分子量平均600计算)根据反应所用腺苷和AMP总摩尔量相应添加,其它反应物添加量不变,烟酸10-150mM和/或喹啉酸10-150mM、腺苷10-200mM、镁离子10-150mM和/或锰离子10-100mM、铵离子10-500mM。除上述外,还可添加钠离子0-500mM和/或钾离子0-500mM、Tris 0-100mM和/或磷酸根0-100mM。
优选地,上述技术方案中,各酶添加量均为10-5000U,其中按照酶活比例来计算,催化相邻反应的酶活比为0.1-10,优选0.2-5。其中EC 6.3.4.21酶与EC 6.3.1.5酶活性比例优选为0.5-5,EC 2.4.2.19酶与EC 6.3.1.5酶活性比例优选为0.5-2。
优选地,上述技术方案中,所述烟酸可由烟酰胺经EC 3.5.1.19酶催化得来,所述喹啉酸可经EC 2.5.1.72酶和EC 1.4.3.16酶由L-天门冬氨酸催化得来。
本发明原理如下:
本发明不使用烟酰胺为底物(合成NMN路线一),即通过效率较低的EC 2.4.2.12酶(MAMPT限速酶)催化PRPP生成NMN,而利用烟酸或/和喹啉酸为底物(合成NMN路线二),通过效率较高的EC 6.3.4.21酶或/和EC 2.4.2.19酶催化PRPP生成β-烟酰胺单核苷酸(NaMN),同时利用EC 6.3.1.5酶催化NaMN生成NMN。
两支路相对比,看似左侧支路用酶少,但实际在生产中,EC 2.4.2.12酶速度较慢,且转化率低,与之相反,右侧支路各酶速度均较快,可达左侧支路的2-5倍及以上,同时底物转化率较高,另外,通过调节酶的使用比例,烟酸利用率可达90%以上,且可有效避免副产物生成;左侧支路使用的两种或三种酶获取及纯化方式基本相同,成本方面并没有较多增加,因此很适合用于工业化生产。
由于底物PRPP成本较高,本发明利用AMP和/或腺苷生产PRPP,进一步降低生产成本。加入EC 2.7.1.20酶,催化腺苷生成腺苷酸(AMP),再通过EC 2.4.2.7酶或者EC2.4.2.57酶和EC 2.7.4.23酶组合生成PRPP(EC 2.4.2.57酶和EC 2.7.4.23酶为捆绑式组合使用),其中EC 2.4.2.57酶催化AMP生成1,5-二磷酸核糖,EC 2.7.4.23酶催化1,5-二磷酸核糖生成PRPP。
为进一步降低成本,反应可偶联ATP再生体系,减少ATP和/或AMP用量或者完全不使用ATP和/或AMP。具体原理为加入EC 2.7.4.3酶、EC2.7.4.1酶和EC 2.7.4.B2酶中的一种或几种。EC2.7.4.1酶催化ADP与多聚磷酸或其盐反应生成ATP,EC 2.7.4.3酶酶催化2分子ADP生成1分子ATP和1分子AMP,EC 2.7.4.B2酶催化AMP与多聚磷酸或其盐反应生成ADP。
另外,生物体内的大部分EC 6.3.1.5酶催化烟酸腺嘌呤二核苷酸(NaAD)生成烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD),少数EC 6.3.1.5酶催化NaMN生成NMN,本发明使用的是后者。
本发明具有如下有益效果:
第一,与化工法和混合法相比较,优势明显,生物酶高效专一,因此使整个合成工艺稳定而迅速,且整个过程无有机溶剂等污染物添加,绿色环保,且生产安全。
第二,与其它酶法生产方法相比,本发明也有较大优势,主要体现在以下几方面:
1.反应速度快,转化率高:不使用限速酶EC 2.4.2.12酶,而使用速度较高的EC6.3.4.21酶或/和EC 2.4.2.19酶以及EC 6.3.1.5酶组合,因此反应高效迅速。NMN生成量可达30g/L反应液以上,底物转化率可达90%以上。
2.生产成本低:不使用高成本原料,如将PRPP替代以价格适中的ATP、AMP或低价的腺苷,若与ATP再生酶偶联,可仅以低价原料腺苷来生产,价格优势巨大。另一底物烟酸或/和喹啉酸市场价格均不高(市场价:烟酸等于烟酰胺低于喹啉酸),且来源广泛。
3.底物范围广:PRPP可被ATP、AMP和腺苷三种原料中的一种或几种替代;另一方面,烟酸可由烟酰胺经EC 3.5.1.19酶催化得来,而喹啉酸可经EC 2.5.1.72酶和EC1.4.3.16酶由L-天门冬氨酸两步催化得来,合理添加用酶,原料可以为烟酸、喹啉酸、烟酰胺和L-天门冬氨酸,不受限于单一原料市场。
4.用酶成本低廉:本发明看似使用酶量较多,实则由于酶的高效性,反应添加总量并不多,且整个反应均可为廉价的粗纯酶,不使用高价纯酶。酶的纯化方式也基本相同,成本方面并没有较多增加。由于当今自动化、发酵工业成熟,制酶成本低廉。使用固定化技术可将酶重复利用,使酶成本进一步降低。
附图说明
图1为本发明酶促反应原理图。
图2为实施例1中所述部分酶的SDS-PAGE电泳图。
图3为实施例1中所述部分酶的SDS-PAGE电泳图。
具体实施方式
下面对本发明的具体实施例进行详细描述,以便于进一步理解本发明。
实施例1酶的制备
本发明方法中的所有酶可以商购获得,或者是经过人工改造获得的具有同样催化功能的酶。
酶的制备过程如下:
本专利所有涉及的酶编号(包括对比例)分别为EC 6.3.4.21、EC 2.4.2.19、EC6.3.1.5、EC 2.4.2.57、EC 2.7.4.23、EC 2.4.2.7、EC 2.4.2.12、EC2.7.4.1、EC 2.7.1.20、EC 2.7.4.3和EC 2.7.4.B2。
根据反应用酶各酶基因序列设计引物,通过PCR分别扩增出基因片段,并将其分别连接至相应载体(市售,可选择单表达载体或多表达载体),经测序正确后,分别转入E.coliBL21(DE3)菌株(市售)。
将转化后的E.coli BL21(DE3)单克隆接入LB培养基,培养至对数期后,加入1mM异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)进行诱导,诱导5小时收集菌体,使用十二烷基磺酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)筛选高表达菌株。
将筛选出的高表达菌株分别使用发酵罐发酵,离心收集菌体。
其中LB培养基成分为:1%蛋白胨、0.5%酵母粉和1%NaCl;种子培养基成分为:1%蛋白胨、0.5%酵母粉和1%氯化钠;发酵培养基成分为:1%蛋白胨、0.5%酵母粉、1%氯化钠、5%磷酸氢二钠、1%磷酸二氢钠、0.01%硫酸镁和1%甘油。
图2和图3均为大肠杆菌表达的各酶的SDS-PAGE图,如图2所示:泳道1为蛋白标志物14.4-116kDa(市售);泳道2为EC 6.3.4.21酶,43kDa;泳道3为EC 2.4.2.19酶,40kDa;泳道4为EC 6.3.1.5酶,28kDa;泳道5为EC 2.4.2.57酶,52kDa;泳道6为EC 2.7.4.23酶,20kDa;泳道7为EC 2.4.2.7酶,23kDa;泳道8为EC 2.4.2.12酶,50kDa。如图3所示:泳道1为蛋白标志物14.4-116kDa(市售);泳道2为EC 2.7.4.1酶,38kDa;泳道3为EC 2.7.1.20酶,40kDa;泳道4为EC 2.7.4.3酶,26kDa;泳道5为EC 2.7.4.B2酶,55kDa。
收获的菌体可分别或按照反应用量混合,经超声或高压匀浆破菌后,离心收集上清。通过盐析方法一步沉淀蛋白,离心收集沉淀制得混合粗酶,可直接用于反应。
实施例2烟酸和PRPP为底物的反应
50ml的反应体系中含有0.15g烟酸、0.5g PRPP、0.3g Tris、0.2g氯化钾、0.25g六水氯化镁、0.25g硫酸铵和1.0g ATP,调节pH值至7.0,加入500U EC 6.3.4.21酶和500U EC6.3.1.5酶开始反应。反应期间控制pH值为7.0,温度为35℃。
反应1小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为5.2g/L,2小时后检测NMN生成量为6.9g/L,3小时后检测NMN生成量7.4g/L,之后NMN几乎没有增加。烟酸转化率超过90%。
实施例3喹啉酸和PRPP为底物的反应
50ml的反应体系中含有0.2g喹啉酸、0.5g PRPP、0.3g Tris、0.2g氯化钾、0.25g六水氯化镁、0.25g硫酸铵和1.0g ATP,调节pH值至7.0,加入500U EC 2.4.2.19酶和500U EC6.3.1.5酶开始反应。反应期间控制pH值为7.0,温度为35℃。
反应1小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为4.6g/L,2小时后检测NMN生成量为6.3g/L,3小时后检测NMN生成量6.7g/L,之后NMN几乎没有增加。烟酸转化率约为84%。
实施例4AMP为底物的反应
50L的反应体系中含有0.5kg烟酸、0.75kg十二水磷酸氢二钠、0.2kg氯化钠、0.5kg七水硫酸镁、0.3kg氯化铵、1.25kg AMP和1.5kg ATP,调节pH值至7.2,加入800U EC6.3.4.21酶、1000U EC 6.3.1.5酶、1200U EC 2.4.2.57酶和1200U EC 2.7.4.23酶开始反应。反应期间控制pH值为7.2,温度为37℃。
反应4小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为22g/L。
实施例5腺苷为底物的反应
50L的反应体系中含有0.75kg喹啉酸、0.25kg六水氯化镁、0.35kg硫酸铵、0.2kg焦磷酸钠、1.0kg腺苷和2.5kg ATP,调节pH值至7.5,加入1000U EC 2.4.2.19酶、2000U EC6.3.1.5酶、2500U EC 2.4.2.7酶和2000U EC 2.7.1.20酶开始反应。反应期间控制pH值为7.5,温度为30℃。
反应5小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为21g/L。
实施例6加入再生酶的反应
50L的反应体系中含有0.75kg烟酸、0.2kg氯化钾、0.5kg七水硫酸镁、0.4kg氯化铵、1.0kg腺苷和1.75kg多聚磷酸盐,调节pH值至6.8,加入1500U EC 6.3.4.21酶、750U EC6.3.1.5酶、1000U EC 2.4.2.57酶、1000U EC 2.7.4.23酶、2000U EC 2.7.1.20酶和1000UEC 2.7.4.1酶开始反应。1.5小时后补加1.0g腺苷,反应期间控制pH值为6.8,温度为40℃。
反应7小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为30g/L。
实施例7加入再生酶的反应
50L的反应体系中含有0.2kg氯化钾、0.5kg七水硫酸镁、0.13kg一水硫酸锰、0.4kg氯化铵、1.5kg多聚磷酸盐、1.0kg腺苷和0.05kg ATP,调节pH值至6.8,加入2000U EC2.7.1.20酶、1000U EC 2.7.4.1酶和100U EC 2.7.4.3酶开始反应。反应期间控制pH值为6.8,温度为37℃。反应2小时后,补加0.93kg烟酸、1.0kg腺苷和750U EC 6.3.4.21酶、1500UEC 6.3.1.5酶、1000U EC 2.4.2.57酶、1000U EC 2.7.4.23酶进行反应。
反应4小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为32g/L。
实施例8加入再生酶的反应
50L的反应体系中含有0.5kg烟酸、0.5kg喹啉酸、0.2kg氯化钾、0.5kg七水硫酸镁、0.4kg氯化铵、2.0kg腺苷和1.75kg多聚磷酸盐,调节pH值至6.8,加入2000U EC 6.3.4.21酶、1000U EC 2.4.2.19酶、2000U EC 6.3.1.5酶、1000U EC 2.4.2.57酶、1000U EC2.7.4.23酶、1000U EC 2.7.1.20酶和1000U EC 2.7.4.1酶开始反应。1.5小时后补加1.0kg腺苷,反应期间控制pH值为6.8,温度为40℃。
反应7小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为37g/L。
实施例9
按照实施例2和3配制溶液和加入酶,分别调节反应液pH值至5.0、6.0、7.0、8.0、9.0和10.0,调节反应温度为20、25、30、35、40、45、50℃,反应结果如下表:
表1.pH值对NMN生成量的影响(单位:g/L,反应温度35℃)
Figure GDA0002290981230000091
Figure GDA0002290981230000101
表2.温度对NMN生成量的影响(单位:g/L,反应pH值7.0)
Figure GDA0002290981230000102
实施例10
按照实施例2配制溶液,分别调节反应液pH值至7.0,调节反应温度至35℃,EC6.3.1.5加入量为500U,按照一定比例调节反应用酶,结果如下表:
表3.以烟酸为底物反应不同酶配比NMN产量(单位:g/L,反应温度35℃)
Figure GDA0002290981230000103
按照实施例3配制溶液,分别调节反应液pH值至7.0,调节反应温度至35℃,按照一定比例调节反应用酶,结果如下表:
表4.以喹啉酸为底物反应不同酶配比NMN产量(单位:g/L,反应温度35℃)
Figure GDA0002290981230000104
Figure GDA0002290981230000111
实施例11
50L的反应体系中含有0.06kg烟酸、0.08kg喹啉酸、0.12kg Tris、0.25kg十二水磷酸氢二钠、0.2kg氯化钾、0.1kg六水氯化镁、0.027kg氯化铵、0.17kg AMP和0.27kg ATP,调节pH值至7.0,加入10U EC 6.3.4.21酶、10U EC 2.4.2.19酶、10U EC 6.3.1.5酶、10U EC2.4.2.57酶和10U EC 2.7.4.23酶开始反应。反应期间控制pH值为7.0,温度为35℃。
反应4小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量约为1.2g/L。
实施例12
50L的反应体系中含有0.95kg烟酸、0.75kg氯化镁、1.9kg氯化钾、1.35kg氯化铵、1.7kg腺苷和2.25kg ATP,调节pH值至6.8,加入5000U EC 6.3.4.21酶、5000U EC 6.3.1.5酶、5000U EC 2.4.2.7酶和5000U EC 2.7.1.20酶开始反应。反应2小时后,补加1.0kg腺苷和2.0kg ATP。反应期间控制pH值为6.8,温度为35℃。
反应7小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为28g/L。
实施例13
50L的反应体系中含有0.95kg烟酸、1.9kg氯化钾、0.85kg一水硫酸锰、1.35kg氯化铵、1.7kg腺苷、2.5kg AMP和3.0kg多聚磷酸盐,调节pH值至6.8,加入5000U EC 6.3.4.21酶、1000U EC 6.3.1.5酶、5000U EC 2.4.2.57酶、500U EC 2.7.4.23酶、1000U EC2.7.1.20酶和5000U EC 2.7.4.1酶开始反应。1.5小时后补加1.0kg腺苷和1.0kg AMP,反应期间控制pH值为6.8,温度为40℃。
反应7小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为22g/L。
实施例14使用固定化酶进行反应
将实施例1中所述酶按照2500U EC 6.3.4.21酶、2000U EC 6.3.1.5酶、5000U EC2.4.2.7酶、3000U EC 2.7.1.20酶、1000U EC 2.7.4.1酶和1000U EC 2.7.4.B2酶混合配成混合酶液。在恒温搅拌反应罐中加入LX1000HA湿载体,按照固定化载体与酶质量比为20:1混合,150rpm搅拌12小时。过滤收集载体,用0.02M磷酸钾缓冲液(pH 8.0)清洗2遍,即得固定化混合酶。将混合固定酶20kg装入反应柱设备,排尽气泡后制得酶反应柱。
配制反应液,50L的反应体系中含有0.75kg烟酸、0.2kg氯化钾、0.5kg七水硫酸镁、0.3kg氯化铵、1.5kg腺苷、1.5kg多聚磷酸盐和0.05kg ATP,调节pH值至6.8。使用恒流泵将反应液以20L/h流速由下而上缓慢通过酶反应柱,反应期间控制温度为35-40℃。反应6小时后,收集反应液,高效液相色谱(HPLC)高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为28g/L。
实施例15以烟酰胺为底物
50ml的反应体系中含有0.15g烟酰胺、0.5g PRPP、0.3g Tris、0.2g氯化钾、0.25g六水氯化镁、0.25g硫酸铵和1.0g ATP,调节pH值至7.0,加入500U EC 6.3.4.21酶、500U EC6.3.1.5酶和500U EC 3.5.1.19酶开始反应。反应期间控制pH值为7.0,温度为35℃。
反应1小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为4.7g/L,2小时后检测NMN生成量为6.3g/L,3小时后检测NMN生成量6.9g/L,之后NMN几乎没有增加。烟酰胺转化率超过80%。
对比例1烟酰胺和PRPP为底物的反应
50ml的反应体系中含有0.15g烟酰胺、0.5g PRPP、0.3g Tris、0.2g氯化钾、0.25g六水氯化镁、0.25g硫酸铵和1.0g ATP,调节pH值至7.0,加入500U EC 2.4.2.12酶开始反应。反应期间控制pH值为7.0,温度为35℃。
反应1小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为2.2g/L,2小时后检测NMN生成量为3.0g/L,4小时后检测NMN生成量为3.3g/L,之后NMN几乎没有增加。烟酰胺转化率约为42%。
该对比例1与实施例2、实施例3对比可知,使用EC 2.4.2.12酶反应速度较慢,且底物转化率低。
对比例2
50L的反应体系中含有0.5kg烟酰胺、0.2kg氯化钾、0.5kg七水硫酸镁、0.3kg氯化铵、1.0kg腺苷和1.0kg多聚磷酸盐,调节pH值至6.8,加入2000U EC 2.4.2.12酶、1000U EC2.4.2.57酶、1000U EC 2.7.4.23酶、2000U EC 2.7.1.20酶和1000U EC 2.7.4.1酶开始反应。反应期间控制pH值为6.8,温度为37℃。
反应7小时后,高效液相色谱(HPLC)检测NMN的生成量为11g/L。
该对比例与实施例6对比,使用EC 2.4.2.12酶底物转化率明显低。
虽然本发明已以实施例公开如上,然其并非用于限定本发明,任何本领域技术人员,在不脱离本发明的精神和范围内,均可作各种不同的选择和修改,因此本发明的保护范围由权利要求书及其等同形式所限定。

Claims (9)

1. 一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法,其特征在于,
所述方法是以PRPP为原料,在此基础上添加烟酸、铵离子、ATP、镁离子和/或锰离子以形成反应体系, EC 6.3.4.21酶催化烟酸和PRPP生成NaMN,EC 6.3.1.5酶进一步催化NaMN,生成β-烟酰胺单核苷酸;或
所述方法是以PRPP为原料,在此基础上添加喹啉酸、铵离子、ATP、镁离子和/或锰离子以形成反应体系,EC 2.4.2.19酶催化喹啉酸和PRPP生成NaMN,EC 6.3.1.5酶进一步催化NaMN生成β-烟酰胺单核苷酸;或
所述方法是以PRPP为原料,在此基础上添加烟酸和喹啉酸、铵离子、ATP、镁离子和/或锰离子以形成反应体系,在EC 6.3.4.21酶及EC 2.4.2.19酶催化烟酸、喹啉酸和PRPP生成NaMN,EC 6.3.1.5酶进一步催化NaMN,生成β-烟酰胺单核苷酸。
2. 根据权利要求1所述的一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法,其特征在于,所述PRPP是以AMP为原料,在EC 2.4.2.7酶的催化下,或在EC 2.4.2.57酶和EC 2.7.4.23酶共同催化下,或在EC 2.4.2.7酶、EC 2.4.2.57酶和EC 2.7.4.23酶共同催化下发生化学反应,快速制备得到的。
3. 根据权利要求2所述的一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法,其特征在于,所述AMP是以腺苷为原料,在EC 2.7.1.20酶的催化下发生化学反应,制备得到的。
4.根据权利要求1-3任一所述的一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法,其特征在于,所述反应体系中还包括钠离子和/或钾离子、Tris和/或磷酸根离子,所述体系反应的pH值为5.0-9.0;反应的温度20℃-50℃。
5. 根据权利要求4所述的一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法,其特征在于,所述反应体系中底物添加量为:烟酸10-150 mM和/或喹啉酸10-150 mM、ATP 10-150 mM、镁离子10-150 mM和/或锰离子10-100 mM、铵离子10-500 mM、钠离子0-500 mM和/或钾离子0-500 mM、Tris 0-100 mM和/或磷酸根0-100 mM。
6. 根据权利要求1-3任一所述的一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法,其特征在于,各酶添加量均为10-5000 U,其中按照酶活比例来计算, EC 6.3.4.21酶与EC6.3.1.5酶活性比例为0.5-5,EC 2.4.2.19酶与EC 6.3.1.5酶活性比例为0.5-2。
7. 根据权利要求1-3任一所述的一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法,其特征在于,所述方法还包括偶联ATP再生体系进行循环反应,所述循环反应的反应体系中还包括多聚磷酸盐以及EC 2.7.4.3酶、EC 2.7.4.1酶和EC 2.7.4.B2酶的一种或多种。
8. 根据权利要求7所述的一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法,其特征在于,所述偶联ATP再生体系进行循环反应中,底物添加量为:烟酸10-150 mM和/或喹啉酸10-150mM、镁离子10-150 mM和/或锰离子10-100 mM、铵离子10-500 mM。
9. 根据权利要求1所述的一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法,其特征在于,所述烟酸由烟酰胺经EC 3.5.1.19酶催化得来,所述喹啉酸经EC 2.5.1.72酶和EC1.4.3.16酶由L-天门冬氨酸催化得来。
CN201910958989.XA 2019-10-10 2019-10-10 一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法 Active CN112646851B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201910958989.XA CN112646851B (zh) 2019-10-10 2019-10-10 一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201910958989.XA CN112646851B (zh) 2019-10-10 2019-10-10 一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN112646851A CN112646851A (zh) 2021-04-13
CN112646851B true CN112646851B (zh) 2023-03-28

Family

ID=75342630

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201910958989.XA Active CN112646851B (zh) 2019-10-10 2019-10-10 一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN112646851B (zh)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113141989A (zh) * 2021-04-21 2021-07-23 王炳江 一种提高葫芦科瓜果内β–烟酰胺单核苷酸含量的方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108026535A (zh) * 2016-07-30 2018-05-11 邦泰生物工程(深圳)有限公司 一种制备烟酰胺单核苷酸的方法
WO2018211028A1 (en) * 2017-05-18 2018-11-22 Dsm Ip Assets B.V. Microbial production of nicotinamide riboside
CN109053838A (zh) * 2018-07-26 2018-12-21 四川大学 制备β-烟酰胺单核苷酸或β-烟酰胺核糖的方法

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20190093140A1 (en) * 2015-06-11 2019-03-28 Newsouth Innovations Pty Limited Enzymatic systems and methods for synthesizing nicotinamide mononucleotide and nicotinic acid mononucleotide

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108026535A (zh) * 2016-07-30 2018-05-11 邦泰生物工程(深圳)有限公司 一种制备烟酰胺单核苷酸的方法
WO2018211028A1 (en) * 2017-05-18 2018-11-22 Dsm Ip Assets B.V. Microbial production of nicotinamide riboside
CN109053838A (zh) * 2018-07-26 2018-12-21 四川大学 制备β-烟酰胺单核苷酸或β-烟酰胺核糖的方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Nicotinamide mononucleotide synthetase is the key enzyme for an alternative route of NAD biosynthesis in Francisella tularensis;Leonardo Sorci等;《PNAS》;20090303;第106卷(第9期);3083-3088 *
烟酰胺单核苷酸的研究及应用进展;赵娟等;《食品科技》;20181231;第43卷(第4期);257-262 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN112646851A (zh) 2021-04-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN106191170B (zh) 一种酶法制备三磷酸腺苷的方法
CN105647996B (zh) 固定化酶法制备三磷酸腺苷的方法
CN109280680B (zh) 一种酶促联产的方法
CN106636020A (zh) 短链脱氢酶的突变体、重组表达载体、基因工程菌和应用
CN104830815A (zh) 一种采用全细胞转化高效生产α-苯丙酮酸的方法
WO2011110056A1 (zh) 一种微生物生产环腺苷酸的方法
CN102605027B (zh) 一种氧化型辅酶ii的酶催化制备方法
CN108018252B (zh) 一种中间体2’-脱氧鸟苷的制备方法
CN113430240A (zh) 一种连续流生物催化合成阿扎那韦中间体氯醇的方法
CN106995808A (zh) 一种重组转氨酶及其应用
CN115927513A (zh) 一种生物酶制备β-烟酰胺单核苷酸的方法
JP2024515083A (ja) β-ニコチンアミドモノヌクレオチドを調製するための酵素組成物及びその応用
CN102827853B (zh) 一种卤醇脱卤酶基因突变体及其应用
CN112646851B (zh) 一种酶法快速制备β-烟酰胺单核苷酸的方法
CN111808899A (zh) 一种胞磷胆碱钠的合成方法
CN101792786B (zh) 一种定向催化合成胞苷磷酰化合物的方法
CN115927141A (zh) 一种合成nmn的双酶共表达菌株及其构建方法和应用
CN113373192B (zh) 一种生物酶法合成核苷酸或其衍生物的方法
CN114262726A (zh) 一种利用胞苷酶法合成胞磷胆碱钠的方法
CN106834176A (zh) 一种核苷磷酸化酶、编码基因及其高产菌株和应用
CN102558261A (zh) 一种核苷酸类似物及其合成和应用
CN106047826A (zh) 醛脱氢酶、其重组表达转化体及在他汀前体合成中的应用
CN113122593A (zh) 一种利用多聚磷酸盐制备核苷三磷酸和脱氧核苷三磷酸的方法
CN116855473A (zh) 一种多聚磷酸激酶突变体及其在制备胞二磷胆碱中的应用
CN115820768A (zh) 一种利用多酶环状级联策略生产β-烟酰胺单核苷酸的方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
PE01 Entry into force of the registration of the contract for pledge of patent right
PE01 Entry into force of the registration of the contract for pledge of patent right

Denomination of invention: A rapid enzymatic preparation method b- Method for Nicotinamide Mononucleotides

Effective date of registration: 20230509

Granted publication date: 20230328

Pledgee: Anqing rural commercial bank Limited by Share Ltd.

Pledgor: Anhui Gute Biotechnology Co.,Ltd.

Registration number: Y2023980040047

PC01 Cancellation of the registration of the contract for pledge of patent right
PC01 Cancellation of the registration of the contract for pledge of patent right

Granted publication date: 20230328

Pledgee: Anqing rural commercial bank Limited by Share Ltd.

Pledgor: Anhui Gute Biotechnology Co.,Ltd.

Registration number: Y2023980040047