CN112359037A

CN112359037A - 一种高产γ-氨基丁酸的谷氨酸脱羧酶GADZ11及其基因和应用

Info

Publication number: CN112359037A
Application number: CN202110027735.3A
Authority: CN
Inventors: 涂涛; 孙磊; 王苑; 柏映国; 罗会颖; 姚斌; 黄火清; 苏小运; 王亚茹; 张�杰; 秦星; 王晓璐
Original assignee: Institute of Animal Science of CAAS
Current assignee: Institute of Animal Science of CAAS
Priority date: 2021-01-11
Filing date: 2021-01-11
Publication date: 2021-02-12

Abstract

本发明涉及基因工程领域，具体地，本发明涉及一种高产γ‑氨基丁酸的谷氨酸脱羧酶GADZ11及其基因和应用。本发明的谷氨酸脱羧酶最适pH为5.0，在pH 4～6都有较高的酶活性。利用大肠杆菌异源表达并纯化后，比活为91.7 U/mg。因此本发明的谷氨酸脱羧酶可作为饲料添加剂使用，减少畜禽活动量，减少应激反应，从而促进生长。

Description

一种高产γ-氨基丁酸的谷氨酸脱羧酶GADZ11及其基因和应用

技术领域

本发明涉及基因工程领域，具体地，本发明涉及一种高产γ-氨基丁酸的谷氨酸脱羧酶GADZ11及其基因和应用。

背景技术

γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid，GABA)是自然界普遍存在的一种四碳非蛋白质氨基酸，主要以兼性离子的方式存于水溶液中（Dhakal et al., 2012）。在微生物中，GABA的生成过程与菌体的耐酸机制直接相关（Wang et al., 2013）。研究发现，大多真核微生物细胞内GABA的存在可促进孢子生长（Hao et al., 1991）；另外，GABA在酵母抵御活性氧及有机酸等逆境胁迫中也发挥着重要作用（Cao et al., 2013）。在植物中，GABA影响着植物碳源和氮源的存储，能诱导生物体中乙烯的合成或调节胞内pH的平衡，同时防止植物体受氧化胁迫或渗透压等外界环境的影响，并在抵抗真菌和害虫等多种生理生化反应中均有参与（Bouché et al., 2004）。此外，在动物体内GABA同样发挥着重要的生理功效，主要表现为：(1) 血压与心率的调节（Diana et al., 2014）；(2) 促进生长激素分泌（Di Cagnoet al., 2010）；(3) 抗衰老（McCann et al., 1984）；(4) 保肝利肾（Leventhal et al.,2003）；(5) 治疗哮喘（Foster et al., 2006）；(6) 其余功能：除上述功能外，GABA还具备其他多种生理功效，如改善机体的脂质代谢、减缓血管动脉硬化、防止皮肤的老化、预防肥胖、抑制癌细胞生长和促进生殖等（Khakhalin et al., 2011），因此GABA在医药领域得到越来越多的关注。GABA减少活动量、促进生长的作用，使其还可以作为一种新型饲料添加剂应用于畜牧业。

目前工业制备GABA包括化学合成和生物转化两种常用方法，生物转化法相比较化学合成法具有反应过程简单、条件温和的优势，而围绕生物转化法的核心便是谷氨酸脱羧酶。谷氨酸脱羧酶(Glutamate decarboxylase，GAD)是一种依赖于磷酸吡哆醛(pyridoxal-5-phosphate，PLP)的II类氨基酸脱羧酶，可催化l-谷氨酸或谷氨酸盐脱羧生成GABA，并释放出CO₂。GAD广泛分布于从单细胞生物到哺乳动物的各种有机体活细胞中。微生物生长条件较简单、生长速度快、代谢过程特殊，成为生物酶的重要来源。利用微生物中的GAD生物转化生产GABA不受资源、环境和空间等因素的限制，具有显著的优点（de Carvalho et al.,2017）。但不同来源的GAD在结构和功能上具有一定的差异，因此利用蛋白质工程、生物信息学等技术的支持在现有GAD结构的基础上进行定向改造或者获得新来源的GAD，对得到高效益的GAD具有不可忽视的作用。

发明内容

本发明的目的是提供一种能高效应用的谷氨酸脱羧酶。

本发明的再一目的是提供编码上述谷氨酸脱羧酶的基因。

本发明的另一目的是提供包含上述基因的重组载体。

本发明的另一目的是提供包含上述基因的重组菌株。

本发明的另一目的是提供一种制备上述谷氨酸脱羧酶的基因工程方法。

本发明的另一目的提供上述谷氨酸脱羧酶的应用。

本发明提供了一种从芽孢杆菌中分离得到一种谷氨酸脱羧酶GADZ11，其氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示。该酶包括489个氨基酸，不含信号肽序列。

本发明提供了编码上述谷氨酸脱羧酶的基因gadz11，具体地，该基因的基因组序列如 SEQ ID NO:2所示。

本发明还提供了包含上述谷氨酸脱羧酶GADZ11的重组载体，优选为pET28a- z11。

本发明还提供了包含上述谷氨酸脱羧酶GADZ11的重组菌株，优选所述菌株为大肠杆菌、酵母菌、芽孢杆菌或乳酸杆菌。

其中，优选所述宿主细胞为大肠杆菌细胞，优选将重组大肠杆菌表达质粒转化至大肠杆菌细胞BL21(DE3)，得到重组菌株BL21/gadz11。

本发明还提供了一种制备谷氨酸脱羧酶GADZ11的方法，包括以下步骤：

1）用上述的重组载体转化宿主细胞，得重组菌株；

2）培养重组菌株，诱导重组谷氨酸脱羧酶表达；

3）回收并纯化所表达的谷氨酸脱羧酶GADZ11。

本发明还提供了上述谷氨酸脱羧酶GADZ11的应用。

本发明首先所要解决的技术问题是克服现有技术的不足，提供一种性质优良的、适合于在饲料、食品工业中应用的新型谷氨酸脱羧酶。本发明获得一种谷氨酸脱羧酶GADZ11，最适温度40℃，最适pH5.0。这些性质符合畜禽动物消化生理特点，能提高饲料消化能和代谢能，降低配方成本，减少环境污染。

此谷氨酸脱羧酶的理论分子量为55.4 kDa。该谷氨酸脱羧酶GADZ11的最适pH为5.0，在pH4.0-5.5的范围内，酶活性均维持在最大酶活性的60%以上。利用大肠杆菌异源表达并纯化后，比活为91.7 U/mg。

本发明还提供了编码上述谷氨酸脱羧酶GADZ11的基因gadz11。

本发明通过PCR的方法分离克隆了这一谷氨酸脱羧酶基因gadz11，DNA全序列分析结果表明，谷氨酸脱羧酶GADZ11结构基因gadz11全长1470bp编码489个氨基酸和一个终止密码子，无信号肽序列。蛋白理论分子量为55.4 kDa，等电点为5.66。在GenBank数据库中的比对结果表明GADZ11是一个新的谷氨酸脱羧酶。

本发明还提供了包含上述谷氨酸脱羧酶基因的重组载体，优选为pET28a-gadz11。将本发明的谷氨酸脱羧酶基因插入到表达载体合适的限制性酶切位点之间，使其核苷酸序列可操作的与表达调控序列相连接。作为本发明的一个最优选的实施方案，优选为将谷氨酸脱羧酶基因插入到质粒pET28a(+)上的EcoRI和NotI限制性酶切位点之间，得到重组表达质粒pET28a-gadz11。

本发明还提供了上述谷氨酸脱羧酶的应用。

本发明首先所要解决的技术问题是克服现有技术的不足，提供一种性质优良的、适合于在饲料、食品工业中应用的新型谷氨酸脱羧酶。谷氨酸脱羧酶在室温有较高的活性，因其不需要外加能量供酶促反应，所以在工业和农业上的应用可以节省大量的能源。本发明的谷氨酸脱羧酶最适pH为5.0，在pH4～6都有较高的酶活性。因此本发明的谷氨酸脱羧酶可作为饲料添加剂使用，减少畜禽活动量，减少应激反应，从而促进生长。与序列一致性较高的谷氨酸脱羧酶GADZ20相比，酶活显著增加。

附图说明

图1显示在大肠杆菌中表达的重组谷氨酸脱羧酶的SDS-PAGE分析，其中，M：低分子量蛋白质Marker；1：诱导的含有空载体的大肠杆菌培养上清液；2：诱导的含有谷氨酸脱羧酶基因的大肠杆菌培养上清液浓缩液；3：通过镍柱纯化的达到电泳纯的Z20蛋白。

图2显示重组谷氨酸脱羧酶的最适pH。

图3显示重组谷氨酸脱羧酶的最适温度。

图4显示l-Glu转化成γ-氨基丁酸的转化率试验。

图5显示GADZ11与GADZ20氨基酸序列比对图。

具体实施方式

试验材料和试剂

1、菌株及载体：大肠杆菌表达载体pET28a(+)及菌株Escherichia coli BL21 (DE3)购自于南京诺唯赞生物科技有限公司。

2、酶类及其它生化试剂：内切酶购自TaKaRa公司，连接酶购自Invitrogen公司。感受态细胞购自南京诺唯赞生物科技有限公司。γ-氨基丁酸、磷酸吡哆醛（PLP）购自Sigma公司，其它都为国产分析纯试剂（均可从普通生化试剂公司购买得到）。

3、培养基：

（1）LB培养基（g/l）：酵母粉 5.0，蛋白胨10.0，NaCl 10.0，pH7.0。

（2）平板筛选培养基（g/l）：酵母粉 5.0，蛋白胨10.0，NaCl 10.0，琼脂15.0，pH7.0。

说明：以下实施例中未作具体说明的分子生物学实验方法，均参照《分子克隆实验指南》（第三版）J.萨姆布鲁克一书中所列的具体方法进行，或者按照试剂盒和产品说明书进行。

实施例1芽孢杆菌中Z11基因组DNA的提取

枯草芽孢杆菌Z11在LB培养基中30 ℃过夜培养后，在12,000×g高速离心2分钟以收集菌体，然后将离心得到的沉淀按照天根生化科技有限公司细菌基因组DNA提取试剂盒说明书提供的方法进行基因组DNA的提取。

实施例2 枯草芽孢杆菌Z11来源的谷氨酸脱羧酶编码基因gadz11的克隆

根据序列设计合成了扩增引物EcoRI F/NotI R：

EcoRI F：（SEQ ID NO:3）;

NotI R：（SEQ ID NO:4）。

以上述的基因组总DNA为模板进行PCR扩增。降落PCR反应参数为：95℃变性5 min；95℃变性30 sec，55℃退火30 sec，72℃延伸5 min，25个循环，4℃保温10 min。得到一约1500 bp片段，将该片段回收后与pET28a(+)载体相连送天一辉远生物技术有限公司测序。

通过序列拼接获得该片段的完整序列，全序列共长1470 bp，编码489个氨基酸和一个终止密码子。gadz11编码蛋白预计分子量为55.4kDa，等电点为5.66。

实施例3 重组谷氨酸脱羧酶的制备。

将表达载体pET28a(+)进行双酶切 (EcoRI+NotI)，同时将编码谷氨酸脱羧酶的基因gadz11双酶切（EcoRI+NotI），酶切好的谷氨酸脱羧酶基因片段与表达载体pET28a(+)连接，获得含有谷氨酸脱羧酶基因gadz11的重组质粒pET28a-gadz11并转化大肠杆菌BL21(DE3)，获得重组大肠杆菌菌株BL21/gad-z11。

取含有重组质粒的BL21菌株，接种于40 mL LB(50 µg/mL的卡那酶素)培养液中，37 ℃培养过夜。按1%的接种量接菌于400 mL LB(含有50 µg/mL的卡那酶素)培养基，于37℃振荡培养约2~3 h后(OD₆₀₀达到0.6)，加入终浓度0.5 mM的诱导剂IPTG。在16℃震荡培养16 h后，于8000 rpm离心15 min，收集菌体，并选用20 mM Tris-HCl（0.5 M NaCl）缓冲液重悬菌体，置于冰上后，以50%的功率超声破碎2小时，12000 rpm离心10 min，收集上清。谷氨酸脱羧酶的活力采用HPLC法测定。SDS-PAGE结果(图1)表明，重组谷氨酸脱羧酶在大肠杆菌中得到了表达。所表达的谷氨酸脱羧酶经过纯化之后，其蛋白质的含量达到总蛋白的95％以上。

实施例4 重组谷氨酸脱羧酶GADZ11的活性分析、及性质测定

HPLC法：具体方法如下：在pH5.0，40℃条件下，1 mL的反应体系包括50 μL酶液，500 μL底物，400 μL Buffer，50 μL PLP。反应30 min，加入1 mL 80%的乙醇终止反应。样品离心后取500 µL，加100 µL的NaHCO₃（40 g/L）和200 µL的4-二甲基胺基偶氮苯-4-磺酰氯（1 g/L）乙腈溶液70℃衍生20 min，0.02μm孔径的滤膜过滤后，进行HPLC分析检测。分析条件如下：仪器为：岛津液相色谱仪，测定条件包括：Agilent Zorbax SB-Aq柱(5×150mm)；检测波长436nm；流动相A＝乙腈，B＝50mM的乙酸钠溶液；流速＝1mL/min；自动柱前衍生，衍生剂为1g/L 4-二甲基胺基偶氮苯-4-磺酰氯（DABS-Cl）乙腈溶液。梯度洗脱条件：35％体积A，65％体积B；进样量10 μL。

1、重组谷氨酸脱羧酶Z11的最适pH的测定方法如下:

将实施例3纯化的重组谷氨酸脱羧酶在不同的pH下进行酶促反应以测定其最适pH。底物L-Glu用不同pH的0.1 M柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液中40℃下进行谷氨酸脱羧酶活力测定。结果(图2)表明，Z11的最适pH为5.0，在pH4.5～5.5的范围内，酶活性均维持在最大酶活性的60%以上。

2、谷氨酸脱羧酶的最适温度测定方法如下:

谷氨酸脱羧酶的最适温度的测定为在柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液(pH6.0)缓冲液体系及不同温度下进行酶促反应。耐温性测定为谷氨酸脱羧酶在不同温度下处理不同时间，再在40℃下进行酶活性测定。酶反应最适温度测定结果(图3)表明, 其最适温度为40℃。重组酶在35-45℃时稳定性非常好。

3、谷氨酸脱羧酶的K _m值测定方法如下:

用不同浓度的l-Glu为底物，在pH5.0的l-Glu和柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液的混合体系中，在40℃下测定酶活性，计算出K _m值。经测定，GADZ11对l-Glu底物在40℃的动力学常数如表1所示。

表1. 谷氨酸脱羧酶GAD-Z11的动力学常数

4、转化率试验

人如图4所示，将携带gadz11的大肠杆菌菌株在16℃下诱导培养16 h后，8000×g下离心10min，然后在水中以l-Glu为底物，在适当浓度下再悬浮。细胞密度用OD₆₀₀值表示。反应混合物在37℃下孵育产生GABA。经测定在OD₆₀₀ 20的细胞浓度下，含GADZ11的工程菌可以在2 hour内将1 M的l-Glu全部转化成γ-氨基丁酸，转化率达到100%。

实施例5 重组谷氨酸脱羧酶GADZ20的性质测定

谷氨酸脱羧酶GADZ20，其氨基酸序列如SEQ ID NO. 5所示。如图5所示，与本发明的谷氨酸脱羧酶GADZ11的氨基酸序列一致性为96.32%，近20个氨基酸的差显著影响了两种谷氨酸脱羧酶的性质。

该谷氨酸脱羧酶GADZ20的最适pH为5.0，在pH4.0-5.5的范围内，酶活性均维持在最大酶活性的60%以上。然而，利用大肠杆菌异源表达并纯化后，比活为13.5 U/mg，显著低于本发明的谷氨酸脱羧酶GADZ11的比活91.7 U/mg。

谷氨酸脱羧酶GADZ20的的K _m值测定方法如下:

用不同浓度的l-Glu为底物，在pH5.0的l-Glu和柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液的混合体系中，在40℃下测定酶活性，计算出K _m值。经测定，GADZ20对l-Glu底物在40℃的动力学常数如表1所示。

表2. 谷氨酸脱羧酶GADZ20的动力学常数

由此可见，谷氨酸脱羧酶GADZ11与谷氨酸脱羧酶GADZ20与底物的结合特性差异显著。尽管谷氨酸脱羧酶GADZ11的K _m值是谷氨酸脱羧酶GADZ20的3.9倍，意味着谷氨酸脱羧酶GADZ20与底物l-Glu的亲和力较谷氨酸脱羧酶GADZ11强，但谷氨酸脱羧酶GADZ11的k _cat值是谷氨酸脱羧酶GADZ20的31.9倍，即单位时间内每个谷氨酸脱羧酶GADZ11分子催化底物l-Glu转变为产物GABA的速率是谷氨酸脱羧酶GADZ20的31.9倍，说明二者之间的差异氨基酸位点对谷氨酸脱羧酶GADZ11的高催化活力起到了关键作用，具体表征在谷氨酸脱羧酶GADZ11的酶催化效率（k _cat/K _m值）是谷氨酸脱羧酶GADZ20的8.3倍，证明谷氨酸脱羧酶GADZ11催化底物的能力远大于谷氨酸脱羧酶GADZ20。

序列表

<110> 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所

<120> 一种高产γ-氨基丁酸的谷氨酸脱羧酶GADZ11及其基因和应用

<160> 5

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 489

<212> PRT

<213> 枯草芽孢杆菌(Bacillus)

<400> 1

Met Ser Lys Asp Arg Lys Ala Asp Thr Gln Ser Asp Thr Tyr Gly Gly

1 5 10 15

Lys Glu Ile Lys Pro Asp Gln Gln Gln Arg Leu Pro His His Met Glu

20 25 30

Met Glu Leu Pro His Glu Leu Ser Ile Asn Pro Leu Phe Ala Arg Glu

35 40 45

Gly Glu Ser Thr Ile Pro Arg Phe His Leu Ala Asp Gly Gly Met Leu

50 55 60

Pro Glu Thr Ala Tyr Gln Ile Val His Asp Glu Ile Thr Leu Asp Gly

65 70 75 80

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85 90 95

Ala Ala Glu Arg Leu Tyr Ala Gln Ser Phe Asp Lys Asn Met Ile Asp

100 105 110

Lys Asp Glu Tyr Pro Gln Thr Ala Gln Ile Glu Glu Arg Cys Val Arg

115 120 125

Ile Leu Ala Asp Leu Trp His Ser Pro Glu Pro Leu Lys Thr Ile Gly

130 135 140

Val Ser Thr Thr Gly Ser Ser Glu Ala Cys Met Leu Gly Gly Leu Ala

145 150 155 160

Leu Lys Arg Arg Trp Gln Asn Ala Arg Lys Lys Lys Gly Lys Pro Val

165 170 175

Asp Arg Pro Asn Ile Val Phe Ser Ser Ala Val Gln Val Val Trp Glu

180 185 190

Lys Phe Ala Asn Tyr Trp Glu Val Glu Pro Arg Tyr Val Lys Val Thr

195 200 205

Pro Glu His Pro Gln Leu Asn Pro Glu Gly Val Leu Ala Ala Val Asp

210 215 220

Glu Asn Thr Ile Gly Val Val Ala Ile Leu Gly Glu Thr Tyr Thr Gly

225 230 235 240

Leu Tyr Glu Pro Ile Ala Ala Ile Ala Lys Ala Leu Asp Glu Leu Gln

245 250 255

Glu Lys Ser Gly Leu Asn Ile Pro Met His Val Asp Ala Ala Ser Gly

260 265 270

Gly Phe Ile Ala Pro Phe Leu Gln Pro Asp Leu Val Trp Asp Phe Gln

275 280 285

Leu Pro Arg Val Lys Ser Ile Asn Val Ser Gly His Lys Tyr Gly Leu

290 295 300

Val Tyr Pro Gly Leu Gly Trp Ile Ile Trp Arg Glu Ala Lys Asp Leu

305 310 315 320

Pro Glu Glu Leu Ile Phe Arg Val Ser Tyr Leu Gly Gly Asn Met Pro

325 330 335

Thr Phe Ala Leu Asn Phe Ser Arg Pro Gly Ala Gln Val Leu Leu Gln

340 345 350

Tyr Tyr Asn Tyr Leu Arg Leu Gly Lys Glu Gly Tyr Tyr Glu Val Gln

355 360 365

Lys Ala Ser Gln Asn Val Ala Leu Phe Leu Ser Lys Glu Ile Gln Asn

370 375 380

Met Gly Pro Phe Glu Leu Leu Ser Asn Gly Ser Asp Ile Pro Val Phe

385 390 395 400

Ala Trp Arg Leu Lys Asp Asp Ala Thr Ser His Trp Thr Leu Phe Asp

405 410 415

Leu Ser Arg Gln Met Arg Val Phe Gly Trp Gln Val Pro Ala Tyr Pro

420 425 430

Leu Pro Pro Ala Met Glu Thr Val Thr Ile Met Arg Val Val Val Arg

435 440 445

Asn Gly Phe Ser Met Asp Leu Ala His Leu Phe Leu Val Asn Leu Lys

450 455 460

Gln Ala Val Ala Phe Leu Asp Thr Leu Asp Ala Pro Met Ala His Asp

465 470 475 480

Thr Lys Tyr Asp Asn Gly Phe His His

485

<210> 2

<211> 1470

<212> DNA

<213> 枯草芽孢杆菌(Bacillus)

<400> 2

atgtccaagg atcgaaaagc agacactcaa agcgatacat acggaggaaa agagatcaag 60

cccgatcagc aacaacgatt accgcatcac atggaaatgg agcttccaca cgaactctcc 120

ataaaccctc tgtttgcccg cgaaggtgaa tccaccattc cccgctttca tctggcggat 180

ggggggatgc taccagaaac agcctatcag atcgtccatg atgaaatcac tcttgatggc 240

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ttatatgccc aatcattcga taaaaacatg atagacaagg atgaatatcc gcagacagcc 360

caaatcgagg agagatgcgt ccgcatttta gccgatctct ggcattcacc cgagcctttg 420

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cctgacctgg tttgggattt ccaactgccg agggtgaagt ccatcaatgt atccggacat 900

aagtatggat tggtctaccc gggattgggt tggatcatct ggagggaagc caaggacctc 960

cctgaggaac tcatcttccg cgtctcctat ctcggcggga acatgccgac tttcgccctg 1020

aatttctccc gccccggcgc gcaggtactg ctgcagtatt ataattacct gcgtctaggg 1080

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gagattcaga acatgggacc gttcgaactt ttatccaatg gttccgatat acccgtcttc 1200

gcttggcgac tgaaagatga tgccacatcc cattggacgc tatttgattt atccagacaa 1260

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gtgaacctca aacaggccgt tgcttttctc gatacactgg atgcacctat ggcacatgat 1440

acgaagtatg ataatgggtt tcatcattag 1470

<210> 3

<211> 30

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

ctgaattcat gtccaaggat cgaaaagcag 30

<210> 4

<211> 38

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

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<210> 5

<211> 489

<212> PRT

<213> 枯草芽孢杆菌(Bacillus)

<400> 5

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1 5 10 15

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Glu Lys Ser Gly Leu Asn Ile Pro Met His Val Asp Ala Ala Ser Gly

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Claims

1.一种谷氨酸脱羧酶GADZ11，其特征在于，其氨基酸序列如SEQ ID NO: 1所示。

2.一种谷氨酸脱羧酶基因gadz11，其特征在于，其编码权利要求1所述的谷氨酸脱羧酶GADZ11。

3.根据权利要求2所述的谷氨酸脱羧酶基因gadz11，其特征在于，其核苷酸序列如SEQID NO：2。

4.包含权利要求2所述谷氨酸脱羧酶基因gadz11的重组载体。

5.包含权利要求2所述谷氨酸脱羧酶基因gadz11的重组菌株。

6.根据权利要求5所述的重组菌株，其特征在于，其所述重组菌株为重组大肠杆菌、重组酵母菌、重组芽孢杆菌或重组乳酸杆菌。

7.权利要求1所述谷氨酸脱羧酶GADZ11的应用。

8.根据权利要求7所述的应用，其特征在于，所述谷氨酸脱羧酶GADZ11用作饲料添加剂。

9.一种生产谷氨酸脱羧酶的方法，其特征在于，所述方法包括以下步骤：

构建包含编码权利要求1所述谷氨酸脱羧酶GADZ11的基因的重组载体；

将上述获得的重组载体导入宿主细胞；

表达并回收谷氨酸脱羧酶。