CN112341552A - 不饱和羟丁基壳聚糖和温敏水凝胶、二者的制备方法及应用 - Google Patents

不饱和羟丁基壳聚糖和温敏水凝胶、二者的制备方法及应用 Download PDF

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Abstract

本发明涉及生物医用材料技术领域，涉及不饱和羟丁基壳聚糖和温敏水凝胶、二者的制备方法及应用。本发明的提供了一种不饱和羟丁基壳聚糖及其制备方法，该不饱和羟丁基壳聚糖侧链含有不饱和基团，利用该不饱和基团实现链状的羟丁基壳聚糖的交联成网状凝胶，得到一种机械强度更高，具有更高的弹性模量的温敏凝胶，该温敏凝胶用于制备生物软组织材料时，服役时间更长，能够用于制备软组织填充材料，软组织修复材料，体表创伤敷料，软组织、肌腱与神经组织手术后防粘连材料。

Description

不饱和羟丁基壳聚糖和温敏水凝胶、二者的制备方法及应用
技术领域
本发明涉及生物医用材料技术领域，具体而言，涉及不饱和羟丁基壳聚糖和温敏水凝胶、二者的制备方法及应用。
背景技术
壳聚糖(Chitosan)又称脱乙酰甲壳素，是由自然界广泛存在的甲壳素(chitin)经过脱乙酰作用得到的，化学名称为聚葡萄糖胺(1-4)-2-氨基-B-D葡萄糖。这种天然高分子的生物官能性和相容性、血液相容性、安全性、微生物降解性等优良性能被各行各业广泛关注，在医药、食品、化工、化妆品、水处理、金属提取及回收、生化和生物医学工程等诸多领域的应用研究取得了重大进展。但由于分子内氢键与分子间的氢键作用，导致了壳聚糖的结晶度较高，因此壳聚糖难溶于水，只能溶解于酸中，也就限制了壳聚糖的应用范围。这样，就需要对壳聚糖进行改性，以增强其溶解性能，扩宽其应用领域。
近年来报道的壳聚糖新型改性产物：羟丁基壳聚糖(HBCS)，由于其独特的温度敏感型与良好的生物学活性，已然成为了研究的热点。羟丁基壳聚糖易溶于水，其水溶液可在不加任何交联剂的情况下，通过温度响应形成物理交联网络的凝胶，此凝胶可任意塑形，且具有一定机械强度，此性质扩宽了壳聚糖的应用领域。据报道，羟丁基壳聚糖由壳聚糖在强碱性条件下，与1,2-环氧丁烷发生加成反应而制备。取代度超过1的羟丁基壳聚糖，在壳聚糖结构单元的C2-NH2与C6-OH上被羟丁基取代。
当前，HBCS已经广泛地应用在皮肤创面敷料、可注射水凝胶以及术后防粘连等领域。虽然HBCS可在体温条件下快速发生凝胶化转变，但由于HBCS的主要结构仍为线性多糖，在体内环境下受到生物酶(例如溶菌酶、内切型几丁质酶等)与体内活性氧簇自由基的作用易发生降解，大约在2～4周左右。而且温敏性HBCS凝胶的机械强度较差，弹性模量较低，当将HBCS凝胶作用生物材料对一些活动度较大的部位进行修复时，易造成HBCS凝胶的破裂。
鉴于此，特提出本发明。
发明内容
本发明的目的在于提供一种不饱和羟丁基壳聚糖(UHBCS)，该不饱和羟丁基壳聚糖为侧链含有不饱和基团的羟丁基壳聚糖分子，利用不饱和基团实现链状的羟丁基壳聚糖的交联成网状凝胶，以提高其机械强度从而能够应用于生物软组织材料的修复和替换。
本发明的另一目的在于提供上述不饱和羟丁基壳聚糖的制备方法，通过简单、易操作的反应条件，选择不饱和酸酐和/或不饱和酰氯与羟丁基壳聚糖的侧链羟基和/或氨基发生酰化反应，能够在自然pH条件下，实现将不饱和基团接枝与羟丁基壳聚糖的主链上。
本发明还有一个目的在于提供上述不饱和羟丁基壳聚糖在制备温敏凝胶中的应用。
本发明的另一目的在于提供利用上述不饱和羟丁基壳聚糖制备温敏凝胶的方法，上述不饱和羟丁基壳聚糖的不饱和侧链能够在多种交联试剂的作用下，提供简单的反应条件即可实现快速的交联，形成具有网状结构的温敏凝胶。
本发明还有一个目的在于，提供一种温敏凝胶，该温敏凝胶即利用上述不饱和羟丁基壳聚糖。温敏凝胶的特性为温度敏感可逆性，通过控制温度的变化可以自由调整水凝胶的溶胶与凝胶状态，并可以多次反复变化。而化学交联的凝胶则不可逆，凝胶化后不可通过物理手段形成溶胶。通过上述制备方法得到的，在温敏凝胶化之后，不饱和的基团紧密缠绕给化学交联提供了环境，使得上述不饱和羟丁基壳聚糖能够通过不饱和侧链实现网状交联，得到的温敏凝胶机械强度更高，具有更高的弹性模量，用于制备生物软组织材料时，服役时间更长。
本发明的最后一个目的在于，提供上述温敏凝胶在制备软组织填充材料，软组织修复材料，体表创伤敷料，软组织、肌腱与神经组织手术后防粘连材料中的应用，由于上述温敏凝胶具有更高的弹性模量和更长的服役时间，因此，更适合用于上述材料中。
本发明是这样实现的：
本发明提供了一种不饱和羟丁基壳聚糖，所述不饱和羟丁基壳聚糖为侧链含有不饱和基团的羟丁基壳聚糖分子，所述不饱和基团包括不饱和酸酐基团和/或不饱和酰氯基团，所述不饱和基团的接枝率为10％～100％；例如可以为，但不限于10％、20％、40％、60％、80％或100％。
上述不饱和基团指的是含有π键或环的基团，接枝不饱和基团的羟丁基壳聚糖之间能够在交联剂的作用下，通过不饱和键之间的加成反应形成具有网状结构的凝胶。羟丁基壳聚糖分子含有羟丁基及氨基两类侧链，本发明选用了不饱和酸酐基团和/或不饱和酰氯基团，通过简单的酰化反应，将羟丁基壳聚糖分子侧链中羟基中的氢和/或氨基中的氢取代为不饱和酰基，反应简单，且接枝率容易控制。接枝率是指共聚合反应中，单体或聚合物支链接到接枝共聚物中的量与初始投入的待接枝的单体或待接枝的聚合物支链的总量之比。本发明中指已接枝不饱和酰基的羟丁基壳聚糖单体的分子数与总的羟丁基壳聚糖分子数之间的比值。
优选地，所述不饱和基团的接枝率为38～98％。
进一步优选地，所述不饱和基团的接枝率为96％。
优选地，所述不饱和羟丁基壳聚糖包括如下单体(A)～(C)中的一种或两种以上组合：
单体(A)为
Figure BDA0002810545730000041
单体(B)为
Figure BDA0002810545730000042
单体(C)为
Figure BDA0002810545730000043
其中，R1包括不饱和酸酐基团和/或不饱和酰氯基团；R2包括不饱和酸酐基团和/或不饱和酰氯基团；R3包括不饱和酸酐基团和/或不饱和酰氯基团。
优选地，所述不饱和羟丁基壳聚糖含有数量比为1:5～9的单体(A)和单体(C)。
优选地，所述不饱和羟丁基壳聚糖含有所述(A)～(C)三种单体，且单体(A)的数量：单体(B)的数量：单体(C)的数量为1：0.01～4：5～9。
优选地，所述不饱和酸酐基团包括甲基丙烯酸酐、丙烯酸酐、马来酸酐或衣康酸酐中的一种或两种以上组合；所述不饱和酰氯基团包括丙烯酰氯和/或甲基丙烯酰氯。
优选地，所述不饱和酸酐基团为衣康酸基团，且三种单体的数量比为1:1:8。
优选地，所述不饱和酸酐基团为甲基丙烯酸酐，且三种单体的数量比为1：1.5：7.5。
优选地，所述不饱和酸酐基团为丙烯酰氯，且三种单体的数量比为1：1.5：7.5。
在应用不饱和羟丁基壳聚糖进行交联制备水凝胶时，接枝率越高其交联度越高，形成的凝胶网络越致密，所得水凝胶的机械性能也就越好，但是，通常羟丁基壳聚糖的接枝率对其水溶性有着重要的影响，由于本发明中使用的不饱和基团为疏水基团，所以随着接枝率的增加，羟丁基壳聚糖的侧链疏水基团增多，疏水性的增加会造成水溶性降低，不利于水溶液条件下的交联反应。本发明选择含有双键的酸酐和/或酰氯作为不饱和基团在接枝后仍然可以保证接枝基团的亲水性，例如衣康酸基团，接枝后仍保留羧基，尤其是当接枝位点为壳聚糖2位的氨基时，接枝后侧链为亲水的酰胺基团，亦可保证接枝基团的亲水性，例如丙烯酰氯与氨基接枝后形成丙烯酰胺基团。因此，本发明中的方法可以保证羟丁基壳聚糖分子的接枝率达到100％时都具有良好的水溶性。
本发明提供了上述不饱和羟丁基壳聚糖的制备方法，所述制备方法包括，将羟丁基壳聚糖水溶液与不饱和酰化试剂的有机溶液混合后经过酰化反应制得不饱和羟丁基壳聚糖。
优选地，所述羟丁基壳聚糖水溶液中羟丁基壳聚糖的质量分数为0.1％～10％，包括但不限于0.1％、1％、5％、10％。
优选地，所述不饱和酰化试剂的有机溶液的质量分数为1％～50％，包括但不限于1％、2％、3％、4％、5％、6％、7％、8％、9％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％。
优选地，所述酰化反应在自然pH下进行，反应完成后调节pH至7.0。
本发明在将上述不饱和基团接枝于羟丁基壳聚糖时，只需要发生简单的酰化反应，反应简单，反应过程中无需对pH进行调节，即节约工序、提高了效率，又避免了pH调节过程中酸碱中和反应的放热对不饱和基团造成的破坏。
优选地，所述酰化反应的温度为20～60℃，包括但不限于20℃、30℃、40℃、50℃、60℃。
优选地，所述酰化反应的温度为40～50℃，包括但不限于40℃、41℃、42℃、43℃、44℃、45℃、46℃、47℃、48℃、49℃、50℃。
优选地，所述酰化反应的时间为2～24h，包括但不限于2h、4h、6h、8h、10h、12h、15h、18h、24h。
优选地，所述酰化反应的时间为15～20h，包括但不限于15h、16h、17h、18h、19h、20h。
优选地，所述酰化反应在催化剂作用下进行。
优选地，所述催化剂包括弱碱性催化剂。
优选地，所述弱碱性催化剂包括醋酸钠、磷酸钠、三乙胺或碳酸钠中的一种或两种以上组合。
上述催化剂能够在溶液中形成缓冲体系，避免溶液pH值的大范围波动，同时，催化剂的加入可提高酰化反应效率，减少副反应的发生。
优选地，所述催化剂的加入量为羟丁基壳聚糖加入量的1～50％，包括但不限于1％、2％、3％、4％、5％、6％、7％、8％、9％、10％、15％、20％、25％、30％、35％、40％、45％、50％。
优选地，所述酰化反应在惰性气体保护气氛下进行。
优选地，所述惰性气体包括氮气。
优选地，所述酰化反应完成并调节pH至7.0之后还依次包括过滤和干燥的步骤。
优选地，所述干燥的方法包括冷冻干燥法。冷冻干燥法是利用冰晶升华的原理，在高度真空的环境下，将已冻结了的食品物料的水分不经过冰的融化直接从冰固体升华为蒸汽，避免了固相组分液化过程对不饱和羟丁基壳聚糖分子结构的破坏，能够更好地保持制备得到的不饱和羟丁基壳聚糖分子的空间结构。
优选地，所述不饱和酰化试剂的有机溶液所使用的溶剂为溶于水的非活性氢试剂，所述的非活性氢试剂为不含羟基，伯胺或仲胺等基团的有机溶剂，可保证不饱和酰化试剂的活性基团不被溶剂所破坏。
优选地，所述溶剂包括四氢呋喃、液体聚乙二醇、N,N-二甲基甲酰胺、二甲基亚砜或N-甲基吡咯烷酮。
优选地，所述过滤的方法包括超滤，超滤时长为2～24h，包括但不限于2h、4h、6h、12h、24h。
优选地，所述超滤步骤所用的器材包括膜包或中空纤维。
优选地，所述膜包或中空纤维的截留分子量为1000～30000Da，所述截留分子量以制备的不饱和羟丁基壳聚糖的分子量为标准，所述不饱和羟丁基壳聚糖的分子量能够通过调整酰化反应的各项参数来控制。
本发明提供了上述不饱和羟丁基壳聚糖在制备温敏水凝胶中的应用。
本发明提供了一种温敏水凝胶的制备方法，所述制备方法包括利用上述的不饱和羟丁基壳聚糖，在交联引发剂的作用下，通过自由基交联反应制得温敏水凝胶。
优选地，所述交联引发剂包括光交联引发剂或热交联引发剂。
优选地，所述交联引发剂为光交联引发剂，所述温敏水凝胶的制备方法包括将不饱和羟丁基壳聚糖与光交联引发剂溶于水，然后在35℃以上条件下，采用光强度为0.05～50mW·cm-2的紫外光或蓝光照射1～20min，引发剂在光照条件下释放自由基，引发不饱和羟丁基壳聚糖的自由基交联反应，得到光交联温敏水凝胶；所述不饱和羟丁基壳聚糖质量分数为0.5％～20％，包括但不限于0.5％、1％、1.5％、2％、2.5％、3％、3.5％、4％、4.5％、5％、5.5％、6％、6.5％、7％、7.5％、8％、8.5％、9％、9.5％、10％、10.5％、11％、11.5％、12％、12.5％、13％、13.5％、14％、14.5％、15％、15.5％、16％、16.5％、17％、17.5％、18％、18.5％、19％、19.5％、20％；所述光交联引发剂质量分数为0.01％～1％，包括但不限于0.01％、0.02％、0.03％、0.04％、0.05％、0.06％、0.07％、0.08％、0.09％、0.1％、0.15％、0.2％、0.25％、0.3％、0.35％、0.4％、0.45％、0.5％、0.55％、0.6％、0.65％、0.7％、0.75％、0.8％、0.85％、0.9％、0.95％、1％；所述的光交联引发剂与不饱和羟丁基壳聚糖的质量比为1:1～200，包括但不限于1:1、1:2、1:3、1:4、1:5、1:6、1:7、1:8、1:9、1:10、1:15、1:20、1:25、1:30、1:35、1:40、1:45、1:50、1:55、1:60、1:65、1:70、1:75、1:80、1:85、1:90、1:95、1:100、1:110、1:120、1:130、1:140、1:150、1:160、1:170、1:180、1:190、1:200。
进一步优选地，所述光交联引发剂包括I2959。
进一步优选地，所述紫外光波长为200～400nm，包括但不限于200nm、205nm、210nm、215nm、220nm、225nm、230nm、235nm、240nm、245nm、250nm、255nm、260nm、265nm、270nm、275nm、280nm、285nm、290nm、295nm、300nm。
进一步优选地，所述蓝光波长为400～480nm，包括但不限于400nm、405nm、410nm、415nm、420nm、425nm、430nm、435nm、440nm、445nm、450nm、455nm、460nm、465nm、470nm、475nm、480nm。
优选地，所述交联引发剂为热交联剂，所述热敏水凝胶的制备方法包括将不饱和羟丁基壳聚糖与热交联引发剂溶于水，所述不饱和羟丁基壳聚糖质量分数为0.5％～10％，包括但不限于0.5％～20％，包括但不限于0.5％、1％、1.5％、2％、2.5％、3％、3.5％、4％、4.5％、5％、5.5％、6％、6.5％、7％、7.5％、8％、8.5％、9％、9.5％、10％；所述热交联引发剂的质量分数为0.01％～5％，包括但不限于0.01％、0.02％、0.03％、0.04％、0.05％、0.06％、0.07％、0.08％、0.09％、0.1％、0.15％、0.2％、0.25％、0.3％、0.35％、0.4％、0.45％、0.5％、0.55％、0.6％、0.65％、0.7％、0.75％、0.8％、0.85％、0.9％、0.95％、1％、1.5％、2％、2.5％、3％、3.5％、4％、4.5％、5％；然后在35℃条件下使不饱和羟丁基壳聚糖发生胶化后，再升温至60～80℃，持续反应10～120min，得到热交联温敏水凝胶；所述的热交联引发剂与不饱和羟丁基壳聚糖的质量比为1:2～200，包括但不限于1:2、1:3、1:4、1:5、1:6、1:7、1:8、1:9、1:10、1:15、1:20、1:25、1:30、1:35、1:40、1:45、1:50、1:55、1:60、1:65、1:70、1:75、1:80、1:85、1:90、1:95、1:100、1:110、1:120、1:130、1:140、1:150、1:160、1:170、1:180、1:190、1:200。
进一步优选地，所述热交联引发剂包括水溶性过氧引发剂或水溶性偶氮引发剂，过氧引发剂或水溶性偶氮引发剂能够在加热条件下释放自由基，引发不饱和羟丁基壳聚糖的自由基交联反应。
进一步优选地，所述水溶性过氧引发剂包括过氧苯甲酸，过硫酸钾或过氧乙酸中的一种或两种以上组合。
进一步优选地，所述水溶性偶氮引发剂包括偶氮二异丁脒盐酸盐和/或偶氮二异丁咪唑啉盐酸盐。
本发明提供了一种上述制备方法制备得到的温敏水凝胶。
本发明提供了上述水凝胶在制备软组织替换材料，软组织修复材料，体表创伤敷料，软组织、肌腱与神经组织手术后防粘连材料中的应用。
本发明具有以下有益效果：
本发明提供的不饱和羟丁基壳聚糖侧链中含有不饱和酸酐基团和/或不饱和酰氯基团，接枝率为10％～100％，该不饱和羟丁基壳聚糖以不饱和酸酐和/或不饱和酰氯基团为接枝基团，当接枝率达到100％时仍能保持良好的水溶性。且利用该不饱和基团能够实现链状的羟丁基壳聚糖的交联，得到网状凝胶，该网状凝胶应用于生物软组织材料的修复和替换时具有更高的机械强度。
本发明提供的不饱和羟丁基壳聚糖的制备方法成功地将不饱和酸酐和/或不饱和酰氯通过酰化反应接枝与羟丁基壳聚糖的侧链上，该反应在自然pH条件下进行，反应条件简单，易操作。
本发明提供的温敏凝胶的制备方法，实现了上述不饱和羟丁基壳聚糖的不饱和侧链在多种交联试剂的作用下及简单的反应条件下的快速交联，该方法反应条件简单，易操作，适于批量生产。
本发明还提供了采用上述不饱和羟丁基壳聚糖制备的温敏凝胶，利用本发明提供的不饱和羟丁基壳聚糖通过简单的操作步骤，使其在交联试剂的作用下形成的具有网状的凝胶，该温敏凝胶的热稳定性、化学稳定性及生物相容性好，杨氏模量高，无毒，用于制备生物软组织材料时，更加安全，且服役时间更长。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例的技术方案，下面将对实施例中所需要使用的附图作简单地介绍，应当理解，以下附图仅示出了本发明的某些实施例，因此不应被看作是对范围的限定，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他相关的附图。
图1为实施例6中UHBCS-96IA经1H NMR检测结果；
图2为实施例7中UHBCS-38IA经1H NMR检测结果；
图3为实施例7中UHBCS-38IA与HBCS、CS经红外检测得到的FTIR谱图；
图4为实施例12中利用UHBCS-96IA制备温敏凝胶的示意图；
图5为实验例1中UHBCS-96IA凝胶膜体外降解结果示意图；
图6为实验例2中UHBCS-96IA凝胶膜与UHBCS-38IA凝胶膜机械强度对比图；
图7为实验例3中UHBCS-96IA凝胶膜与UHBCS-38IA凝胶膜体外细胞毒性检测结果；
图8为实验例4中HE染色结果；
图9为实验例4中MASSON染色结果。
具体实施方式
为使本发明实施例的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述。实施例中未注明具体条件者，按照常规条件或制造商建议的条件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可以通过市售购买获得的常规产品。
以下结合实施例对本发明的特征和性能作进一步的详细描述。
实施例1
本实施例提供了一种不饱和羟丁基壳聚糖，该不饱和羟丁基壳聚糖壳聚糖的侧链接枝率为96％，共包含下三种单体：
单体(A)
Figure BDA0002810545730000111
单体(B)
Figure BDA0002810545730000112
和单体(C)
Figure BDA0002810545730000113
其中R1、R2和R3均为衣康酸基团，三种单体的数量比为nA：nB：nC＝1：1：8。
实施例2
本实施例提供了一种不饱和羟丁基壳聚糖，该不饱和羟丁基壳聚糖的侧链中接枝率为38％，接枝的不饱和基团为衣康酸基团，包含的单体主链及数量与实施例1相同。
实施例3
本实施例提供了一种不饱和羟丁基壳聚糖，该不饱和羟丁基壳聚糖的侧链中包含接枝率为40％的不饱和基团丙烯酰氯，nA：nB：nC＝1：1.5：7.5。
实施例4
本实施例提供了一种不饱和羟丁基壳聚糖，该不饱和羟丁基壳聚糖的侧链中包含接枝率为25％的不饱和基团甲基丙烯酸酐，nA：nB：nC＝1：1.5：7.5。
实施例5
本实施例提供了一种不饱和羟丁基壳聚糖，该不饱和羟丁基壳聚糖与实施例1的区别在于，nA：nB：nC＝为1:1.5:7.5。
对比例1
本对比例提供了一种不饱和羟丁基壳聚糖，该不饱和羟丁基壳聚糖的侧链中包含接枝率为25％的甲基丙烯酸缩水甘油酯，包含的单体主链与实施例1相同，区别在于，R1、R2和R3均为甲基丙烯酸缩水甘油酯，nA：nB：nC＝1：1.5：7.5。
对比例2本对比例提供了一种不饱和羟丁基壳聚糖，该不饱和羟丁基壳聚糖的侧链中包含接枝率为25％的丙烯，不饱和试剂选用溴丙烯，包含的单体主链与实施例1相同，区别在于，R基为丙烯，nA：nB：nC＝1：1.5：7.5。
采用溶解度检测法，测定上述实施例上述实施例1～5以及对比例1和2提供的不饱和羟丁基壳聚糖水溶性，溶解度单位为g/L，结果如表1所示：
表1 实施例1～5及对比例1和2所得不饱和羟丁基壳聚糖水溶性
Figure BDA0002810545730000121
Figure BDA0002810545730000131
实施例6
本实施例提供了制备实施例1中提供的不饱和羟丁基壳聚糖的方法，具体如下：称取5g羟丁基壳聚糖在10℃条件溶解于100mL去离子水中，得到羟丁基壳聚糖的水溶液，加入1g无水醋酸钠作为催化剂，搅拌30min得到均匀的溶液。在干燥的高纯氮保护下，将20g的衣康酸酐溶解于200mL四氢呋喃中，持续快速搅拌下滴入到羟丁基壳聚糖的水溶液中，滴加完毕之后，升温至40℃并持续反应16小时。反应结束后，采用截流分子量为10kDa的中空纤维柱超滤24小时，以去除体系中多余的四氢呋喃，衣康酸和盐分。冷冻干燥36小时得到UHBCS-IA。将本实施例中得到的UHBCS-IA经1H NMR检测，结果如图1所示，图1中化学位移2.0ppm(d峰)处的质子为羟丁基与壳聚糖6-O或2-N相连碳上的质子，证明了侧链羟丁基的存在，证明了主链为羟丁基壳聚糖。在图1中化学位移为6.29ppm(a峰)与5.81ppm(b峰)处出现了明显的烯烃基团的质子峰，由于烯烃上的两个质子的化学环境不同，靠近羧基的质子受到羧基的拉电子效应而使化学位移转向低场，为6.29ppm；而远离羧基的质子则处在相对低场，为5.81ppm。同样，处在0.86ppm(f峰)处的为羟丁基上甲基的质子峰，1.45ppm(e峰)处为羟丁基上与甲基相连亚甲基的质子峰。在3.00-4.00ppm之间出现的宽峰为壳聚糖的糖环上的或羟丁基上与氧相连亚甲基或次甲基的质子峰。出现在3.34ppm(c峰)处的峰为衣康酸上的非双键亚甲基质子的特征峰，这是因为衣康酸基团处在分子链的最外层，得到良好伸展的质子的核磁共振信号要强于处在分子链内层的信号。通过核磁共振氢谱的检测同样证明了衣康酸接枝到羟丁基壳聚糖的主链之上，UHBCS-IA成功合成。
通过核磁共振氢谱可以确定衣康酸基团的接枝率，即取代度。由于作为中间体的UHBCS已经由元素分析法确定了羟丁基的接枝率，因此通过比较羟丁基中甲基的质子峰(图1中f峰)与衣康酸上的双键亚甲基质子峰(图1中a或b峰)的峰面积即可计算得到UHBCS-IA中IA基团的接枝率。本实施例中得到的UHBCS-IA经1H NMR中的峰面积比计算，每100个壳聚糖单糖结构单元上，有96个结构单元被衣康酸取代，因此衣康酰化的接枝率为96％，因此，本实施例制备得到的低取代UHBCS-IA记为“UHBCS-96IA”。
实施例7
本实施例提供了实施例2中提供的不饱和羟丁基壳聚糖的方法，具体如下：称取5g羟丁基壳聚糖在10℃条件溶解于100mL去离子水中，得到羟丁基壳聚糖的水溶液，加入1g无水醋酸钠作为催化剂，搅拌30min得到均匀的溶液。在干燥的高纯氮保护下，将5g的衣康酸酐溶解于200mL四氢呋喃(THF)中，持续快速搅拌下滴入到羟丁基壳聚糖的水溶液中，滴加完毕之后，升温至40℃并持续反应16小时。反应结束后，采用截流分子量为10kDa的中空纤维柱超滤24小时，以去除体系中多余的四氢呋喃，衣康酸和盐分。冷冻干燥36小时得到UHBCS-IA，将本实施例中得到的UHBCS-IA经1H NMR检测，结果如图2所示，本实施例获得的UHBCS-IA峰位置与图1基本一致，a，b与c的峰面积低于图1。本实施例中得到的UHBCS-IA经1H NMR中的峰面积比计算，每100个壳聚糖单糖结构单元上，有38个结构单元被衣康酸取代，因此衣康酰化的接枝率为38％，因此，本实施例制备得到的低取代UHBCS-IA记为“UHBCS-38IA”。
将本实施例得到的UHBCS-38IA与HBCS、CS进行红外检测，得到FTIR谱图如图3所示，图中A为UHBCS-38IA的红外图谱，B为HBCS的红外图谱，C为CS的红外图谱。从UHBCS-38IA、CS与HBCS的红外光谱，发现相比较CS的图谱中，2925-2966cm-1处出现了较为明显的C-H振动峰，这是由接枝到CS主链上羟丁基基团引起的。UHBCS-38IA图谱中在1670-1744cm-1处的出现了C＝O峰，在CS与HBCS的红外光谱中在相似位置也出现了弱吸收峰，这是由于壳聚糖(脱乙酰度90％)中存在尚未脱掉的乙酰氨基。但1670cm-1处出现的酰胺强吸收峰证明了衣康酸酐已经成功接枝到了HBCS的主链之上，也说明衣康酸酐主要接枝在羟丁基壳聚糖2位的仲胺上。同时，在1744cm-1处出现的羧基或酯基的C＝O峰。因此，通过红外光谱可以证明UHBCS-38IA的成功合成。
实施例8
本实施例提供了实施例3中提供的不饱和羟丁基壳聚糖的方法，具体如下：称取5g羟丁基壳聚糖在10℃条件溶解于100mL去离子水中，得到羟丁基壳聚糖的水溶液，加入1g无水丙烯酸钠作为催化剂，搅拌30min得到均匀的溶液。在干燥的高纯氮保护下，将5g的丙烯酰氯溶解于200mL四氢呋喃(THF)中，持续快速搅拌下滴入到羟丁基壳聚糖的水溶液中，滴加完毕之后，升温至40℃并持续反应18小时。反应结束后，用氢氧化钠中和体系pH至7.0左右，采用截流分子量为10kDa的中空纤维柱超滤24小时，以去除体系中多余的四氢呋喃，丙烯酸和盐分。冷冻干燥36小时得到UHBCS-AC。
实施例9
本实施例提供了实施例4中提供的不饱和羟丁基壳聚糖的方法，具体如下：称取5g羟丁基壳聚糖在10℃条件溶解于100mL去离子水中，得到羟丁基壳聚糖的水溶液，加入1g无水甲基丙烯酸钠作为催化剂，搅拌30min得到均匀的溶液。在干燥的高纯氮保护下，将5g的甲基丙烯酸酐溶解于200mL四氢呋喃(THF)中，持续快速搅拌下滴入到羟丁基壳聚糖的水溶液中，滴加完毕之后，升温至40℃并持续反应18小时。反应结束后，用氢氧化钠中和体系pH至7.0左右，采用截流分子量为10kDa的中空纤维柱超滤24小时，以去除体系中多余的四氢呋喃，甲基丙烯酸和盐分。冷冻干燥36小时得到HBCS-MA。
实施例10
本实施例提供了制备实施例5中提供的不饱和羟丁基壳聚糖的方法，具体如下：称取5g羟丁基壳聚糖在10℃条件溶解于100mL去离子水中，得到羟丁基壳聚糖的水溶液，加入1g无水醋酸钠作为催化剂，搅拌30min得到均匀的溶液。在干燥的高纯氮保护下，将30g的衣康酸酐溶解于100mL四氢呋喃中，持续快速搅拌下滴入到羟丁基壳聚糖的水溶液中，滴加完毕之后，升温至50℃并持续反应16小时。反应结束后，采用截流分子量为10kDa的中空纤维柱超滤24小时，以去除体系中多余的四氢呋喃，衣康酸和盐分。冷冻干燥36小时得到UHBCS-IA。
实施例11
本实施例提供了一种含有两种不饱和基团的羟丁基壳聚糖的制备方法，具体如下：称取5g羟丁基壳聚糖在10℃条件溶解于100mL去离子水中，得到羟丁基壳聚糖的水溶液，加入1g无水甲基丙烯酸钠作为催化剂，搅拌30min得到均匀的溶液。在干燥的高纯氮保护下，将5g的甲基丙烯酸酐溶解于四氢呋喃(THF)中，持续快速搅拌下滴入到羟丁基壳聚糖的水溶液中，滴加完毕之后，继续当前状态，加入1g无水醋酸钠作为催化剂，搅拌30min得到均匀的溶液。在干燥的高纯氮保护下，将5g的衣康酸酐溶解于200mL四氢呋喃(THF)中，持续快速搅拌下滴入到羟丁基壳聚糖的水溶液中，滴加完毕之后，升温至40℃并持续反应18小时。反应结束后，用氢氧化钠中和体系pH至7.0左右，采用截流分子量为10kDa的中空纤维柱超滤24小时，以去除体系中多余的四氢呋喃，甲基丙烯酸和盐分，冷冻干燥36小时得到HBCS-MA-IA。经1H NMR检测，本实施例得到的不饱和羟丁基壳聚糖中甲基丙烯酸酐的接枝率为25％，衣康酸基团的接枝率为38％，且nA：nB：nC＝1：1.5：7.5。经溶解性检测，本实施例得到的不饱和羟丁基壳聚糖的溶解度为154g/L。
实施例12
本实施例提供了采用实施例1提供的UHBCS-96IA通过光固化制备温敏凝胶的方法，具体如下：将1.0g UHBCS-96IA溶解于10mL去离子水中，采用质量分数为0.1％的光引发剂I2959引发UHBCS-96IA的化学交联，升温至37℃待凝胶固化之后，采用紫外光照射强度为5mW·cm-2，照射时间为5分钟。凝胶的温敏相转变与化学交联示意图如图4所示，UHBCS-96IA水溶液在37℃时发生温敏相转变，由透明溶胶转变为白色凝胶，继续经过紫外光照射，侧链的双键发生自由基交联反应而形成交联凝胶。
实施例13
本实施例提供了采用实施例1提供的UHBCS-96IA通过热固化制备温敏凝胶的方法，具体如下：将1.0g UHBCS-96IA溶解于10mL去离子水中，采用质量分数为1％的热引发剂AIBA引发UHBCS-96IA的化学交联，交联温度为60℃，反应时间为30分钟。取出部分所得到的化学交联凝胶放置于真空干燥箱内，50℃条件下干燥至恒重，得到UHBCS-96IA干凝胶膜。
实施例14
本实施例提供了采用实施例2提供的UHBCS-38IA通过光固化制备温敏凝胶的方法，具体如下：将1.0g UHBCS-38IA溶解于10mL去离子水中，采用质量分数为0.1％的光引发剂I2959引发UHBCS-96IA的化学交联，升温至37℃待凝胶固化之后，采用紫外光照射强度为5mW·cm-2，照射时间为5分钟。UHBCS-38IA水溶液在37℃时发生温敏相转变，由透明溶胶转变为白色凝胶，继续经过紫外光照射，侧链的双键发生自由基交联反应而形成交联凝胶。
实施例15
本实施例提供了采用实施例2提供的UHBCS-38IA通过热固化制备温敏凝胶的方法，具体如下：将1.0g UHBCS-38IA溶解于10mL去离子水中，采用质量分数为1％的热引发剂AIBA引发UHBCS-38IA的化学交联，交联温度为60℃，反应时间为30分钟。取出部分所得到的化学交联凝胶放置于真空干燥箱内，50℃条件下干燥至恒重，得到UHBCS-38IA干凝胶膜。
实验例1
对实施例12所得的UHBCS-96IA水凝胶进行体外降解性能测试。由于降解试验耗时较长，在选用的HBCS分子量相同的情况下，侧链接枝的不饱和基团越多，则交联形成的水凝胶交联度越大，交联度越大的结果就是降解时间越长，因此在降解试验时，选用的是取代度最大的UHBCS-96IA水凝胶作为标识水凝胶。具体方法如下：
称取1.0g的UHBCS-96IA干凝胶膜，浸泡于pH 7.4的PBS缓冲液中，加入溶菌酶，使溶液中的溶菌酶的浓度为100单位·mL-1，实验初始的5天每天补加相同浓度的溶菌酶一次，第六天起停止加入溶菌酶。再另称取1.0g干凝胶膜浸泡于pH 4.0的抗坏血酸-抗坏血酸钠(AH2/AH-)缓冲溶液中，在实验起始的五天内每天加入0.2mL质量分数为3％的双氧水溶液以诱发ROS的生成。在浸泡一段时间之后，取出残留的凝胶，用去离子水冲洗，于50℃条件下真空干燥至恒重，再次称重以确定凝胶在降解过程中的质量损失。降解结果如图5所示，图中A为溶菌酶降解曲线，B为ROS降解曲线。
从图中曲线A可以看出，溶菌酶主要通过破坏UHBCS-96IA中部分残留的N-乙酰氨基葡糖之间的β-1,4糖苷键而达到分解壳聚糖的目的。由于溶菌酶是直接破坏壳聚糖主链，所以在降解过程中会发现原本完整的凝胶膜会分裂为碎片，然后这些碎片再在溶菌酶的作用下继续降解。图中可以看出在添加溶菌酶14小时后，酶活性降低，因此在14-24小时的时间区间内，残存的UHBCS-96IA凝胶膜降解缓慢。24小时后补入溶菌酶，残存的UHBCS-96IA凝胶膜则基本被降解完全。通过补加溶菌酶的方法，UHBCS-96IA的降解时间在36小时之内。图中曲线B可以发现在降解初期，凝胶膜的质量损失速率较慢。这是由于在降解初期，凝胶膜中致密的交联网络结构阻碍了溶菌酶或者ROS对凝胶膜内部结构进行破坏，只能从外部层层推进。一旦凝胶膜的内部结构被破坏，凝胶膜的网络结构则会迅速瓦解，质量损失的开始加速，直至最终降解完全。同样地，虽然ROS的体积比溶菌酶要小很多，但ROS并不像溶菌酶那样的特异性降解，可供ROS进攻的位点较多，包括β-1,4糖苷键、糖环中的缩醛键、羟丁基与主链相连的醚键以及衣康酸酯键均是ROS的进攻目标。ROS会优先进攻空间位阻相对较小的目标，所以在ROS降解的过程中，只是偶尔出现像溶菌酶降解那样的凝胶膜碎片，大部分情况下就是凝胶膜体积逐渐减小最终完全消失。同溶菌酶的情况相类似，在降解反应发生12小时之后，ROS几乎被消耗殆尽，所以在14-24小时的时间区段内，UHBCS-96IA凝胶膜的降解缓慢。但由于体系的酸性环境，UHBCS-96IA将会继续缓慢地降解。24小时之后补加双氧水，则凝胶膜的降解加速，经过第二个ROS失活过程(36-48小时)，在第三次补加双氧水之后，UHBCS-96IA完全降解，整个降解过程在60小时之内。
实验例2
对实施例13和实施例15所得的UHBCS-96IA水凝胶和UHBCS-38IA水凝胶进行机械强度测试，具体方法如下：将实施例13和实施例15中通过热固化之后得到的厚度均匀的UHBCS-96IA干凝胶膜和UHBCS-38IA干凝胶膜裁剪成标准样条，样条宽度2mm，厚度0.1mm。通过万能试验机在室温条件下检测其机械性能，主要研究凝胶膜的极限强度(MPa)，断裂伸长率(％)以及杨式模量(MPa)，万能试验机的拉伸速率为200mm·min-1。检测结果如图6所示，图中a为UHBCS-96IA干凝胶膜的应变曲线，图中b为UHBCS-38IA干凝胶膜的应变曲线。
从图6中可以看到，UHBCS-96IA凝胶膜在拉伸过程中经历了一个应变软化与应变硬化的过程。应变软化是由于凝胶膜中存在的线性聚合物链的动态再结晶作用引起的，而应变硬化则由刚性的凝胶交联网络导致。同时UHBCS-96IA凝胶膜的断裂伸长率要低于UHBCS-38IA凝胶膜，而断裂强度与杨式模量却均比UHBCS-38IA凝胶膜高。这些现象都说明了UHBCS-96IA凝胶膜并不是典型的弹性体，而更类似一种互穿的网络结构。因为在交联过程中形成聚衣康酸(PIA)，凝胶结构中同时存在了壳聚糖与聚衣康酸的分子链，而不是单纯的两个衣康酸官能团的交联。其实，让UHBCS-96IA水凝胶溶胶先发生温敏凝胶化之后再化学交联这样的方法为聚衣康酸分子链的形成提供了的条件。在温敏凝胶化之后，UHBCS-96IA分子链紧密缠绕，这使得分子链中的IA官能团团聚在一起，当自由基反应引发之后，相邻的多个IA都能发生自由基聚合反应形成聚衣康酸，而不是两个衣康酸基团的交联反应。UHBCS-38IA中由于IA基团含量较低，难以形成PIA，所以UHBCS-38IA凝胶膜则属于是典型的弹性体。这也论证了UHBCS-96IA凝胶膜的杨式模量要远高于UHBCS-38IA凝胶膜的结果。
实验例3
对实施例13和实施例15所得的UHBCS-96IA水凝胶和UHBCS-38IA水凝胶进行体外细胞毒性测试，具体方法如下：
将L-929细胞种植在细胞培养基中，加入1％的盘尼西林-链霉素溶液以及10％的胎牛血清溶液。L-929细胞在潮湿的含有5％二氧化碳的细胞培养箱中，37℃下恒温孵化3天。然后，再将UHBCS-IA水凝胶转移进入96孔板中，紫外灯固化并灭菌。再次，将L-929细胞培养液加入到放置了UHBCS-IA凝胶的孔中，并加入1mL含有0.1％EDTA的胰蛋白酶溶液，每孔中的L-929细胞数量为1×105个。并继续放置在细胞培养箱中以促进细胞生长。
UHBCS-IA交联水凝胶的细胞毒性由MTT法测定。在分别培养了24，48以及72小时之后，向每个孔中加入100μL的MTT水溶液(浓度为5mg·mL-1)并置于培养箱中继续培养4小时。然后移除MTT溶液，加入150μL的二甲亚砜以溶解甲瓒结晶，采用酶标仪在490nm波长处检测溶液的吸光度以确定该凝胶对L-929的细胞毒性。细胞存活率根据下式计算：
细胞存活率(％)＝(As/Ac)×100％
其中，As为样品溶液在490nm处的吸光度，Ac为空白对照在490nm处的吸光度。
细胞毒性结果如图7所示：从图中可以看出UHBCS-96IA水凝胶与UHBCS-38IA水凝胶均显示出了良好的细胞增值率，UHBCS-96IA在24，48以及72小时的细胞存活率分别为91％，93％和97％，细胞毒性为I级，说明HBCS-96IA水凝胶没有细胞毒性。UHBCS-38IA水凝胶在24，48以及72小时的细胞存活率为94％，98％与102％，其在72小时的细胞毒性为零级，其余的为I级。从这两类凝胶的细胞存活率可以看出，UHBCS-IA水凝胶均没有细胞毒性，其细胞存活率随时间增长而升高的现象表明UHBCS-IA水凝胶在一定程度上会起到促进细胞增长的作用。
实验例4
对实施例13所得的UHBCS-96IA水凝胶进行防黏连性能测试，具体方法如下：
1.动物模型制作与动物分组
将受试动物分为两组，UHBCS-96IA受试组、模型对照组。每组各5只大鼠。实验设计方案如下：在椎板切除手术中，只切除大鼠右侧椎板，左侧不予处理。UHBCS-96IA受试组右侧取出椎板止血后给予UHBCS-96IA溶胶(溶胶pH 7.2)，溶胶接触到体内组织后，先由动物体的体温触发溶胶的凝胶化，待凝胶凝固后缝合伤口。模型对照组右侧取出椎板止血后给予羧甲基壳聚糖溶液并缝合伤口。此实验自造模给药后8周处死进行病理组织形态学观察。
正式实验手术流程如下：腹腔注射麻醉4.5％戊巴比妥钠(1ml/kg)，大鼠取俯卧位，剔除背部下2/3鼠毛，触摸确定脊柱位置后，于脊柱正上方切口，切口长度6-7cm，皮层切开后，在脊柱两旁分别切开肌肉层，去除脊柱上覆盖的多余肌肉。暴露大鼠腰椎第4、5椎板，右侧神经根损伤，移除黄韧带和硬膜外脂肪，尽量使留下干净的硬脊膜更大程度上暴露。UHBCS-96IA受试组给予UHBCS-96IA溶胶待凝固后缝合伤口，模型对照组止血后给予羧甲基壳聚糖溶液并缝合伤口。
2.动物模型标本的制备与评定
初始校准手术区，包括椎板切除点，椎骨骼和周围的肌肉，整块取出然后将其存储在4％多聚甲醛溶液，经甲酸-甲醛液脱钙，梯度乙醇脱水，EG1150H自动生物组织包埋机包埋，Leica RM2255切片机制片，HE染色。在显微镜下对染色切片进行分析，以量化存在不同的炎症、纤维化及相关组织变性。参照Hooker等评分标准，由病理科医师盲法对神经组织外膜胶原纤维粘合性，瘢痕组织的厚度进行评分。结果记录为：0分＝无瘢痕粘连(0级)，1分＝离散的，少量的瘢痕(I级)，2分＝中度，较多离散瘢痕组织(II级)，3分＝显著，较多致密瘢痕(III级)，4分＝严峻，大量的致密瘢痕组织(IV级)。HE染色的结果如图8所示。粘连评分结果如表2所示。同时，采用MASSON三色染色观察椎板间隙：常规石蜡切片脱蜡至水，采用Masson三色染色法半定量分析胶原纤维。MASSON染色结果如图9所示。
表2 大鼠硬膜外组织粘连及瘢痕评分及统计结果
Figure BDA0002810545730000221
通过观察图8，发现术后8周模型对照组10/10只动物神经织组周围纤维结缔组织增生，见轻度至中度以淋巴细胞为主炎细胞浸润反应，并见少量多核巨细胞及新生毛细血管。偶见水肿及脂肪浸润，未见明显变性坏死。UHBCS-96IA凝胶受试试验组中，5/10只动物神经织组周围反应与模型对照组相近，其余5/10未见明显病理形态学改变。纤维化评分UHBCS-96IA凝胶受试组与模型对照组比较有显著差异，(P<0.05)，数据见表2。模型对照组中的瘢痕发生率竟高达100％，而UHBCS-96IA凝胶受试组的瘢痕发生率仅为50％，发生的瘢痕均为轻微瘢痕。
图9中的脊髓组织与神经根组织呈红色，瘢痕组织呈蓝绿色。从图9中可以发现，椎板切除术后8周时间，模型对照组中的神经根周围已被纤维组织包裹，瘢痕与粘连的发生非常明显。而在UHBCS-96IA凝胶给药组的神经跟周围几乎没有发现有蓝绿色的粘连以及瘢痕组织，可见UHBCS-96IA凝胶的防粘连效果非常明显。
以上所述仅为本发明的优选实施例而已，并不用于限制本发明，对于本领域的技术人员来说，本发明可以有各种更改和变化。凡在本发明的精神和原则之内，所作的任何修改、等同替换、改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (10)

1.一种不饱和羟丁基壳聚糖，其特征在于，所述不饱和羟丁基壳聚糖为侧链含有不饱和基团的羟丁基壳聚糖分子，所述不饱和基团包括不饱和酸酐基团和/或不饱和酰氯基团，所述不饱和基团的接枝率为10％～100％；
优选地，所述不饱和基团的接枝率为38％～98％；
进一步优选地，所述不饱和基团的接枝率为96％。
2.根据权利要求1所述的不饱和羟丁基壳聚糖，其特征在于，所述不饱和羟丁基壳聚糖含有如下单体(A)～(C)中的一种或两种以上组合：
单体(A)为
Figure FDA0002810545720000011
单体(B)为
Figure FDA0002810545720000012
单体(C)为
Figure FDA0002810545720000013
其中R1包括不饱和酸酐基团和/或不饱和酰氯基团；R2包括不饱和酸酐基团和/或不饱和酰氯基团；R3包括不饱和酸酐基团和/或不饱和酰氯基团；
优选地，所述不饱和羟丁基壳聚糖含有数量比为1:5～9的单体(A)和单体(C)；
优选地，所述不饱和羟丁基壳聚糖含有所述(A)～(C)三种单体，且单体(A)的数量：单体(B)的数量：单体(C)的数量为1：0.01～4：5～9。
3.根据权利要求2所述的不饱和羟丁基壳聚糖，其特征在于，所述不饱和酸酐基团包括甲基丙烯酸酐、丙烯酸酐、马来酸酐或衣康酸酐中的一种或两种以上组合；所述不饱和酰氯基团包括丙烯酰氯和/或甲基丙烯酰氯；
优选地，所述不饱和酸酐基团基团为衣康酸基团，且单体(A)的数量：单体(B)的数量：单体(C)的数量为1:1:8；
优选地，所述不饱和酸酐基团基团为甲基丙烯酸酐，且单体(A)的数量：单体(B)的数量：单体(C)的数量为1：1.5：7.5；
优选地，所述不饱和酸酐基团基团为丙烯酰氯，且单体(A)的数量：单体(B)的数量：单体(C)的数量为1：1.5：7.5。
4.权利要求1～3任一项所述的不饱和羟丁基壳聚糖的制备方法，其特征在于，所述制备方法包括，将羟丁基壳聚糖水溶液与不饱和酰化试剂的有机溶液混合后经过酰化反应制得不饱和羟丁基壳聚糖；
优选地，所述羟丁基壳聚糖水溶液中羟丁基壳聚糖的质量分数为0.1％～10％；
优选地，所述羟丁基壳聚糖水溶液中羟丁基壳聚糖的质量分数为1～10％；
优选地，所述不饱和酰化试剂的有机溶液的质量分数为1％～50％；
优选地，所述酰化反应在自然pH下进行，反应完成后调节pH至7.0；
优选地，所述酰化反应的温度为20～60℃；
优选地，所述酰化反应的温度为40～50℃；
优选地，所述酰化反应的时间为2～24h；
优选地，所述酰化反应的时间为15～20h；
优选地，所述酰化反应在催化剂作用下进行；
优选地，所述催化剂包括弱碱性催化剂；
优选地，所述弱碱性催化剂包括醋酸钠、磷酸钠、三乙胺或碳酸钠中的一种或两种以上组合；
优选地，所述催化剂的加入量为羟丁基壳聚糖加入量的1～50％；
优选地，所述酰化反应在惰性气体保护气氛下进行；
优选地，所述惰性气体包括氮气；
优选地，所述酰化反应完成并调节pH至7.0之后还依次包括过滤和干燥的步骤；
优选地，所述干燥的方法包括冷冻干燥法。
5.根据权利要求4所述的不饱和羟丁基壳聚糖的制备方法，其特征在于，所述不饱和酰化试剂的有机溶液所使用的溶剂为溶于水的非活性氢试剂；
优选地，所述溶剂包括四氢呋喃、液体聚乙二醇、N,N-二甲基甲酰胺、二甲基亚砜或N-甲基吡咯烷酮。
6.根据权利要求4所述的不饱和羟丁基壳聚糖的制备方法，其特征在于，所述过滤的方法包括超滤，所述超滤的时长为2～24h；
优选地，所述超滤的步骤所用的器材包括膜包或中空纤维；
优选地，所述膜包或中空纤维的截留分子量为1000～30000Da。
7.权利要求1～3任一项所述的不饱和羟丁基壳聚糖或采用权利要求4～6任一项所述的不饱和羟丁基壳聚糖的制备方法制备得到的不饱和羟丁基壳聚糖在制备温敏水凝胶中的应用。
8.一种温敏水凝胶的制备方法，其特征在于，所述制备方法包括利用权利要求1～3任一项所述的不饱和羟丁基壳聚糖或采用权利要求4～6任一项所述的不饱和羟丁基壳聚糖的制备方法制备得到的不饱和羟丁基壳聚糖在交联引发剂的作用下通过自由基交联反应制得温敏水凝胶；
优选地，所述交联引发剂包括光交联引发剂或热交联引发剂；
优选地，所述交联引发剂为光交联引发剂，所述温敏水凝胶的制备方法包括将不饱和羟丁基壳聚糖与光交联引发剂溶于水，然后在35℃以上条件下，采用光强度为0.05～50mW·cm-2的紫外光或蓝光照射1～20min，得到光交联温敏水凝胶；所述不饱和羟丁基壳聚糖质量分数为0.5％～20％，所述光交联引发剂的质量分数为0.01％～1％；所述的光交联引发剂与不饱和羟丁基壳聚糖的质量比为1:1～200；
进一步优选地，所述光交联引发剂包括I2959；
进一步优选地，所述紫外光的波长为200～400nm；
进一步优选地，所述蓝光的波长为400～480nm；
优选地，所述交联引发剂为热交联引发剂，所述温敏水凝胶的制备方法包括将不饱和羟丁基壳聚糖与热交联引发剂溶于水，所述不饱和羟丁基壳聚糖质量分数为0.5％～10％，所述热交联引发剂的质量分数为0.01％～5％，然后在35℃条件下使不饱和羟丁基壳聚糖发生胶化后，再升温至60～80℃，持续反应10～120min，得到热交联温敏水凝胶；所述的热交联引发剂与不饱和羟丁基壳聚糖的质量比为1:2～200；
进一步优选地，所述热交联引发剂包括水溶性过氧引发剂或水溶性偶氮引发剂；
进一步优选地，所述水溶性过氧引发剂包括过氧苯甲酸，过硫酸钾或过氧乙酸中的一种或两种以上组合；
进一步优选地，所述水溶性偶氮引发剂包括偶氮二异丁脒盐酸盐和/或偶氮二异丁咪唑啉盐酸盐。
9.一种采用权利要求8所述制备方法制备得到的温敏水凝胶。
10.权利要求9所述的温敏水凝胶在制备软组织替换材料，软组织修复材料，体表创伤敷料，软组织、肌腱与神经组织手术后防粘连材料中的应用。
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