CN112175039A - 一种绿色、广谱的蛋白质交联方法 - Google Patents

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Abstract

本发明属于医用生物材料技术领域,具体涉及一种绿色、广谱的蛋白质交联方法。所述方法采用复合波长的可见光光源照射含有蛋白质和银离子的混合溶液,即可获得形貌均一的交联蛋白材料。与传统的蛋白质交联方法相比,该制备方法不涉及有毒化学试剂,绿色环保;该方法可广谱地交联多种蛋白质;该制备方法能够最大程度地保证蛋白质的原有活性;该制备方法还具有步骤简单、易于操作等优势;并且以该方法制备的交联蛋白具有良好的生物活性和抑菌性能,应用前景巨大。

Description

一种绿色、广谱的蛋白质交联方法
技术领域
本发明属于医用生物材料技术领域,具体涉及一种绿色、广谱的蛋白质交联方法。
背景技术
蛋白质生物材料在组织工程领域中,可作为各组织及器官替代物的基底材料——砖块,具有生物活性及生物可降解性,能够修复、维持并改善受损组织,可用于伤口敷料、仿生皮肤、心脏血管组织(如血管,心脏阀门,心肌补丁等)、肌肉骨骼组织(如软骨,肌腱,韧带,半月板,骨等)、皮肤修复支架等组织工程领域及再生组织支架领域[1]
但是,目前在蛋白质生物材料中所使用的蛋白质等生物活性材料的力学性能较差,不能为蛋白质生物材料提供足够的结构支撑,无法达到生物医学应用中所需要的力学性质和生物降解速率,限制了其在生物医用材料、组织工程等方面的应用。例如,中国专利CN105936671A指出未改性的胶原往往存在热稳定性差、降解速率过快和机械强度低、易变性等缺点,在很多情况下不能满足使用要求;中国专利CN103333508A指出未经交联的胶原蛋白在体内的降解速度较快,存留时间比较短,因此也限制了它在填充材料方向的应用。所以,在应用蛋白质前,往往需要对蛋白质进行一步或多步的交联,通过蛋白质交联技术,可以提高蛋白质的热稳定性和机械强度,降低包括胶原蛋白在内的多种生物活性蛋白质的降解速率,可广泛用于止血材料、药物缓释载体材料、组织工程支架材料、皮肤替代物、骨移植材料、角膜移植材料等多领域。
其中,蛋白质交联是指将两个或多个蛋白分子之间通过共价键结合以提高蛋白材料的力学性质,如韧性、抗拉伸及抗冲击,目前常用的交联方法主要包括化学交联法、酶交联法、高温热处理交联法、冷冻交联法、重度脱水交联法和紫外光(UV)照射交联法等,但是上述方法存在以下问题:①化学交联法需要添加化学交联剂,其中常用的化学交联剂为戊二醛(GA)或碳二酰亚胺(EDC),具有一定的毒性,对环境不友好,并且在蛋白质交联过程中引用化学交联剂时,残留试剂有潜在的生物毒性,例如,中国专利CN101005865A以戊二醛进行交联,但产品中会有高浓度的戊二醛残留,会引起强烈的生物毒性从而危害人体健康;②高温交联法会使蛋白质功能结构发生变化甚至变性,丧失其生物活性,一般仅用于凝胶的交联,不适用于蛋白质的交联,例如中国专利CN109248337A公开了一种人工真皮修复材料的制备方法,需要在105℃高温真空条件下进行高温交联24h,但是,105℃高温容易导致蛋白结构和性能的破坏;③UV照射法一般需要添加光诱导剂,且交联蛋白质的范围有限;④重度脱水法也需要高温处理,容易导致蛋白活性的丧失;⑤酶交联法只适用于特定结构的蛋白质,广谱性较差,且中国专利CN109908405A指出一些酶交联剂因交联性能也使制备的骨支架材料出现力学性能差,易溶胀等缺点;⑥冷冻交联法的交联效果差,一般需要与化学交联法等配合进行,适用于多孔蛋白材料的制备[2]
因此,非常有必要开发一种简单、易控、安全、绿色环保、广谱的蛋白质通用交联方法。发明人意外发现,用可见光(380-780nm)光源照射蛋白质和银离子的混合溶液,可制备出形貌均一、结构稳定的交联蛋白材料,该方法与其他方法相比,可以适用于多种蛋白质的交联,具有广谱性,且交联效果良好;制备的交联蛋白质,本身就具有良好的抑菌性能,不需额外添加其他抑菌剂;该方法具有条件温和、绿色环保,既能保持蛋白的生物活性,又可显著改善蛋白的力学性能,制备的交联蛋白可用于制备生物活性和力学性能同时兼备的止血材料、药物缓释载体材料、组织工程支架材料、人工皮肤、仿生牙齿、骨修复材料、角膜移植材料等。
参考文献
[1]Miranda-Nieves,David,Chaikof,Elliot L.Collagen and ElastinBiomaterials for the Fabrication of Engineered Living Tissues[J].AcsBiomaterials Science&Engineering:acsbiomaterials.6b00250.
[2]毕斌斌,林巧佳,郑培涛,et al.冷冻方式对醛交联大豆蛋白多孔材料结构及吸附特性的影响[J].农业工程学报,2016,v.32;No.284(07):317-322.
发明内容
针对上述技术问题,本发明的目的在于提供一种蛋白质的交联方法,所述方法为:用波长范围为380-780nm的复合波长光源或单一波长光源照射含有蛋白质和Ag+的混合溶液。
优选地,所述混合溶液中Ag+和蛋白质的浓度比为1:1-100。
优选地,所述混合溶液中Ag+和蛋白质的浓度比为1:10。
优选地,所述的照射温度为0-37℃。
优选地,所述照射时间为18min-24h。
优选地,所述照射时间为12h。
优选地,所述蛋白质包括胶原蛋白、牛血清白蛋白、人血清白蛋白、鸡蛋清白蛋白、酪蛋白、胃蛋白酶、木瓜蛋白酶。
优选地,所述的蛋白质为胶原蛋白。
本发明的另一目的在于提供一种制备交联蛋白的方法,所述方法为:用波长范围为380-780nm的复合波长光源或单一波长光源照射含有蛋白质和Ag+的混合溶液,反应后离心,即得交联蛋白质。
优选地,所述混合溶液中Ag+和蛋白质的浓度比为1:1-100。
优选地,所述混合溶液中Ag+和蛋白质的浓度比为1:10。
优选地,所述的反应温度为0-37℃。
优选地,所述反应时间为18min-24h。
优选地,所述反应时间为12h。
优选地,所述蛋白质包括胶原蛋白、牛血清白蛋白、人血清白蛋白、鸡蛋清白蛋白、酪蛋白中、胃蛋白酶、木瓜蛋白酶。
优选地,所述的蛋白质为胶原蛋白。
本发明的另一目的在于提供一种通过上述方法制备获得的交联蛋白质。
本发明的另一目的在于提供一种交联蛋白质在制备止血材料、药物缓释载体材料、组织工程支架材料、人工皮肤、仿生牙齿、人工血管、骨修复材料、角膜移植材料中的应用。
本发明的有益效果是:①本发明提供的方法不涉及有毒化学试剂,绿色环保;②本发明所述方法对胶原蛋白、牛血清白蛋白、人血清白蛋白、鸡蛋清白蛋白、酪蛋白,胃蛋白酶、木瓜蛋白酶等多种蛋白均具有良好的交联作用,适用广谱;③本发明所述方法可以最大程度的保证蛋白的原有活性,且制备的交联蛋白形貌均一、性质稳定;④本发明所述方法制备的交联蛋白质,本身具有良好的抑菌性能,不需额外添加其他抑菌剂;⑤本发明所述方法简单方便,易于操作等优点,应用前景巨大;⑥本发明制备的交联蛋白质具有安全无毒、具有较好的生物活性和力学性能,可广泛用于制备止血材料、药物缓释载体材料、组织工程支架材料、人工皮肤、仿生牙齿、骨修复材料、角膜移植材料。
附图说明
图1交联胶原蛋白的紫外色谱(UV)图、能量散射X射线分析(EDX)图及X射线光电子能谱(XPS)图,其中图1A(图中a-g分别为实施例1制备的交联胶原蛋白a-g)为UV检测图,图1B为实施例1制备的交联胶原蛋白a的EDX检测图,图1C和图1D为实施例1制备的交联胶原蛋白a的XPS检测图;
图2交联胶原蛋白的扫描电镜(SEM)图,透射电镜(TEM)图,红外色谱(IR)图及热重分析(TGA)图,其中图2a为SEM图,图2b为图2a的局部放大图,图2c为TEM图,图2d为图2c的局部放大图,图2e为IR检测图,图2f为TGA检测图;
图3不同交联时间制备的交联胶原蛋白的TEM图,其中图3a-f的交联时间分别为18min,30min,1h,3h,6h,10h;
图4不同交联时间制备的胶原蛋白的UV图和TGA图,其中图4a为UV图,图4b为TGA图;
图5不同浓度的胶原蛋白制备的交联胶原蛋白的SEM图和TEM图,其中图5a-d(蛋白浓度分别为1mg/ml,3mg/ml,5mg/ml和7mg/ml)为SEM图,图5e-h(蛋白浓度分别为1mg/ml,3mg/ml,5mg/ml和7mg/ml)为TEM图;
图6不同浓度的AgNO3制备的交联胶原蛋白的SEM图和TEM图,其中图6a-d(AgNO3浓度分别为0.1mg/ml,0.2mg/ml,0.5mg/ml和1mg/ml)为SEM图,图6e-h(AgNO3浓度分别为0.1mg/ml,0.2mg/ml,0.5mg/ml和1mg/ml)为TEM图;
图7不同pH制备的交联胶原蛋白的SEM图和TEM图,其中图7a-d(pH分别为3,5,7,9)为SEM图,图7e-h(pH分别为3,5,7,9)为TEM图;
图8其他交联蛋白的SEM图和TEM图,其中图8A-F(蛋白分别为牛血清白蛋白、酪蛋白、人血清白蛋白、胃蛋白酶、木瓜蛋白酶和鸡蛋清白蛋白)为TEM图,图8a-f(蛋白分别为牛血清白蛋白、酪蛋白、人血清白蛋白、胃蛋白酶、木瓜蛋白酶和鸡蛋清白蛋白)为SEM。
具体实施方式
为使本发明实现的技术手段、创作特征、达成目的与功效易于明白了解,下面结合具体实施方式,进一步阐述本发明。但本发明的保护范围并不局限于以下实施例。
以下一个或多个实施例中所使用的方法如无特殊说明均为常规方法;所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
以下一个或多个实施例中所述的蛋白包括胶原蛋白(CL),牛血清白蛋白(BSA),酪蛋白(Casein),人血清白蛋白(HSA),胃蛋白酶(Pepsin),木瓜蛋白酶(Papain)和鸡蛋清蛋白(Egg White)。
以下一个或多个实施例中所述的胶原蛋白(CL)属于生物高分子,是动物结缔组织中的主要成分,也是哺乳动物体内含量最多、分布最广的功能性蛋白,由三条具有左手螺旋结构的多肽链相互缠绕形成右手螺旋结构。
以下一个或多个实施例中所述的胶原蛋白(CL)可以为天然胶原蛋白、重组胶原蛋白以及仿生胶原蛋白等各种天然来源或其他方式制备的胶原蛋白。
以下一个或多个实施例中所述的Ag+溶液为AgNO3溶液,任何以其他可溶性银盐配置的Ag+溶液均可用于蛋白质的交联。
以下一个或多个实施例中所述的可见光的波长为380-782nm,所述的光源为白炽灯,但不局限于白炽灯,其光源还可以为日光灯、手电筒、探照灯等任何可以发出波长为380-782nm的可见光的光源中的任一种。
以下一个或多个实施例均在室温条件下进行,但是需要说明的是,本发明在不影响蛋白质稳定性和活性的基础上实现了蛋白质的交联,因此,在能够维持蛋白质稳定性和活性的温度(0-37℃)下均可发生蛋白质的交联。
以下一个或多个实施例中未对反应pH值进行特殊说明的,反应pH值均为7。
以下所有实施例中所涉及到蛋白交联的蛋白种类、浓度、反应时间、光照条件等具体反应参数如下表1所示。
表1
Figure BDA0002307760160000051
以下一个或多个实施例中所述的交联蛋白质是指蛋白质和Ag+在可见光照射下发生交联后的形成的产物。
以下一个或多个实施例中所制备的交联蛋白质具有良好的力学性能,可用于制备止血材料、药物缓释载体材料、组织工程支架材料、人工皮肤、仿生牙齿、人工血管、骨修复材料、角膜移植材料等医疗器械。
以下一个或多个实施例中所述的可见光光源的功率为48W,照射距离为20cm,但是实施例中可见光光源的功率和照射距离并不是唯一选择,可以根据不同的实验操作对可见光光源的功率和照射距离进行相应的调整。
以下一个或多个实施例中所述的UV为紫外色谱,EDX为能量散射X射线分析,XPS为X射线光电子能谱,SEM为扫描电镜,TEM为透射电镜,IR为红外色谱,TGA为热重分析。
以下一个或多个实施例中所述的UV检测为:取制备的交联蛋白样品500ul,稀释至3ml,进行UV检测;所述EDX检测为:取制备的交联蛋白样品500ul,稀释至3ml,进行EDX检测;所述XPS检测为:取适量的交联蛋白样品冻干后,进行XPS检测;所述SEM检测为:取适量的交联蛋白反应液,滴于硅片上喷金,进行SEM测试;所述TEM检测为:取适量的交联蛋白反应液,滴加于铜网上晾干,进行TEM测试;所述IR检测为:取适量的交联蛋白样品冻干后,进行IR检测;所述TGA检测为:取适量的交联蛋白样品冻干后,进行TGA检测。
实施例1
1.1交联胶原蛋白的制备
胶原蛋白溶液的配置:将10mg胶原蛋白固体用1ml水溶解,配置成浓度为10mg/ml的胶原蛋白溶液,临用时用水稀释。
AgNO3溶液的配置:将100mg的AgNO3固体用1ml水溶解,配置成浓度为100mg/ml的AgNO3溶液,临用时用水稀释。
交联胶原蛋白的制备:
a.在室温下,于12孔板中加入胶原蛋白溶液,用功率为48W的可见光光源,在20cm距离下,照射胶原蛋白溶液,快速搅拌溶液并缓慢加入AgNO3溶液,得含5mg/ml胶原蛋白和0.5mg/ml AgNO3的终溶液,反应24h,得反应液a;
b.在室温下,于12孔板中加入胶原蛋白溶液,快速搅拌溶液并缓慢加入AgNO3溶液,得含5mg/ml胶原蛋白和0.5mg/ml AgNO3的终溶液,反应24h,得反应液b;
c.在室温下,于12孔板中加入胶原蛋白溶液,用功率为48W的可见光光源,在20cm距离下,照射胶原蛋白溶液,快速搅拌溶液并缓慢加入AgNO3溶液,得含5mg/ml胶原蛋白和0.5mg/mlAgNO3的终溶液,得反应液c;
d.在室温下,于12孔板中加入5mg/ml的胶原蛋白溶液,用功率为48W的可见光光源,在20cm距离下,照射胶原蛋白溶液24h,得反应液d;
e.在室温下,于12孔板中加入5mg/ml的胶原蛋白溶液,得反应液e;
f.在室温下,于12孔板中加入0.5mg/ml的AgNO3溶液,用功率为48W的可见光光源,在20cm距离下,照射AgNO3溶液24h,得反应液f;
g.在室温下,于12孔板中加入0.5mg/ml的AgNO3溶液,得反应液g。
交联蛋白的纯化:将上述反应液a-g于9500rpm离心,弃去上清液,留取沉淀,用去离子水洗涤离心3-5次,室温干燥后分别获得交联胶原蛋白a-g。
1.2交联胶原蛋白的结构检测
将交联胶原蛋白a-g分别进行UV检测;对交联胶原蛋白a进行EDX检测、XPS检测、SEM检测、TEM检测、IR检测及TGA检测。
UV检测结果如图1A所示(其中,图中a-g分别为上述制备的交联胶原蛋白a-g),只有在胶原蛋白和Ag+同时存在,且在可见光光照条件下,反应体系在450nm左右出现明显的吸收峰,说明有银纳米粒子的形成;EDX检测如图1B所示,XPS检测如图1C和图1D所示,EDX及XPS检测峰进一步显示该条件下有银纳米粒子的生成;上述制备的交联胶原蛋白a的SEM、TEM、IR和TGA检测结果如图2所示,其中图2a为SEM图,图2b为图2a的局部放大图,图2c为TEM图,图2d为图2c的局部放大图;图2e为IR检测图,图2f为TGA检测图;SEM和TEM检测显示,反应液中有胶原纤维的生成;IR检测结果显示,胶原蛋白的三级结构仍然完整;TGA检测结果显示,反应体系中胶原蛋白占体系总量近一半;以上实验结果表明,只有在蛋白溶液、银离子溶液和可见光光照条件同时存在时,蛋白发生交联,且制备的交联蛋白的结构完整。
实施例2
2.1交联胶原蛋白的制备
胶原蛋白溶液和AgNO3溶液的配置如上述1.1所示。
交联胶原蛋白的制备:
在室温下,于12孔板中加入胶原蛋白溶液,用功率为48W的可见光光源,在20cm距离下,照射胶原蛋白溶液,快速搅拌溶液并缓慢加入AgNO3溶液,得含5mg/ml胶原蛋白和0.5mg/ml AgNO3的终溶液,分别反应18min,30min,60min,3h,6h和10h,得反应液。
交联蛋白的纯化:将上述反应液于9500rpm离心,弃去上清液,留取沉淀,用去离子水洗涤离心3-5次,室温干燥获得不同交联时间的交联胶原蛋白。
2.2交联胶原蛋白的结构检测
将上述交联胶原蛋白或反应液分别进行UV检测、TEM检测及TGA检测。
TEM检测结果如图3所示,不同交联时间的反应液中均有形貌均一的胶原纤维生成;UV检测结果如图4a所示,随着交联时间的延长,反应体系在450nm左右出现的吸收峰明显增高,说明随着交联时间的延长,银纳米粒子的形成逐渐增多;TGA检测如图4b所示,热重趋势线无变化,不同交联时间的反应体系中胶原蛋白占体系总量近一半;说明随着银纳米粒子的增多,体系中胶原纤维的含量也逐渐增加;以上结果说明,交联时间在18min以上均能形成交联胶原蛋白,且随着交联时间的延长,反应体系中胶原纤维的含量增多。
实施例3
3.1交联胶原蛋白的制备
胶原蛋白溶液和AgNO3溶液的配置如上述1.1所示。
交联胶原蛋白的制备:
在室温下,于12孔板中加入胶原蛋白溶液,用功率为48W的可见光光源,在20cm距离下,照射胶原蛋白溶液,快速搅拌溶液并缓慢加入AgNO3溶液,分别获得含不同浓度(1mg/ml、3mg/ml、5mg/ml、7mg/ml)胶原蛋白和0.5mg/mlAgNO3的终溶液,分别反应12h,得反应液。
交联蛋白的纯化:将上述反应液于9500rpm离心,弃去上清液,留取沉淀,用去离子水洗涤离心3-5次,室温干燥,获得不同胶原蛋白浓度的交联胶原蛋白。
3.2交联胶原蛋白的结构检测
将上述交联胶原蛋白或反应液分别进行TEM检测及SEM检测。
结果如图5所示,其中,图5a-d分别为胶原蛋白浓度为1mg/ml,3mg/ml,5mg/ml,7mg/ml的SEM图,图5e-h分别为胶原蛋白浓度为1mg/ml,3mg/ml,5mg/ml,7mg/ml的TEM图;结果显示,不同胶原蛋白浓度的反应液中均有形貌均一的胶原纤维生成,说明胶原蛋白浓度对于胶原蛋白交联的影响不大,在任何浓度下,均可形成形貌均一的胶原纤维。
实施例4
4.1交联胶原蛋白的制备
胶原蛋白溶液和AgNO3溶液的配置如上述1.1所示。
交联胶原蛋白的制备:
在室温下,于12孔板中加入胶原蛋白溶液,用功率为48W的可见光光源,在20cm距离下,照射胶原蛋白溶液,快速搅拌溶液并缓慢加入AgNO3溶液,得到含5mg/ml胶原蛋白和不同浓度(0.1mg/ml、0.2mg/ml、0.5mg/ml和1.0mg/ml)AgNO3的终溶液,分别反应12h,得反应液。
交联蛋白的纯化:将上述反应液于9500rpm离心,弃去上清液,留取沉淀,用去离子水洗涤离心3-5次,室温干燥,获得不同AgNO3浓度的交联胶原蛋白。
4.2交联胶原蛋白的结构检测
将上述交联胶原蛋白或反应液分别进行TEM检测及SEM检测。
结果如图6所示,其中,图6a-d分别为AgNO3浓度为0.1mg/ml,0.2mg/ml,0.5mg/ml,1mg/ml的SEM图,图6e-h分别为AgNO3浓度为0.1mg/ml,0.2mg/ml,0.5mg/ml,1mg/ml的TEM图;结果显示,不同AgNO3浓度的反应液中均有形貌均一的胶原纤维生成,说明AgNO3浓度对于胶原蛋白交联的影响不大,在任何浓度下,均可形成形貌均一的胶原纤维。
实施例5
5.1交联胶原蛋白的制备
胶原蛋白溶液和AgNO3溶液的配置如上述1.1所示。
交联胶原蛋白的制备:
分别调节胶原蛋白溶液pH至3,5,7和9,在室温下,于12孔板中加入不同pH值的胶原蛋白溶液,用功率为48W的可见光光源,在20cm距离下,照射胶原蛋白溶液,快速搅拌溶液并缓慢加入AgNO3溶液,得到含5mg/ml胶原蛋白和0.5mg/ml AgNO3的终溶液,分别反应12h,得反应液。
交联蛋白的纯化:将上述反应液于9500rpm离心,留取沉淀,用去离子水洗涤离心3-5次,室温干燥,获得不同pH反应的交联胶原蛋白。
5.2交联胶原蛋白的结构检测
将上述交联胶原蛋白或反应液分别进行TEM检测及SEM检测。
检测结果如图7所示,其中,图7a-d分别为pH为3,5,7,9时的SEM图,图7e-h分别pH为3,5,7,9时的TEM图,结果显示,不同pH反应液中均有形貌均一的胶原纤维生成,说明在不同pH反应体系下,均可形成交联胶原蛋白。
实施例6
6.1交联蛋白的制备
蛋白溶液和AgNO3溶液的配置如上述1.1所示,其中蛋白分别为BSA,Casein,HSA,Pepsin,Papain和Egg White。
交联蛋白的制备:
在室温下,分别于12孔板中加入上述蛋白溶液,用功率为48W的可见光光源,在20cm距离下,照射蛋白溶液,快速搅拌溶液并缓慢加入AgNO3溶液,得到含5mg/ml蛋白和0.5mg/ml AgNO3的终溶液,分别反应12h,得反应液。
交联蛋白的纯化:将上述反应液于9500rpm离心,弃去上清液,留取沉淀,用去离子水洗涤离心3-5次,室温干燥,获得蛋白种类不同的交联蛋白。
6.2交联蛋白的结构检测
将上述交联蛋白或反应液分别进行TEM检测及SEM检测。
检测结果如图8所示,其中,图8A-F分别为牛血清白蛋白(BSA)、酪蛋白(Casein)、人血清白蛋白(HSA)、胃蛋白酶(Pepsin)、木瓜蛋白酶(Papain)、鸡蛋清蛋白(Egg White)反应的TEM图,图8a-f分别为牛血清白蛋白(BSA)、酪蛋白(Casein)、人血清白蛋白(HSA)、胃蛋白酶(Pepsin)、木瓜蛋白酶(Papain)、鸡蛋清蛋白(Egg White)反应的SEM图,结果表明,不同蛋白的反应体系中均有形貌均一的纤维生产,说明该方法同样适用于其他蛋白的交联,具有广谱性。
综上,本发明通过蛋白质溶液和银离子溶液在可见光照射下交联获得了一种交联蛋白,该方法的条件温和,不需添加额外的交联剂,安全无毒;制备的交联蛋白具有良好的生物活性和抑菌性能,相比于其他交联方法制备的交联蛋白质,更适用于制备止血材料、药物缓释载体材料、组织工程支架材料、人工皮肤、仿生牙齿、人工血管、骨修复材料、角膜移植材料。
以上所述仅为本发明的个别示范性实施案例的细节,对于本领域的技术人员来说,本发明在实际应用过程中根据具体的制备条件可以有各种更改和变化,并不用于限制本发明。凡在本发明的精神和原则之内,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (11)

1.一种蛋白质的交联方法,其特征在于,所述方法为:用波长范围为380-780nm的复合波长光源或单一波长光源照射含有蛋白质和Ag+的混合溶液。
2.一种制备交联蛋白质的方法,其特征在于,所述方法为:用波长范围为380-780nm的复合波长光源或单一波长光源照射含有蛋白质和Ag+的混合溶液,反应后离心,即得交联蛋白质。
3.如权利要求2所述的方法,其特征在于,所述混合溶液中Ag+和蛋白质的浓度比为1:1-100。
4.如权利要求3所述的方法,其特征在于,所述混合溶液中Ag+和蛋白质的浓度比为1:10。
5.如权利要求2所述的方法,其特征在于,所述反应温度为0-37℃。
6.如权利要求2所述的方法,其特征在于,所述反应时间为18min-24h。
7.如权利要求6所述的方法,其特征在于,所述反应时间为12h。
8.如权利要求2所述的方法,其特征在于,所述的蛋白质包括胶原蛋白、牛血清白蛋白、人血清白蛋白、鸡蛋清白蛋白、酪蛋白、胃蛋白酶、木瓜蛋白酶。
9.如权利要求8所述的方法,其特征在于,所述的蛋白质为胶原蛋白。
10.根据权利要求2-9任一所述方法制备获得的交联蛋白质。
11.如权利要求10所述的交联蛋白质在制备止血材料、药物缓释载体材料、组织工程支架材料、人工皮肤、仿生牙齿、人工血管、骨修复材料、角膜移植材料中的应用。
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