CN112111461B - 一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法 - Google Patents

一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN112111461B
CN112111461B CN202010824126.6A CN202010824126A CN112111461B CN 112111461 B CN112111461 B CN 112111461B CN 202010824126 A CN202010824126 A CN 202010824126A CN 112111461 B CN112111461 B CN 112111461B
Authority
CN
China
Prior art keywords
cells
cell
culture
hybridoma
single cell
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN202010824126.6A
Other languages
English (en)
Other versions
CN112111461A (zh
Inventor
张洋
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Zhejiang Zhengxi Biotechnology Co ltd
Original Assignee
Zhejiang Zhengxi Biomedical Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zhejiang Zhengxi Biomedical Co ltd filed Critical Zhejiang Zhengxi Biomedical Co ltd
Priority to CN202010824126.6A priority Critical patent/CN112111461B/zh
Publication of CN112111461A publication Critical patent/CN112111461A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN112111461B publication Critical patent/CN112111461B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/10Cells modified by introduction of foreign genetic material
    • C12N5/12Fused cells, e.g. hybridomas
    • C12N5/16Animal cells
    • C12N5/163Animal cells one of the fusion partners being a B or a T lymphocyte
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2803Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily
    • C07K16/2809Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily against the T-cell receptor (TcR)-CD3 complex
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2803Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily
    • C07K16/2812Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily against CD4
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C40COMBINATORIAL TECHNOLOGY
    • C40BCOMBINATORIAL CHEMISTRY; LIBRARIES, e.g. CHEMICAL LIBRARIES
    • C40B50/00Methods of creating libraries, e.g. combinatorial synthesis
    • C40B50/06Biochemical methods, e.g. using enzymes or whole viable microorganisms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/20Cytokines; Chemokines
    • C12N2501/23Interleukins [IL]
    • C12N2501/2304Interleukin-4 (IL-4)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/50Cell markers; Cell surface determinants
    • C12N2501/599Cell markers; Cell surface determinants with CD designations not provided for elsewhere

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明属于杂交瘤细胞培养技术领域,具体涉及一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法,对杂交瘤细胞进行单细胞分选,并在分选过程中加入BAFF和IL4。本发明采用单细胞分选与刺激结合,在单细胞分选过程中加入BAFF和IL4促进B细胞的繁殖和单抗分泌,通过单细胞分选刺激后单抗产量最高的杂交瘤细胞单克隆细胞,并对单克隆细胞进行扩增繁殖,公司成功翻新了老化的杂交瘤细胞,新构建的高产株细胞的抗体产量可达到50‑100mg/L以上。

Description

一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法
技术领域
本发明属于杂交瘤细胞培养技术领域,具体涉及一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法。
背景技术
杂交瘤细胞(hybridoma)是用骨髓瘤细胞和单克隆的B细胞融合成的细胞,其融合细胞既具有骨髓瘤细胞无限复制的能力,也具有成熟的单克隆B浆细胞不断分泌单克隆抗体的功能。抗体工业生产上利用这种融合细胞进行单克隆抗体的规模化生产,这种融合细胞被称为杂交瘤细胞。
但是,杂交瘤细胞随着传代次数的增多以及细胞的衰老,其单抗分泌的产量会逐渐降低,严重影响了单克隆抗体的生产。
发明内容
本发明的目的之一是提供BAFF的新用途,用于刺激杂交瘤细胞的繁殖,抑制杂交瘤细胞的老化。
作为优选,BAFF与IL4共同使用,用于刺激杂交瘤细胞的繁殖,抑制杂交瘤细胞的老化。
本发明的目的之二是提供IL4的新用途,用于刺激杂交瘤细胞的繁殖,抑制杂交瘤细胞的老化。
作为优选,IL4与BAFF共同使用,用于刺激杂交瘤细胞的繁殖,抑制杂交瘤细胞的老化。
本发明的目的之三是提供构建单克隆抗体高产株细胞工作库的新方法,翻新了老化的杂交瘤细胞,新构建的高产株细胞的抗体产量可达到100mg/L,最高可达到500mg/L以上。
本发明采用如下的技术方案:
一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法,包括如下步骤:
对杂交瘤细胞进行单细胞分选,并在分选过程中加入BAFF和 IL4。
作为优选,BAFF的加入量为100ng/ml~1mg/ml。
进一步优选为500ng/ml。
作为优选,IL4的加入量为10ng/ml-500ng/ml。
进一步优选为20ng/ml。
具体操作步骤包括:
(1)获取杂交瘤细胞;
(2)将事先培养好的老化杂交瘤细胞进行计数,按计数结果将细胞稀释成单细胞后,加入含BAFF、IL4培养液进行刺激培养;
(3)培养4-5天后进行换液,继续培养2-3天;
(4)培养2-3天后,进行单细胞检测;
(5)对于单细胞检测阳性的细胞株,用10%FBS RPMI进行扩增,建立筛选后单克隆主细胞库。
通过实施上述技术方案,本发明具有如下的有益效果:
本发明提供了BAFF的新用途,扩大了其使用范围。
本发明提供了IL4的新用途,扩大了其使用范围。
本发明采用单细胞分选与刺激结合,在单细胞分选过程中加入 BAFF和IL4促进B细胞的繁殖和单抗分泌,通过单细胞分选刺激后单抗产量最高的杂交瘤细胞单克隆细胞,并对单克隆细胞进行扩增繁殖,公司成功翻新了老化的杂交瘤细胞,新构建的高产株细胞的抗体产量可达到100mg/L,最高可达到500mg/L以上。
附图说明
图1为未翻新的抗人CD3[克隆号:OKT3]杂交瘤细胞株生产的抗体产量,50ml杂交瘤细胞无血清培养上清中纯化的抗体为0.94mg,产量为18.8mg/L。
图2为翻新后的抗人CD3[克隆号:OKT3]杂交瘤细胞株生产的抗体产量,50ml杂交瘤细胞无血清培养上清中纯化的抗体为 16.501mg,翻新后细胞产量为330mg/L。
图3为未翻新后的抗人CD4[克隆号:OKT4]杂交瘤细胞株生产的抗体产量,50ml杂交瘤细胞无血清培养上清中纯化的抗体为 1.448mg,产量为28.96mg/L。
图4为翻新后的抗人CD4[克隆号:OKT4]杂交瘤细胞株生产的抗体产量,50ml杂交瘤细胞无血清培养上清中纯化的抗体为 25.908mg,产量为518.16mg/L。
具体实施方式
为使本发明实施例的目的、技术方案和优点更加清楚,下面将对本发明实施例的技术方案进行清楚、完整的描述。显然,所描述的实施例是本发明的一部分实施例,而不是全部的实施例。基于所描述的本发明的实施例,本领域普通技术人员在无需创造性劳动的前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明的保护范围。
实施例1:
一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法,以抗人CD3[克隆号:OKT3]为例,包括:
1.杀死小鼠:用酒精浸泡数分钟,取出小鼠放在解剖板上,用大头针固定好四肢,在超净台上用一个镊子挑起腹部皮肤,用手术剪刀剪开腹部皮肤,换一把干净镊子夹住腹膜,用另一把镊子捅破腹膜,用巴氏管向腹腔内加5ml(10%FBS RPMI)培养基,吹打几次,吸出培养基,吸出的培养基里即含有腹腔巨噬细胞,反复进行两至三次即可基本取彻底。将取出的细胞500G离心5min,去掉上清,向沉淀中加入适量的完全培养基(用于刚融合的细胞需要加HAT,用于克隆化的细胞需要加HT),用移液枪反复吹打均匀,可用血球计数板计数(一般一只老鼠的腹腔巨噬细胞约为3*10^6个)。根据计数的结果将巨噬细胞稀释到合适的浓度(以96孔板为例,平均每孔含1*10^4 个巨噬细胞为宜)。稀释好后,用移液枪吸取饲养层细胞按100ul滴到96孔板(平均每只老鼠的腹腔巨噬细胞可铺两至三块96孔板),静置培养一天。
2.将事先培养好需要的老化杂交瘤细胞进行计数,按计数结果将细胞稀释(按10倍逐次进行稀释,减小误差)成单细胞,另取一个15ml离心管,加入10ml(10%FBS RPMI1640,100ng/ml重组 BAFF,20ng/ml重组IL4)培养液进行刺激培养。按稀释结果将细胞接种到10ml离心管中,使离心管中的细胞总数量为80个细胞左右。将离心管中的细胞混匀,按每孔100ul加满96孔板静置培养4-5天。每天对细胞进行计数观察。
3.培养4天后对96孔板进行换液,用移液枪将96孔板中的上清液吸取(尽量不要吸到底层细胞),然后按每孔100ul进行换液。继续培养3天。每天对细胞进行计数观察。
4.培养2天后,用记号笔对有细胞生长的孔进行标记,用移液枪将标记的孔的上清液吸取100ul至1.5ml离心管中,一一对应,并吸取2个无细胞生长的孔的上清液作为阴性对照,进行流式细胞仪的检测。
5.对于单细胞检测阳性的细胞株,用10%FBS RPMI进行扩增,建立筛选后单克隆主细胞库,再对该主细胞库进行复苏,CD培养基适应后建立工作库,通过工作库进行无血清培养生产的单抗产量较未通过B细胞因子刺激及单细胞分选构建前的产量提高10-50倍,并且新建立的工作库细胞传代后抗体产量表现稳定。
实施例2:
一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法,以抗人CD3[克隆号:OKT3]为例,包括:
1.杀死小鼠:用酒精浸泡数分钟,取出小鼠放在解剖板上,用大头针固定好四肢,在超净台上用一个镊子挑起腹部皮肤,用手术剪刀剪开腹部皮肤,换一把干净镊子夹住腹膜,用另一把镊子捅破腹膜,用巴氏管向腹腔内加5ml(10%FBS RPMI)培养基,吹打几次,吸出培养基,吸出的培养基里即含有腹腔巨噬细胞,反复进行两至三次即可基本取彻底。将取出的细胞500G离心5min,去掉上清,向沉淀中加入适量的完全培养基(用于刚融合的细胞需要加HAT,用于克隆化的细胞需要加HT),用移液枪反复吹打均匀,可用血球计数板计数(一般一只老鼠的腹腔巨噬细胞约为3*10^6个)。根据计数的结果将巨噬细胞稀释到合适的浓度(以96孔板为例,平均每孔含1*10^4 个巨噬细胞为宜)。稀释好后,用移液枪吸取饲养层细胞按100ul滴到96孔板(平均每只老鼠的腹腔巨噬细胞可铺两至三块96孔板),静置培养一天。
2.将事先培养好需要的老化杂交瘤细胞进行计数,按计数结果将细胞稀释(按10倍逐次进行稀释,减小误差)成单细胞,另取一个15ml离心管,加入10ml(10%FBS RPMI1640,500ng/ml重组 BAFF,10ng/ml重组IL4)培养液进行刺激培养。按稀释结果将细胞接种到10ml离心管中,使离心管中的细胞总数量为80个细胞左右。将离心管中的细胞混匀,按每孔100ul加满96孔板静置培养4-5天。每天对细胞进行计数观察。
3.培养4-5天后对96孔板进行换液,用移液枪将96孔板中的上清液吸取(尽量不要吸到底层细胞),然后按每孔100ul进行换液。继续培养2-3天。每天对细胞进行计数观察。
4.培养2-3天后,用记号笔对有细胞生长的孔进行标记,用移液枪将标记的孔的上清液吸取100ul至1.5ml离心管中,一一对应,并吸取2个无细胞生长的孔的上清液作为阴性对照,进行流式细胞仪的检测。
5.对于单细胞检测阳性的细胞株,用10%FBS RPMI进行扩增,建立筛选后单克隆主细胞库,再对该主细胞库进行复苏,CD培养基适应后建立工作库,通过工作库进行无血清培养生产的单抗产量较未通过B细胞因子刺激及单细胞分选构建前的产量提高10-50倍,并且新建立的工作库细胞传代后抗体产量表现稳定。
实施例3:
一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法,以抗人CD3[克隆号:OKT3]为例,包括:
1.杀死小鼠:用酒精浸泡数分钟,取出小鼠放在解剖板上,用大头针固定好四肢,在超净台上用一个镊子挑起腹部皮肤,用手术剪刀剪开腹部皮肤,换一把干净镊子夹住腹膜,用另一把镊子捅破腹膜,用巴氏管向腹腔内加5ml(10%FBS RPMI)培养基,吹打几次,吸出培养基,吸出的培养基里即含有腹腔巨噬细胞,反复进行两至三次即可基本取彻底。将取出的细胞500G离心5min,去掉上清,向沉淀中加入适量的完全培养基(用于刚融合的细胞需要加HAT,用于克隆化的细胞需要加HT),用移液枪反复吹打均匀,可用血球计数板计数(一般一只老鼠的腹腔巨噬细胞约为3*10^6个)。根据计数的结果将巨噬细胞稀释到合适的浓度(以96孔板为例,平均每孔含1*10^4 个巨噬细胞为宜)。稀释好后,用移液枪吸取饲养层细胞按100ul滴到96孔板(平均每只老鼠的腹腔巨噬细胞可铺两至三块96孔板),静置培养一天。
2.将事先培养好需要的老化杂交瘤细胞进行计数,按计数结果将细胞稀释(按10倍逐次进行稀释,减小误差)成单细胞,另取一个15ml离心管,加入10ml(10%FBS RPMI1640,500ng/ml重组 BAFF,20ng/ml重组IL4)培养液进行刺激培养。按稀释结果将细胞接种到10ml离心管中,使离心管中的细胞总数量为80个细胞左右。将离心管中的细胞混匀,按每孔100ul加满96孔板静置培养4-5天。每天对细胞进行计数观察。
3.培养4-5天后对96孔板进行换液,用移液枪将96孔板中的上清液吸取(尽量不要吸到底层细胞),然后按每孔100ul进行换液。继续培养2-3天。每天对细胞进行计数观察。
4.培养2-3天后,用记号笔对有细胞生长的孔进行标记,用移液枪将标记的孔的上清液吸取100ul至1.5ml离心管中,一一对应,并吸取2个无细胞生长的孔的上清液作为阴性对照,进行流式细胞仪的检测。
5.对于单细胞检测阳性的细胞株,用10%FBS RPMI进行扩增,建立筛选后单克隆主细胞库,再对该主细胞库进行复苏,CD培养基适应后建立工作库,通过工作库进行无血清培养生产的单抗产量较未通过B细胞因子刺激及单细胞分选构建前的产量提高10-50倍,并且新建立的工作库细胞传代后抗体产量表现稳定,如附图2所示。
实施例4:
一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法,以抗人CD4[克隆号:OKT4]为例,包括:
1.杀死小鼠:用酒精浸泡数分钟,取出小鼠放在解剖板上,用大头针固定好四肢,在超净台上用一个镊子挑起腹部皮肤,用手术剪刀剪开腹部皮肤,换一把干净镊子夹住腹膜,用另一把镊子捅破腹膜,用巴氏管向腹腔内加5ml(10%FBS RPMI)培养基,吹打几次,吸出培养基,吸出的培养基里即含有腹腔巨噬细胞,反复进行两至三次即可基本取彻底。将取出的细胞500G离心5min,去掉上清,向沉淀中加入适量的完全培养基(用于刚融合的细胞需要加HAT,用于克隆化的细胞需要加HT),用移液枪反复吹打均匀,可用血球计数板计数(一般一只老鼠的腹腔巨噬细胞约为3*10^6个)。根据计数的结果将巨噬细胞稀释到合适的浓度(以96孔板为例,平均每孔含1*10^4 个巨噬细胞为宜)。稀释好后,用移液枪吸取饲养层细胞按100ul滴到96孔板(平均每只老鼠的腹腔巨噬细胞可铺两至三块96孔板),静置培养一天。
2.将事先培养好需要的老化杂交瘤细胞进行计数,按计数结果将细胞稀释(按10倍逐次进行稀释,减小误差)成单细胞,另取一个15ml离心管,加入10ml(10%FBS RPMI1640,500ng/ml重组 BAFF,20ng/ml重组IL4)培养液进行刺激培养。按稀释结果将细胞接种到10ml离心管中,使离心管中的细胞总数量为80个细胞左右。将离心管中的细胞混匀,按每孔100ul加满96孔板静置培养4-5天。每天对细胞进行计数观察。
3.培养4-5天后对96孔板进行换液,用移液枪将96孔板中的上清液吸取(尽量不要吸到底层细胞),然后按每孔100ul进行换液。继续培养2-3天。每天对细胞进行计数观察。
4.培养2-3天后,用记号笔对有细胞生长的孔进行标记,用移液枪将标记的孔的上清液吸取100ul至1.5ml离心管中,一一对应,并吸取2个无细胞生长的孔的上清液作为阴性对照,进行流式细胞仪的检测。
5.对于单细胞检测阳性的细胞株,用10%FBS RPMI进行扩增,建立筛选后单克隆主细胞库,再对该主细胞库进行复苏,CD培养基适应后建立工作库,通过工作库进行无血清培养生产的单抗产量较未通过B细胞因子刺激及单细胞分选构建前的产量提高10-50倍,并且新建立的工作库细胞传代后抗体产量表现稳定,如附图4所示。
对比例1:
与实施例3的不同在于,不进行单细胞分选,不加入BAFF和IL4 的老化杂交瘤细胞株(抗人CD3[OKT3])扩增后通过50ml无血清培养基培养后抗体纯化产量如附图1所示。
对比例2:
与实施例4的不同在于,不进行单细胞分选,不加入BAFF和IL4 的老化杂交瘤细胞株(抗人CD3[OKT3])扩增后通过50ml无血清培养基培养后抗体纯化产量如附图3所示。
上述实施例的细胞培养及抗体纯化(翻新及未翻新杂交瘤细胞培养纯化流程)步骤(参照申请号为“201811187760.2”、专利名称为“利用杂交瘤细胞生产单克隆抗体的方法及其生产的单克隆抗体”的专利申请):
将杂交瘤细胞置于含20%(体积分数)胎牛血清的RPMI完全培养基中复苏后,进行传代培养和扩大培养;
具体地,先将杂交瘤细胞置于含20%(体积分数)胎牛血清的 RPMI完全培养基中,将培养皿置于5%CO、37℃培养箱内培养,待杂交瘤细胞复苏后完成一次传代,培养过程(3天)中每天进行细胞计数;
然后,将细胞密度生长至1×106个/mL左右或颜色变为橙黄色时的培养液转移至15ml离心管内,4℃下1500rpm离心5min,去掉离心管内上清液;用PBS溶液对细胞进行清洗后将细胞重悬在含20%胎牛血清的RPMI完全培养基内,并将细胞重悬液转移至T-25细胞培养瓶中,用含20%胎牛血清的RPMI完全培养基定容至120mL;将T-25细胞培养瓶放置于5%CO2、37℃培养箱内培养,培养过程(3 天)中可间隔时间对细胞进行计数;
(2)将杂交瘤细胞转移至置于含10%(体积分数)胎牛血清的 RPMI完全培养基中,进行扩大培养;
具体地,待细胞密度生长至1×106个/mL左右或培养液颜色变为橙黄色时,将T-25细胞培养瓶中的120mL培养液转移至50ml离心管内,4℃1500rpm离心5min,然后去掉离心管内上清液;用PBS溶液对细胞进行清洗后将细胞重悬在含10%胎牛血清的RPMI完全培养基中;并将细胞重悬液转移至T-75细胞培养瓶中,用含10%胎牛血清的RPMI完全培养基定容至540mL;将T-75细胞培养瓶置于5%CO、37℃培养箱内培养,培养过程(5天)中可间隔时间对细胞进行计数;
(3)将杂交瘤细胞转移至无血清细胞培养基中培养,进行单克隆抗体的生产;
具体地,待细胞密度生长至1×106个/mL左右或培养液颜色变为橙黄色时,将T-75细胞培养瓶中的培养液分次转移至50ml离心管内, 4℃1500rpm离心5min,去掉细胞上层清液,用PBS溶液对细胞进行清洗后将细胞重悬在装有50ml无血清CD-hybridoma培养基的125ml 细胞培养摇瓶内,将摇瓶放置于5%CO、37℃,100rpm培养箱内培养,进行单克隆抗体的生产;抗体生产周期为10天,在第11天收集培养液用于下一步抗体纯化(采用通用公司的AKTA设备和Mabselect Protein A的柱子进行亲和层析,以纯化抗体,下同)。

Claims (4)

1.BAFF与IL4的用途,其特征在于,BAFF与IL4共同使用,用于刺激杂交瘤细胞的繁殖,抑制杂交瘤细胞的老化,BAFF的加入量为100ng/ml~1mg/ml,IL4的加入量为10ng/ml-500ng/ml。
2.一种单细胞分选构建单克隆抗体细胞工作库的方法,其特征在于,包括如下步骤:对杂交瘤细胞进行单细胞分选,并在分选过程中加入BAFF和IL4,BAFF的加入量为100ng/ml~1mg/ml,IL4的加入量为10ng/ml-500ng/ml。
3.根据权利要求2所述的方法,其特征在于,BAFF的加入量为500ng/ml。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,IL4的加入量为20 ng/ml。
CN202010824126.6A 2020-08-17 2020-08-17 一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法 Active CN112111461B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010824126.6A CN112111461B (zh) 2020-08-17 2020-08-17 一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010824126.6A CN112111461B (zh) 2020-08-17 2020-08-17 一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN112111461A CN112111461A (zh) 2020-12-22
CN112111461B true CN112111461B (zh) 2022-08-30

Family

ID=73803771

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202010824126.6A Active CN112111461B (zh) 2020-08-17 2020-08-17 一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN112111461B (zh)

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA2818892A1 (en) * 2010-11-24 2012-05-31 Duke University Adjuvant
CN103421113B (zh) * 2012-05-22 2018-01-19 武汉华鑫康源生物医药有限公司 抗BLyS抗体
CN103898060B (zh) * 2012-12-25 2015-12-23 深圳先进技术研究院 Hat半固体筛选培养基以及杂交瘤细胞的筛选方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN112111461A (zh) 2020-12-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU670316B2 (en) An improved method of (agrobacterium)-mediated transformation of cultured soybean cells
Vasil et al. Totipotency and embryogenesis in plant cell and tissue cultures
EP1687414B1 (en) Method of isolating and culturing mesenchymal stem cell derived from umbilical cord blood
Gosch et al. Isolation, culture, and induction of embryogenesis in protoplasts from cell-suspensions of Atropa belladonna
JP2012508562A5 (zh)
CN112680415A (zh) 一种nk培养基及其扩增培养方法
CN114921416B (zh) 一种nk细胞及其制备方法
CN108085337A (zh) 一种gs表达系统细胞株的筛选方法
CN112111461B (zh) 一种单细胞分选构建单克隆抗体高产株细胞工作库的方法
CN113564117B (zh) 一种冻存脐带血来源调节性t细胞体外扩增优化方法
CN112080469B (zh) T1肽在体外促进脐带血造血干细胞增殖中的应用
JP7025524B2 (ja) 非動員末梢血を利用した不均一性造血幹細胞・前駆細胞の製造方法
CN104894054A (zh) 一种猴胚胎肾上皮细胞Marc-145悬浮适应株及其在培养蓝耳病病毒、生产蓝耳病毒疫苗中的应用
CN107922924A (zh) Cd34+cd41暗巨核细胞祖细胞及其用于产生带有前血小板的mk和/或血小板的应用
CN116376822A (zh) 利用人多潜能干细胞体外制备t淋巴细胞
US4721675A (en) Production of hepatitis A virus in vitro utilizing a persistently virus infected cell culture system
Louzada et al. Preparation and fusion of Citrus sp. microprotoplasts
CN108239620A (zh) IFN-β1编码基因缺失的MDCK细胞株及其构建方法和应用
Gosch et al. Isolation, culture, and fusion studies on protoplasts from different species
Brahe et al. A simple method for fusing human lymphocytes with rodent cells in monolayer by polyethylene glycol
CN114149977A (zh) 一种小鼠肺微血管内皮细胞永生化以获得胞外囊泡的方法
CN110396496B (zh) 一种鸭小肠上皮细胞的培养方法及应用
AU2020102372A4 (en) Bhk21 cell population with reconstructed innate immune system, and use of cell clones thereof in virus proliferation
Huang et al. Tissue culture investigations of bamboo V, Recovery of callus from protoplasts of suspension-cultured
KR102648479B1 (ko) 단백질 기반 의약들 (protein-based pharmaceuticals) 의 고 수준 생산을 위한 세포주들 (cell lines)

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CP03 Change of name, title or address
CP03 Change of name, title or address

Address after: Building 1 and 3, No. 926, Changhong East Street, Fuxi Street, Huzhou, Zhejiang Province, 313000 (Mount Mogan National High tech Zone)

Patentee after: Zhejiang Zhengxi Biotechnology Co.,Ltd.

Address before: Building 1, No. 926, Changhong East Street, Fuxi street, Deqing County, Huzhou City, Zhejiang Province, 313000 (Moganshan national high tech Zone)

Patentee before: ZHEJIANG ZHENGXI BIOMEDICAL Co.,Ltd.

PE01 Entry into force of the registration of the contract for pledge of patent right
PE01 Entry into force of the registration of the contract for pledge of patent right

Denomination of invention: A method for constructing a high-yield monoclonal antibody cell library through single-cell sorting

Granted publication date: 20220830

Pledgee: Deqing sub branch of Bank of China Ltd.

Pledgor: Zhejiang Zhengxi Biotechnology Co.,Ltd.

Registration number: Y2024980010535