CN111876460A - 鼠单抗IgG2a F(ab`)2的制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及抗体制备技术领域,尤其涉及鼠单抗IgG2aF(ab')2的制备方法。本发明提供的制备方法采用Bromelain酶对IgG2a亚型鼠单抗进行酶消化处理,酶解过程简单,操作方便,不需要把抗体透析到酸性缓冲液中,避免了抗体结构和活性的改变。并且,本发明使用ProteinA纯化F(ab')2和Fab,再用Superdex 200 Increase10/30GL分离F(ab')2和Fab,2步即可将Fc、F(ab')2、Fab三者分离,避免了操作步骤的繁琐,片段回收率达到70%以上,并且2步使用的缓冲液一致,省去了缓冲液更换步骤,节省了纯化时间。
Description
技术领域
本发明涉及抗体制备技术领域,尤其涉及鼠单抗IgG2a F(ab’)2的制备方法。
背景技术
鼠单克隆抗体的片段,目前被广泛用于临床诊断和治疗等研究领域,抗体片段化后,因去掉了某些功能结构域以及分子量的改变,比全长抗体有明显的优势:在抗原-抗体结合研究中可避免Fc相关作用因子的干扰,避免全长抗体的空间位阻效应,在固相抗原检测中灵敏度更高。一些体外诊断试剂盒存在有假阳性,将酶标抗体进行Fc段切除后,样本假阳性均可得到消除,因而F(ab’)2在生物制品中有较大的实际应用价值,对其的制备具有重要的研究意义。
目前鼠单抗F(ab’)2片段的制备目前大多采用胃蛋白酶进行酶切,但有些单克隆抗体,尤其是小鼠IgG亚类对胃蛋白酶具有抵抗性,因此,对于不同的抗体,特别是对胃蛋白酶酶切不敏感甚至有抗性的抗体,寻求一种合适的酶酶切此类抗体很有必要。一般来说,不同亚型的鼠单抗对蛋白水解酶的敏感性顺序是IgG2b>IgG3>IgG2a>IgG1,鼠IgG1可以被一步酶切成F(ab’)2,而IgG2a被酶切时,首先产生F(ab’)2,暴露新的位点后进一步被切成Fab,所以IgG2a被酶切后的产物有F(ab’)2、Fab、Fc,由于F(ab’)2与Fab等电点较接近,离子交换不能把二者分离;F(ab’)2与Fab分子量比较接近,Sephacryl S-200凝胶法很难实现二者的分离。因此寻求一种相对简单、实用并且能够分离F(ab’)2、Fab、Fc的方法非常重要。
发明内容
有鉴于此,本发明要解决的技术问题在于提供鼠单抗IgG2a F(ab’)2的制备方法,该方法制得的IgG2a F(ab’)2纯度高,收率大。
本发明提供的鼠单抗IgG2a F(ab’)2的制备方法,其包括:
步骤1:IgG2a亚型鼠单抗经透析后,以Bromelain酶解;
步骤2:终止酶解反应后,再次透析,透析液上Protein A亲和层析柱,收集含有鼠单抗IgG2a F(ab’)2的流穿液;
步骤3:将流穿液过Superdex 200Increase10/30GL柱,用1~3倍柱体积平衡缓冲液洗脱,收集含F(ab’)2的洗脱液;
其中,所述Bromelain酶解以L-Glutathione激活酶解反应;
所述平衡缓冲液0.02mol/L,pH值为7.0~7.5的PBS缓冲液。
本发明中,步骤1中所述透析的透析液中包含水和50mmol/L Tris、2mmol/L EDTA。步骤1中所述透析液的pH值为7.0~7.4。
步骤1中所述透析的IgG2a亚型鼠单抗的以pH7.2~7.4的0.01M PBS溶解,溶解至浓度为5~10mg/ml,IgG2a亚型鼠单抗溶液与透析液的体积比为1:(50~100)。步骤1中所述透析的截留分子量为3kDa。
本发明中,所述以L-Glutathione激活酶解反应中,L-Glutathione的浓度为1mmol/L。
在本发明中,所述Bromelain酶解中,Bromelain酶与IgG2a亚型鼠单抗的质量比为1:(50~75)。所述Bromelain酶解的条件为37℃~38℃,100~150rpm振荡反应3~4h。
一些实施例中,所述Bromelain酶解中的条件为:酶/抗体(w/w)=1:50,37℃,120rpm振荡酶解3.5h。
本发明中,所述终止酶解反应采用终止液,所述终止液为TPCK,TLCK或烷化剂中的任意一种。一些具体实施例中,所述终止液为NEMI。
一些实施例中,步骤2中所述透析的透析液为0.02mol/L,pH值为7.0~7.5的PBS缓冲液。步骤2中所述透析的截留分子量为3kDa。酶解液与透析液的体积比为1:(50~100)。
透析液在上Protein A亲和层析柱前还包括过滤的步骤,所述过滤采用0.45μm滤膜。收集的流穿液中包括包含F(ab’)2和Fab。以pH 2.7~3.5,0.2mol/L的甘氨酸-盐酸缓冲液洗脱Protein A亲和层析柱,收集含有Fc的洗脱液。所述含有Fc的洗脱液以pH 9.0,1mol/L的Tris-Hcl溶液中和。
所述Superdex 200Increase10/30GL填料的颗粒直径不超过20μm。
流穿液过Superdex 200Increase10/30GL柱,先以1~3倍柱体积平衡缓冲液洗脱收集含有F(ab’)2的流分,然后再收集含有Fab的流分。
本发明中,还包括将所述洗脱液浓缩到浓度为5mg/ml。
本发明所述方法制备的鼠单抗IgG2a F(ab’)2。
本发明还提供了含有所述鼠单抗IgG2a F(ab’)2的检测试剂。
本发明所述的检测试剂中,其还包括保护剂和防腐剂。
所述保护剂为50%甘油或6%海藻糖;防腐剂为1‰P300或NaN3。
本发明提供的制备方法采用Bromelain酶对IgG2a亚型鼠单抗进行酶消化处理,小分子中酶切位点比较偏向于-R-R-/-的序列,是比较广普的肽内切酶。该酶解过程简单,操作方便,不需要把抗体透析到酸性缓冲液中,避免了抗体结构和活性的改变。并且,本发明使用ProteinA纯化F(ab’)2和Fab,再用Superdex 200Increase10/30GL分离F(ab’)2和Fab,2步即可将Fc、F(ab’)2、Fab三者分离,避免了操作步骤的繁琐,片段回收率达到70%以上,并且2步使用的缓冲液一致,省去了缓冲液更换步骤,节省了纯化时间。
附图说明
图1为鼠单抗IgG2a酶切及片段分离过程样品SDS-PAGE电泳图;
图2为鼠单抗IgG2a F(ab’)2和Fab分离后SDS-PAGE电泳图;
图3为IgG2a F(ab’)2和Fab混合物的HPLC分析结果;
图4为IgG2a F(ab’)2的HPLC分析结果;
图5为鼠单抗IgG2a木瓜蛋白酶酶切各阶段样品SDS-PAGE电泳图;
图6为鼠单抗IgG2a胃蛋白酶酶切各阶段样品SDS-PAGE电泳图。
具体实施方式
本发明提供了鼠单抗IgG2a F(ab’)2的制备方法,本领域技术人员可以借鉴本文内容,适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是,所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,它们都被视为包括在本发明。本发明的方法及应用已经通过较佳实施例进行了描述,相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文的方法和应用进行改动或适当变更与组合,来实现和应用本发明技术。
本发明采用的试材皆为普通市售品,皆可于市场购得。
本发明的方法对于IgG1亚型的鼠单抗的来源或制备方法无特殊要求,其来源或制备方法不影响本发明提供方法的效果。例如,本发明实施例中采用的所述鼠单抗为小鼠、大鼠单克隆抗体。具体的,实施例中采用为小鼠单抗。
下面结合实施例,进一步阐述本发明:
实施例1本发明所述的鼠单抗IgG2a F(ab’)2的制备方法包括下述步骤:
步骤一,将IgG2a亚型的鼠单抗,装入截留分子量为3KD的透析袋中,透析到50mMTris+2mM EDTA pH7.0中,搅拌透析。
步骤二,用步骤一中的透析液50mM Tris+2mM EDTA pH7.0将Bromelain酶溶解为1mg/ml,按质量比1:50E/S将酶加入到抗体溶液中,然后按体积比(V抗体+V酶)/100加入L-Glutathione,37℃~40℃(优选37℃)水浴摇床中震荡反应3.5h;加入终止液1h后于0.02MPBS pH 7.4中透析。
步骤三,解透析袋,样品过0.45μm滤膜过滤,将过滤后上清泵入Protein A亲和层析柱,收集流穿液即为F(ab’)2,再用5倍柱体积0.2M甘氨酸-盐酸缓冲液pH 2.7洗脱Fc,并用1M Tris-Hcl pH 9.0中和。
步骤四,由于IgG2a亚型的鼠单抗在酶切时第一步产生F(ab’)2,暴露新的位点后又被进一步切成Fab,Protein A亲和层析收集的流穿中实际包含F(ab’)2和Fab,将流穿液过Superdex 200Increase10/30GL,用0.02M PBS pH 7.4洗脱依次收集第一峰(1倍柱体积)主要成分是F(ab’)2;第二峰(1.5倍柱体积)主要成分是Fab,F(ab’)2回收率80%。
步骤五,将步骤四中收集到的第一峰和第二峰分别浓缩到浓度为5mg/ml,即为抗体片段F(ab’)2和Fab,其中,F(ab’)2的收率为80%,Fab的收率为15%。分别加入50%甘油和1‰P300,-20℃保存。
功效验证
1、鼠单抗IgG2a按实施例1酶切及片段分离效果,结果见图1:将原抗体、酶切后样品、及片段分离后样品,取样浓度稀释至1mg/ml,进行10%SDS-PAGE变性非还原胶和还原胶检测,泳道2为IgG2a亚型抗体酶切后,主要有3条带,从上往下依次为F(ab’)2、Fab、Fc;泳道3为过SPA分离后的F(ab’)2、Fab。IgG2a F(ab’)2和Fab的分离效果见图2:泳道2为分离后的F(ab’)2,泳道3为Fab,F(ab’)2纯度达98%。
结论:鼠单抗IgG2a首先被切成F(ab’)2和Fc,然后暴露新的位点后,F(ab’)2又被进一步切成Fab,经Protein A分离后,图1泳道3是目的片段F(ab’)2和Fab的混合物,再经分辨率较高的Superdex 200Increase10/30GL分离后,图2泳道2为目的片段F(ab’)2,达到了较好的分离效果。
2、将实施例1分离的F(ab’)2和Fab的混合物、F(ab’)2分别进行HPLC分析,其结果见图3、图4。图3中从右到左峰对应的分子量分别为1KD、17KD、45KD、150KD、300KD、670KD、1340KD。从右到左第一个峰对应Fab,第二个峰对应F(ab’)2,分子量都在Marker标示的范围内。
图4是经Superdex 200Increase10/30GL分离的F(ab’)2的HPLC图,F(ab’)2,峰面积99%,分子量在45KD-150KD之间,符合预期目标。
对比例1本发明所述的鼠单抗IgG2a F(ab’)2的制备方法包括下述步骤:
步骤一,将IgG2a亚型的鼠单抗,装入截留分子量为3KD的透析袋中,透析到50mMTris+2mM EDTA pH7.0中,搅拌透析。
步骤二,用步骤一中的透析液50mM Tris+2mM EDTA pH7.0将Bromelain酶溶解为1mg/ml,按质量比1:40E/S将酶加入到抗体溶液中,然后按体积比(V抗体+V酶)/100加入L-Glutathione,37℃-40℃水浴摇床中震荡反应3.5h;加入终止液1h后于0.02M PBS pH 7.4中透析。
步骤三,解透析袋,样品过0.45μm滤膜过滤,将过滤后上清泵入Protein A亲和层析柱,收集流穿液即为F(ab’)2,再用5倍柱体积0.2M甘氨酸-盐酸缓冲液pH 2.7洗脱Fc,并用1M Tris-Hcl pH 9.0中和。
步骤四,由于IgG2a亚型的鼠单抗在酶切时第一步产生F(ab’)2,暴露新的位点后又被进一步切成Fab,Protein A亲和层析收集的流穿中实际包含F(ab’)2和Fab,将流穿液过Superdex 200Increase10/30GL,用1~3倍柱体积0.02M PBS pH 7.4洗脱分别收集第一峰F(ab’)2和第二峰Fab,F(ab’)2回收率65%。
步骤五,将步骤四中收集到的第一峰和第二峰分别浓缩到浓度为5mg/ml,即为抗体片段F(ab’)2和Fab,其中,F(ab’)2的收率为63%,Fab的收率为31%。分别加入50%甘油和1‰P300,-20℃保存。说明抗体被切成单价Fab的比例增大,导致F(ab’)2的纯度降低。
对比例2本发明所述的鼠单抗IgG2a F(ab’)2的制备方法包括下述步骤:
步骤一,将IgG2a亚型的鼠单抗,装入截留分子量为3KD的透析袋中,透析到50mMTris+2mM EDTA pH7.0中,搅拌透析。
步骤二,用步骤一中的透析液50mM Tris+2mM EDTA pH7.0将Bromelain酶溶解为1mg/ml,按质量比1:80E/S将酶加入到抗体溶液中,然后按体积比(V抗体+V酶)/100加入L-Glutathione,37℃-40℃水浴摇床中震荡反应3.5h;加入终止液1h后于0.02M PBS pH 7.4中透析。
步骤三,解透析袋,样品过0.45μm滤膜过滤,将过滤后上清泵入Protein A亲和层析柱,收集流穿液即为F(ab’)2,再用5倍柱体积0.2M甘氨酸-盐酸缓冲液pH 2.7洗脱Fc,并用1M Tris-Hcl pH 9.0中和。
步骤四,由于IgG2a亚型的鼠单抗在酶切时第一步产生F(ab’)2,暴露新的位点后又被进一步切成Fab,Protein A亲和层析收集的流穿中实际包含F(ab’)2和Fab,将流穿液过Superdex 200Increase10/30GL,用1~3倍柱体积0.02M PBS pH 7.4洗脱分别收集第一峰F(ab’)2和第二峰Fab,F(ab’)2回收率53%。
步骤五,将步骤四中收集到的第一峰和第二峰分别浓缩到浓度为5mg/ml,即为抗体片段F(ab’)2和Fab,其中,F(ab’)2的收率为50%,Fab的收率为14%。分别加入50%甘油和1‰P300,-20℃保存。说明绝大部分抗体不能被切开,最终导致F(ab’)2回收率降低。
对比例3鼠单抗IgG2a按现有技术中的酶解法-木瓜蛋白酶酶切:
步骤一,将从小鼠腹水中SPA纯化的IgG2a亚型的鼠单抗,装入截留分子量小于3KD的透析袋中,透析到50mM Tris+2mM EDTA pH7.0-7.4中,搅拌透析。
步骤二,用50mM Tris+2mM EDTA+1mM cysteine pH7.0-7.4激活木瓜蛋白酶(1-2mg/ml),37℃反应15min;按酶/抗体(W/W)=1:50比例将酶加入到抗体溶液中,37℃-38℃水浴摇床中震荡反应8-10h;加入终止液碘乙酰胺至终浓度为20mM,1-2h后于平衡缓冲液0.02M PBS pH 7.4中透析。
其结果见图5:将原抗体及酶切后样品,稀释至1mg/ml,各取20μL进行10%SDS-PAGE变性非还原胶检测,结果IgG2a没有完全被切成F(ab’)2和Fab,还有部分IgG2a整分子剩余。
对比例4鼠单抗IgG2a按现有技术中的酶解法-胃蛋白酶酶切:
步骤一,将从小鼠腹水中SPA纯化的IgG2a亚型的鼠单抗,装入截留分子量小于3KD的透析袋中,透析到NaAC pH4.0-4.2中,搅拌透析。
步骤二,用NaAC pH4.0-4.2将Pepsin溶解为1mg/ml,按酶/抗体(W/W)=1:50比例将酶加入到抗体溶液中,37℃-38℃水浴摇床中震荡反应3-4h;加入1M Tris致其pH值为8.0终止反应,1-2h后于平衡缓冲液0.02M PBS pH 7.4中透析。
其结果见图6:将原抗体及酶切后样品,稀释至1mg/ml,各取20μL进行10%SDS-PAGE变性非还原胶检测,结果IgG2a没有被完全切开,还有部分完整的IgG2a剩余。
以上仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Claims (10)
1.鼠单抗IgG2a F(ab')2的制备方法,其包括:
步骤1:IgG2a亚型鼠单抗经透析后,以Bromelain酶解;
步骤2:终止酶解反应后,再次透析,透析液上Protein A亲和层析柱,收集含有鼠单抗IgG2a F(ab')2的流穿液;
步骤3:将流穿液过Superdex 200 Increase10/30GL柱,用3~5倍柱体积平衡缓冲液洗脱,收集含F(ab')2的洗脱液;
其中,所述Bromelain酶解以L-Glutathione激活酶解反应;
所述平衡缓冲液0.02mol/L,pH值为7.0~7.5的PBS缓冲液。
2.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,步骤1中所述透析的透析液中包含水和50mmol/L Tris、2mmol/L EDTA。
3.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述Bromelain酶解中,Bromelain酶与IgG2a亚型鼠单抗的质量比为1:(50~75)。
4.根据权利要求3所述的制备方法,其特征在于,所述以L-Glutathione激活酶解反应中,L-Glutathione的浓度为1mmol/L;
所述Bromelain酶解的条件为37℃~38℃,100~150rpm振荡反应3~4h。
5.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述终止酶解反应采用终止液,所述终止液为TPCK,TLCK或烷化剂中的任意一种。
6.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于,步骤2中所述透析的透析液为0.02mol/L,pH值为7.0~7.5的PBS缓冲液。
7.根据权利要求1~6任一项所述的制备方法,其特征在于,还包括将所述洗脱液浓缩到浓度为5mg/ml。
8.权利要求1~7任一项所述方法制备的鼠单抗IgG2a F(ab')2。
9.含有权利要求8所述鼠单抗IgG2a F(ab')2的检测试剂。
10.根据权利要求9所述的检测试剂,其特征在于,其还包括保护剂和防腐剂。
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PB01 | Publication | ||
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RJ01 | Rejection of invention patent application after publication | ||
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