CN111793613B - 一种低温纤维素酶突变体及其应用 - Google Patents
一种低温纤维素酶突变体及其应用 Download PDFInfo
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Abstract
本发明的目的是提供一种低温纤维素酶突变体及其应用。本发明通过对纤维素酶进行蛋白质工程改造,获得了突变体蛋白。与野生型相比,本发明提供的分别含E48N、S55K、S55M、S55L、F70Y、N123L、N123F、I131P单点突变的纤维素酶突变体在40℃条件下的相对酶活普遍提高了23%‑80%。而且,本发明提供的含上述突变位点组合的纤维素酶突变体在40℃条件下的相对酶活比野生型纤维素酶也普遍提高了26%‑85%,取得了意料不到技术效果。所述突变体在低温条件下能保持更高的活力,从而保证除毛和水洗效果,更适合在低温条件下对纺织品进行处理。
Description
技术领域
本发明涉及基因工程与蛋白质改造技术领域,具体涉及一种低温纤维素酶突变体及其应用。
背景技术
纤维素酶是催化降解纤维素水解而生成葡萄糖和低聚合度纤维的一组酶的总称,包括葡聚糖内切酶、葡聚糖外切酶和纤维二糖酶3个主要组分。纤维素酶不是单一种酶,而是起协同作用的多组分酶系。纤维素酶广泛存在于自然界的生物体中,细菌、真菌、动物体内等都能产生纤维素酶。一般用于工业生产的纤维素酶来自于真菌,比较典型的是木霉属、曲霉属和青霉属。纤维素酶是在工业中应用最广泛的酶之一,可广泛应用于纺织、去污剂、纸浆和造纸、饲料和食品等工业领域,在采油、医药等方面也有巨大的潜在市场。
纤维素酶可以按照其一级序列分类成各种糖基水解酶家族,例如,糖基水解酶家族5、7、12和45含有内切葡聚糖酶。大多数纺织用酸性纤维素酶属于家族5,而大多数纺织用中性纤维素酶属于家族12或45。
目前,在纺织行业,普遍利用纤维素酶对纤维素织物进行生物整理即酶降解整理,整理后的织物蓬松、丰满、柔软、滑爽、布面清晰、悬垂性好、吸湿性强,并具有一定的“丝光”效果。中性纤维素酶对织物的剥蚀作用温和,织物强力损失小,沾色少,处理后可获得更加丰满的手感,而且纤维素酶的用量在0.5%~3%时,即可达到满意的整理效果,具有环保、节能和高效的优点。但是大部分工业用纤维素酶通常在高于50℃的条件下才具有较高的催化效率,而在纺织领域,为了节省加热或冷却费用,更为了提高织物色彩的牢固性以及减轻衣物的收缩,普遍采用30℃-40℃的低温条件进行处理。因此,现在急需开发在低温度水平下仍具有较高酶活水平的纤维素酶。
发明内容
本发明的目的是提供一种低温纤维素酶突变体及其应用。本发明通过对纤维素酶进行蛋白质工程改造,获得了突变体蛋白。与野生型相比,所述突变体在低温条件下能保持更高的活力,从而保证除毛和水洗效果,更适合在低温条件下对纺织品进行处理。
为了实现上述发明目的,本发明提供以下技术方案:
本发明涉及一种纤维素酶突变体,其包含与SEQ ID NO:1具有至少90%同一性的氨基酸序列,且与SEQ ID NO:1相比在48,55,70,123,131中至少一个位置上发生了氨基酸的取代。
在本发明的一些实施例中,所述突变体的氨基酸序列与SEQ ID NO:1相比具有至少91%,92%,93%,94%,95%,96%,97%,98%,或至少99%的同一性。
在一些更具体的实施例中,所述突变体的氨基酸序列与SEQ ID NO:1相比具有至少99.1%,99.2%,99.3%,99.4%,99.5%,99.6%,99.7%,99.8%,或至少99.9%的同一性。
在本发明的一些实施例中,所述突变体包含下组中至少一个氨基酸的取代:E48N,S55K,S55M,S55L,F70Y,N123L,N123F,I131P。
在本发明的一些实施例中,所述突变体包含有下述取代或取代的组合:
E48N;
S55K;
S55M;
S55L;
F70Y;
N123L;
N123F;
I131P;
E48N+S55K;
E48N+S55M;
E48N+S55L;
E48N+F70Y;
E48N+N123L;
E48N+N123F;
E48N+I131P;
S55M+F70Y;
S55M+N123L;
S55M+N123F;
S55M+I131P;
F70Y+N123L;
F70Y+N123F;
F70Y+I131P;
N123L+I131P;
N123F+I131P;
S55L+F70Y;
S55L+N123L;
S55L+N123F;
S55L+I131P;
S55K+F70Y;
S55K+N123L;
S55K+N123F;
S55K+I131P;
E48N+S55M+F70Y;
E48N+S55M+N123L;
E48N+S55M+N123F;
E48N+S55M+I131P;
E48N+S55M+F70Y+N123L;
E48N+S55M+F70Y+N123F;
E48N+S55M+F70Y+I131P;
S55M+F70Y+N123L+I131P;
S55M+F70Y+N123F+I131P;
E48N+S55M+F70Y+N123L+I131P;
E48N+S55M+F70Y+N123F+I131P;
E48N+S55L+F70Y;
E48N+S55L+N123L;
E48N+S55L+N123F;
E48N+S55L+I131P;
E48N+S55L+F70Y+N123L;
E48N+S55L+F70Y+N123F;
E48N+S55L+F70Y+I131P;
S55L+F70Y+N123L+I131P;
S55L+F70Y+N123F+I131P;
E48N+S55L+F70Y+N123L+I131P;
E48N+S55L+F70Y+N123F+I131P;
E48N+S55K+F70Y;
E48N+S55K+N123L;
E48N+S55K+N123F;
E48N+S55K+I131P;
E48N+S55K+F70Y+N123L;
E48N+S55K+F70Y+N123F;
E48N+S55K+F70Y+I131P;
S55K+F70Y+N123L+I131P;
S55K+F70Y+N123F+I131P;
E48N+F70Y+N123L+I131P;
E48N+F70Y+N123F+I131P;
E48N+S55K+F70Y+N123L+I131P;
E48N+S55K+F70Y+N123F+I131P;
S55K+F70Y+N123L;
S55K+F70Y+N123F;
S55K+F70Y+I131P;
S55K+N123L+I131P;
S55K+N123F+I131P;
S55M+F70Y+N123L;
S55M+F70Y+N123F;
S55M+F70Y+I131P;
S55M+N123L+I131P;
S55M+N123F+I131P;
S55L+F70Y+N123L;
S55L+F70Y+N123F;
S55L+F70Y+I131P;
S55L+N123L+I131P;
S55L+N123F+I131P;
E48N+F70Y+N123L;
E48N+F70Y+N123F;
E48N+F70Y+I131P;
E48N+N123L+I131P;
E48N+N123F+I131P;
F70Y+N123L+I131P;
F70Y+N123F+I131P。
本发明还涉及编码上述纤维素酶突变体的DNA分子。
本发明还涉及包含上述DNA分子的重组表达载体。
本发明还涉及一种宿主细胞,包含上述重组表达载体。
在本发明的一些实施例中,宿主细胞为里氏木霉(Trichoderma reesei)。
将上述重组表达载体转入里氏木霉宿主细胞中进行重组表达,获得的纤维素酶突变体在低温条件下具有更高的酶活力。
本发明还涉及上述纤维素酶突变体在纺织领域中的应用。
本发明提供的纤维素酶突变体在低温条件下具有更高的耐受性和酶活力。与野生型相比,分别含E48N、S55K、S55M、S55L、F70Y、N123L、N123F、I131P单点突变的纤维素酶突变体在40℃条件下的相对酶活普遍提高了23%-80%。其中,F70Y单点突变体和I131P单点突变体在40℃条件下的相对酶活均超过100%。而且,本发明提供的含上述突变位点组合的纤维素酶突变体在40℃条件下的相对酶活比野生型纤维素酶M4也普遍提高了26%-85%,取得了意料不到技术效果。
野生型纤维素酶的最适作用温度为65℃,在40℃和30℃条件下,分别仅剩下30%和12%的酶活。而本发明提供的纤维素酶突变体的最适作用温度为50-55℃,在40℃条件下能保持56-80%的酶活,在30℃条件下,仍能保持33-68%的酶活,显著高于野生型。因此,本发明所述纤维素酶突变体比野生型更适合应用于纺织工业领域,能大大减少纤维素酶的用量,节省工时和能源,降低生产成本。
具体实施方式
本发明用到了遗传工程和分子生物学领域使用的常规技术和方法,例如MOLECULAR CLONING:A LABORATORY MANUAL,3nd Ed.(Sambrook,2001)和CURRENTPROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY(Ausubel,2003)中所记载的方法。这些一般性参考文献提供了本领域技术人员已知的定义和方法。但是本发明不限定于所述的任何具体方法、实验方案和试剂。
下面结合具体实施方式对本发明进行详细描述。
实施例1纤维素酶突变体的筛选
为了提高野生型纤维素酶M4(氨基酸序列为SEQ ID NO:1,编码核苷酸序列为SEQID NO:2)在低温条件下的酶活力,申请人通过定向进化技术对该酶活性位点附近的氨基酸进行了大量突变的筛选。
设计PCR引物NcE-F1、NcE-R1如下:
NcE-F1:GGCGAATTCATGCGTTCCTCCCCCCTC(下划线为限制性内切酶EcoRI识别位点);
NcE-R1:ATAGCGGCCGCCTACAGGCACTGATGATACCAG(下划线为限制性内切酶NotI识别位点)。
以野生型纤维素酶M4基因(SEQ ID NO:2)为模板,以上述引物用GeneMorph II随机突变PCR试剂盒(Stratagene)进行PCR扩增,胶回收PCR产物,EcoRI、NotI进行酶切处理后与经同样酶切后的pET21a载体连接,转化至大肠杆菌BL21(DE3)中,涂布于LB+Amp平板,37℃倒置培养,待转化子出现后,用牙签逐个挑至96孔板,每个孔中加入150μL含有0.1mMIPTG的LB+Amp培养基,37℃220rpm培养6h左右,离心弃上清,菌体用缓冲液重悬,反复冻融破壁,获得含有纤维素酶的大肠杆菌细胞裂解液。
分别取出50μL裂解液至两块新的96孔板,分别在40℃和60℃条件下测定其纤维素酶酶活,并以60℃条件下的酶活计100%,计算40℃条件下的相对酶活。结果发现,与野生型纤维素酶M4相比,有些突变体在40℃条件下的相对酶活没有变化,有些突变体的相对酶活甚至降低了,另外还有些突变,虽然在40℃条件下的相对酶活得到提高,但突变后纤维素酶的酶学性质发生了显著的变化,均不符合要求。最终,申请人获得了既能显著提高纤维素酶在40℃条件下的相对酶活,又不会影响原有酶学性质的突变位点:E48N,S55K,S55M,S55L,F70Y,N123L,N123F,I131P。
在上述野生型纤维素酶M4的基础上,本发明提供了分别含E48N,S55K,S55M,S55L,F70Y,N123L,N123F,I131P单个突变位点的突变体。
本发明还提供了包含E48N,S55K,S55M,S55L,F70Y,N123L,N123F,I131P中至少2个,至少3个,至少4个,至少5个突变位点的纤维素酶突变体,例如S55K/F70Y、E48N/S55M、F70Y/N123F、S55M/I131P两点突变体,E48N/S55M/I131P、S55K/F70Y/N123L、S55M/F70Y/N123F三点突变体,E48N/S55K/F70Y/N123F、S55M/F70Y/N123F/I131P、E48N/F70Y/N123F/I131P四点突变体,以及E48N/S55M/F70Y/N123F/I131P、E48N/S55K/F70Y/N123L/I131P五点突变体。
实施例2纤维素酶突变体在里氏木霉中的表达
2.1基因合成与质粒构建
申请人依照里氏木霉的密码子偏爱性分别对野生型纤维素酶的编码核苷酸序列SEQ ID NO:2和实施例1记载的突变体的编码核苷酸序列进行优化合成,并且在合成序列的5’和3’两端分别加上KpnI和XbaI两个酶切位点。上述基因合成工作由上海生工生物工程股份有限公司完成。
合成后的质粒分别用限制性内切酶KpnI(Fermentas)和XbaI进行酶切;同时用限制性内切酶KpnI(Fermentas)和XbaI对质粒pTGII进行酶切;使用凝胶纯化试剂盒将酶切产物纯化,并用T4DNA连接酶(Fermentas)将上述两个酶切产物连接;将连接产物转化进Trans5α大肠杆菌(Transgen),用氨苄青霉素进行选择,为确保准确,对若干克隆进行测序(Invitrogen)。测序结果显示,多个克隆测序结果均一致。
使用质粒中量制备试剂盒(Axygen)从测序结果正确的大肠杆菌克隆中纯化质粒。
2.2原生质体制备
取纤维素酶基因缺陷型的宿主菌里氏木霉U4孢子悬液,接种于PDA平板上,30℃培养6天;待其产孢丰富后,切取约1cm×1cm的菌落置于含120mL YEG+U(0.5%酵母粉、1%葡萄糖、0.1%尿苷)的液体培养基中,30℃,220rpm振荡培养14~16h;用无菌纱布过滤收集菌丝体,并用无菌水清洗一次;将菌丝体置于含有20mL 10mg/mL裂解酶液(Sigma L1412)的三角瓶中,30℃,90rpm作用1-2h;用显微镜观察检测原生质体转化进展。
将预冷的20mL 1.2M山梨醇(1.2M山梨醇,50mM Tris-Cl,50mM CaCl2)加入上述三角瓶中,轻轻摇匀,用无菌Miracloth滤布过滤收集滤液,3000rpm,4℃离心10min;弃上清,加入预冷的5mL 1.2M山梨醇溶液悬浮菌体,3000rpm,4℃离心10min;弃上清,加入适量预冷的1.2M山梨醇悬浮分装(200μL/管,原生质体浓度为108个/mL)。
2.3表达载体转化与菌株验证
以下操作均在冰上进行,取10μg重组质粒加入到含有200μL原生质体溶液的无菌7mL离心管中,然后加入50μL 25%PEG(25%PEG,50mM Tris-Cl,50mM CaCl2),轻弹管底混匀,冰上放置20min;加入2mL 25%PEG,混匀后室温放置5min;加入4mL 1.2M山梨醇,轻轻混匀后倒入熔化并保持在55℃的上层培养基中(0.1%MgSO4,1%KH2PO4,0.6%(NH4)2SO4,1%葡萄糖,18.3%山梨醇,0.35%琼脂糖);轻轻混匀后铺在制备好的下层培养基平板上(2%葡萄糖,0.5%(NH4)2SO4,1.5%KH2PO4,0.06%MgSO4,0.06%CaCl2,1.5%琼脂),30℃培养5~7d至有转化子长出。挑取转化子至下层培养基平板,30℃培养2d;取适量菌丝体置于2mL离心管中,加入100mg无菌石英砂和400μL抽提缓冲液(100mM Tris-HCl,100mM EDTA,250mMNaCl,1%SDS);用珠打仪剧烈振荡2min;65℃水浴20min后,加入200μL 10M NH4AC,冰浴10min;13000rpm离心10min;取上清,加入2倍体积的无水乙醇,-20℃放置30min;13000rpm离心10min,弃上清;用70%乙醇洗涤2次;晾干,加水溶解,于-20℃保存。
以上述提取转化子基因组DNA为模板,利用引物M6-F和M6-R进行PCR扩增目的基因进行验证。
M6-F:ATGCGTTCCTCCCCCCTC;
M6-R:CTACAGGCACTGATGATACCAG。
PCR扩增条件为94℃4min;94℃40s;58℃40s,72℃1min,30个循环;72℃7min,16℃;利用凝胶回收试剂盒回收PCR扩增产物并进行测序分析,构建得到了含纤维素酶基因的里氏木霉工程菌。
2.4发酵验证
将上述里氏木霉工程菌分别接种于PDA平板,30℃培养6d,待孢子丰富后,取两块直径1cm的菌丝块接种于含有50mL发酵培养基的250mL三角瓶中(1.5%葡萄糖,1.7%乳糖,2.5%玉米浆,0.44%(NH4)2SO4,0.09%MgSO4,2%KH2PO4,0.04%CaCl2,0.018%吐温-80,0.018%微量元素),30℃培养48小时,然后25℃培养48小时,取发酵液进行酶活测定和酶学性质检测。
实施例3酶活测定和酶学性质分析
3.1纤维素酶酶活测定方法
在50℃、pH值为6.0的条件下,每分钟从浓度为5mg/ml的羟甲基纤维素钠溶液中降解释放1μmol还原糖所需要的酶量为一个酶活力单位U,还原糖以葡萄糖等量。
取三支试管各加入0.5mL CMC底物,与待测酶液一起50℃水浴预热5min。在第一、二试管中各加入0.5mL待测液,并计时,50℃水浴中反应15min。反应完后在三支试管中各加入1.5mL DNS试剂,并在第三支试管总补加0.5mL的待测酶液。取出并摇匀三支试管后,在沸水浴中反应5min。迅速冷却至室温,用水定到5.0mL。以第三支试管试液为对照在540nm波长条件下测第一、二试管试液的吸光度,吸光度在0.25-0.35之间为宜。待测酶液反应液的吸光度与水平控制酶液反应液吸光度之差的绝对值不超过0.015。
酶活X=(葡萄糖等量值/180/15/0.5)×n
其中:X——酶活力单位,IU/g(mL);
180——葡萄糖从微克换算成微摩尔;
15——待测液与底物的反应时间;
0.5——加入反应的待测酶液量;
n——稀释倍数。
3.2酶活测定
按照上述方法进行酶活检测,结果显示:本发明实施例2构建得到的重组表达野生型纤维素酶M4及其突变体的里氏木霉发酵上清液的酶活为33-110U/mL。
3.3耐低温效果分析
分别在40℃、60℃,pH6.0条件下测定上述重组表达野生型纤维素酶M4及其突变体的里氏木霉发酵上清液的酶活,并以60℃条件下的酶活计100%,分别计算野生型纤维素酶M4及其突变体各自在40℃条件下的相对酶活,结果见表1。
相对酶活=40℃条件下的酶活/60℃条件下的酶活×100%
表1纤维素酶在40℃条件下的相对酶活
纤维素酶 | 在40℃条件下的相对酶活 |
野生型M4 | 30% |
E48N单点突变体 | 88% |
S55K单点突变体 | 60% |
S55M单点突变体 | 63% |
S55L单点突变体 | 53% |
F70Y单点突变体 | 108% |
N123L单点突变体 | 73% |
N123F单点突变体 | 80% |
I131P单点突变体 | 110% |
从表1的数据可以看出,与野生型纤维素酶M4相比,本发明提供的单点突变体在40℃条件下的相对酶活普遍提高了23%-80%,从而说明本发明提供的单点突变体在40℃低温条件下的酶活水平得到显著提高。其中,F70Y单点突变体和I131P单点突变体在40℃条件下的相对酶活均超过100%,说明这两个单点突变体在40℃低温条件下的酶活水平高于在60℃条件下的酶活水平,取得了意料不到的技术效果。
此外,本发明提供的包含E48N、S55K、S55M、S55L、F70Y、N123L、N123F、I131P中任意2个或2个以上突变位点组合的纤维素酶突变体,例如S55K/F70Y、E48N/S55M、F70Y/N123F、S55M/I131P两点突变体,E48N/S55M/I131P、S55K/F70Y/N123L、S55M/F70Y/N123F三点突变体,E48N/S55K/F70Y/N123F、S55M/F70Y/N123F/I131P、E48N/F70Y/N123F/I131P四点突变体,以及E48N/S55M/F70Y/N123F/I131P、E48N/S55K/F70Y/N123L/I131P五点突变体,在40℃条件下的相对酶活比野生型纤维素酶M4普遍提高了26%-85%,取得了意料不到的技术效果。
实施例4纤维素酶突变体酶学性质分析
4.1最适作用温度
分别在20℃、30℃、35℃、40℃、45℃、50℃、55℃、60℃、65℃、70℃、80℃,pH6.0条件下测定实施例2构建得到的重组表达野生型纤维素酶M4及其突变体的里氏木霉发酵上清液的酶活,以最高酶活为100%,计算相对酶活,做温度-相对酶活曲线。
结果显示,野生型纤维素酶的最适作用温度为65℃,在40℃条件下仅能保持30%的酶活,在30℃条件下,仅剩12%的酶活;而本发明提供的纤维素酶突变体的最适作用温度为50-55℃,在40℃条件下能保持56-80%的酶活,在30℃条件下,仍能保持33-68%的酶活。从而说明,与野生型相比,本发明提供的纤维素酶突变体在低温条件下具有更高的耐受性和酶活力。
4.2最适作用pH值
分别用pH值为3.0、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0的缓冲液稀释实施例2构建得到的重组表达野生型纤维素酶M4及其突变体的里氏木霉发酵上清液,在50℃条件下测定其酶活,以最高酶活为100%,计算相对酶活,做pH-相对酶活曲线。
结果显示,本发明提供的纤维素酶突变体和野生型纤维素酶M4的最适作用pH均为6.0,且在pH 5.0-7.0范围内均能保持80%以上的酶活水平。
综上所述,与本发明提供的纤维素酶突变体在低温条件下具有更高的耐受性和酶活力,更适合其在纺织工业中的应用,前景广阔。
实施例5纤维素酶突变体在纺织领域中的应用
5.1针织面料、梭织面料的除毛染色一浴工艺
应用温度为35-55℃;
处理时间为30-150min;
pH范围为4.0-8.5;
上述工艺条件特别适用于染色同浴的情况;适用的浴比范围为1:5-1:30,使用的设备类型为溢流染色机,卷染机,水洗机等,纤维素酶突变体的用量为300-900U/L。
本发明提供的纤维素酶突变体除毛干净,对织物强力损失小,可实现染色和除毛工艺一体同浴。
5.2牛仔面料的起花及除毛应用
应用温度为35-55℃;
处理时间为10-60min;
pH范围为4.0-8.5;
上述工艺条件可应用于退浆及单独石磨洗条件下的除毛、起花工艺;适用的浴比范围为1:5-1:30,使用的设备类型为工业水洗机等,纤维素酶突变体的用量为300-900U/L。
本发明提供的纤维素酶突变体除毛干净,起花均匀,花点较小,对织物强力损失小。
上述实验结果表明,本发明的低温纤维素酶突变体可广泛应用于纺织加工领域,在35-55℃低温条件下,及pH4.0-8.5范围内应用,无需调酸可直接使用,且效果良好;除毛干净,对织物强力损失小;牛仔水洗,起花小,花点较小,批差稳定;耐盐性好,直接使用可用于中和除氧后的抛光、染色一浴工艺,能大大节省工时,减少生产成本。
而且,与野生型纤维素酶M4相比,达到相同处理效果所需纤维素酶突变体的用量减少了30-50%,从而显著降低了加工过程中的用酶成本,有利于进一步提高降低生产成本。
序列表
<110> 青岛蔚蓝生物集团有限公司
<120> 一种低温纤维素酶突变体及其应用
<160> 2
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 284
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
Ala Asp Gly Lys Ser Thr Arg Tyr Trp Asp Cys Cys Lys Pro Ser Cys
1 5 10 15
Gly Trp Ala Lys Lys Ala Pro Val Asn Gln Pro Val Phe Ser Cys Asn
20 25 30
Ala Asn Phe Gln Arg Leu Thr Asp Phe Asp Ala Lys Ser Gly Cys Glu
35 40 45
Pro Gly Gly Val Ala Tyr Ser Cys Ala Asp Gln Thr Pro Trp Ala Val
50 55 60
Asn Asp Asp Phe Ala Phe Gly Phe Ala Ala Thr Ser Ile Ala Gly Ser
65 70 75 80
Asn Glu Ala Gly Trp Cys Cys Ala Cys Tyr Glu Leu Thr Phe Thr Ser
85 90 95
Gly Pro Val Ala Gly Lys Lys Met Val Val Gln Ser Thr Ser Thr Gly
100 105 110
Gly Asp Leu Gly Ser Asn His Phe Asp Leu Asn Ile Pro Gly Gly Gly
115 120 125
Val Gly Ile Phe Asp Gly Cys Thr Pro Gln Phe Gly Gly Leu Pro Gly
130 135 140
Gln Arg Tyr Gly Gly Ile Ser Ser Arg Asn Glu Cys Asp Arg Phe Pro
145 150 155 160
Asp Ala Leu Lys Pro Gly Cys Tyr Trp Arg Phe Asp Trp Phe Lys Asn
165 170 175
Ala Asp Asn Pro Ser Phe Ser Phe Arg Gln Val Gln Cys Pro Ala Glu
180 185 190
Leu Val Ala Arg Thr Gly Cys Arg Arg Asn Asp Asp Gly Asn Phe Pro
195 200 205
Ala Val Gln Ile Pro Ser Ser Ser Thr Ser Ser Pro Val Gly Gln Pro
210 215 220
Thr Ser Thr Ser Thr Thr Ser Thr Ser Thr Thr Ser Ser Pro Pro Val
225 230 235 240
Gln Pro Thr Thr Pro Ser Gly Cys Thr Ala Glu Arg Trp Ala Gln Cys
245 250 255
Gly Gly Asn Gly Trp Ser Gly Cys Thr Thr Cys Val Ala Gly Ser Thr
260 265 270
Cys Thr Lys Ile Asn Asp Trp Tyr His Gln Cys Leu
275 280
<210> 2
<211> 855
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
gctgatggca agtccacccg ctactgggac tgctgcaagc cttcgtgcgg ctgggccaag 60
aaggctcccg tgaaccagcc tgtcttctcc tgcaacgcca acttccagcg tctcactgac 120
ttcgacgcca agtccggctg cgagccgggc ggtgtcgcct actcgtgcgc cgaccagacc 180
ccatgggctg tgaacgacga cttcgcgttc ggttttgctg ccacctctat tgccggcagc 240
aatgaggcgg gctggtgctg cgcctgctac gagctcacct tcacatccgg tcctgttgct 300
ggcaagaaga tggtcgtcca gtccaccagc actggcggtg atcttggcag caaccacttc 360
gatctcaaca tccccggcgg cggcgtcggc atcttcgacg gatgcactcc ccagttcggc 420
ggtctgcccg gccagcgcta cggcggcatc tcgtcccgca acgagtgcga tcggttcccc 480
gacgccctca agcccggctg ctactggcgc ttcgactggt tcaagaacgc cgacaacccg 540
agcttcagct tccgtcaggt ccaatgccca gccgagctcg tcgctcgcac cggatgccgc 600
cgcaacgacg acggcaactt ccctgccgtc cagatcccct ccagcagcac cagctctccg 660
gtcggccagc ctaccagtac cagcaccacc tccacctcca ccacctcgag cccgcccgtc 720
cagcctacga ctcccagcgg ctgcactgct gagaggtggg ctcagtgcgg cggcaatggc 780
tggagcggct gcaccacctg cgtcgctggc agcacctgca cgaagattaa tgactggtac 840
catcagtgcc tgtag 855
Claims (6)
1.一种纤维素酶突变体,其特征在于,所述的纤维素酶突变体是氨基酸序列为SEQ IDNO:1的纤维素酶的第55位上发生了氨基酸取代获得的,其中所述的取代为S55M。
2.编码权利要求1所述的纤维素酶突变体的DNA分子。
3.一种重组表达载体,其特征在于,所述的重组表达载体中包含有权利要求2所述的DNA分子。
4.一种宿主细胞,其特征在于,所述的宿主细胞转入有权利要求3所述的重组表达载体。
5.如权利要求4所述的宿主细胞,其特征在于,所述的宿主细胞为里氏木霉(Trichoderma reesei)。
6.权利要求1所述的纤维素酶突变体在纺织领域中的应用。
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