CN111707763A - 一种食品快速检测氯霉素的方法 - Google Patents
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Abstract
本申请涉及一种食品快速检测氯霉素的方法,本申请通过快速对待测样品进行前处理,缩短了检测所需时间,并且①本申请方法操作简单规范,可对食品氯霉素进行检测,适合大规模推广;②本申请方法去除了基体干扰物,提高了灵敏度,并且优化了前处理过程,用时较短,稳定性好,加快了整体检测速度③本申请用时短、只需小体积有机溶剂提取,整体操作简单、快速、易操作,也减少了对环境的污染和人员的身体危害。
Description
技术领域
本申请涉及食品检测技术领域,尤其是一种食品快速检测氯霉素的方法。
背景技术
氯霉素又名氯胺苯醇,是一种广谱抗菌素,可有效抑制革兰氏阴性细菌、革兰氏阳性细菌等多种病原菌。由于氯霉素具有面世时间早、药性稳定、价格便宜等优点,曾被广泛应用于畜禽疾病的控制与治疗。但是,食品中残留的氯霉素会对人体健康造成威胁,如可逆性骨髓抑制、神经系统受损等。
毒理学研究表明,CAP对人体具有较大的毒副作用,主要表现为:抑制骨髓造血功能,引起再生障碍性贫血、细胞减少性贫血、血小板减少和粒状白细胞减少。另外,该药物理化性质极为稳定,可通过食物链在人体内蓄积,从而对人体健康造成严重损害。CAP对人类健康的危害已引起国际组织和多个国家或地区的高度重视,中国、美国、欧盟、韩国、日本等都已对该药物在食品中的残留做出了禁用和不得检出的规定。我国现行有效标准《动物源性食品中兽药最高残留限量》(农业部第235号公告)中也明确规定,氯霉素在动物源性食品中不得检出。
但是,目前对氯霉素的检测方法,总体上存在着前处理过程复杂耗时长、检测结果滞后的特点,因此,开发一种简便、高效、安全的氯霉素类兽药残留检测方法已迫在眉睫。
发明内容
为了解决现有技术中存在的上述技术问题,本申请提供一种食品快速检测氯霉素的方法,具体如下:
一种食品快速检测氯霉素的方法,包括以下步骤:
(1)样品制备:取待测食品粉碎,混合均匀后收集待用;
(2)样品提取:称取3g样品至50mL离心管内,加入1μg/mL氘代氯霉素标准溶液20μL,加入80%乙腈水溶液15mL,混匀,超声10min,6 000r·min-1离心10min;
(4)样品测定:将干燥后的固体残渣用纯净水定容至1mL,经0.22μm的微孔滤膜过滤,用液相色谱串联质谱仪测定。
优选的,所述步骤(2)中的混匀,是涡旋混合1min。
优选的,所述步骤(2)中的离心,是在10℃以下的环境中进行。
优选的,所述步骤(2),在离心后将上清液和沉淀分离,将沉淀加入至50mL离心管内,加入氘代氯霉素标准溶液(1μg/mL)20μL,加入80%乙腈水溶液15mL,混匀,超声10min,6000r·min-1离心10min,取上清液,并与第一次分离的上清液合并。
优选的,所述步骤(3),得到固体残渣之后,用5mL水溶解指形瓶中的残渣,以小型混合机混匀,得溶液;将溶液A过HLB柱子,待溶液自然流出后,再用5mL水分两次洗柱,弃去流出液,减压抽干盛有HLB柱的容器,以5mL乙腈洗脱该柱,速度为1ml/min,将洗脱液收集在10mL的离心管中,将洗脱液放置于50℃水浴中,同时以氮气吹干。优选的,所述HLB柱子,是用5mL甲醇活化后的HLB柱。
优选的,所述步骤(4)的用液相色谱串联质谱仪测定,其检测条件如下:
(1)液相条件
色谱柱:C18柱(150mm×2.1mm,5μm);流动相:水:乙腈=66:34(V:V)等度洗脱;柱温:40℃;进样量:25μL;流速:0.5mL/min;
(2)质谱条件
离子源:电喷雾离子源;扫描方式:负离子扫描;检测方式:多重反应监测;毛细管电压,3.50kV;离子源温度:200℃;去溶剂气流量:500L/h;反吹气:50L/h。
优选的,所述氯霉素质谱分析的条件参数如下:
表1氯霉素测定的质谱参数
与现有技术相比,本发明创造的技术效果体现在:
(1)本申请方法操作简单规范,可对食品氯霉素进行检测,适合大规模推广。
(2)本申请方法去除了基体干扰物,提高了灵敏度,并且优化了前处理过程,用时较短,稳定性好,加快了整体检测速度。
(3)本申请用时短、只需小体积有机溶剂提取,整体操作简单、快速、易操作,也减少了对环境的污染和人员的身体危害。
具体实施方式
下面结合具体的实施方式来对本申请的技术方案做进一步的限定,但要求保护的范围不仅局限于所作的描述。
实施例1
(1)样品制备:取罗非鱼肌肉粉碎,混合均匀后收集待用;
(2)样品提取:称取3g样品至50mL离心管内,加入1μg/mL氘代氯霉素标准溶液20μL,加入80%乙腈水溶液15mL,涡旋混合1min,超声10min,在10℃以下的环境中进行6000r·min-1离心10min,在离心后将上清液和沉淀分离,将沉淀加入至50mL离心管内,加入氘代氯霉素标准溶液(1μg/mL)20μL,加入80%乙腈水溶液15mL,混匀,超声10min,6 000r·min-1离心10min,取上清液,并与第一次分离的上清液合并;
(3)样品处理:取5mL合并的上清液,加入到PRiME HLB:6cc,200mg小柱上,使其自然下滴通过,取4mL收集到的滤液置于氮吹管中,于40℃下用氮气吹干,得到固体残渣,得到固体残渣之后,用5mL水溶解指形瓶中的残渣,以小型混合机混匀,得溶液;将溶液A过HLB柱子,待溶液自然流出后,再用5mL水分两次洗柱,弃去流出液,减压抽干盛有HLB柱的容器,以5mL乙腈洗脱该柱,速度为1ml/min,将洗脱液收集在10mL的离心管中,将洗脱液放置于50℃水浴中,同时以氮气吹干。优选的,所述HLB柱子,是用5mL甲醇活化后的HLB柱;
(4)样品测定:将干燥后的固体残渣用纯净水定容至1mL,经0.22μm的微孔滤膜过滤,用液相色谱串联质谱仪测定。
所述步骤(4)的用液相色谱串联质谱仪测定,其检测条件如下:
(1)液相条件
色谱柱:C18柱(150mm×2.1mm,5μm);流动相:水:乙腈=66:34(V:V)等度洗脱;柱温:40℃;进样量:25μL;流速:0.5mL/min;
(2)质谱条件
离子源:电喷雾离子源;扫描方式:负离子扫描;检测方式:多重反应监测;毛细管电压,3.50kV;离子源温度:200℃;去溶剂气流量:500L/h;反吹气:50L/h。
所述氯霉素质谱分析的条件参数如下:
表1氯霉素测定的质谱参数
实施例2
(1)样品制备:取罗非鱼肌肉粉碎,混合均匀后收集待用;
(2)样品提取:称取3g样品至50mL离心管内,加入1μg/mL氘代氯霉素标准溶液20μL,加入80%乙腈水溶液15mL,涡旋混合1min,超声10min,在10℃以下的环境中进行6000r·min-1离心10min;
(3)样品处理:取5mL合并的上清液,加入到PRiME HLB:6cc,200mg小柱上,使其自然下滴通过,取4mL收集到的滤液置于氮吹管中,于40℃下用氮气吹干,得到固体残渣,得到固体残渣之后,用5mL水溶解指形瓶中的残渣,以小型混合机混匀,得溶液;将溶液A过HLB柱子,待溶液自然流出后,再用5mL水分两次洗柱,弃去流出液,减压抽干盛有HLB柱的容器,以5mL乙腈洗脱该柱,速度为1ml/min,将洗脱液收集在10mL的离心管中,将洗脱液放置于50℃水浴中,同时以氮气吹干。优选的,所述HLB柱子,是用5mL甲醇活化后的HLB柱;
(4)样品测定:将干燥后的固体残渣用纯净水定容至1mL,经0.22μm的微孔滤膜过滤,用液相色谱串联质谱仪测定。
所述步骤(4)的用液相色谱串联质谱仪测定,其检测条件如下:
(1)液相条件
色谱柱:C18柱(150mm×2.1mm,5μm);流动相:水:乙腈=66:34(V:V)等度洗脱;柱温:40℃;进样量:25μL;流速:0.5mL/min;
(2)质谱条件
离子源:电喷雾离子源;扫描方式:负离子扫描;检测方式:多重反应监测;毛细管电压,3.50kV;离子源温度:200℃;去溶剂气流量:500L/h;反吹气:50L/h。
所述氯霉素质谱分析的条件参数如下:
表1氯霉素测定的质谱参数
实施例3
(1)样品制备:取罗非鱼肌肉粉碎,混合均匀后收集待用;
(2)样品提取:称取3g样品至50mL离心管内,加入1μg/mL氘代氯霉素标准溶液20μL,加入80%乙腈水溶液15mL,涡旋混合1min,超声10min,在10℃以下的环境中进行6000r·min-1离心10min,在离心后将上清液和沉淀分离,将沉淀加入至50mL离心管内,加入氘代氯霉素标准溶液(1μg/mL)20μL,加入80%乙腈水溶液15mL,混匀,超声10min,6 000r·min-1离心10min,取上清液,并与第一次分离的上清液合并;
(3)样品处理:取5mL合并的上清液,加入到PRiME HLB:6cc,200mg小柱上,使其自然下滴通过,取4mL收集到的滤液置于氮吹管中,于40℃下用氮气吹干,得到固体残渣,得到固体残渣之后,用5mL水溶解指形瓶中的残渣,以小型混合机混匀,得溶液;
(4)样品测定:将干燥后的固体残渣用纯净水定容至1mL,经0.22μm的微孔滤膜过滤,用液相色谱串联质谱仪测定。
所述步骤(4)的用液相色谱串联质谱仪测定,其检测条件如下:
(1)液相条件
色谱柱:C18柱(150mm×2.1mm,5μm);流动相:水:乙腈=66:34(V:V)等度洗脱;柱温:40℃;进样量:25μL;流速:0.5mL/min;
(2)质谱条件
离子源:电喷雾离子源;扫描方式:负离子扫描;检测方式:多重反应监测;毛细管电压,3.50kV;离子源温度:200℃;去溶剂气流量:500L/h;反吹气:50L/h。
所述氯霉素质谱分析的条件参数如下:
表1氯霉素测定的质谱参数
实施例4
(1)样品制备:取罗非鱼肌肉粉碎,混合均匀后收集待用;
(2)样品提取:称取3g样品至50mL离心管内,加入1μg/mL氘代氯霉素标准溶液20μL,加入80%乙腈水溶液15mL,涡旋混合1min,超声10min,在10℃以下的环境中进行6000r·min-1离心10min;
(3)样品处理:取5mL合并的上清液,加入到PRiME HLB:6cc,200mg小柱上,使其自然下滴通过,取4mL收集到的滤液置于氮吹管中,于40℃下用氮气吹干,得到固体残渣,得到固体残渣之后,用5mL水溶解指形瓶中的残渣,以小型混合机混匀,得溶液;
(4)样品测定:将干燥后的固体残渣用纯净水定容至1mL,经0.22μm的微孔滤膜过滤,用液相色谱串联质谱仪测定。
所述步骤(4)的用液相色谱串联质谱仪测定,其检测条件如下:
(1)液相条件
色谱柱:C18柱(150mm×2.1mm,5μm);流动相:水:乙腈=66:34(V:V)等度洗脱;柱温:40℃;进样量:25μL;流速:0.5mL/min;
(2)质谱条件
离子源:电喷雾离子源;扫描方式:负离子扫描;检测方式:多重反应监测;毛细管电压,3.50kV;离子源温度:200℃;去溶剂气流量:500L/h;反吹气:50L/h。
所述氯霉素质谱分析的条件参数如下:
表1氯霉素测定的质谱参数
记录实施例1-4的相对标准偏差、定量限、用时,具体如下:
相对标准偏差 | 定量限 | 用时 | |
实施例1 | 2.5% | 0.05μg/kg | 2.5h |
实施例2 | 3.2% | 0.05μg/kg | 2h |
实施例3 | 3.0% | 0.05μg/kg | 2h |
实施例4 | 4.0% | 0.05μg/kg | 1.5h |
由上可知,本申请方法用时较短,稳定性好,加快了氯霉素检测速度。
Claims (8)
2.如权利要求1所述的食品快速检测氯霉素的方法,其特征在于,所述步骤(2)中的混匀,是涡旋混合1min。
3.如权利要求1所述的食品快速检测氯霉素的方法,其特征在于,所述步骤(2)中的离心,是在10℃以下的环境中进行。
4.如权利要求1所述的食品快速检测氯霉素的方法,其特征在于,所述步骤(2),在离心后将上清液和沉淀分离,将沉淀加入至50mL离心管内,加入氘代氯霉素标准溶液(1μg/mL)20μL,加入80%乙腈水溶液15mL,混匀,超声10min,6000r·min-1离心10min,取上清液,并与第一次分离的上清液合并。
5.如权利要求1所述的食品快速检测氯霉素的方法,其特征在于,所述步骤(3),得到固体残渣之后,用5mL水溶解指形瓶中的残渣,以小型混合机混匀,得溶液;将溶液A过HLB柱子,待溶液自然流出后,再用5mL水分两次洗柱,弃去流出液,减压抽干盛有HLB柱的容器,以5mL乙腈洗脱该柱,速度为1ml/min,将洗脱液收集在10mL的离心管中,将洗脱液放置于50℃水浴中,同时以氮气吹干。
6.如权利要求5所述的食品快速检测氯霉素的方法,其特征在于,所述HLB柱子,是用5mL甲醇活化后的HLB柱。
7.如权利要求1所述的食品快速检测氯霉素的方法,其特征在于,所述步骤(4)的用液相色谱串联质谱仪测定,其检测条件如下:
(1)液相条件
色谱柱:C18柱(150mm×2.1mm,5μm);流动相:水:乙腈=66:34(V:V)等度洗脱;柱温:40℃;进样量:25μL;流速:0.5mL/min;
(2)质谱条件
离子源:电喷雾离子源;扫描方式:负离子扫描;检测方式:多重反应监测;毛细管电压,3.50kV;离子源温度:200℃;去溶剂气流量:500L/h;反吹气:50L/h。
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