CN111333709B - 旋毛虫肌幼虫期丝氨酸蛋白酶抑制剂的b细胞表位多肽、杂交瘤细胞株、单克隆抗体及应用 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及免疫学领域，特别涉及旋毛虫肌幼虫期高表达的丝氨酸蛋白酶抑制剂(Ts‑WM5)的B细胞表位多肽、杂交瘤细胞株、单克隆抗体及其应用。本发明获得了可以分泌抗Ts‑WM5蛋白特异性抗体的杂交瘤细胞株，并鉴定出其所分泌的单克隆抗体所识别的Ts‑WM5蛋白特异性B细胞表位多肽，对旋毛虫病的诊断具有重要意义，对建立竞争ELISA和循环抗原的检测的夹心ELSIA用于旋毛虫多宿主的检测及亚单位疫苗的研制具有重要的意义。

Description

旋毛虫肌幼虫期丝氨酸蛋白酶抑制剂的B细胞表位多肽、杂交 瘤细胞株、单克隆抗体及应用
技术领域
本发明涉及免疫学领域，特别涉及旋毛虫肌幼虫期高表达的丝氨酸蛋白酶抑制剂的B细胞表位多肽、杂交瘤细胞株、单克隆抗体及应用。
背景技术
旋毛虫病是一种危害非常严重的食源性人兽共患寄生虫病，人主要通过生食或半生食含有旋毛虫的肉类引发，猪肉是人类感染的主要来源。该寄生虫不但给畜牧业生产造成巨大的经济损失，而且对人类健康也构成了巨大威胁。鉴于旋毛虫对公共卫生安全造成的极大威胁与危害，世界动物卫生组织(OIE)将旋毛虫病列为屠宰动物强制性检验及首检必检病种。
目前国内外对旋毛虫病的防控策略主要通过对畜禽生产的下游即对屠宰动物进行检验，而检验方法仍为较为落后的镜检及集样消化法，目前我国也在延用这两种方法。然而以上两种方法均存在一定的弊端，镜检法费时费力而且敏感性差，其敏感性为肉中虫体密度达到每克3条虫体时方可检出。集样消化法虽可大大提高检出率，将虫体检出率提高至每克肉1条虫体，但该方法仍十分繁琐，在发现阳性样品时仍需对阳性组进行逐头检测。从敏感性的角度来看，由镜检法和集样消化法所造成漏检的肉类均存在安全隐患并可引起人类的感染(摄入75条虫体即可引起人的感染)。由于我国集约化养殖率低、患畜率高以及屠宰量大，从而导致检验压力大且漏检率高。
国内外学者对旋毛虫免疫学检测的方法进行了大量的研究，如间接荧光免疫试验，免疫酶染色试验，免疫印迹试验，免疫吸附试验(ELISA)等，酶联免疫吸附试验(ELISA)是进行旋毛虫感染检测的最常用的免疫学方法，其具有高的敏感性，检测底限可低至每100g肌肉组织中1条幼虫。目前，旋毛虫肌幼虫排泄分泌物ES抗原是OIE及国际旋毛虫委员会规定的唯一的用于血清学抗体检测的标准抗原。然而ES抗原成分复杂，制备繁琐、生产周期长、批次质量不均和交叉反应等问题，因而阻碍了其实际应用。因此，筛选特异性及敏感性的旋毛虫抗原，利用基因工程技术制备重组抗原，以减小抗原制备难度，建立特异性猪旋毛虫病血清学检测方法已成为国内外众多学者的研究焦点。现代分子生物学技术的发展和应用，筛选并大规模制备质量均匀、性能良好的旋毛虫病诊断抗原成为可能。
发明内容
有鉴于此，本发明提供一种WM5蛋白的B细胞表位多肽、杂交瘤细胞株、单克隆抗体及其应用。本发明获得了可以分泌抗Ts-WM5蛋白特异性抗体的杂交瘤细胞株，并鉴定出其所分泌的单克隆抗体所识别的Ts-WM5蛋白特异性B细胞表位多肽，对旋毛虫病的诊断具有重要意义，对建立竞争ELISA和循环抗原的检测的夹心ELISA用于旋毛虫多宿主的检测及亚单位疫苗的研制具有重要的意义。
为了实现上述发明目的，本发明提供以下技术方案：
本发明提供了WM5蛋白的B细胞表位多肽，其具有：
(Ⅰ)、如SEQ ID No.1所示的氨基酸序列；或
(Ⅱ)、如(Ⅰ)所述的氨基酸序列经取代、缺失或添加一个或两个氨基酸残基获得的氨基酸序列，且与(Ⅰ)所示的氨基酸序列功能相同或相似的氨基酸序列；或
(III)、与(Ⅰ)或(Ⅱ)所述序列具有至少90％序列一致性，且与(Ⅰ)所示的氨基酸序列功能相同或相似的氨基酸序列。
本申请人对旋毛虫肌幼虫cDNA表达文库中进行了免疫学筛选，成功获得了一个高丰度强反应原性的抗原蛋白基因命名为WM5，编码丝氨酸蛋白酶抑制剂。WM5基因注册号：DQ864973.2，蛋白注册号：ABI32311.1。进一步免疫印记表明原核表达的重组Ts-WM5抗原可以被猪感染旋毛虫感染20d、30d、45d、60d、90d和120d血清所识别，表明Ts-WM5是旋毛虫血清学检测的理想候选抗原，可以用来改进血清学检测方法。所以，筛选出以分泌抗Ts-WM5蛋白特异性抗体的杂交瘤细胞株，并鉴定出其所分泌的单克隆抗体所识别的Ts-WM5蛋白特异性B细胞表位，对旋毛虫病的诊断及预防具有积极意义，并为旋毛虫病亚单位疫苗的研制奠定基础。
在上述研究的基础上，本发明还提供了编码如权利要求1所述的B细胞表位多肽的核苷酸，具有
(Ⅰ)、如SEQ ID No.2所示的核苷酸序列；或
(Ⅱ)、如SEQ ID No.2所示的核苷酸序列的互补核苷酸序列；或
(Ⅲ)、与(Ⅰ)或(Ⅱ)的核苷酸序列编码相同蛋白质，但因遗传密码的简并性而与(Ⅰ)或(Ⅱ)的核苷酸序列不同的核苷酸序列；或
(Ⅳ)、与(Ⅰ)、(Ⅱ)或(Ⅲ)所示的核苷酸序列经取代、缺失或添加一个或两个核苷酸序列获得的核苷酸序列，且与(Ⅰ)、(Ⅱ)或(Ⅲ)所示的核苷酸序列功能相同或相似的核苷酸序列；或
(V)、与(Ⅰ)、(Ⅱ)、(Ⅲ)或(Ⅳ)所述核苷酸序列具有至少90％序列一致性的核苷酸序列。
此外，本发明还提供了一种包含所述的核苷酸的重组表达载体。
本发明还提供了一种包含所述的核苷酸的重组菌株或细胞。
在上述研究的基础上，本发明还提供了所述的B细胞表位多肽在制备旋毛虫感染的检测试剂、检测试剂盒中的应用。
此外，本发明还提供了杂交瘤细胞株，其保藏编号为CGMCC No.18318。
本发明还提供了单克隆抗体，选自：
(I)、通过保藏编号为CGMCC No.18318的杂交瘤细胞株产生的单克隆抗体；
(II)、与能够结合由保藏编号为CGMCC No.18318的杂交瘤细胞株产生的单克隆抗体的表位结合的单克隆抗体；
(III)、在竞争结合测定中与由保藏编号为CGMCC No.18318的杂交瘤细胞株产生的单克隆抗体竞争的单克隆抗体；
(IV)、具有(I)～(III)任一项所述的单克隆抗体的抗原结合片段的单克隆抗体，其中所述片段保持特异性结合WM5蛋白或其变体的能力。
本发明还提供了所述的杂交瘤细胞株或所述的单克隆抗体在制备旋毛虫感染的检测试剂、检测试剂盒或预防旋毛虫感染的疫苗中的应用。
本发明还提供了用于旋毛虫感染的检测试剂或检测试剂盒，包括所述的杂交瘤细胞株或所述的单克隆抗体以及检测学上可接受的辅料。
本发明还提供了用于防旋毛虫感染的疫苗，包括所述的B细胞表位多肽。
旋毛虫肌幼虫排泄分泌物ES抗原是OIE及国际旋毛虫委员会规定的唯一的用于血清学抗体检测的标准抗原。然而ES抗原成分复杂，制备繁琐、生产周期长、批次质量不均，而且存在交叉反应等问题，因而阻碍了其实际应用。单克隆抗体具有与抗原结合的特异性强、纯度好、重复性强、便于质量控制、亲和力好且可大量生产优势，因而被广泛的应用于免疫学检测方法的建立。
本发明获得了可以分泌抗Ts-WM5蛋白特异性抗体的杂交瘤细胞株，并鉴定出其所分泌的单克隆抗体所识别的Ts-WM5蛋白特异性B细胞表位多肽，对旋毛虫病的诊断具有重要意义，对建立竞争ELISA和循环抗原的检测的夹心ELISA用于旋毛虫多宿主的检测及亚单位疫苗的研制具有重要的意义。
生物保藏说明
生物材料：WM5-M2A12；分类命名：杂交瘤细胞株；于2019年08月15日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC)；保藏中心地址为：北京市朝阳区北辰西路1号院3号；保藏编号为CGMCC No.18318。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案，下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍。
图1示WM5基因的克隆结果；其中，M：DL2000 DNA maker；1：WM5全长；
图2示WM5表达与可溶性分析；其中，图2A示SDS-PAGE分析WM5重组菌诱导表达产物；M:蛋白分子量标准；1:诱导前菌体；2:诱导后0h菌体；3:诱导后3h菌体；4:诱导后6h菌体；图2B示WM5可溶性分析；M:Protein Marker 100kDa；5:WM5超声后包涵体；6:WM5超声后上清；
图3示纯化后的WM5的SDS-PAGE鉴定结果；其中，M:蛋白分子量标准(100kDa)；1:纯化后WM5；
图4示单克隆抗体SDS-PAGE鉴定；其中，M：180KD maker；1：M2A12；
图5示单克隆抗体与猪感染旋毛虫阳性血清竞争结果；
图6示抗WM5单克隆抗体M2A12的Western blot分析；其中，1：虫体蛋白；2：ES；3：WM5重组蛋白；
图7示Ts-WM5蛋白分段表达的SDS-PAGE分析；其中，M:180KD maker1.BL21-pET28a-WM5；2.BL21-pET28a-WM5-1；3.BL21-pET28a-WM5-2；4.BL21-pET28a-WM5-3；
图8示单克隆抗体M2A12与WM5短肽的Western blot分析；其中，M:Maker；1.BL21-pET28a-WM5-1；2.BL21-pET28a-WM5-2；3.BL21-pET28a-WM5-3；
图9示合成短肽W1-W8的ELISA结果。
具体实施方式
本发明公开了一种旋毛虫丝氨酸蛋白酶抑制剂的B细胞表位多肽、杂交瘤细胞株、单克隆抗体及其应用，本领域技术人员可以借鉴本文内容，适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是，所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的，它们都被视为包括在本发明。本发明的方法及应用已经通过较佳实施例进行了描述，相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法和应用进行改动或适当变更与组合，来实现和应用本发明技术。
本发明目的之一是提供一株分泌抗Ts-WM5蛋白单克隆抗体的杂交瘤细胞株；
本发明目的之二是提供一种由上述杂交瘤细胞株所分泌的单克隆抗体，该单克隆抗体可与Ts-WM5蛋白发生特异性反应，并可以与猪感染旋毛虫阳性血清竞争识别重组的WM5抗原。
本发明之三是鉴定一个Ts-WM5蛋白特异性B细胞表位多肽。
本发明采用TRIZOL提取旋毛虫(T.spiralis)总RNA，进而利用反转录技术克隆WM5基因cDNA，将该cDNA插入原核表达载体pET28a，利用pET28a原核表达载体对Ts-WM5基因进行原核表达，将所表达出的包涵体形式的Ts-WM5蛋白切胶纯化后作为免疫原，免疫BALB/c小鼠，取其脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞进行融合。此外，本发明还采用AKTA蛋白纯化仪对Ts-WM5蛋白进行亲和纯化，作为检测用抗原，建立间接ELISA检测方法对阳性杂交瘤细胞进行筛选。同时按照标准OIE Terrestrial Manual2017 Chapter2.1.20-Trichinellosis中推荐的ES间接ELISA方法对阳性杂交瘤细胞进行再次筛选，最终获得了一株稳定分泌抗Ts-WM5蛋白单克隆抗体的杂交瘤细胞株。
本发明还提供了一种由上述杂交瘤细胞株所分泌的单克隆抗体，其命名为：Ts-WM5-M2A12，Ts-WM5竞争ELISA检测结果表明，单克隆抗体Ts-WM5-M2A12可以与旋毛虫感染阳性猪血清竞争结合Ts-WM5蛋白。Western blot试验结果表明，本发明所制备的单克隆抗体能与旋毛虫(T.spiralis)肌幼虫虫体抗原和ES抗原发生特异性反应。
本发明利用肽扫描技术对Ts-WM5-M2A12所识别的Ts-WM5蛋白B细胞表位进行了鉴定，确定Ts-WM5-M2A12识别表位277EALKKLGIEDLF288(如SEQ ID No.1所示)。其核苷酸序列为：
GAAGCATTGAAGAAACTTGGTATAGAAGATCTTTTC(如SEQ ID No.2所示)。
因此，本发明提出了所述的杂交瘤细胞株在研制旋毛虫(T.spiralis)感染检测中的应用。及所述Ts-WM5蛋白B细胞表位多肽在研制旋毛虫(T.spiralis)感染检测中的应用。
综上所述，本发明制备并鉴定出了一种针对Ts-WM5蛋白的单克隆抗体，本发明的单克隆抗体以及该单克隆抗体所识别的Ts-WM5蛋白B细胞表位多肽可用于制备成诊断旋毛虫(T.spiralis)感染的试剂，为建立旋毛虫(T.spiralis)血清学诊断方法奠定了基础。
本发明提供的WM5蛋白的B细胞表位多肽、杂交瘤细胞株、单克隆抗体及其应用中所用原料及试剂均可由市场购得。
主要实验材料和来源
1.蛋白、细胞、虫种
原核表达并切胶纯化的Ts-WM5蛋白、原核表达并一步柱上复性纯化的Ts-WM5蛋白、SP2/0细胞和旋毛虫T1(T.spiralis)虫种均由本实验室保存。
2.主要试剂和药品
Ni纯化柱HisTrapHP购自美国GE公司；胎牛血清、1640培养基购自BiologicalIndustries公司；HAT培养基(50×)、HT培养基(50×)和抗体亚类鉴定试剂盒购自sigma公司；Soluble TMB substrate Solution购自TIANGEN公司；辣根过氧化物酶(HRP)标记山羊抗鼠IgG抗体购自北京博奥森公司；预染蛋白Marker购自Fermentas公司；限制性内切酶EcoRI和XhoI、反转录酶、Ex Taq DNA聚合酶、T4DNA连接酶购自宝生物(大连)有限公司。ECL发光底物购自北京索莱宝公司。
3.实验动物
6周龄BALB/c小鼠由长春亿斯实验动物技术有限公司提供。
下面结合实施例，进一步阐述本发明：
实施例1 Ts-WM5蛋白的原核表达及纯化
1.引物设计
根据Genbank中已登录的WM5基因序列(登录号：DQ864973.2)，设计PCR扩增引物，序列如下：
WM5-HindIII-atg:5’-ATACAAGCTTATGGAAACAGAAATTGCAAA-3’(如SEQ ID No.3所示)
WM5-XhoI-tta:5’-ATTAACTCGAGAATTACCAGAAAAACGTCCAA-3’(如SEQ ID No.4所示)
下划线部分为引入的HindIII、XhoI酶切位点，预计扩增产物长度为1238bp。
2.旋毛虫T1(T.spiralis)RNA的提取及反转录
取本实验旋毛虫T1(T.spiralis)保种小鼠1只，断颈处死后去皮、尾、内脏及爪，将胴体洗净后绞碎，置于300ml含有1％HCl和1％胃蛋白酶的消化液中于37℃温箱内搅拌消化2h。用80目滤网过滤消化液及残渣，滤液于分液漏斗中沉淀2h后收集约500ml。沉淀30min后用20ml注射器轻轻吸去上层液体，加入生理盐水再次沉淀，弃上清，反复洗涤至无杂质。将虫体移至EP管中，1000rpm离心3min吸去多余液体。收获的虫体加入1ml Trizol混匀，室温静置5min，加入0.2ml氯仿，用力振摇15s，室温孵育2-3min，12000g4℃离心15min，小心取上层液体，加入等体积预冷的异丙醇，混匀后室温孵育10min，12000g 4℃离心10min，弃上清，沉淀加入1ml 75％乙醇(DEPC水配制)轻振15s，7500g 4℃离心5min，小心弃上清，沉淀室温风干3-5min，加入20-30ulDEPC水溶解，-20℃保存。
用提取的总RNA进行反转录合成cDNA，体系如下：
NAase-free水至25μl，
混匀后于42℃反应1h。-20℃保存。
3.pET28a-Ts-WM5表达载体的构建
以反转录获得的cDNA为模板扩增Ts-WM5基因。PCR反应体系(50ul)如下：
反应条件为95℃预变性5min，95℃45s，53℃45s，72℃45s，循环30个，72℃终延伸10min。扩增产物经过1％琼脂糖凝胶电泳检测显示，在1238bp左右出现一条亮带(图1)，与理论上目的条带的大小一致。测序结果显示成功得到了Ts-WM5蛋白的基因编码片段。对PCR产物胶回收。
Ts-WM5基因的克隆的结果表明(如图1所示)，克隆得到Ts-WM5基因特异性引物扩增片段，去掉信号肽获得基因序列1238bp。
将胶回收得到的Ts-WM5基因以及原核表达载体pET28a分别进行双酶切，酶切体系如下：
同时，对原核表达载体pET28a进行双酶切，酶切体系如下：
将酶切反应体系置37℃水浴静置2h，之后进行胶回收。将双酶切后的WM5基因和pET28a载体进行连接，体系为：10×T4DNA Ligase Buffer 1ul，酶切后WM5基因4ul，酶切后pET28a 1.5ul，T4DNA连接酶1ul，ddH2O2.5ul。16℃连接过夜。将连接产物全部转化EcoliDH5a感受态细胞，挑取单菌落进行双酶切鉴定。阳性重组质粒转化BL21(DE3)感受态细胞。
4.BL21(DE3)-pET28a-Ts-WM5诱导表达与切胶纯化
取1ml重组菌菌液加入到100ml的LB培养基中37℃震荡培养至OD600nm约为0.6.时，加IPTG至终浓度为1mmol/L，37℃诱导6-8h。将表达产物进行SDS-PAGE电泳，如图2所示，通过切胶方法进行纯化。将切下的胶块加入适量的PBS将其研磨成碎颗粒，可用于免疫小鼠。
5.BL21(DE3)-pET28a-Ts-WM5亲和纯化。
诱导后菌液离心后用30mL重悬缓冲液(20mM Tris-HCL PH8.0)重悬。冰浴10min，冰上超声，超声3s间歇3s共处理30min。8000rpm离心10min收沉淀，沉淀用30ml预冷的包涵体洗涤液(2M尿素、20mM Tris-HCL、0.3M NaCL PH8.0)重悬，冰浴10min，冰上超声，超声3s间歇3s共处理10min。此步骤重复3次。8000rpm离心10min收沉淀，沉淀用30ml预冷的PBS洗涤液(含4M尿素的0.01M PBS)重悬，冰浴10min，冰上超声，超声3s间歇3s共处理5min。此步骤重复2次。8000rpm离心10min收沉淀，沉淀用5ml Binding buffer(8M尿素、20mMTris-HCL、0.3M NaCL、5mM咪唑PH8.0)重悬，4℃溶解过夜。8000rpm离心30min收上清，上清过滤后准备上样。将带有His标签的Ts-WM5采用AKTA purifier100(美国GE Healthcare公司)纯化系统纯化。分别用含有30mmol/L、50mmol/L、100mmol/L、300mmol/L咪唑的Elution Buffer洗脱，纯化后的蛋白进行SDS-PAGE鉴定。SDS-PAGE可看到，纯化后的蛋白上清液只有一条清晰明显的条带，且大小与理论值相符图3，说明本研究获得了较纯的rTs-WM5重组蛋白。使用BCA蛋白定量试剂盒，对上述纯化的蛋白进行浓度测定，得出rTs-WM5蛋白的浓度为0.65mg/mL。
实施例2抗Ts-WM5蛋白单克隆抗体的制备
1.小鼠免疫
以切胶纯化的重组Ts-WM5蛋白免疫5只6周龄雌性BALB/c小鼠，共免疫5次，每次免疫间隔两周，免疫剂量为50μg/只，免疫途径为腹腔免疫。
分别在4免和5免后1周对小鼠进行断尾采血，分离血清(4℃，3000rpm离心30min)，用Ts-WM5间接ELISA方法检测抗体水平。Ts-WM5间接ELISA方法操作如下：柱上纯化后的Ts-WM5蛋白用包被液(0.01M NaOH PH12)稀释，包被量为0.125ug/孔，每孔100ul。于37℃包被2h或者4℃过夜。之后PBST(含0.05％吐温20)洗板3次。用封闭液(5％脱脂乳)37℃封闭2h。之后PBST洗板3次。待检血清倍比稀释(或者杂交瘤上清1:2倍稀释)后加入微孔板，每孔100ul。37℃孵育1h。之后PBST洗板3次。羊抗鼠二抗1:1000倍稀释，与37℃孵育30min。之后PBST洗板4次。37℃显色10min。2M H2SO4终止反应，读取OD450nm处光吸收值。
在细胞融合前3天，对免疫效果好的BALB/c小鼠进行加强免疫，每只小鼠腹腔注射50μg免疫原。
2.细胞融合
融合前1天准备饲养层细胞，按照常规方法取BALB/c小鼠腹腔巨噬细胞铺于96孔细胞培养板中待用。断颈处死待取脾的小鼠，无菌取脾并分离脾细胞，按照脾细胞1×108与SP2/0骨髓瘤细胞2.5×107(4:1)的比例混合，用1ml PEG1000进行细胞融合，1min内滴加结束。然后在1min内将预热至37℃的1ml 1640基础培养基滴加进细胞悬液中，边滴加边搅拌。进一步在3min内将预热至37℃的1ml 1640基础培养基滴加进细胞悬液中，边滴加边搅拌。最后将10ml 37℃的1640基础培养基缓慢的加入细胞悬液中。整个过程在37℃水浴中操作。1000r/min离心10min，弃上清，用HAT培养基重悬细胞，将细胞均匀的铺至预先铺有饲养细胞的96孔细胞培养板中，放置于37℃，5％CO2培养箱中培养。
3.阳性杂交瘤细胞株的筛选及克隆
利用Ts-WM5间接ELISA方法筛选阳性杂交瘤细胞株，对反应阳性的杂交瘤细胞进行扩大培养，同时用有限稀释法进行阳性杂交瘤细胞的第1次亚克隆。参考OIETerrestrial Manual2017 Chapter2.1.20-Trichinellosis所述ES间接ELISA方法再次筛选阳性杂交瘤细胞株，对反应阳性的杂交瘤细胞进行扩大培养，同时用有限稀释法进行阳性杂交瘤细胞的亚克隆，至少亚克隆3次，将亚克隆好的阳性杂交瘤细胞及时冻存。最终获得1株可以稳定分泌抗Ts-WM5蛋白单克隆抗体的杂交瘤细胞株，其微生物保藏号是：18318；并将其分泌的单克隆抗体命名为Ts-WM5-M2A12以下简称M2A12。
4.腹水的制备
给12周龄左右健康的BALB/c小鼠腹腔注射石蜡油，0.5ml/只，1周后腹腔注射1×106个杂交瘤细胞，7～10天后当小鼠腹腔极度膨胀时抽取腹水，隔2天抽取一次，将抽取的腹水10000rpm离心10min去除上层油脂和沉淀，上清分装保存于-20℃(图4)。
实施例3单克隆抗体的鉴定
1.单克隆抗体的亚类鉴定
按照抗体亚类鉴定试剂盒操作说明书对实施例2所得到单克隆抗体进行亚类鉴定。结果显示本发明单克隆抗体的重链均为IgG1轻链为κ链，详见表1。
表1 单克隆抗体亚类鉴定
2.Ts-WM5竞争ELISA试验
包被封闭同Ts-WM5间接ELISA，从1:1开始2倍倍比稀释猪旋毛虫感染阳性和阴性血清，稀释后的待检血清各取50μl分别与单抗上清50μl等体积混合，取混合后溶液100μl加入微孔板，37℃作用1h，之后同间接ELISA，分析单抗上清能否与猪旋毛虫感染阳性血清竞争结合Ts-WM5蛋白。
试验结果证实，本发明所制备的单克隆抗体能够与猪旋毛虫感染阳性血清竞争结合Ts-WM5蛋白，详见表2、图5。从图5可以看出，单抗的P/N值随着旋毛虫阴阳性血清稀释度的增大而增大，说明旋毛虫阳性血清能够阻断单抗上清。因此单抗为检测猪血清的竞争抗体。
表2 M2A12单克隆抗体与猪旋毛虫感染阳性血清竞争结合Ts-WM5抗原
3.Western blot试验
将旋毛虫肌幼虫用ddH2O洗涤3次，加入少量ddH2O，在冰浴中以组织研磨器研磨虫体至碎片，再于冰浴中用超声波细胞粉碎仪破碎虫体碎片。电压300V，超声5s间隔9s，工作5次，超声3个循环，光镜下观察虫体已粉碎成较小碎片时，置4℃和-20℃交替冻融5次，冻融后的虫体4℃1600g离心30min，吸取上清即为可溶性抗原。参考OIE TerrestrialManual2017 Chapter2.1.20-Trichinellosis所述制备ES抗原。分别对WM5重组蛋白、肌幼虫虫体可溶性抗原和肌幼虫ES抗原进行SDS-PAGE，然后经电转印将蛋白转移到硝酸纤维素膜上，5％脱脂乳4℃封闭过夜，加入单克隆抗体室温孵育1h，用PBST洗涤3次，再与3000倍稀释的HRP标记的羊抗鼠IgG抗体室温孵育1h，PBST洗涤3次后，用ECL发光底物显色。
试验结果证实，单抗能结合重组的WM5抗原、虫体可溶性抗及肌幼虫ES抗原，所识别的大小，与WM5所一致，表明所获得的单克隆抗体可以特异性的识别重组和天然的WM5抗原。本发明所制备的单克隆抗体M2A12能与重组抗原、旋毛虫(T.spiralis)肌幼虫可溶性抗原和ES抗原发生特异性反应(图6)。
实施例4 B细胞表位多肽的鉴定
1.Ts-WM5蛋白的分段截短表达
以重组质粒pET28a-WM5的基因序列为模板，设计3对引物。
表3
经PCR扩增后将他们分别连接到pET28a上构建重组质粒，分别命名为pET28a-Ts-WM5-1、pET28a-Ts-WM5-2和pET28a-Ts-WM5-3，对含有pET28a-Ts-WM5-1、pET28a-Ts-WM5-2和pET28a-Ts-WM5-3的重组菌液分别进行诱导表达按实例1(4)的方法，并对其进行SDS-PAGE电泳分析，确定短肽表达成功(图7)。三段蛋白处理后进行SDS-PAGE，按照实例3(3)的方法将他们与单克隆抗体进行Western blot试验。试验结果表明单克隆抗体所针对的B细胞表位位于pET28a-Ts-WM5-3分段蛋白上(图8)。
SDS-PAGE分析表明三个蛋白均获得成功表达。经Western blot鉴定，所获得的单抗与pET28a-Ts-WM5-3产生特异性反应，且反应性较强。
3.单克隆抗体抗原表位的鉴定
应用生物学软件DNAstar对WM5进行亲水性、抗原性预测，同时利用表位预测程序ABCpred和Bepipred进行表位预测，利用PepScan技术合成8个短肽，再进行间接ELISA试验检测，包被量为0.25μg/孔。结果显示M2A12与Ts-WM5-W3发生特异性反应，结合Westernblot结果推断M2A12所识别的Ts-WM5蛋白B细胞表位初步定位于SEQ ID No.1所示氨基酸序列上。
277EALKKLGIEDLF288(如SEQ ID No.1所示)；
核苷酸序列如SEQ ID No.2所示：
GAAGCATTGAAGAAACTTGGTATAGAAGATCTTTTC(如SEQ ID No.2所示)。
表4 合成短肽
短肽 序列编号 序列
W1 SEQ ID No.11 KSGKTLSELQQKFNGETLLNL
W2 SEQ ID No.12 VSGAEVKVTIPKMKFEKQMNLV
W3 SEQ ID No.13 EALKKLGIEDLF
W4 SEQ ID No.14 IPGKADLSGIC
W5 SEQ ID No.15 VKEKLYVSDIVHKAY
W6 SEQ ID No.16 FNEEGTEAAAATADRIVPMSG
W7 SEQ ID No.17 VMYEDSFEFVADH
W8 SEQ ID No.18 FDSRSKAILFIGRFSGN
表5 ELISA分析结果
以上所述仅是本发明的优选实施方式，应当指出，对于本技术领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明原理的前提下，还可以做出若干改进和润饰，这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
序列表
<110> 吉林大学
<120> 旋毛虫肌幼虫期丝氨酸蛋白酶抑制剂的B细胞表位多肽、杂交瘤细胞株、单克隆抗体及应用
<130> MP2001295
<160> 18
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 12
<212> PRT
<213> B cell epitope of Ts-WM5 protein
<400> 1
Glu Ala Leu Lys Lys Leu Gly Ile Glu Asp Leu Phe
1 5 10
<210> 2
<211> 36
<212> DNA
<213> B cell epitope of Ts-WM5 protein
<400> 2
gaagcattga agaaacttgg tatagaagat cttttc 36
<210> 3
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 3
atacaagctt atggaaacag aaattgcaaa 30
<210> 4
<211> 32
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 4
attaactcga gaattaccag aaaaacgtcc aa 32
<210> 5
<211> 30
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 5
atacaagctt atggaaacag aaattgcaaa 30
<210> 6
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 6
ttactcgaga tttgcctcaa ctgttcc 27
<210> 7
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 7
tgctctagac aatatccaat attgcat 27
<210> 8
<211> 27
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 8
ccgctcgaga ccgctaactt tggatac 27
<210> 9
<211> 33
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 9
agaaggatcc ttcattttat taccaaagtc agg 33
<210> 10
<211> 34
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 10
atattctcga gttaattacc agaaaaacgt ccaa 34
<210> 11
<211> 21
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<400> 11
Lys Ser Gly Lys Thr Leu Ser Glu Leu Gln Gln Lys Phe Asn Gly Glu
1 5 10 15
Thr Leu Leu Asn Leu
20
<210> 12
<211> 22
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<400> 12
Val Ser Gly Ala Glu Val Lys Val Thr Ile Pro Lys Met Lys Phe Glu
1 5 10 15
Lys Gln Met Asn Leu Val
20
<210> 13
<211> 12
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<400> 13
Glu Ala Leu Lys Lys Leu Gly Ile Glu Asp Leu Phe
1 5 10
<210> 14
<211> 11
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<400> 14
Ile Pro Gly Lys Ala Asp Leu Ser Gly Ile Cys
1 5 10
<210> 15
<211> 15
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<400> 15
Val Lys Glu Lys Leu Tyr Val Ser Asp Ile Val His Lys Ala Tyr
1 5 10 15
<210> 16
<211> 21
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<400> 16
Phe Asn Glu Glu Gly Thr Glu Ala Ala Ala Ala Thr Ala Asp Arg Ile
1 5 10 15
Val Pro Met Ser Gly
20
<210> 17
<211> 13
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<400> 17
Val Met Tyr Glu Asp Ser Phe Glu Phe Val Ala Asp His
1 5 10
<210> 18
<211> 17
<212> PRT
<213> Artificial Sequence
<400> 18
Phe Asp Ser Arg Ser Lys Ala Ile Leu Phe Ile Gly Arg Phe Ser Gly
1 5 10 15
Asn

Claims (9)

1.WM5蛋白的B细胞表位多肽，其特征在于，其氨基酸序列如SEQ ID No.1所示。
2.编码如权利要求1所述的B细胞表位多肽的核苷酸，其特征在于，其核苷酸序列如SEQID No.2所示。
3.一种包含如权利要求2所述的核苷酸的重组表达载体。
4.一种包含如权利要求2所述的核苷酸的重组菌株或细胞。
5.如权利要求1所述的B细胞表位多肽在制备旋毛虫感染的检测试剂或检测试剂盒中的应用。
6.杂交瘤细胞株，其特征在于，其保藏编号为CGMCC No.18318。
7.单克隆抗体，其特征在于，其为通过保藏编号为CGMCC No.18318的杂交瘤细胞株产生的单克隆抗体。
8.如权利要求6所述的杂交瘤细胞株或如权利要求7所述的单克隆抗体在制备旋毛虫感染的检测试剂或检测试剂盒中的应用。
9.用于旋毛虫感染的检测试剂或检测试剂盒，其特征在于，包括如权利要求6所述的杂交瘤细胞株或如权利要求7所述的单克隆抗体以及检测学上可接受的辅料。
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