CN111122877A - 一种绵羊肺炎支原体抗体间接elisa检测试剂盒 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及兽用生物制品检测技术领域,尤其涉及一种绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒。其中的包被抗原为绵羊肺炎支原体黏附素基因P113重组蛋白rP113(C),其引物序列如下:P113(c)F:5‑CGCGGATCCGAAGGTGCTCAAGACCAAGGTA‑3,P113(c)R:5‑CCGCTCGAGGGTTGTTGTTGAGGTGGTATCAGG‑3。本发明提供一种以纯化P113重组蛋白rP113(C)作为包被抗原,建立绵羊肺炎支原体抗体间接ELSIA检测试剂盒,为流行病学调查、疾病诊断和疫苗免疫效果评价提供了有力工具。
Description
技术领域
本发明涉及兽用生物制品检测技术领域,尤其涉及一种绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒。
背景技术
绵羊肺炎支原体是引起绵羊和山羊非典型性肺炎的主要病原,同时,羊感染绵羊肺炎支原体后,对多杀性巴氏杆菌、溶血性曼氏杆菌及副流感病毒等的易感性也明显增加。目前,该病原在全球范围内分布,给绵羊、山羊养殖业造成了重大的经济损失,同时也严重威胁野生小反刍动物的健康。在我国,绵羊肺炎支原体的感染也十分普遍,危害严重。
对绵羊肺炎支原体感染的准确诊断及流行病学调查是采取综合防制措施的关键环节。目前,绵羊肺炎支原体感染的诊断方法主要是采用分子生物学技术,应用最广泛的为L.Mcauliffe等基于绵羊肺炎支原体16S rRNA基因建立的PCR检测方法。血清抗体的检测是进行流行病学调查、疾病诊断和疫苗免疫效果评价的重要手段,但目前绵羊肺炎支原体尚无公认的特异灵敏的血清学检测方法。在血清学检测方法中,ELISA方法因其灵敏特异、简单快速、稳定及易于自动化操作和批量检测等优点,已广泛用于各种病原微生物所引起的传染病、寄生虫病及非传染病等的免疫诊断。目前,绵羊肺炎支原体中并没有商业化的ELISA抗体检测试剂盒,国内虽有采用全菌抗原建立的ELISA方法,但由于在羊中存在结膜支原体等与绵羊肺炎支原体亲缘关系相近的其他支原体,全菌抗原包被会出现明显的交叉反应,因此不适合用于血清学诊断技术的建立。因此,建立一种特异灵敏的绵羊肺炎支原体抗体检测ELISA方法及试剂盒十分必要。
发明内容
本发明要解决的技术问题是由于在羊中存在结膜支原体等与绵羊肺炎支原体亲缘关系相近的其他支原体,全菌抗原包被会出现明显的交叉反应,因此不适合用于血清学诊断技术。
为解决上述问题,本发明提供一种以纯化P113重组蛋白rP113(C)作为包被抗原,建立绵羊肺炎支原体抗体间接ELSIA检测试剂盒,为流行病学调查、疾病诊断和疫苗免疫效果评价提供了有力工具。
为达到上述目的,本发明通过以下技术方案实现,一种绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒,其中的包被抗原为绵羊肺炎支原体黏附素基因P113重组蛋白rP113(C),其引物序列如下:
P113(c)F:5-CGCGGATCC GAAGGTGCTCAAGACCAAGGTA-3
P113(c)R:5-CCGCTCGAG GGTTGTTGTTGAGGTGGTATCAGG-3。
粘附素不仅是支原体重要的毒力因子,同时也是最为重要的免疫原,并且P113重组蛋白已证明是良好的免疫原,而且避免了用全菌作为抗原导致的交叉反应。因此,建立绵羊肺炎支原体抗体间接ELSIA检测方法,通过最适的反应条件优化,建立特异性强,敏感性好,符合率高的绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒。
经由特异性分析表明,P113(C)作为包被抗原,可以用于建立检测绵羊肺炎支原体的间接ELISA检测试剂盒。
绵羊肺炎支原体重组蛋白的特异性分析具体为:将纯化的重组蛋白rP113(C)按浓度稀释到4μg/ml包被过夜,5%脱脂奶粉37℃封闭2h,用于特异性评价的兔血清均1:400倍稀释,37℃孵育1h,各血清均做3个重复,HRP标记的山羊抗兔IgG以1:6000倍稀释,37℃孵育1h,加TMB室温显色10min后,2M H2SO4终止,酶标仪读取OD450吸光值。包被重组蛋白rP113(C),以兔抗MO阳性血清为标准阳性、兔抗MO阴性血清为标准阴性,其余兔抗阳性或高免血清对两个重组蛋白进行特异性评价,结果显示,重组蛋白与绵羊肺炎支原体阳性血清出现强阳性反应,与阴性血清几乎无反应;与绵羊肺炎支原体Y98株和SC01株亦出现强。
进一步的,根据阳性平均值接近1且P/N最大的判定条件,rP113(C)最佳抗原包被浓度为1μg/ml,最适血清稀释度为1:200倍稀释。
进一步的,最佳封闭液为5%脱脂奶粉。
进一步的,最佳孵育时间为60min。
进一步的,当酶标二抗以1:40000稀释时,阳性血清OD450读数接近于1且P/N最大,因此1:40000为最佳的酶标二抗稀释度。
进一步的,酶标二抗最佳反应时间为45min。
进一步的,结果判定为当S’/N≥2.9时,判定为阳性;S’/N≤2.5时,判定为阴性,2.5<S’/N<2.9时,结果为可疑。
临界值的确定:按特异性分析的方法检测30份绵羊肺炎支原体阴性兔血清,以OD450最小的一份作为标准阴性血清,其余所有血清的OD450(P)分别除以标准阴性血清的OD450(N),得到所有的P/N。计算30份血清的P/N平均值X和标准差S,以血清P/N≥X+3S为阳性,P/N≤X+2S为阴性作为特异性血清的判断标准,介于二者之前的为可疑。结果矫正值的平均值X=1.631,标准差S=0.430,因此计算得:X+3S=2.921,X+2S=2.491,为了判定结果方便,确定当S’/N≥2.9时,判定为阳性;S’/N≤2.5时,判定为阴性,2.5<S’/N<2.9时,结果为可疑。
批内重复试验的变异系数均值为1.5%,批间重复试验的变异系数均值为6%,表明该方法重复性良好。
进一步的,绵羊肺炎支原体黏附素基因P113重组蛋白rP113(C)的制备方法如下:诱导表达纯化绵羊肺炎支原体黏附素基因p113重组蛋白作为抗原,rP113(C)浓度为816μg/ml。
本发明的有益效果在于:
首次以纯化P113重组蛋白rP113(C)作为包被抗原,建立绵羊肺炎支原体抗体间接ELSIA检测试剂盒,为流行病学调查、疾病诊断和疫苗免疫效果评价提供了有力工具。
附图说明
图1pET-32a(+)-P113(C)重组质粒的酶切鉴定M:DL1,0000Marker;1:pET-32a(+)-P113(C)重组质粒Xho I酶切产物;2:pET-32a(+)-P113(C)重组质粒的双酶切产物;
图2pET32a(+)-P113(C)在Rosetta(DE3)中的表达M:蛋白质分子量标准;0a~9a:0.4mM IPTG诱导前、诱导2、4、6、8及诱导过夜重组表达工程菌表达产物;0b~9b:1mM IPTG诱导前、诱导2、4、6、8及诱导过夜重组表达工程菌表达产物;0c~9c;诱导前、诱导2、4,、6、8及诱导过夜pET32a(+)空载表达产物;
图3rP113(C)的可溶性分析及纯化M:蛋白分子量标准;1:表达rP113(C)的EoliRosetta(DE3)裂解物;2:裂解物沉淀;3:裂解物上清;4:纯化产物;
图4rP113(C)重组蛋白的Westernblot分析M:蛋白分子量标准品;1:纯化的rP113(C)/阳性血清;2.纯化的重组蛋白rP113(C)/阴性血清;
图5绵羊肺炎支原体抗体消长规律折线为rP113(C)-ELSIA结果,柱状图为IHA结果。
具体实施方式
为使本发明实施例的目的、技术方案和优点更加清楚,下面将结合本发明的实施例,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述。显然,所描述的实施例是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
实施例1绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA抗原的制备以及免疫源性检测
1.材料
(1)菌株及质粒:绵羊肺炎支原体的阳性血清和绵羊肺炎支原体阴性血清、巴氏杆菌、金黄色葡萄球菌、溶血曼氏杆菌阳性血清以及丝状支原体山羊亚种血清、猪肺炎支原体阳性血清、丝状支原体丝状亚种血清均为现有材料,由西南民族大学动物医学实验室-20℃保存;大肠杆菌、沙门氏菌因子血清购自四川省生物制品研究所;绵羊肺炎支原体临床分离株SC01由本实验室分离保存;原核表达载体pET-32a(+)为Novagen公司产品;感受态细胞DH5ɑ、Rosetta(DE3)为TaKaRa公司产品;
(2)主要试剂
IPTG、氨苄青霉素、氯霉素为Sigma公司产品;dNTPs、Mg2+离子、TaqDNA聚合酶、T4连接酶为TaKaRa公司产品;限制性内切酶BamHⅠ、XhoⅠ为NEB公司产品;核酸蛋白分子量标准DL2000、DL10000为Blotopped公司产品;DNAGel Extraction Kit、Plasmid Miniprep Kit为AXYGEN公司产品;DNA纯化试剂盒、BCA蛋白定量试剂盒为上海生工公司产品;30%丙烯酰胺、PVDF膜、Immun-Star WesternC Chemiluminescence Kit、Precision Plus ProteinTM标准品、Precision Plus ProteinTM WesternCTM标准品为Bio-Rad公司产品;DABSubstrate Kit为Thermo公司产品;HistrapTM HP纯化柱为GE公司产品。
(3)主要仪器
离心机:5417R、5804R,Eppendorf,德国;CO2恒温培养箱:Forma SeriesⅡ,Thermo,美国;隔水式恒温培养箱:上海齐欣科学仪器有限公司;核酸蛋白检测仪:DU800,Beckman,美国;RCR仪:My CyclerTM,Bio-Rad,美国;核酸电泳仪:Powerpac UniversalTM,Bio-Rad,美国;凝胶成像系统:VerSaDoc2000,Bio-Rad,美国;超声细胞破碎仪:VC-750,SONIC,美国;酶标仪:680,Bio-Rad,美国;凝胶半干转印装置:Trars-Blot SD,Bio-Rad,美国。
2.方法
(1)抗原的制备
①SC01株的培养与基因组DNA的提取
将绵羊肺炎支原体SC01株冻干菌种加入2ml改良Hayfliek′s培养基中,37℃、160rpm恒温水平震荡培养48h后,按3%(v/v)将其接入新鲜的改良Hayfliek′s培养基中,37℃、160rpm恒温水平震荡培养24h后,13000rpm室温离心30min,收集菌体,采用常规酚/氯仿法提取DNA,分光光度计检测提取质量并测定浓度后,分装-20℃保存。
②引物的设计与合成
根据生物信息学分析结果,对P113蛋白C端进行原核表达,针对C端,利用PrimerPremier 5软件设计一对表达引物,序列如下:
P113(c)F:5-CGCGGATCC GAAGGTGCTCAAGACCAAGGTA-3
P113(c)R:5-CCGCTCGAG GGTTGTTGTTGAGGTGGTATCAGG-3
上游引物P113(c)F于5’端引入BamHⅠ酶切位点,下游引物P113(c)R于5’端引入XhoⅠ酶切位点。该对引物扩增的目的区域为第2344bp至3012bp大小共669bp的碱基片段,其间不含有在支原体中编码色氨酸的TGA密码子,且目的片段包含P113蛋白C端重复区域的整个编码区域。
③原核表达质粒的构建及鉴定结果
目的片段经酶切后与质粒连接,转化入DH5α感受态细胞,挑取疑似阳性菌落进行培养,提取质粒,分别进行阳性质粒的鉴定。
采用引物P113(c)F/P113(c)R对质粒进行PCR扩增,所得条带与目的条带大小相符;BamH I和Xho I双酶切结果显示,双酶切后在5800bp左右及700bp左右出现两条明显的条带,单酶切后在6500bp左右出现一条亮带,与预期一致,见图1;同时,该质粒的测序结果显示,目的片段的序列和大小与引物设计所参考的绵羊肺炎支原体SC01株p113基因相应区域完全相同且在载体中插入的位置正确。因此成功的构建了扩增P113蛋白C端重复区的原核表达重组质粒pET-32a(+)-P113(C)。
④重组蛋白的诱导表达
将重组表达质粒pET-32a(+)-P113(C)转化入表达工程菌E.coli Rosetta(DE3)后,分别经0.4mM和1mM的IPTG浓度诱导,在诱导后0h、2h、4h、6h、8h及过夜五个时间点分别采集菌液进行SDS-PAGE检测,结果显示:
pET-32a(+)-P113(C)/Rosetta(DE3)重组表达工程菌经IPTG诱导后,能够表达出大小约为44ku的蛋白条带,其大小与预期相符。诱导条件的优化结果显示(图2),在诱导开始后2h,目的蛋白即开始表达(图中2a,2b);到诱导后6h,目的蛋白的表达量达到最高(图中6a,6b)。同时,0.4mM和1mM的IPTG浓度下,目的蛋白表达量趋势相同,但是0.4mM IPTG诱导的目的蛋白表达量(图中6a)明显高于1mM下的表达量(图中6b)。含空载的表达工程菌无相应蛋白的表达(图中c)。因此,rP113(C)重组蛋白的最佳表达条件为:37℃下0.4mM IPTG浓度诱导表达6h。
⑤重组蛋白的可溶性分析及纯化
rP113(C)重组蛋白的可溶性分析显示,该蛋白以可溶性表达的形式表达。利用HistrapTM HP纯化柱对全菌裂解液上清进行纯化,对收集到的目的蛋白进行SDS-PAGE检测,结果仅在44ku左右出现单一条带,纯化回收结果良好。可溶性分析和纯化结果如图3。
(2)抗原免疫源性检测
以rP113(C)纯化蛋白制样,进行SDS-PAGE,转膜后,以兔抗绵羊肺炎支原体高免血清为一抗,同时以绵羊肺炎支原体阴性兔血清作为阴性对照,HRP标记的山羊抗兔IgG为二抗,进行Western blot分析,结果显示,经纯化后的重组蛋白可与兔抗绵羊肺炎支原体全菌抗体结合,而与阴性对照血清无结合反应,如图4。表明P113重组蛋白具有良好的免疫原性,说明P113蛋白是绵羊肺炎支原体的免疫原,能在感染中诱导产生特异性抗体。
(3)抗原特异性检测
将纯化的重组蛋白rP113(C)按浓度稀释到4μg/ml包被过夜,5%脱脂奶粉37℃封闭2h,用于特异性评价的兔血清均1:400倍稀释,37℃孵育1h,各血清均做3个重复,HRP标记的山羊抗兔IgG以1:6000倍稀释,37℃孵育1h,加TMB室温显色10min后,2M H2SO4终止,酶标仪读取OD450吸光值。以兔抗MO阳性血清为标准阳性、兔抗MO阴性血清为标准阴性,其余兔抗阳性或高免血清对两个重组蛋白进行特异性评价,结果见表1。结果显示,两个重组蛋白与绵羊肺炎支原体阳性血清均出现强阳性反应,与阴性血清几乎无反应;与绵羊肺炎支原体Y98株和SC01株亦出现强阳性反应。rP113(C)与无关血清无反应,OD450读数均接近阴性血清且都小于临界值;
表1特异性评价结果
Table 1 Results of specificity
注:表格中数值为OD450读数,P为阳性,N为阴性。
实施例2绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA方法的建立及条件优化
①抗原抗体最佳工作浓度的确定
采用方正滴定法确定抗原抗体的最佳工作浓度。根据所制备的重组蛋白浓度,使用包被缓冲液将抗原依次稀释成4μg/ml、2μg/ml、1μg/ml、0.5μg/ml、0.25μg/ml,每个稀释度做3个重复。使用血清稀释液将绵羊肺炎支原体阴阳性血清依次做1:100倍、1:200倍、1:400倍和1:800倍稀释,以2%BSA封闭,其余步骤按2.3.1方法操作,读取结果,计算P/N值,选择阳性OD450平均值在1左右且P/N最大时的抗原浓度为抗原最佳作用浓度。该点对应的血清稀释度为最佳的血清稀释度。方正滴定结果见表2,根据阳性平均值接近1且P/N最大的判定条件,本试验所确定的rP113(C)最佳抗原包被浓度为1μg/ml,最适血清稀释度为1:200倍稀释。
表2抗原与血清最适工作浓度的确定
Table 2 Determination of the optimal antigen concentration and serumdilution
注:P:阳性血清;N:阴性血清。
②最佳封闭液的确定
按照确定的最佳条件,包被抗原,分别使用PBST稀释的5%脱脂奶粉、10%脱脂奶粉、1%BSA、2%BSA、5%马血清和1%明胶,每种封闭液做3个重复,加入最佳稀释度的阴阳性血清,选择阴性OD450平均最小且P/N值最大的封闭液为最佳。不同封闭液的封闭效果见表3,根据阴性OD450平均值最小且P/N值最大的判定条件,本试验确定的最佳封闭液为5%脱脂奶粉。
表3封闭液的优化
Fig.3 Optimization of blocking reagents
③血清作用时间的确定
按以上最优条件包被、封闭后,阴阳性血清作用时间分别为30min、60min和90min,每个时间点做3个重复,比较各时间点阴阳性血清的OD450平均值和P/N值,以阳性血清OD450接近1,P/N最大的时间作为最佳。血清反应不同时间的结果见表4,以阳性血清OD450接近1,P/N最大的时间作为最佳,因此,本试验确定的一抗最佳孵育时间为60min。
表4血清反应时间的优化
Fig.4 Optimization of incubating time of sera
④酶标二抗稀释度的优化
按以上最优条件操作后,将酶标二抗依次稀释为1:10000、1:20000、1:40000和1:80000,每个稀释度做3个重复,以阳性血清OD450接近1,P/N最大的二抗浓度作为最佳。HRP标记的兔抗山羊IgG不同稀释度的反应结果如表5,当酶标二抗以1:40000稀释时,阳性血清OD450读数接近于1且P/N最大,因此1:40000为最佳的酶标二抗稀释度。
表5酶标二抗浓度的优化
Fig.5 Optimization of concentration of HRP-labeled antibody
⑤酶标二抗作用时间的优化
按以上最优条件,加入酶标二抗后,分别于37℃作用30min、45min、60min和90min,以阳性血清OD450接近1,P/N最大的时间作为最佳。将HRP标记的兔抗山羊IgG以最佳稀释度稀释,分别作用30min、45min、60min和90min,结果如表6。以阳性血清OD450接近1,P/N最大的反应时间作为最佳,因此本试验确定的酶标二抗最佳反应时间为45min。
表6酶标二抗作用时间的优化
Fig.6 Optimization of incubating time of HRP-labeled antibody
⑥临界值的判定
用优化好的间接ELISA方法测定30份绵羊肺炎支原体阴性山羊血清,以OD450最小的一份作为标准阴性血清,其余所有血清的OD450(P)分别除以标准阴性血清的OD450(N),得到所有的P/N。计算这些P/N的平均值(X)和标准差(S),P/N≥X+3S判定为阳性,P/N≤X+2S则判定为阴性,介于二者之前的为可疑。根据表7的结果,矫正值的平均值X=1.631,标准差S=0.430,因此计算得:X+3S=2.921,X+2S=2.491,为了判定结果方便,确定当S’/N≥2.9时,判定为阳性;S’/N≤2.5时,判定为阴性,2.5<S’/N<2.9时,结果为可疑。
表7阴阳性血清临界值的确定
Fig.7 Determination of the threshold between negative and positiveserum
⑥重复性试验
用同一次包被的酶标板,取5份血清,在同一条件下进行检测,每个血清样本做5个重复,根据读数结果判定批内重复性。取3个不同批次包被的酶标板,在同一条件下对15份血清进行检测,每个血清样本做2个重复,根据读数结果盘点批间重复性。用同一批包被的的ELISA板,对5份临床血清进行检测,各重复5孔,批内重复试验的变异系数均值为1.5%,表明该方法重复性良好。15份血清样本分别用3个不同批次包被的酶标板进行检测,结果显示平均变异系数小于6%。
⑦临床应用
(1)抗体消长规律测定结果
使用建立的rP113(C)-ELISA方法和IHA方法,分别测定4只(A、B、C、D)山羊在免疫绵羊肺炎支原体疫苗前,免疫后1周、2周、3周、4周及8周的血清抗体水平,所得抗体消长规律见图5。ELISA结果显示,免疫前,有一只山羊(D)为绵羊肺炎支原体阳性,免疫后1周抗体水平急剧提高,2周时达到最高,之后一直维持较高抗体水平;其余山羊(A、B、C)为绵羊肺炎支原体阴性,免疫后3周抗体达到最高,4周时略有下降,至8周下降幅度不大。该结果与IHA结果趋势相符,表明rP113(C)-ELISA方法能正确反应出疫苗免疫后山羊血清抗体的变化趋势,表明该方法可用于绵羊肺炎支原体抗体水平的监测。
(2)临床血清的检测
对来至四川省南江县、双流县和攀枝花市的共80份山羊血清使用建立的rP113(C)-ELISA进行检测,结果见表8。对所检测样本,南江县、双流县和攀枝花市的血清阳性率分别为33.3%、45%和40%,与之对应的IHA检测阳性率为23.3%、35%和33.3%,可见rP113(C)-ELISA方法具有相对更高的检出率,敏感性更好。然而,经rP113(C)-ELISA检测为阴性的49份血清中,有3份被IHA检测判定为阳性,这可能是由于rP113(C)-ELISA或IHA判定标准差异造成,也可能与IHA方法的检测特异性有关,值得进一步探讨。
表8 rP113(C)-ELISA与IHA对临床血清的检测比较
Table.8 Seras used for comparison of rP113(C)-ELISA with IHA
最后需要说明,以上实施例虽然描述了本发明的具体实施方式,但是并非限制本发明;本领域的技术人员应当理解,这些仅是举例说明,本发明的保护范围是由所附权利要求书所限定的。而一切进行修改或等同替换,其均应包含在本发明的保护范围中。
序列表
<110> 西南民族大学
<120> 一种绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒
<130> 西南民族大学
<141> 2020-01-13
<160> 2
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 31
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
cgcggatccg aaggtgctca agaccaaggt a 31
<210> 2
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
ccgctcgagg gttgttgttg aggtggtatc agg 33
Claims (8)
1.一种绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒,其特征在于:其中的包被抗原为绵羊肺炎支原体黏附素基因P113重组蛋白rP113(C),其引物序列如下:
P113(c)F:5-CGCGGATCC GAAGGTGCTCAAGACCAAGGTA-3
P113(c)R:5-CCGCTCGAG GGTTGTTGTTGAGGTGGTATCAGG-3。
2.如权利要求1所述的绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒,其特征在于:rP113(C)抗原包被浓度为1μg/ml,血清稀释度为1:200倍稀释。
3.如权利要求1所述的绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒,其特征在于:封闭液为5%脱脂奶粉。
4.如权利要求1所述的绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒,其特征在于:孵育时间为60min。
5.如权利要求1所述的绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒,其特征在于:酶标二抗稀释度为1:40000。
6.如权利要求1所述的绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒,其特征在于:酶标二抗反应时间为45min。
7.如权利要求1所述的绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒,其特征在于:结果判定为当S’/N≥2.9时,判定为阳性;S’/N≤2.5时,判定为阴性,2.5<S’/N<2.9时,结果为可疑。
8.如权利要求1所述的绵羊肺炎支原体抗体间接ELISA检测试剂盒,其特征在于:绵羊肺炎支原体黏附素基因P113重组蛋白rP113(C)的制备方法如下:诱导表达纯化绵羊肺炎支原体黏附素基因p113重组蛋白作为抗原,rP113(C)浓度为816μg/ml。
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