CN110537427A - 岷江百合鳞片扦插方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种岷江百合鳞片扦插方法,包括以下步骤:S1、选择岷江百合鳞片:选择品种优良的岷江百合鳞球,用0.1%多菌灵浸泡种球30min,然后去掉岷江百合种球外面老死或坏掉的两到三层鳞片,再将剩余的鳞片剥下,用0.5%高锰酸钾消毒8min,放置阴凉处自然晾晒24h;S2、准备培养盆和扦插基质;S3、将岷江百合鳞片进行激素处理:将岷江百合鳞片用50mg/L的NAA进行速蘸处理,然后将岷江百合鳞片在30mg/L的IBA中浸泡4h;S4、采用埋片扦插的方式进行扦插。本发明的岷江百合鳞片扦插方法繁殖成本低、操作方便,且繁殖系数高,有利于规模化繁殖,能够在保持优良性状的同时缩短生产周期。
Description
技术领域
本发明属于植物栽培技术领域,特别涉及一种岷江百合鳞片扦插方法。
背景技术
岷江百合(Lilium regale Wilson),也称王百合、千叶百合,为百合科百合属植物。花1至数朵,开放时很香,喇叭形,白色,喉部为白色。主要集中分布于我国四川省岷江流域上游干旱河谷地带。具有较强抗旱、抗寒性,耐晒,喜半阴,耐高温、盐碱。岷江百合作为野生百合曾被西方人引入欧洲,是拯救西方商业百合危机的重要资源。岷江百合不仅是一种重要的观赏植物,也用作切花或球根类专园。其鳞茎含有丰富的营养素,可作食材,鲜食干用均可,具有良好的营养滋补作用,也可供药用,中医书上讲百合具有养心安神,润肺止咳的功效。
百合的繁殖方法主要有种子繁殖、分球繁殖、珠芽繁殖、鳞片扦插与组织培养。岷江百合的自然繁殖主要是种子繁殖与较少的珠芽繁殖。但使用种子繁殖与珠芽繁殖的方法耗时较长,一般都要生长三到四年才能开花。而且岷江百合自身很难分球繁殖。虽然对岷江百合从有性与无性繁殖两方面都进行了一定的研究,并取得了一定的研究成果,但对岷江百合野生资源的保护与利用却无太多的研究。
利用植物组织培养可解决百合连续进行营养繁殖而引起的退化现象,以及解决百合的脱毒和扩大繁殖问题,但需要大量的人力、财力和物力,且移栽成活率低,如果利用组织培养生产出的脱毒种球,用其鳞片扦插繁殖技术大量繁殖生产种球,就会大幅度降低生产成本,为市场提供充足的无病毒优质种球。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足,提供一种繁殖成本低、操作方便,且繁殖系数高,有利于规模化繁殖,能够在保持优良性状的同时缩短生产周期的岷江百合鳞片扦插方法。
本发明的目的是通过以下技术方案来实现的:岷江百合鳞片扦插方法,包括以下步骤:
S1、选择岷江百合鳞片:选择品种优良的岷江百合鳞球,用0.1%多菌灵浸泡种球30min,然后去掉岷江百合种球外面老死或坏掉的两到三层鳞片,再将剩余的鳞片剥下,用0.5%高锰酸钾消毒8min,放置阴凉处自然晾晒24h;
S2、准备培养盆和扦插基质:选择泥炭和珍珠岩按1:1的比例混合作为扦插基质,然后用适量的多菌灵干粉末混匀在基质中,将扦插基质放置在消毒后的培养盆中;
S3、将岷江百合鳞片进行激素处理:将岷江百合鳞片用50mg/L的NAA进行速蘸处理,然后将岷江百合鳞片在30mg/L的IBA中浸泡4h;
S4、采用埋片扦插的方式进行扦插:扦插基床高度不低于5cm:先平铺3cm后的基质,再将用激素处理好的鳞片凹面向上平放于基质上,相邻鳞片间隔1cm,最后覆盖上2cm厚的基质。
进一步地,所述步骤S2中,培养盆用0.5%的高锰酸钾进行擦拭消毒。
进一步地,所述步骤S2中,对扦插基质进行如下处理:选择泥炭和珍珠岩按1:1的比例混合作为扦插基质,将配制好的扦插基质用开水消毒,具体操作为:将100℃的沸水倒入准备好的基质中,使基质完全被淹没;消毒10min后,将基质倒在滤网上,用滤网悬挂于阴凉处1-2天,滤去多余水分;基质含水量以手轻握基质不出水为准。
进一步地,所述步骤S2中,多菌灵干粉末与扦插基质的比例为:每15g多菌灵与30L扦插基质相配比。
本发明的有益效果是:本发明的岷江百合鳞片扦插方法鳞片繁殖成本低、操作方便,且繁殖系数高,有利于规模化繁殖,能够在保持优良性状的同时缩短生产周期,是目前种球商品化生产过程中必不可少的关键环节。在岷江百合的原产地对岷江百合进行野生资源保护和开发利用研究,对保护和开发岷江百合这一珍贵野生种质资源,培植民族地区中药产业和花卉产业具有重要的意义。
具体实施方式
下面结合具体实施例进一步说明本发明的技术方案。
本发明的岷江百合鳞片扦插方法,包括以下步骤:
S1、选择岷江百合鳞片:选择品种优良的岷江百合鳞球,用0.1%多菌灵浸泡种球30min,然后去掉岷江百合种球外面老死或坏掉的两到三层鳞片,再将剩余的鳞片剥下,用0.5%高锰酸钾消毒8min,放置阴凉处自然晾晒24h;
S2、准备培养盆和扦插基质:选择泥炭和珍珠岩按1:1的比例混合作为扦插基质,然后用适量的多菌灵干粉末混匀在基质中,将扦插基质放置在消毒后的培养盆中;
S3、将岷江百合鳞片进行激素处理:将岷江百合鳞片用50mg/L的NAA进行速蘸处理,然后将岷江百合鳞片在30mg/L的IBA中浸泡4h;
S4、采用埋片扦插的方式进行扦插:鳞片繁殖包括扦插与埋片两种方法,传统的扦插法是将提前消毒、阴干的鳞片凹面向上斜插到基质中二分之一到三分之二处;埋片法则是指将鳞片用湿基质包埋以培养小鳞茎的方法。本发明利用埋片扦插的方式进行扦插:扦插基床高度不低于5cm:先平铺3cm后的基质,再将用激素处理好的鳞片凹面向上平放于基质上,相邻鳞片间隔1cm,最后覆盖上2cm厚的基质。
进一步地,所述步骤S2中,培养盆用0.5%的高锰酸钾进行擦拭消毒。
进一步地,所述步骤S2中,对扦插基质进行如下处理:选择泥炭和珍珠岩按1:1的比例混合作为扦插基质,将配制好的扦插基质用开水消毒,具体操作为:将100℃的沸水倒入准备好的基质中,使基质完全被淹没;消毒10min后,将基质倒在滤网上,用滤网悬挂于阴凉处1-2天,滤去多余水分;基质含水量以手轻握基质不出水为准。
进一步地,所述步骤S2中,多菌灵干粉末与扦插基质的比例为:每15g多菌灵与30L扦插基质相配比。
下面通过实验进一步验证本发明的岷江百合鳞片扦插效果。
1、本次实验选择激素有NAA、IBA两种,设置三种浓度梯度,同时再加一个对照实验。对用NAA处理的鳞片进行速蘸的方法,对IBA处理的鳞片进行浸泡4h。进行单一激素和两种激素实验探究。实验处理设计如表1、表2。
表1单一激素实验设置
编号 | NAA(mg/L) | 处理方式 | 编号 | IBA(mg/L) | 处理方式 |
<u>N1</u> | <u>50</u> | 速蘸 | <u>I1</u> | <u>30</u> | 浸泡4h |
<u>N2</u> | <u>100</u> | 速蘸 | <u>I2</u> | <u>50</u> | 浸泡4h |
<u>N3</u> | <u>300</u> | 速蘸 | <u>I3</u> | <u>100</u> | 浸泡4h |
表2两种激素实验设置
编号 | NAA(mg/L) | IBA(mg/L) |
A1 | 50 | 30 |
A2 | 100 | 30 |
A3 | 300 | 30 |
A4 | 50 | 50 |
A5 | 100 | 50 |
A6 | 300 | 50 |
A7 | 50 | 100 |
A8 | 100 | 100 |
A9 | 300 | 100 |
CK | 0 | 0 |
对所有扦插鳞片培养60天后进行结果统计。统计指标有鳞茎发生率、成活率、小鳞茎个数。利用IBM SPSS Statistics 25对鳞茎发生率、成活率进行数据分析。
鳞茎发生率=分化产生小鳞茎的鳞片数/每组试验扦插鳞片总数×100%
成活率=鳞片成活片数/扦插鳞片总片数
平均繁殖系数=分化产生的小鳞茎个数/试验扦插鳞片总数
2、IBA、NAA分别使用对岷江百合鳞片扦插繁殖的影响
(1)不同浓度IBA浸泡4h后对岷江百合鳞片扦插繁殖的影响
从表3可以看出,三种不同浓度的IBA对岷江百合鳞片扦插繁殖有一定的显著影响。30mg/L、50mg/L、100mg/L三种不同浓度IBA对岷江百合的鳞茎发生率的影响呈U型,IBA在50mg/L浓度时,鳞茎发生率最低,为15%,且低于对照组,其余两种均高于对照组,IBA在100mg/L浓度时,鳞茎发生率最高,为40%,同时繁殖系数也最高,为60%,比IBA在50mg/L浓度时高40%。然而,三种不同浓度的IBA浸泡4h后对鳞片的成活率没有显著影响。
(2)不同浓度NAA速蘸后对岷江百合鳞片扦插繁殖的影响
对表4分析,发现通过快速蘸取三种不同浓度的NAA对岷江百合鳞片扦插繁殖的影响结果是:在50mg/L、100mg/L、300mg/L三种不同浓度NAA对岷江百合的鳞茎发生率的有一定的显著影响且呈U型,同时均低于对照组,影响效果最小的是NAA浓度为100mg/L,鳞茎发生率只有10%。三种不同浓度的NAA速蘸后对岷江百合鳞片的成活率没有显著影响。对照组的鳞茎发生率、平均繁殖系数都是最高的,从侧面可以说明高浓度的快速蘸取,对岷江百合鳞片扦插繁殖影响效果不显著。
表3不同浓度IBA浸泡4h后对岷江百合鳞片扦插繁殖的影响
编号 | 鳞茎发生率 | 成活率 | 繁殖系数 |
CK | 0.30±0.115ABa | 0.90±0.115Aa | 0.3 |
I1 | 0.35±0.100Aa | 1.00±0.000Aa | 0.35 |
I2 | 0.15±0.100Bb | 0.90±0.115Aa | 0.2 |
I3 | 0.40±0BAa | 0.95±0.100Aa | 0.6 |
注:大写字母为极显著差异,显著水平为0.01。小写字母为显著差异,显著水平为0.05。
表4不同浓度NAA速蘸后对岷江百合鳞片扦插繁殖的影响
注:大写字母为极显著差异,显著水平为0.01。小写字母为显著差异,显著水平为0.05。
IBA和NAA两种激素同时使用对岷江百合鳞片鳞茎发生率、成活率的影响作用显著,除A6、A7、A8、A9这四组外,其余组的岷江百合扦插繁殖结果均高于对照组。随着两种激素的浓度逐渐增高,对小鳞茎的产生造成了一定的抑制作用。在A1时,鳞茎发生率最高,比最低组A9大36.7%。而两种激素同时作用对岷江百合鳞片扦插的成活率的影响却是不同的结果,A9组的成活率最高,为100%;最低的是A6组,为73.3%。从平均繁殖系数的结果分析,可以得出:A1组的平均繁殖系数最高,比最低的A6、A7组大46%,且除A6、A7、A8这三组外,其余各组的平均繁殖系数都高于对照组(见表5)。
表5 IBA和NAA同时使用对岷江百合鳞片扦插繁殖的影响
编号 | 鳞茎发生率 | 成活率 | 平均繁殖系数 |
CK | 0.267±0.058BDc | 0.867±0.058ABa | 0.27 |
A1 | 0.467±0.058ADa | 0.967±0.058Aa | 0.63 |
A2 | 0.367±0.058ABDbd | 0.967±0.058Aa | 0.43 |
A3 | 0.367±0.058ABDbd | 0.867±0.058ABb | 0.43 |
A4 | 0.367±0.000BDbd | 0.933±0.058Aa | 0.43 |
A5 | 0.300±0.000BCc | 0.900±0.100ABa | 0.35 |
A6 | 0.200±0.058Cc | 0.733±0.058Bc | 0.17 |
A7 | 0.133±0.058Cc | 0.767±0.058Bbc | 0.2 |
A8 | 0.133±0.00Cc | 0.967±0.058Aa | 0.17 |
A9 | 0.100±0.058Dd | 1.000±0.058Aa | 0.43 |
注:大写字母为极显著差异,显著水平为0.01。小写字母为显著差异,显著水平为0.05。
通过对IBA、NAA进行单一激素和两种激素同时使用的试验,发现IBA和NAA两种激素同时作用效果更为显著。
单一激素作用,经过4h浸泡处理后,在IBA浓度为100mg/L,鳞茎发生率最高,为40%,比IBA在50mg/L浓度时高25%;同时,繁殖系数也是最高,为60%,比IBA在50mg/L浓度时高40%。通过快速蘸取三种不同浓度的NAA后,对岷江百合鳞茎发生率产生的影响效果均低于对照组。两种分别作用的单一激素对岷江百合鳞片扦插的成活率没有影响。
IBA和NAA同时使用对岷江百合鳞片鳞茎发生率、成活率的影响作用显著,试验发现,随着两种激素的浓度逐渐增高,对小鳞茎的产生造成了一定的抑制作用。在A1时,鳞茎发生率最高,比最低组A9大36.7%。
本领域的普通技术人员将会意识到,这里所述的实施例是为了帮助读者理解本发明的原理,应被理解为本发明的保护范围并不局限于这样的特别陈述和实施例。本领域的普通技术人员可以根据本发明公开的这些技术启示做出各种不脱离本发明实质的其它各种具体变形和组合,这些变形和组合仍然在本发明的保护范围内。
Claims (4)
1.岷江百合鳞片扦插方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1、选择岷江百合鳞片:选择品种优良的岷江百合鳞球,用0.1%多菌灵浸泡种球30min,然后去掉岷江百合种球外面老死或坏掉的两到三层鳞片,再将剩余的鳞片剥下,用0.5%高锰酸钾消毒8min,放置阴凉处自然晾晒24h;
S2、准备培养盆和扦插基质:选择泥炭和珍珠岩按1:1的比例混合作为扦插基质,然后用适量的多菌灵干粉末混匀在基质中,将扦插基质放置在消毒后的培养盆中;
S3、将岷江百合鳞片进行激素处理:将岷江百合鳞片用50mg/L的NAA进行速蘸处理,然后将岷江百合鳞片在30mg/L的IBA中浸泡4h;
S4、采用埋片扦插的方式进行扦插:扦插基床高度不低于5cm:先平铺3cm后的基质,再将用激素处理好的鳞片凹面向上平放于基质上,相邻鳞片间隔1cm,最后覆盖上2cm厚的基质。
2.根据权利要求1所述的岷江百合鳞片扦插方法,其特征在于,所述步骤S2中,培养盆用0.5%的高锰酸钾进行擦拭消毒。
3.根据权利要求1所述的岷江百合鳞片扦插方法,其特征在于,所述步骤S2中,对扦插基质进行如下处理:选择泥炭和珍珠岩按1:1的比例混合作为扦插基质,将配制好的扦插基质用开水消毒,具体操作为:将100℃的沸水倒入准备好的基质中,使基质完全被淹没;消毒10min后,将基质倒在滤网上,用滤网悬挂于阴凉处1-2天,滤去多余水分;基质含水量以手轻握基质不出水为准。
4.根据权利要求1所述的岷江百合鳞片扦插方法,其特征在于,所述步骤S2中,多菌灵干粉末与扦插基质的比例为:每15g多菌灵与30L扦插基质相配比。
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