CN110511929B

CN110511929B - 一种在水稻茎节和穗特异表达的启动子gms1p及其应用

Info

Publication number: CN110511929B
Application number: CN201810847326.6A
Authority: CN
Inventors: 黄培劲; 龙湍; 唐杰; 吴春瑜; 刘昊; 李佳林; 李新鹏; 曾翔; 吴永忠
Original assignee: Hainan Bolian Rice Gene Technology Co ltd
Current assignee: Hainan Bolian Rice Gene Technology Co ltd
Priority date: 2018-07-27
Filing date: 2018-07-27
Publication date: 2021-03-02
Anticipated expiration: 2038-07-27
Also published as: CN110511929A

Abstract

本发明公开了一种在水稻茎节和穗特异表达的启动子GMS1P及其应用，涉及基因工程与分子生物学领域。本发明启动子GMS1P具有SEQ ID No：1所示的核苷酸序列，本发明进一步提供含有启动子GMS1P的表达载体、基因表达盒，工程菌或细胞系。本发明还提供了扩增茎节和穗特异性启动子的引物对。本发明的茎节和穗特异启动子为水稻内源基因，对水稻基因工程十分有利，能够驱动外源基因在茎节和穗中特异性表达且表达水平精确，提供了驱动外源基因在水稻茎节和穗中特异性表达的新方法。

Description

一种在水稻茎节和穗特异表达的启动子GMS1P及其应用

技术领域

本发明涉及基因工程与分子生物学领域，具体地说，涉及水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P及其应用。

背景技术

转录调控是植物基因表达调控的主要形式之一，由顺式作用元件和反式作用因子协调完成。启动子是植物基因转录调控中最重要顺式元件之一，一般位于基因5′端上游区，是RNA聚合酶及一些反式作用因子的识别与结合位点。启动子主要包含核心启动子区与转录调控区两个功能区。核心启动子区是启动转录的最短启动子片段，一般为40nt，是一段被RNA聚合酶家族I、II和III识别和结合的DNA序列。此区域包含一些重要的功能元件，能够准确的定位转录起点及方向，是基因表达调控的基础。转录调控区域位于核心启动子的上游(或下游)，可与特异的转录因子相结合从而对转录的时空和强弱起调控作用，如增强子和沉默子等。深入研究启动子的表达模式既有利于理解基因的表达调控机制和生物学功能，又有助于控制外源基因的表达。

启动子按其表达方式可分为组成型启动子、诱导型启动子和时空特异型启动子等三类。组成型启动子能在所有或大多数组织中启动基因转录，使基因表达具有时空持续性和表达量恒定性。烟草花叶病毒的35S启动子，水稻的Actin启动子以及玉米的Ubiquitin启动子都属于组成型启动子。组成型启动子广泛应用于植物的基因工程研究中，用于目标基因，如抗虫和抗除草剂基因的超表达。诱导型启动子能在某些物理或化学信号的刺激下启动或大幅提高基因表达。它们具增强子、沉默子或类似功能的序列结构，并有明显的专一性。诱导型启动子根据诱导信号的不同可以分为光诱导启动子、热诱导启动子、低温诱导启动子、干旱诱导启动子、创伤诱导启动子、激素诱导启动子等。时空特异型启动子只在特定的生长阶段或部位中启动基因表达。组织特异性启动子是时空特异型启动子的一种，只在特定细胞、组织或器官中启动表达。在植物的遗传转化中运用组织特异表达的启动子控制目标基因的表达能更有效的避免使用组成型启动子带来的潜在负作用，如能减少组成型表达增加的代谢负担，降低转基因食品安全风险及对与环境的不良影响，以及重复使用相同启动子引发的基因沉默等。目前已开发的水稻组织特异启动子的种类多种多样，在根、茎、叶、种子和果实等几乎各种组织中都发现了有组织特异性表达的启动子。

稻穗是水稻的生殖器官，稻穗的发育决定了水稻的结实率、千粒重、穗粒数、粒型、垩白粒率、垩白度、胶稠度、糊化温度、直链淀粉含量、蛋白质含量等产量和品质等农艺性状。茎是水稻地上部的支撑结构，控制着稻穗和根之间空气、水分、养分的运输。而茎节是节间分生组织的所在部位，是节间的连接点，是茎发育的调控节点。寻找在茎节和穗同时特异性表达的启动子，将有助于高产、优质、抗倒、营养高效水稻品种的选育。目前，茎节和穗特异性表达启动子的克隆和应用尚不多见。

发明内容

本发明的目的是提供一种植物茎节和穗特异性启动子及其应用。

本发明提供的一种植物茎节和穗特异性启动子GMS1P，其为具有：

1)SEQ ID No：1所示的核苷酸序列，

或2)在SEQ ID No：1所示的核苷酸序列中经取代、缺失或添加一个或几个核苷酸且具有同等茎节和穗特异性启动功能的由1)衍生的核苷酸序列；

或3)与SEQ ID No：1所示的核苷酸序列互补的序列。

其中，2)所述的由1)衍生的核苷酸序列，与1)所述的核苷酸序列为与1)相比具有70％以上同源性，且具有同等茎节和穗特异性启动子功能的核苷酸序列。

本领域技术人员根据相同目的能够容易地鉴定并利用与植物茎节和穗特异性启动子GMS1P核苷酸序列互补的DNA分子，因此，具有启动子活性并在严格条件下能与本发明启动子序列或其片段杂交的DNA序列包括在本发明中。其中，所述核苷酸序列互补，是指在严格条件下能与GMS1P杂交。

严格条件是指探针将与其靶序列杂交至可探测程度超过与其它序列杂交(如至少2倍于背景)的条件。严格条件具有序列依赖性，且因实验其它条件的不同而不同。通过控制杂交和/或洗涤条件的严格性，可以鉴定与探针100％互补的靶序列(同源探测)。可选择地，可以调节严格条件以允许一些序列错配，使得探测到较低程度的相似性(异源探测)。通常，探针长度不超过1000个核苷酸，优选地短于500个核苷酸。

典型地，严格条件是在pH值7.0-8.3下盐浓度低于大约1.5M Na离子，典型地大约0.01-1.0M Na离子浓度(或其它盐类)，温度对短探针(如10-50个核苷酸)至少大约30℃，对长探针(如超过50个核苷酸)至少大约60℃。通过添加去稳定剂如甲酰胺也可获得严格条件。低严格条件，例如，包括在30-35％甲酰胺、1M NaCl、l％SDS(十二烷基磺酸钠)的缓冲溶液中37℃杂交，在1×至2×SSC(20×SSC＝3.0MNaCl/0.3M柠檬酸三钠)中50-55℃洗涤。中度严格条件，例如，包括在40-45％甲酰胺、1.0M NaCl、l％SDS的缓冲溶液中37℃杂交，在0.5×至1×SSC中55-60℃洗涤。高度严格条件，例如，包括在50％甲酰胺、1M NaCl、l％SDS的缓冲溶液中37℃杂交，在0.1×SSC中60-65℃洗涤。非必要地，洗涤缓冲液可含有大约0.1％-1％的SDS。杂交时间一般少于大约24小时，通常大约4-12小时。

特别典型地是杂交后洗涤的函数，关键因素是最终洗涤溶液的离子强度和温度。对于DNA-DNA杂交体，Tm可以从Meinkoth和Wahl(Anal Biochem，1984，138：267-284)的方程估算:Tm＝81.5℃+16.6(logM)+0.41(％GC)-0.61(％form)-500/L；其中M是单价阳离子的摩尔浓度，％GC是鸟嘌呤核苷酸和胞嘧啶核苷酸在DNA中的百分比，％form是甲酰胺在杂交溶液中的百分比，L是杂交体在碱基对中的长度。Tm是50％互补靶序列与完全配对探针杂交的温度(在规定的离子强度和pH下)。每1％的错配需Tm降低大约l℃；因此，Tm杂交和/或洗涤条件可被调节以与所需同一性的序列杂交。例如，如果探寻的序列具有≥90％的同一性，Tm可以降低10℃。一般地，选择的严格条件是低于特定序列的热解链温度(Tm)大约5℃，且其在规定的离子强度和pH下互补。但是，高度严格条件可以应用低于热解链温度(Tm)1、2、3或4℃的杂交和/或洗涤；中度严格条件可以应用低于热解链温度(Tm)6、7、8、9或10℃的杂交和/或洗涤；低度严格条件可以应用低于热解链温度(Tm)11、12、13、14、15或20℃的杂交和/或洗涤。本领域普通技术人员会理解杂交和/或洗涤溶液的条件随严格度的变化而变化，并应用此方程计算杂交和洗涤组合物和所需的Tm。如果所需的错配程度使Tm低于45℃(水溶液)或32℃(甲酰胺溶液)，优选增加SSC浓度以能够使用较高的温度。核酸杂交的指南见于Tijssen(1993)生物化学和分子生物学实验室技术一用核酸探针杂交，第I部分，第2章(Elsevier，New York)；和Ausubel等人编辑(1995)分子生物学现代方法第2章(GreenePublishing and Wiley-Interscience,New York)。见Sambrook等人(1989)分子克隆:实验室手册(第二版，Cold Spring Harbor Laboratory Press,Plainview,NewYork)。

所述严格条件优选为在6×SSC(柠檬酸钠)、0.5％SDS(十二烷基磺酸钠)的溶液中，在65℃下杂交，然后用2×SSC、0.1％SDS和1×SSC、0.1％SDS各洗膜1次。

本发明提供含有本发明所述植物茎节和穗特异性启动子GMS1P的基因表达盒、表达载体和含有所述表达载体的宿主细胞。

所述基因表达盒为在茎节和穗特异性启动子GMS1P的下游连接有结构基因、调节基因、结构基因的反义基因、调节基因的反义基因或能够干扰内源基因表达的小RNA基因的表达盒。

本发明进一步提供含有上述茎节和穗特异性启动子GMS1P的基因表达盒的植物茎节和穗。

本发明提供了上述水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P或含有其的表达盒、表达载体或宿主细胞在驱动外源基因在植物茎节和/或穗中特异性表达的应用。

本发明提供了水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P或含有其的表达盒、表达载体或宿主细胞在制备转基因植物中的应用。

所述转基因植物为外源基因在茎节和穗中特异表达的转基因植物，优选为授粉/受精能力增强/削弱的转基因植物，更优选为雄性不育转基因植物。

所述植物包括而不限于水稻、玉米、高梁、大麦、燕麦、小麦、粟、甘蔗、大豆、芸苔属物种、棉花、红花、烟草、苜蓿和向日葵。

本发明还提供了扩增所述茎节和穗特异性启动子GMS1P的引物对，所述引物对的核苷酸序列为SEQ ID NO：2-3。

本发明提供一种扩增茎节和穗特异性启动子GMS1P的方法，其为通过SEQ ID NO：2-3引物对PCR扩增茎节和穗特异性启动子GMS1P的核苷酸序列。

本发明还提供驱动外源基因在茎节和穗中特异性表达的方法，包括如下步骤：

将本发明的水稻茎节和穗特异启动子GMS1P和目的外源基因克隆到载体中得到含有GMS1P和目的外源基因的表达盒的重组表达载体，并将其引入植物基因组，得到外源基因在茎节和穗中特异表达的转基因植物。

本发明提供的茎节和穗特异启动子GMS1P具有如下优点：

1)茎节和穗特异启动子GMS1P为水稻内源基因，对水稻转基因工程十分有利，有利于驱动外源基因在植物茎节和穗中特异性表达。

2)茎节和穗特异启动子GMS1P驱动GUS基因特异性表达实验表明，茎节和穗特异启动子GMS1P驱动外源基因在茎节和穗中特异性表达的表达水平精确。

3)本发明提供了一种驱动外源基因在茎节和穗中特异性表达的新方法。

附图说明

图1是实施例2中茎节和穗特异性启动子GMS1P的重组表达载体p1300gus-GMS1P的载体图。

图2是实施例3中转基因组植株的PCR阳性检测琼脂糖胶电泳图。M，marker；ddH₂O，双蒸水；DNA，中花11基因组DNA；Vector，p1300gus-GMS1P质粒。

图3是实施例4中转基因中花11五期(A)和六期(B)幼穗的GUS染色照片。

图4是实施例4中转基因中花11七期幼穗小穗解剖前(A)、后(B)的GUS染色照片。

图5是实施例4中转基因中花11抽穗期第二(左)和基部(右)茎节的GUS染色照片。

具体实施方式

以下实施例用于说明本发明，但不用来限制本发明的范围。在不背离本发明精神和实质的情况下，对本发明方法、步骤或条件所作的修改或替换，均属于本发明的范围。

若未特别指明，实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段。

实施例1水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P的获取

1.水稻基因组DNA的提取

使用植物DNA分离试剂盒(成都福际生物技术有限公司)提取水稻基因组DNA。基因组来源于水稻品种日本晴的新鲜叶子。提取的基因组DNA分装后于-20℃保存备用。

2.GMS1P的PCR引物设计与扩增

引物设计使用Gibson Assembly方法，扩增产物插入到1300GUSplus载体Nco I和Hind III酶切位点。扩增GMS1P的引物序列如SEQ ID NO：2和SEQ ID NO：3所示。其中上下游引物5’端均有15个左右核苷酸序列与载体相应连接位置重叠，以便Gibson Assembly连接。

PCR反应体系(100μL)：

DNA模板：3μL(50ng)

KOD聚合酶(购自东洋坊公司)：2μL

10X buffer：10μL

10μM正向引物：3μL

10μM反向引物：3μL

10mM dNTP：10μL

MgSO₄：4μL

1/10DMSO：20μL

ddH₂O：45μL

PCR程序：预变性95℃，4min。变性94℃，30s；退火50℃，30s；延伸68℃，2.5min；35个循环。延伸68℃，10min。

扩增产物包含411bp的茎节和穗特异性启动子GMS1P(序列如SEQ ID NO：1)。

实施例2构建启动子GMS1P的重组表达载体p1300gus-GMS1P

将实施例1中获得的PCR产物在1％琼脂糖凝胶中进行电泳，回收440bp左右大小的条带。用Nco I及Hind III双酶切载体p1300GUSplus，回收线性酶切载体。

用Lightening Cloning Kit(金福塞(北京)生物科技有限公司)对PCR回收产物和线性化p1300GUSplus空载体进行连接，10μL体系如下：2.5μL回收产物(50ng)，2.5μL酶切载体(100ng)，5μL Ligation Mix。连接程序：50℃，60min。

取上述连接产物5μL电击转化大肠杆菌感受态细胞。使用引物SEQ ID NO：4和SEQID NO：5进行菌落PCR，挑选阳性克隆测序验证。测序正确的载体命名为p1300gus-GMS1P(图1)。p1300GUSplus载体含有GUS基因。表达GUS基因的组织经染色后呈现蓝色，可用于指示启动子的表达部位和强度。

实施例3转p1300gus-GMS1P的水稻的获得

取-70℃保存的农杆菌EHA105于含50μg/mL利福平平板划线，28℃培养。挑取单菌落接种于50mL YEB液体培养基中，220rpm 28℃振荡培养12-16hr。取2mL菌液转接于100mL(含有抗生素)YEB液体培养基中，28℃220rpm振荡培养至OD600＝0.5。冰上预冷10分钟，5000rpm离心10min(冷冻离心机预冷到4℃)。无菌去离子水洗2次(每次10mL)，10％甘油洗1次溶于3mL 10％甘油中。取100μL感受态细胞加1μL实施例1中得到的p1300gus-GMS1P质粒，2.5KV电击转化。在含有卡那霉素和利福平的YEB培养板上28℃培养，挑选阳性克隆，用p1300GUSplus载体特异性引物SEQ ID NO：4和SEQ ID NO：5进行PCR验证。

验证正确的克隆，通过农杆菌介导的遗传转化法侵染水稻中花11(Hiei Y OhtaS,Komari T,Kumashiro T(1994)Efficient transformation of rice(Oryza sativa L.)mediated by Agrobacterium and sequence analysis of the boundaries of the T-DNA.The Plant Journal 6:271-282)。经共培养、筛选、分化、生根等步骤共获得T₀代转化植株21株。提取转化植株的叶片总DNA，使用引物SEQ ID NO：6和SEQ ID NO：7进行PCR阳性检测，结果表明所有植株都是转基因阳性植株(图2)。

实施例4转基因水稻GUS染色分析

配制GUS染色液X-Gluc反应液(50mM磷酸纳缓冲液，pH值7.0，0.5mM铁氰化钾，0.5mM亚铁氰化钾，0.5mg/mL X-Gluc，体积百分含量20％甲醇，0.1％Triton X-100)，随机选取10株以上在实施例3中获得的转基因阳性植株，采集根、茎、叶、穗等组织样品，浸泡在X-Gluc反应液中37℃孵育2h或过夜，然后用体积百分含量70％的乙醇脱去组织的叶绿体颜色后观察照相。如图3-5所示，五期幼穗的穗颈节、小穗以及小穗枝梗被染成了淡蓝色(图3的A图)。六期幼穗的穗颈节、小穗以及小穗枝梗、甚至部分主穗轴和一次枝梗都被染上明显蓝色(图3的B图)。在七期幼穗中，只有小穗被染成明显蓝色，其中内外粰和小穗轴染色明显(图4的A图)。去掉内外粰，可以看到雄蕊、雌蕊、浆片也被染成蓝色(图4的B图)。茎组织的染色中，只有茎节被染成蓝色(图5)。转基因水稻的根和叶中未见明显蓝色。上述结果表明GMS1P启动子可驱动GUS基因在水稻茎节和穗中特异性表达。

虽然，上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述，但在本发明基础上，可以对之作一些修改或改进，这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此，在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进，均属于本发明要求保护的范围。

序列表

<110> 海南波莲水稻基因科技有限公司

<120> 一种在水稻茎节和穗特异表达的启动子GMS1P及其应用

<130> KHP181114255.8

<160> 7

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 411

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 1

gttgagggaa gcaaagtaga cttagggcct gttcactttg atgaaaaaaa aaaccttacc 60

aaattttggt aggcaacttg ccaaaatttt ggcaggattt cttatatagt tatcaaaatt 120

tggcagcaaa ttaaatatag tcactttttt ggcaaattta ctaaaatttg gtaaggttga 180

aaatgacatc aaagtaaaca ggcccttatt acccacggga atggtgtggg gtgggctggt 240

aatataagcc cagaaaccaa tccatccagc ccagcaactg cgaggtcggc tgctagtcta 300

acgtgcaccc aagccatcac cccacacgtg aaaaatcccc gctccacccg cgccgcgccg 360

cgcccaggta gttcagccgc gcgccaaccc aagctcgctc gccggccgga a 411

<210> 2

<211> 37

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

gcttgcatgc ctgcagttga gggaagcaaa gtagact 37

<210> 3

<211> 37

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

taccctcaga tctaccattt ccggccggcg agcgagc 37

<210> 4

<211> 27

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

gatcagttta aagaaagatc aaagctc 27

<210> 5

<211> 25

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 5

ctgcaaggcg attaagttgg gtaac 25

<210> 6

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 6

cttagccaga cgagcgggtt c 21

<210> 7

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 7

gcttctgcgg gcgatttgt 19

Claims

1.水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P，其特征在于，其核苷酸序列如SEQ ID No：1所示。

2.含有权利要求1所述水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P的基因表达盒。

3.含有权利要求1所述水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P的表达载体。

4.权利要求1所述的水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P或含有其的表达盒、表达载体在驱动外源基因在植物茎节和/或穗中特异性表达的应用。

5.权利要求1所述的水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P或含有其的表达盒、表达载体在制备转基因植物中的应用。

6.权利要求1所述的水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P或含有其的表达盒、表达载体在制备转基因水稻中的应用。

7.扩增权利要求1所述水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P的引物对，其特征在于，所述引物对的核苷酸序列为SEQ ID NO：2-3所示的核苷酸序列。

8.权利要求7所述的引物对在制备外源基因在水稻茎节和穗特异表达的转基因水稻中的应用。

9.驱动外源基因在植物茎节和穗中特异性表达的方法，其特征在于，包括如下步骤：将权利要求1所述的水稻茎节和穗特异性启动子GMS1P和目的外源基因导入到载体中得到含有GMS1P和目的外源基因的表达盒的重组表达载体，并将其引入植物基因组，得到外源基因在茎节和穗中特异表达的转基因植物。