CN110403967B - 一种增加人参皂苷Rg3、Rh2含量的人参加工方法及得到的加工人参和应用 - Google Patents
一种增加人参皂苷Rg3、Rh2含量的人参加工方法及得到的加工人参和应用 Download PDFInfo
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Abstract
本发明提供了一种增加人参皂苷Rg3、Rh2含量的人参加工方法及得到的加工人参和应用。本发明人参加工方法包括:将蒸制和干燥后的人参以液体辅料浸润,然后进行再次蒸制和干燥;所述液体辅料包括:米醋和任选的其他辅料;其中,所述其他辅料包括:黄酒,吴茱萸汁,白酒,盐水,蜂蜜,炼蜜,甘草汁,黑豆汁,姜汁,米泔水,胆汁,皂角汁,白矾水,鲜竹沥,以及黄连汁中的至少一种。本发明中,通过以液体辅料对人参进行浸润处理,并配合特定的蒸制和干燥处理步骤,能够有效促进人参二醇组皂苷转化为Rg3、Rh2等稀有皂苷,并得到Rg3、Rh2含量更高的人参制品,提高其作为抗肿瘤和癌症转移药物的治疗效果。
Description
本申请要求申请日为2019年6月13日,申请号为201910512654.5,发明名称为“一种增加人参皂苷Rg3、Rh2含量的人参加工方法及得到的加工人参和应用”的在先申请的优先权,该在先申请的全部内容均已在本申请中体现。
技术领域
本发明涉及中药加工领域,具体而言,涉及一种增加人参皂苷Rg3、Rh2含量的人参加工方法及得到的加工人参和应用。
背景技术
人参为五加科植物人参(Panax ginseng C.A.Mey.)的干燥根和根茎,具有很高的药用价值和历史文化价值,被誉为“草药之王”,在科学研究领域和国际市场一直占有极其重要的地位,已经被传统医学乃至全世界广泛应用。人参性平,味甘、微苦,微温,具有大补元气、复脉固脱、补脾益肺、生津止渴、安神益智之功效。现代临床医学和药理学研究表明,人参主要具有提高机体免疫力、抗疲劳、抗肿瘤、降血糖以及抗炎等效用,因此在医学及养生方面具有可观的价值。
已有研究证实,人参皂苷Rg3、Rh2等人参稀有皂苷具有抗肿瘤和转移的作用,这些稀有皂苷是通过人参加工过程中的梅拉德反应而产生的。由于人参的加工工艺不同,导致人参加工品中诸如人参皂苷Rg3、Rh2等人参稀有皂苷的含量参差不齐。尽管已有人参皂苷Rg3、Rh2单体产品出现,但价格十分昂贵,而且产物收率极低,制备过程对环境污染严重。
传统的人参加工工艺中,主要是通过采用九蒸九曝的方法,以制备具有高人参皂苷 Rg3、Rh2含量的人参制品,但该加工方法得到的人参制品中,Rg3、Rh2的含量并不尽如人意。
有鉴于此,特提出本发明。
发明内容
本发明的第一目的在于提供一种增加人参皂苷Rg3、Rh2含量的人参加工方法,本发明方法能够得到高人参皂苷Rg3、Rh2含量的人参制品,具有良好的抗肿瘤和抑制肿瘤转移功效。
本发明的第二目的在于提供一种由本发明人参加工方法所得到的加工人参。
本发明的第三目的在于提供一种本发明加工人参的应用。
为了实现本发明的上述目的,特采用以下技术方案:
一种增加人参皂苷Rg3、Rh2含量的人参加工方法,包括:将蒸制和干燥后的人参以液体辅料浸润,然后进行再次蒸制和干燥;所述液体辅料包括:米醋和任选的其他辅料;优选的,所述米醋中含总酸3.5-5mg/100ml;
其中,所述其他辅料包括:黄酒,吴茱萸汁,白酒,盐水,蜂蜜,炼蜜,甘草汁,黑豆汁,姜汁,米泔水,胆汁,皂角汁,白矾水,鲜竹沥,以及黄连汁中的至少一种;优选的,液体辅料浸润的时间为3-90min;更优选的,液体辅料浸润的时间为5-60min。
同时,本发明还提供了由本发明方法所得到的加工人参。
进一步的,本发明也提供了加工人参在制备肿瘤治疗药物中的应用。
与现有技术相比,本发明的有益效果为:
(1)本发明中,通过以液体辅料对人参进行浸润处理,并配合特定的蒸制和干燥处理步骤,能够有效促进人参二醇组皂苷转化为Rg3、Rh2等稀有皂苷,并得到Rg3、 Rh2含量更高的人参制品,提高其作为抗肿瘤和癌症转移药物的治疗效果。
(2)本发明方法操作简便,无需复杂处理,不仅可以降低成本、减少环境污染,而且所得加工人参使用安全,具有更好的预防和治疗癌症效果。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,以下将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍。
图1为实验例3中正常组小鼠肝转移结节情况示意图;
图2为实验例3中模型组小鼠肝转移结节情况示意图;
图3为实验例3中实施例1高剂量组小鼠肝转移结节情况示意图;
图4为实验例3中实施例1低剂量组小鼠肝转移结节情况示意图;
图5为实验例3中实施例2高剂量组小鼠肝转移结节情况示意图;
图6为实验例3中实施例2低剂量组小鼠肝转移结节情况示意图;
图7为实验例3中实施例3高剂量组小鼠肝转移结节情况示意图;
图8为实验例3中实施例3低剂量组肝转移结节情况示意图;
图9为实验例3中阳性组小鼠肝转移结节情况示意图。
具体实施方式
下面将结合实施例对本发明的实施方案进行详细描述,但是本领域技术人员将会理解,下列实施例仅用于说明本发明,而不应视为限制本发明的范围。实施例中未注明具体条件者,按照常规条件或制造商建议的条件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市售购买获得的常规产品。
有鉴于现有人参加工方法所存在着的环境污染,以及所得到的人参制品中人参稀有皂苷含量低等问题,本发明特提供了一种能够增加加工后人参中Rg3,Rh2等人参稀有皂苷含量的人参加工方法,以解决现有加工方法所存在的问题。
本发明所提供的人参加工方法步骤可参考如下:
(i)将预处理后的人参进行蒸制和干燥;
在本发明的一些实施方式中,待加工的人参为新鲜人参,在进行加工前,需要对原料人参进行预处理。
在本发明的优选一些实施方式中,所述预处理包括:将人参清洗后除杂,然后干燥;
其中,所述干燥包括:将除杂后人参表面的水控干后,将其放置于烘箱内进行低温干燥;
所述低温干燥优选为:在40-80℃(例如可以为,但不限于50、60、70℃等,优选为45-70℃)条件下,干燥2-15h(例如可以为,但不限于3、5、10、12h等,优选为 3-12h);
在本发明的一些实施方式中,预处理后的人参是在90-105℃(例如可以为,但不限于95、100℃等)条件下蒸制2-10h(例如可以为,但不限于3、5、8h等)后,再在 40-80℃(例如可以为,但不限于45、50、60、65、70、75℃等)条件下干燥3-12h(例如可以为,但不限于4、6、8、10、12h等);然后按照如上步骤,重复蒸制和干燥处理人参至少一次。
在本发明优选的一些实施方式中,是将预处理后的人参进行两次蒸制和干燥处理;
优选的,第一次蒸制和干燥处理包括:在90-105℃(例如可以为,但不限于95、 100℃等,优选为96-102℃)条件下蒸制2-8h(例如可以为,但不限于3、4、5、6、 7h等,优选为2-6h)后,再在45-75℃(例如可以为,但不限于50、60、70℃等,优选为50-70℃)条件下干燥3-12h(例如可以为,但不限于4、6、8、10h等,优选为 4-12h);
第二次蒸制和干燥处理包括:将第一次蒸制和干燥处理后的人参在95-105℃(例如可以为,但不限于98、100℃等,优选为98-102℃)条件下蒸制5-10h(例如可以为,但不限于6、7、8、9h等,优选为6-8h)后,再在40-70℃(例如可以为,但不限于 45、50、55、60、65℃等,优选为45-65℃)条件下干燥3-12h(例如可以为,但不限于5、8、10h等,优选为4-12h)。
(ii)蒸制和干燥后的人参以液体辅料浸润。
将蒸制和干燥处理后的人参以药食同源的特殊辅料处理,以促进人参二醇组皂苷转化为人参稀有皂苷,是本发明的创新性之一。
在本发明的一些实施方式中,此步骤中,是将步骤(i)中蒸制和干燥处理的人参以液体辅料进行浸润处理,并使得人参将液体辅料完全吸收;
此步骤中,所用液体辅料包括:米醋和任选的其他辅料;
其中,所述米醋中总酸含量(以醋酸计)为:3.5-5mg/100ml,例如,但不限于 4,4.5mg/100ml等;
其中,所述其他辅料包括:黄酒,吴茱萸汁,白酒(优选乙醇含量为55-60%),食盐水(优选浓度为2%),蜂蜜,炼蜜,甘草汁,黑豆汁,姜汁,米泔水,胆汁,皂角汁,白矾水(优选浓度为12.5%),鲜竹沥,以及黄连汁中的至少一种。
在本发明优选的一些实施方式中,所述液体辅料包括:米醋和其他辅料;其中,米醋和辅其他料的重量(克数)比为100:(10-100),例如可以为,但不限于100:20, 100:30,100:50,100:70,100:90等;
米醋和其他辅料的重量(克数)比优选为100:(15-80);
米醋和其他辅料的重量(克数)比更优选为100:(20-50)。
在本发明优选的一些实施方式中,蒸制和干燥后的人参与液体辅料的重量(克数)比为100:(1-50),例如可以为,但不限于100:5,100:10,100:20,100:30,100:40 等;
蒸制和干燥后的人参与液体辅料的重量(克数)比优选为100:(3-40);
蒸制和干燥后的人参与液体辅料的重量(克数)比更优选为100:(5-30)。
在本发明优选的一些实施方式中,蒸制和干燥后的人参在液体辅料中的浸润时间为3-90min,例如可以为,但不限于5、15、30、45、60、75min等;
更优选的,液体辅料浸润的时间为5-60min。
(iii)将浸润后的人参进行再次蒸制和干燥。
此步骤中,是将步骤(ii)中浸润处理后的人参再次进行蒸制和干燥处理。
在本发明的一些实施方式中,此步骤中,是将浸润后的人参在90-105℃(例如可以为,但不限于95、100℃等)条件下蒸制2-15h(例如可以为,但不限于3、5、8、 10、12h等)后,再在30-80℃(例如可以为,但不限于35、40、45、50、60、70、 75℃等)条件下干燥2-15h(例如可以为,但不限于3、5、8、10、12h等),然后重复如上步骤,再进行至少三次蒸制和干燥处理。
在本发明优选的一些实施方式中,此步骤包括:
(a)将浸润后的人参在95-105℃(例如可以为,但不限于97、100、102℃等,优选为95-102℃)蒸制2-15h(例如可以为,但不限于3、6、8、12h等,优选为3-12h) 后,在40-80℃(例如可以为,但不限于45、50、60、70、75℃等,优选为50-70℃) 条件下干燥2-15h(例如可以为,但不限于3、6、8、12h等,优选为2-12h);
(b)将步骤(a)中蒸制和干燥处理后的人参在95-105℃(例如可以为,但不限于98、100、102℃等,优选为96-102℃等)条件下蒸制2-8h(例如可以为,但不限于 3、6h等,优选为2-6h)后,在30-80℃(例如可以为,但不限于40、50、60、70℃等,优选为40-70℃)条件下干燥2-15h(例如可以为,但不限于3、6、9、12h等,优选为2-12h);
然后,重复步骤(b)至少两次(优选为2-5次)。
本发明如上的人参炮制方法中,以新鲜人参为原料,通过加入可促进人参二醇组皂苷转化为Rg3、Rh2等的药食同源特殊辅料,并通过控制蒸制时间和温度、蒸制次数、干燥温度和时间、辅料种类、辅料处理时间等条件,能够得到人参皂苷Rg3、Rh2含量更高的人参制品。
在经过如上蒸制和干燥,浸润,蒸制和干燥的加工处理后,所得到的稀有人参皂苷(Rg3、Rh2等)含量水平较高的加工人参能够进一步用于制备肿瘤治疗药物,并达到良好的抗肿瘤和抑制肿瘤转移等功效。
在本发明的一些实施方式中,可以将加工后的人参粉碎(例如超微粉碎)后,得到人参粉产品,并将其作为肿瘤治疗药物/肿瘤治疗药物功能成分。
在本发明的一些实施方式中,可以将加工后的人参粉碎/切片后,进行提取,并将所得提取物作为肿瘤治疗药物/肿瘤治疗药物功能成分。
实施例1
按照如下步骤,进行人参加工:
S1:取鲜人参,洗净,除杂,控干表皮水分。
S2:将步骤S1处理后的人参以烘箱干燥,并在50±0.5℃条件下干燥12小时。
S3:将步骤S2处理后的人参以蒸锅蒸制,并在98±0.5℃蒸制6小时,取出。然后,在60±0.5℃的烘箱中干燥12小时。
S4:将步骤S3处理后的人参在100±0.5℃的蒸锅中蒸制8小时,取出。然后,在 60±0.5℃的烘箱中干燥6小时。
S5:将步骤S4处理后的人参与含总酸5mg/100ml的米醋混匀,人参与米醋的重量比为100:15,浸润10分钟至米醋被完全吸收。然后,将人参在96±0.5℃的蒸锅中蒸制 3小时,取出。然后,在60±0.5℃的烘箱中干燥3.5小时。
S6:将步骤S5处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制4.5小时,取出。然后,在 55±0.5℃的烘箱中干燥3小时。
S7:将步骤S6处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制3小时,取出。然后,在 55±0.5℃的烘箱中干燥2小时。
S8:将步骤S7处理后的人参在98±0.5℃的蒸锅中蒸制2小时,取出。然后,在 50±0.5℃的烘箱中干燥6小时,得到实施例1的加工人参。
实施例2
按照如下步骤,进行人参加工:
S1:取鲜人参,洗净,除杂,控干表皮水分。
S2:将步骤S1处理后的人参以烘箱干燥,并在50±0.5℃条件下干燥12小时。
S3:将步骤S2处理后的人参以蒸锅蒸制,并在100±0.5℃蒸制3小时,取出。然后,在65±0.5℃的烘箱中干燥8小时。
S4:将步骤S3处理后的人参在101±0.5℃的蒸锅中蒸制7小时,取出。然后,在 60±0.5℃的烘箱中干燥10小时。
S5:将步骤S4处理后的人参与液体辅料混匀,人参与液体辅料的重量比为100:20,浸润30分钟至液体辅料被完全吸收;其中,所用液体辅料由含总酸3.5mg/100ml米醋与黄酒按照重量比100:50混合配制得到。
然后,将人参在99±0.5℃的蒸锅中蒸制8小时,取出。然后,在55±0.5℃的烘箱中干燥10小时。
S6:将步骤S5处理后的人参在99±0.5℃的蒸锅中蒸制6小时,取出。然后,在 60±0.5℃的烘箱中干燥2.5小时。
S7:将步骤S6处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制3小时,取出。然后,在60±0.5℃的烘箱中干燥2小时。
S8:将步骤S7处理后的人参在100±0.5℃的蒸锅中蒸制2.5小时,取出。然后,在60±0.5℃的烘箱中干燥3小时。
S9:将步骤S8处理后的人参在97.5±0.5℃的蒸锅中蒸制2.5小时,取出。然后,在50±0.5℃的烘箱中干燥10小时,得到实施例2的加工人参。
实施例3
按照如下步骤,进行人参加工:
S1:取鲜人参,洗净,除杂,控干表皮水分。
S2:将步骤S1处理后的人参以烘箱干燥,并在50±0.5℃条件下干燥3小时。
S3:将步骤S2处理后的人参以蒸锅蒸制,并在98±0.5℃蒸制6小时,取出。然后,在60±0.5℃的烘箱中干燥12小时。
S4:将步骤S3处理后的人参在100±0.5℃的蒸锅中蒸制8小时,取出。然后,在 60±0.5℃的烘箱中干燥6小时。
S5:将步骤S4处理后的人参与液体辅料混匀,人参与液体辅料的重量比为100:20,浸润30分钟至液体辅料被完全吸收;其中,所用液体辅料由含总酸5mg/100ml米醋与吴茱萸汁按照重量比100:50混合配制得到。
然后,将人参在99±0.5℃的蒸锅中蒸制3小时,取出。然后,在60±0.5℃的烘箱中干燥3.5小时。
S6:将步骤S5处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制4.5小时,取出。然后,在 55±0.5℃的烘箱中干燥3小时。
S7:将步骤S6处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制3小时,取出。然后,在 55±0.5℃的烘箱中干燥2小时。
S8:将步骤S7处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制2.5小时,取出。然后,在 55±0.5℃的烘箱中干燥3小时。
S9:将步骤S8处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制2小时,取出。然后,在 60±0.5℃的烘箱中干燥2小时。
S10:将步骤S9处理后的人参在98±0.5℃的蒸锅中蒸制2小时,取出。然后,在 60±0.5℃的烘箱中干燥2小时。
S11:将步骤S8处理后的人参在98±0.5℃的蒸锅中蒸制2小时,取出。然后,在 50±0.5℃的烘箱中干燥6小时,得到实施例3的加工人参。
实施例4
按照如下步骤,进行人参加工:
S1:取鲜人参,洗净,除杂,控干表皮水分。
S2:将步骤S1处理后的人参以烘箱干燥,并在65±0.5℃条件下干燥5小时。
S3:将步骤S2处理后的人参以蒸锅蒸制,并在96±0.5℃蒸制5小时,取出。然后,在55±0.5℃的烘箱中干燥8小时。
S4:将步骤S3处理后的人参在101±0.5℃的蒸锅中蒸制4小时,取出。然后,在 55±0.5℃的烘箱中干燥12小时。
S5:将步骤S4处理后的人参与液体辅料混匀,人参与液体辅料的重量比为100:15,浸润30分钟至液体辅料被完全吸收;其中,所用液体辅料由含总酸3.5mg/100ml米醋,12.5%的白矾水,鲜竹沥按照重量比100:5:20混合配制得到。
然后,将人参在96±0.5℃的蒸锅中蒸制6小时,取出。然后,在55±0.5℃的烘箱中干燥12小时。
S6:将步骤S5处理后的人参在98±0.5℃的蒸锅中蒸制6小时,取出。然后,在 45±0.5℃的烘箱中干燥6小时。
S7:将步骤S6处理后的人参在100±0.5℃的蒸锅中蒸制3小时,取出。然后,在 50±0.5℃的烘箱中干燥3小时。
S8:将步骤S7处理后的人参在101±0.5℃的蒸锅中蒸制2.5小时,取出。然后,在55±0.5℃的烘箱中干燥3小时。
S9:将步骤S8处理后的人参在98±0.5℃的蒸锅中蒸制3小时,取出。然后,在 50±0.5℃的烘箱中干燥6小时。
S10:将步骤S9处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制3.5小时,取出。然后,在45±0.5℃的烘箱中干燥3小时,得到实施例4的加工人参。
实施例5
按照如下步骤,进行人参加工:
S1:取鲜人参,洗净,除杂,控干表皮水分。
S2:将步骤S1处理后的人参以烘箱干燥,并在65±0.5℃条件下干燥3小时。
S3:将步骤S2处理后的人参以蒸锅蒸制,并在101±0.5℃蒸制3小时,取出。然后,在55±0.5℃的烘箱中干燥8小时。
S4:将步骤S3处理后的人参在99±0.5℃的蒸锅中蒸制6小时,取出。然后,在55±0.5℃的烘箱中干燥4小时。
S5:将步骤S4处理后的人参与液体辅料混匀,人参与液体辅料的重量比为100:30,浸润30分钟至液体辅料被完全吸收;其中,所用液体辅料由含总酸3.5mg/100ml米醋,蜂蜜,甘草汁,皂角汁按照重量比100:5:5:10混合配制得到。
然后,将人参在101±0.5℃的蒸锅中蒸制6小时,取出。然后,在60±0.5℃的烘箱中干燥6小时。
S6:将步骤S5处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制6小时,取出。然后,在 45±0.5℃的烘箱中干燥12小时。
S7:将步骤S6处理后的人参在99.5±0.5℃的蒸锅中蒸制6小时,取出。然后,在 65±0.5℃的烘箱中干燥9小时。
S8:将步骤S7处理后的人参在101±0.5℃的蒸锅中蒸制6小时,取出。然后,在 60±0.5℃的烘箱中干燥12小时,得到实施例5的加工人参。
实验例1加工人参中人参皂苷含量比较
分别以实施例1-3所得加工人参和市售红参为待检测物,进行不同加工方式人参皂苷含量测定。
待检测样品制备:将实施例1-3所得加工人参和市售红参分别粉碎后备用。
供试品溶液的制备:取过三号筛的各组人参粉末0.5g,加水饱和正丁醇25ml超声(250W,40KHz)60分钟,过滤,精密量取取续滤液10ml,回收溶剂至干,以甲醇转移至10ml量瓶中,定容至刻度,摇匀,滤过,取续滤液,即得。
对照品溶液的制备:分别精确称人参皂苷Rg1,人参皂苷Re,人参皂苷Rf,人参皂苷Rh1,人参皂苷S-Rg2,人参皂苷R-Rg2,人参皂苷Rb1,人参皂苷Ro,人参皂苷 Rc,人参皂苷Rb2,人参皂苷Rb3,人参皂苷Rd,人参皂苷S-Rg3,人参皂苷R-Rg3,人参皂苷Rh2 15种对照品约2mg,定容至10ml,即得。
色谱条件及系统适用性:超高效液相色谱仪Waters ACQUITY UPLC system,色谱柱Waters BEH C18 2.1×50mm 1.7μm,蒸发光检测器漂移管温度为75℃,气体压力为25psi,增益值为500。
以0.2%的乙酸为流动相A,以乙腈为流动相B,按下表中的规定进行梯度洗脱;柱温30℃,流速0.4mL/min,检测波长203nm,进样量10μl。
检测结果如下表1所示:
表1不同人参加工品中人参皂苷百分含量对比表
由如上表1检测结果可知,按照本发明方法所制备的3批人参加工品中,人参皂苷Rg3(S-Rg3,R-Rg3之和)、人参皂苷Rh2等人参稀有皂苷的含量均高于红参样品。
实验例2加工人参抑制A549肺癌试验
试药及动物:A549人腺癌细胞株(武汉博士得生物工程有限公司),90%DMEM高糖培养基(Gibco公司),10%胎牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司),DMSO (Gibco公司),胰蛋白消化酶250mg(Gibco公司),PBS液(参照《细胞培养》配制),注射用顺铂10mg/支(齐鲁制药有限公司),Balb/c裸鼠(北京维通利华动物技术有限公司)。
A549人腺癌细胞培养:A549人腺癌细胞培养于含10%FBS的DMEM培养基中,待细胞生长至对数生长期,采用0.25%的胰酶消化后1200r·min-1离心5min,细胞沉淀以PBS洗涤2次,去除血清,然后将细胞重悬于PBS中,将细胞浓度调整为每毫升 1×107个,每只小鼠于左侧肋骨接近腋窝部位的脂肪垫接种100μL。接种100只小鼠,造模10天后进行分组给药。
分组及给药:选取造模成功的小鼠,随机分为模型组,顺铂组,实施例1高、低,实施例2高、低,实施例3高、低剂量组,每组12只。各样品组灌胃给相应受试物,灌胃容积0.2ml/10g,每天一次,连续给样品5周。顺铂组腹腔注射给药,连续5天。另取6只小鼠不造模,作为正常对照组。
剂量设计:低剂量组0.5g/kg,高剂量组1.5g/kg。
(1)不同药物对小鼠体重的影响
不同试验组小鼠体重变化如表2、3所示:
与正常组比较,ΔΔP<0.01,模型组比较比较,P>0.05。
与正常组比较,ΔP<0.05,ΔΔP<0.01,与模型组比较,*P<0.05,**P<0.01。
由如上表2、3中实验数据可知,模型组体重给受试样品(蒸馏水)后,前2周体重有所增长,从第3周开始,体重有所降低。至第5周,小鼠消瘦明显,体重与正常组比较有明显降低,差异有显著性。阳性组小鼠给药后,小鼠体重从第1周开始就有所降低,从第2周开始,体重与正常组比较明显降低,差异有显著性,此现象一直持续到实验结束,并在第三周有一只小鼠死亡。表明阳性药物顺铂虽然有明显的抗肿瘤作用,但药物本身毒性也较大。
实施例1组小鼠给样前2周,体重有所增加,第3周开始,高剂量组体重基本停止增长,但与正常组比较,无显著性差异;低剂量组体重从第3周开始有所降低,出现一定消瘦,至第5周与正常组比较,体重减轻统计学有显著性差异。与模型组比较,实施例1高剂量组小鼠从第3周开始,小鼠体重降低程度有明显减轻,差异有显著性,低剂量组体重降低程度有一定减轻,但差异无显著性。
实施例2、实施例3组小鼠,给药前2周,体重有所增加,第3周开始,体重开始降低,出现消瘦,第5周后,体重与正常组比较,均有明显降低。与模型组比较,实施例2高、低小鼠体重降低程度有一定减轻,其中高剂量组在给样5周后体重降低程度明显减轻,有显著性差异,低剂量组无显著性差异;实施例3高、低剂量组小鼠体重降低程度有一定减轻,但无显著性差异。
(2)不同药物对小鼠瘤体体积影响
不同试验组小鼠肿瘤体体积变化如下表4、5所示:
与模型组比较比较,P>0.05。
与模型组比较,*P<0.05,**P<0.01。
由如上表4、5中实验结果数据可知,造模后10天,小鼠出现明显肿瘤生长;与模型组比较,给药1周后,各给药组瘤体体积有减小趋势,但无统计学差异,给药3周后,阳性组小鼠瘤体体积明显减小,差异有显著性(P<0.05),至给药后第5周,瘤体体积减小更为明显(P<0.01)。
实施例1高、低剂量组小鼠在灌胃3周后,瘤体体积开始出现减小趋势,至灌胃5周,瘤体体积明显减小,与模型组比较,差异均有显著性,其中高剂量组瘤体体积减小最为明显(P<0.01)。
实施例2样品高剂量在灌胃3周后,瘤体体积开始出现减小趋势,到灌胃5周,瘤体体积与模型组比较,有明显减小,差异有显著性(P<0.05)。低剂量在灌胃4周后瘤体体积有减小趋势,但与模型组比较,差异无显著性。
实施例3样品在灌胃3周后,小鼠瘤体体积开始有减小趋势,一直持续到实验结束,但差异无显著性。
(3)不同药物对小鼠瘤体重量影响
不同试验组小鼠肿瘤体重量变化如下表6所示:
与模型组比较,*P<0.05,**P<0.01。
由如上表6中的实验结果数据可知,与模型组比较,阳性组小鼠瘤体重量明显降低,差异有显著性(P<0.01)。实施例1高、低剂量组瘤体重量均有明显降低,差异有显著性(P<0.05)。实施例2和实施例3高、低剂量组瘤体重量有一定降低趋势,但差异无显著性。
(4)不同药物对小鼠血清中IL-2、TNF-α含量的影响
取各组高剂量组小鼠血清,ELISA法测定IL-2、TNF-α含量,结果如下表7所示:
组别 | 剂量(g/kg) | IL-2(pg/ml) | TNF-α(pg/ml) |
正常组 | 蒸馏水 | 37.95±7.06 | 90.50±21.57 |
模型组 | 蒸馏水 | 13.08±3.71<sup>ΔΔ</sup> | 25.82±6.41<sup>ΔΔ</sup> |
阳性组 | 0.002 | 6.35±2.86** | 15.01±4.19** |
实施例1高剂量 | 1.5 | 23.42±8.21* | 42.22±8.63** |
实施例2高剂量 | 1.5 | 22.30±6.16* | 38.97±9.20* |
实施例3高剂量 | 1.5 | 21.62±7.52* | 37.28±10.04* |
与正常组比较,ΔΔP<0.01,与模型组比较,*P<0.05,**P<0.01。
由表7结果可知,与正常组比较,模型组小鼠血清中IL-2、TNF-α含量明显降低,差异有显著性(P<0.01)。与模型组比较,阳性组小鼠血清IL-2、TNF-α含量更进一步的降低;实施例1、实施例2、实施例3组小鼠血清中IL-2明显升高,差异有显著性 (P<0.05)。与模型组比较,实施例1、实施例2、实施例3组小鼠血清中TNF-α含量升高,差异有显著性,其中实施例1组差异最为显著(P<0.01)。实施例1、实施例2、实施例3样品的抑制肿瘤生长作用可能与其增强免疫力有关。
(5)不同药物对小鼠生存时间影响
各组小鼠在造模后,第10天开始给药。各试验组小鼠生存时间如下表8所示:
组别 | 剂量(g/kg) | 生存时间(天) |
模型组 | 蒸馏水 | 49.33±13.13 |
阳性组 | 0.002 | 34.00±5.22 |
实施例1高剂量 | 1.5 | 74.00±15.97* |
实施例1低剂量 | 0.5 | 71.83±14.95* |
实施例2高剂量 | 1.5 | 68.00±19.15 |
实施例2低剂量 | 0.5 | 65.00±13.62 |
实施例3高剂量 | 1.5 | 65.83±12.95 |
实施例3低剂量 | 0.5 | 61.67±13.92 |
与模型组比较,*P<0.05。
由表8结果可知,模型组在造模后28天开始出现死亡,至62天全部死亡,平均生存时间为49天左右。
阳性组造模后第28天(给药后18天)开始死亡,至43天全部死亡,平均生存时间为34天左右。
实施例1高剂量组造模后55天开始死亡(给药后45天),至98天全部死亡,平均生存时间为74天;实施例1低剂量造模后54天开始死亡(给药后44天),至90天全部死亡,平均生存时间为71天。
实施例2高剂量组造模后48天(给药后38天)开始死亡,至97天全部死亡,平均生存时间为68天左右;实施例2低剂量组造模后52天(给药42)开始死亡,至89 天全部死亡,平均生存时间为65天左右。
实施例3高剂量组造模后48天(给药后38天)开始出现死亡,至81天全部死亡,平均生存时间为65天左右;实施例3低剂量组造模后43天(给药后33天)开始出现死亡,至80天全部死亡,平均生存时间61天左右。
与模型组比较,实施例1高剂量组生存时间最长,为74天,其次为实施例1低剂量组,为71天,差异有显著性(P<0.05);实施例2和实施例3高、低剂量均有明显延长小鼠生存时间的趋势,但差异均无统计学意义;阳性组生存时间(34天)反而较模型组缩短,差异有显著性(P<0.05)。阳性组虽然具有明显的抑制肺腺癌作用,但是其毒性反应较大,导致小鼠生存期反而明显降低,因此在临床上化疗药物使用时一般均需结合营养补充治疗。
实验例3加工人参抑制结肠癌肝转移实验
试药及小鼠:人结肠癌细胞株LoVo(苏州北纳创联生物技术有限公司),90%DMEM高糖培养基(Gibco公司);10%胎牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司),DMSO(Gibco公司),胰蛋白消化酶250mg(Gibco公司),PBS液(参照《细胞培养》配制),5-氟尿嘧啶(5-FU)125mg/支(齐鲁制药有限公司),Balb/c裸鼠(北京维通利华动物技术有限公司)。
人大肠癌LoVo细胞悬液制备:取对数生长期细胞,吸去旧培养液,用PBS液洗3 次;加入0.25%的胰蛋白酶液2ml(以消化液能覆盖整个瓶底为准),消化2~3分钟,加入适量培养液,轻轻地吹打瓶壁细胞,形成细胞悬液;细胞悬液离心l次,1000r/min,离心5min;细胞重悬在适量培养液中,即人大肠癌LoVo细胞悬液。
细胞计数:人大肠癌LoVo细胞悬液制备后,用细胞计数板计数细胞悬液中细胞数量,以细胞数/毫升表示,调整细胞悬液浓度为1x107/ml。
分组:54只小鼠,实验小鼠随机分为正常组、模型组、阳性组、实施例1高、低,实施例2高、低,实施例3高、低剂量组,每组6只。
剂量设计:本受试样品剂量设置以人体推荐量为3g/天,即0.05g/kg进行折算。采用小鼠进行试验,以10、30倍剂量作为低、高剂量组,分别为0.5g/kg、1.5g/kg。
模型建立:用3.5%水合氯醛腹腔内注射麻醉(0.1ml/10g),手术液皮肤消毒。取左侧旁正中切口长约2.0~3.0cm,进腹暴露脾脏后,将脾下极轻柔地提出腹腔,用5号针头将结肠癌LoVo细胞缓慢注入于Balb/c裸鼠脾脏被膜下,每只裸鼠注射细胞悬液 100μL,注射时间约l min,可见脾被膜肿胀、变白,注射完毕拔针后以95%乙醇棉棒压迫针眼1min,以压迫止血和杀灭可能外渗的癌细胞,防止腹腔内种植转移。将脾脏放回原位。关腹。麻醉清醒后裸鼠均于SPF级环境下饲养。整个操作过程遵循无菌操作原则。各组小鼠造模后第二天给相应受试样品5周。阳性组腹腔注射5-FU,0.1g/kg,隔日一次,共12次。
(1)不同药物对小鼠一般情况及体重影响
裸鼠接种后每日观察裸鼠进食、饮水、精神、体形改变等情况,并记录实验前和末次给药后小鼠体重。结果如下表9、10所示:
与正常组比较,ΔΔP<0.01,模型组比较比较,P>0.05。
与正常组比较,ΔP<0.05,ΔΔP<0.01,与模型组比较,P>0.05。
造模前,各组小鼠一般情况良好,精神及活动正常,饮食及大小便正常,各组小鼠体重无明显差异。由表9、10试验结果可知,造模后2~3周左右小鼠出现消瘦,进食及饮水逐渐减少,小鼠腹部出现膨隆,反应迟钝,活动减少,体重增长有明显降低趋势,其中阳性组消瘦最为明显。与正常组比较,各受试物组小鼠体重均出现减轻,模型组从第4周开始,差异有显著性;阳性组从给药第2周体重下降有显著性;实施例1组第5 周体重下降有显著性,实施例2、3组从第4周体重下降有显著性。与模型组比较,阳性组小鼠体重有明显下降,差异有显著性;其余各组小鼠体重较模型组体重有所增加,但差异无显著性。
(2)不同药物对肝脏转移率的影响
给受试样品5周后,麻醉打开胸腔心脏取血,同时迅速打开腹腔分离出肝脏、脾脏。作肝脏表面肿瘤结节肉眼计数和肝脏剖面光镜下计数,将裸鼠肝脏用10%的中性甲醛固定,石蜡包埋,组织切片(4μm),取6个肝脏冠状切面,每一切面相距0.5cm,以最大冠状切面为中心,在显微镜下计数,如同一结节出现在不同切面上计为一个结节。取显微镜下计数和肉眼计数之和为肝转移结节数目,显微镜下及肉眼未见转移结节可视为肝转移阴性。计算肿瘤肝转移率:(各组肝脏转移裸鼠数目/各组裸鼠数目总数)×100%。
末次给受试物后,处死各组小鼠,打开腹腔,肉眼及显微镜下观察小鼠肝脏结节转移情况。
结果如下表11所示:
与模型组比较,P>0.05。
由如上表11可知,正常组肝脏未见有转移结节;阳性组有一只小鼠未出现结节,其余各组小鼠各肝脏表面均见有转移性结节,转移率均为100%。与模型组比较,各受试组肝转移率无明显差异。
(3)不同药物对肝脏转移结节数的影响
末次给受试物后,处死各组小鼠,打开腹腔,肉眼及显微镜下观察小鼠肝脏转移结节数,取显微镜下计数和肉眼计数之和为肝转移结节数目,结果如下表12所示:
与正常组比较,ΔΔP<0.01,与模型组比较,*P<0.05。
由如上表12结果可知,正常组小鼠未见有结节;模型组出现大小不等的结节,部分结节有融合现象;与模型组比较,阳性组小鼠结节数有明显减少;实施例1高剂量组结节数有一定减少,差异有显著性,低剂量组结节数有一定减少趋势,但差异无显著性;实施例2高、低剂量组结节数有一定减少趋势,但差异无显著性;实施例3高剂量组结节数有一定减少,差异有显著性,低剂量组结节有减少趋势,但差异无显著性。除阳性组外,实施例1高剂量组对肝脏转移结节数减少程度较实施例3高剂量组相对更为明显。
(4)不同药物对肝脏转移结节评分的影响
评分标准:0为无肝转移;1为最低限度侵及肝脏,浸润范围<0.25cm2;2为轻度侵及肝脏,浸润范围0.25~0.5cm2;3为中度侵及肝脏,浸润范围0.51~0.75cm2;4为重度侵及肝脏,浸润范围0.76~1cm2。
不同实验组小鼠肝脏转移结节情况如图1-9所示,根据所检测的小鼠肝脏转移结节情况进行评分,评分结果如下表13所示:
组别 | 剂量(g/kg) | 分值 |
正常组 | 蒸馏水 | 0.00±0.00 |
模型组 | 蒸馏水 | 2.83±0.75<sup>ΔΔ</sup> |
阳性组 | 0.002 | 1.17±0.75** |
实施例1高剂量 | 1.5 | 1.83±0.75* |
实施例1低剂量 | 0.5 | 2.33±0.82 |
实施例2高剂量 | 1.5 | 2.33±0.52 |
实施例2低剂量 | 0.5 | 2.67±0.82 |
实施例3高剂量 | 1.5 | 2.17±0.75* |
实施例3低剂量 | 0.5 | 2.50±0.55 |
与正常组比较,ΔΔP<0.01,与模型组比较,*P<0.05。
由表13和图1-9所示结果可知,模型组结节较大,浸润范围以0.5~0.75cm2为多,部分小鼠结节出现融合,直径接近1cm,与模型组比较,阳性组结节明显减小,有一只小鼠未出现结节。实施例1高剂量组结节评分有一定减少,差异有显著性,低剂量组结节评分有一定降低,但差异无显著性。实施例2和实施例3高、低剂量组结节评分有一定降低,但差异无显著性。
尽管已用具体实施例来说明和描述了本发明,然而应意识到,在不背离本发明的精神和范围的情况下可以作出许多其它的更改和修改。因此,这意味着在所附权利要求中包括属于本发明范围内的所有这些变化和修改。
Claims (3)
1.一种增加人参皂苷Rg3、Rh2含量的人参加工方法,其特征在于,由以下步骤组成:
S1:取鲜人参,洗净,除杂,控干表皮水分;
S2:将步骤S1处理后的人参以烘箱干燥,并在50±0.5℃条件下干燥12小时;
S3:将步骤S2处理后的人参以蒸锅蒸制,并在98±0.5℃蒸制6小时,取出,然后,在60±0.5℃的烘箱中干燥12小时;
S4:将步骤S3处理后的人参在100±0.5℃的蒸锅中蒸制8小时,取出,然后,在60±0.5℃的烘箱中干燥6小时;
S5:将步骤S4处理后的人参与含总酸5 mg/100ml的米醋混匀,人参与米醋的重量比为100:15,浸润10分钟至米醋被完全吸收,然后,将人参在96±0.5℃的蒸锅中蒸制3小时,取出,然后,在60±0.5℃的烘箱中干燥3.5小时;
S6:将步骤S5处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制4.5小时,取出,然后,在55±0.5℃的烘箱中干燥3小时;
S7:将步骤S6处理后的人参在97±0.5℃的蒸锅中蒸制3小时,取出,然后,在55±0.5℃的烘箱中干燥2小时;
S8:将步骤S7处理后的人参在98±0.5℃的蒸锅中蒸制2小时,取出,然后,在50±0.5℃的烘箱中干燥6小时,得到加工人参。
2.由权利要求1所述的人参加工方法所得到的加工人参。
3.一种包含权利要求2所述加工人参的药物或药物组合物在制备肿瘤治疗药物中的应用。
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