CN110291210A

CN110291210A - 创伤性脑损伤的生物标志物

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Publication number: CN110291210A
Application number: CN201780084939.2A
Authority: CN
Inventors: 安东尼奥·贝利; 瓦伦丁娜·迪·彼得罗
Original assignee: University of Birmingham
Current assignee: University of Birmingham
Priority date: 2016-03-08
Filing date: 2017-12-22
Publication date: 2019-09-27
Also published as: EP4257705A3; EP4257705A2; US10563262B2; RU2018135107A; RU2018135107A3; WO2018138468A1; UA127918C2; EP3426796B1; CN116004796A; ES2967073T3; US20200385808A1; AU2017231845A1; AU2023282212A1; ZA201805982B; KR20240011189A; AU2017231845B2; JP7111619B2; JP2022163063A; HK1258615A1; US20230295726A1

Abstract

本发明提供了一种诊断和/或监测受试者的轻度创伤性脑损伤(mTBI)或脑震荡的方法。该方法包括测定来自受试者的唾液样品中至少一种miRNA的水平。本发明还提供了用于诊断和/或监测TBI的传感器元件、检测系统、组合物和试剂盒，以及确定对疑似患有mTBI或脑震荡的受试者适当治疗的方法。

Description

创伤性脑损伤的生物标志物

技术领域

本发明涉及用于诊断和/或监测创伤性脑损伤(TBI)的组合物、试剂盒、系统和方法。更具体地，本发明涉及使用miRNA生物标志物来诊断和监测TBI。

背景技术

在西方国家，创伤性脑损伤(TBI)是45岁以下死亡和残疾的主要原因。预计其医疗保健负担和社会成本将继续上升，世界卫生组织预计到2020年TBI将在世界范围内成为残疾的第三个主要原因。

尽管进行了许多研究，但尚未发现来评定TBI的严重程度并预测其恢复的可靠的生物标志物。对于轻度TBI(mTBI)来说尤其如此，目前这在临床实践中仍难以评估。尽管最初是通过格拉斯哥昏迷评分(GCS)和需要昂贵设备的神经成像技术对TBI患者进行评估，但目前的诊断工具缺乏精确定义和量化脑损伤实际严重程度的能力，从而导致容易检测到严重的TBI，而非代表绝大多数病例(75-90％)的mTBI。

mTBI的正确诊断对于患者例如运动员、士兵和儿童尤其重要，因为他们有更大的mTBI复发风险和一种称为二次冲击综合征(SIS)的灾难性脑损伤形式，其中复发的TBI的协同效应会导致严重的伤害、甚至死亡。因此，对TBI的严重程度的早期诊断和评估对患者的健康至关重要，最终将挽救他们的生命。

媒体对运动脑震荡的报道日益增加，极大推动了对TBI生物标志物的探索。在过去几年中，许多研究都集中在可以支持在场边或者运动诊所制定临床决策的生物标志物。然而，文献中报道的蛋白质生物标志物缺乏特异性或敏感性，或者在创伤后的一段时间内无法检测到。这可能是由于脑震荡(TBI的一种形式)后，脑源性化合物仅以极少量释放，而且大部分血脑屏障保持关闭。

微小RNA(miRNA)是一类丰富的、高度保守的非编码RNA分子，其长度约为22个核苷酸，通过与靶基因的3'UTR中的部分互补位点配对，诱导mRNA降解、翻译抑制或两者兼具。人类基因组编码超过2,000种miRNA，其可能靶向所有基因的约60％。然而，尽管有大量的miRNA，但它们的生物分子功能以及在病理学中的参与情况仍有待彻底阐明。它们在包括细胞周期、细胞代谢、细胞凋亡和免疫应答的许多生物进程中发挥着核心作用，因此作为用于检测、鉴定以及分类癌症和其他疾病状态(包括神经退行性疾病)的潜在生物标志物，在临床研究中正吸引着越来越多的关注。

本发明正是考虑到这些问题而设计的。

发明概述

本发明涉及通过检测取自受试者的生物样品中的一种或多种miRNA分子，从而诊断、监测和治疗头部受到损伤的人类受试者的创伤性脑损伤(TBI)的方法和检测系统，所述创伤性脑损伤包括轻度创伤性脑损伤(mTBI)。在以下公开内容的上下文中，关于生物样品中miRNA单个分子或多个分子的水平或量的术语“水平”和“量”可互换使用。

本发明提供一种诊断和/或监测受试者中mTBI的方法，该方法包括测定获自受试者的唾液样品中至少一种miRNA的水平，其中所述至少一种miRNA选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组，或其任意组合。在实施方案中，至少一种miRNA的水平上调表明患有mTBI。在实施方案中，如果至少一种miRNA的水平高于预定阈值或相对于对照增加，则受试者被诊断为患有mTBI。在实施例中，预定阈值相当于2-delta deltaCT(2-ΔΔCT)方法中的2倍或更大的倍数变化。在实施方案中，至少一种miRNA是miR-27b-3p。在实施方案中，至少一种miRNA是let-7i-5p。在实施方案中，至少一种miRNA是miR-142-3p。在实施方案中，至少一种miRNA是miR-107。在实施方案中，至少一种miRNA是miR-135b-5p。

在实施方案中，该方法包括测定从受试者获得的唾液样品中至少两种miRNA的水平。在实施方案中，所述至少两种miRNA选自miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107或miR-135b-5p。在实施方案中，至少两种miRNA的水平上调表明患有mTBI。在实施方案中，如果至少两种miRNA的水平高于预定阈值或相对于对照增加，则受试者被诊断为患有mTBI。在实施例中，预定阈值相当于2-delta deltaCT(2-ΔΔCT)方法中的1.5倍或更大的倍数变化。

在实施方案中，在损伤后24小时至15天获得唾液样品。在实施方案中，在损伤后24小时至7天或损伤后2至5天获得唾液样品。在进一步的实施方案中，可以获得一种以上的唾液样品。可以在不同时间点获得唾液样品从而能够监测受试者、或监测mTBI、或监测受试者的恢复情况。

在实施方案中，该方法包括确定miR-mi-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p中的每一种的水平。

该方法可以进一步包括确定选自let-7c-5p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-148a-3p、miR-15b-5p、miR-16-5p、miR-181a-5p、miR-20a-5p、miR-20b-5p、miR-221-3p、miR-24-3p、miR-27b-3p、miR-29a-3p、miR-29c-3p和miR-424-5p、miR-30a-5p、miR-107、miR-135b-5p、miR-199b-5p、miR-324-5p或miR-652-3p中的一种或多种额外miRNA的水平。

本发明还提供了用于诊断和/或监测mTBI的检测传感器和检测系统。本发明还提供了用于诊断和/或监测mTBI的检测系统的传感器元件，该传感器元件包括用对miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107或miR-135b-5p中的至少一种特异性的探针功能化的基板。在实施方案中，探针包含能够结合至少一种miRNA的核酸。在实施方案中，探针包含一种核酸，其与靶miRNA序列的互补序列具有至少70％的序列同一性。在实施方案中，探针包含一种核酸，其与SEQ ID NO：25、26、35、39或40的互补序列具有至少70％的序列同一性。

本发明还提供了用于诊断和/或监测mTBI的检测系统，其包括如本发明所述的传感器元件，以及能够检测靶miRNA与探针的结合的检测装置。在实施方案中，检测系统还包括确定靶miRNA是否被上调的方法。

本发明还提供了用于确定疑似患有mTBI的受试者的治疗方案的方法，其包括将获自受试者的唾液样品应用于如本发明所述的检测系统，如果检测到至少一种miRNA的水平上调，则提供mTBI治疗。

本发明还提供了治疗疑似患有mTBI受试者的方法，该方法包括：i)确定从受试者获得的唾液样品中是否能够检测到选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组中至少一种miRNA的水平上调，和

ii)如果检测到至少一种miRNA的水平上调，则向受试者提供针对mTBI的治疗。

附图说明

图1：miR-425-5p和miR-502在3种不同类型的创伤和HV中的表达

通过qRT-PCR分析检测在10例HV组、10例mTBI+EC组(1天)、10例mTBI+EC组(15天)、10例EC组(1天)、10例EC组(15天)、10例sTBI+EC(1天)组和10例sTBI+EC(15天)组的患者中MiR-425-5p和miR-502的表达。与HV组(p<0.01)、mTBI+EC组(15天)(p<0.001)和sTBI+EC组(1天)(p<0.01)相比，mTBI+EC组(1天)中miR-425-5p的表达显著降低(图1A)。与HV组(p<0.05)、mTBI+EC组(15天)(p<0.01)和sTBI+EC组(1天)(p<0.05)相比，mTBI+EC组(1天)中miR-502的表达显著降低(图1B)。

图2：miR-21和miR-335在3种不同类型的创伤和HV中的表达

通过qRT-PCR分析检测在10例HV组、10例mTBI+EC组(1天)、10例mTBI+EC组(15天)、10例EC组(1天)、10例EC组(15天)、10例sTBI+EC组(1天)和10例sTBI+EC组(15天)的患者中miR-21和miR-335的表达。与HV组相比，在sTBI+EC组(1天和15天)中发现miR-21的表达显著上调(p<0.01)(图2A)。与HV组(p<0.001)、EC组(15天)(p<0.001)和mTBI+EC组(1天)(p<0.05)相比，在sTBI+EC组(1天)中发现miR-335的表达显著上调(图2B)。

图3：miR-425-5p(图3A)和miR-502(图3B)在3种不同类型的创伤和HV中的表达的时间进程

通过qRT-PCR分析检测在30例HV组、30例mTBI+EC组、30例EC组、30例sTBI+EC组的患者在损伤后不同时间点(T0、T4-12h、T48-72h、15天)的miR-425-5p和miR-502的表达。与HV组、sTBI+EC组和EC组相比，在T0和T4-12h时mTBI+EC组中发现miR-425-5p的表达显著降低(p<0.05)。与HV组、sTBI+EC组和EC组相比，在T0和T4-12h时mTBI+EC组中发现miR-502的表达显著降低(p<0.05)。P值由Tukey的事后检验法确定。

*与HV显著不同

图4：miR-21(图4A)和miR-335(图4B)在3种不同类型的创伤和HV中的表达的时间进程

通过qRT-PCR分析检测在30例HV组、30例mTBI+EC组、30例EC组和30例sTBI+EC组的患者在损伤后不同时间点(T0，T4-12h，T48-72h，15天)的miR-21和miR-335的表达。与HV相比，在T4-12h、T48-72h和15天，sTBI+EC组中发现miR-21的表达显著上调(p<0.01)。与HV组和mTBI+EC组相比，在T0、T4-12h、T48-72h和15天，在sTBI+EC组中发现miR-335的表达显著上调(p<0.001)，而在仅是EC的组中无此现象。P值由Tukey的事后检验法确定。

*与HV显著不同

图5：5种microRNA的相对表达的箱形图，其在验证组中显示出显著的上调(p<0.05)，并通过RT-PCR进行评估。非参数检验(Mann-Whitney U检验)用于比较两个独立组中的microRNA水平。

图6：验证队列中鉴定的生物标志物的接受者-操作特征(ROC)曲线和相应的曲线下面积(AUC)统计。

发明详述

本发明提供了一种用于诊断或监测受试者的创伤性脑损伤(TBI)的方法。

根据本发明的第一方面，其提供了一种用于诊断和/或监测受试者的创伤性脑损伤(TBI)的方法，该方法包括检测来自受试者的样品中至少一种miRNA的存在和/或确定其中的至少一种miRNA的水平。

所述的至少一种miRNA(在本发明中也被称为“miR”)可以选自由miR-505、miR-203、miR-654-3p、miR-655、miR-184、miR-301b、miR-425-5p、miR-502、miR-21、miR-let-7g、miR-335、miR-126*、miR-193a-5p、miR-144*、miR-190、miR-194、miR-365、miR-590-3p、miR-624、miR-625*、miR-671-3p、hsa-let-7c-5p、hsa-let-7i-5p miR-142-3p、miR-148a-3p、miR-15b-5p、miR-16-5p、miR-181a-5p、miR-20a-5p、miR-20b-5p、miR-221-3p、miR-24-3p,miR-27b-3p、miR-29a-3p、miR-29c-3p、miR-424-5p、miR-30a-5p；miR-107，miR-135b-5p，miR-199b-5p，miR-324-5p，miR-652-3p，miR-10a、miR-132、miR-223、miR-143、miR-148b、miR-18a、miR-192、miR-429、miR-618、miR-95、miR-130a、miR-152、miR-27b、miR-301、miR-326、miR-345、miR-361、miR-422a、miR-579、miR-642、miR-99a、miR-520D-3p以及miR-629构成的群组。这些miRNA在本发明中可被称为目标miRNA或靶miRNA。

在一些实施方案中，所述至少一种miRNA选自由miR-505、miR-203、miR-654-3p、miR-655、miR-184、miR-301b、miR-425-5p、miR-502、miR-21、miR-let-7g、miR-335、hsa-miR-126*、miR-193a-5p、miR-144*、miR-190、miR-194、miR-365、miR-590-3p、miR-624、miR-625*和miR-671-3p构成的群组。已发现这些微小RNA是在所有TBI患者(轻度或重度)中表达的生物标志物。

在一些实施方案中，所述至少一种miRNA选自由miR-505、miR-203、miR-654-3p、miR-655、miR-184、miR-301b、miR-425-5p、miR-502、miR-21、miR-let-7g和miR-335构成的群组。

在一些实施方案中，所述至少一种miRNA选自由let-7c-5p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-148a-3p、miR-15b-5p、miR-16-5p、miR-181a-5p、miR-20a-5p、miR-20b-5p、miR-221-3p、miR-24-3p、miR-27b-3p、miR-29a-3p、miR-29c-3p、miR-424-5p，miR-30A-5P，miR-107，miR-135B-5P，miR-199B-5P，miR-324-5p，miR-652-3p构成的群组。

在一些实施方案中，所述至少一种miRNA选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组。

在一些实施方案中，所述至少一种miRNA选自由miR-10a、miR-132、miR-223、miR-143、miR-148b、miR-18a、miR-192、miR-429、miR-618、miR-95、miR-130a、miR-152、miR-194、miR-27b、miR-301、miR-326、miR-345、miR-361、miR-422a、miR-579、miR-642、miR-99a、miR-520D-3p以及miR-629构成的群组。

为避免疑义，应理解，如本发明所用的“所述的至少一种miRNA选自一组miRNA”是指所讨论的方法不管是出于诊断、预后还是治疗的目的，都可以使用任何一种列出的miRNA或任何多种列出的miRNA(例如，所列miRNA中的两种、三种、四种或更多种)进行。因此，任何一种或多种列出的miRNA都可能被明确排除在外。例如，当所述至少一种miRNA选自由miR-505、miR-203、miR-654-3p、miR-655、miR-184、miR-301b、miR-425-5p、miR-502、miR-21、miR-let-7g和miR-335构成的群组时，所述方法可以包括检测和/或评定miR-505、miR-203、miR-654-3p、miR-655、miR-184、miR-301b、miR-425-5p、miR-502、miR-21和miR-let-7g中的任何组合的水平，以便排除miR-335。

例如，根据本发明的一个方面，其提供了一种用于诊断和/或监测受试者的创伤性脑损伤(TBI)的方法，所述方法包括测定来自受试者的样品中至少两种miRNA的水平，其中miRNA选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p组成的组。

根据本发明的一个方面，其提供了一种用于诊断和/或监测受试者的创伤性脑损伤(TBI)的方法，所述方法包括测定来自受试者的样品中至少一种miRNA的水平，其中miRNA选自由miR-425-5p、miR-502、miR-21和miR-335构成的群组。

当外力创伤性地损伤大脑时发生创伤性脑损伤。根据例如严重程度、损伤类型和预后，存在用于对TBI进行分类的不同系统。最常用的TBI分类系统是格拉斯哥昏迷量表(GCS)，它根据一个人对刺激的言语、运动和开眼反应，将其意识等级划分为3～15级。一般而言，将GCS评分为13或以上的TBI定义为轻度、9-12为中度，8或以下为重度。另一个系统即梅奥(Mayo)分类系统有三个主要分类，其包括明确的中重度TBI、可能的轻度TBI和可能的TBI。在每次诊断中使用多个标准，包括意识丧失、创伤后失忆、颅骨骨折，以及神经放射学异常的证据，包括硬膜下血肿、脑挫伤和出血性挫伤。使用GCS或Mayo系统的TBI分类对于本领域技术人员来说是已知的。

如本发明所用，提及“轻度”、“中度”和“重度”TBI是参照GCS进行的。本发明提及的“中度至重度”TBI包括参照GCS的中度和重度TBI。

如本发明所用，轻度TBI(mTBI)也就是脑震荡。

使用本发明的生物标志物诊断和/或监测TBI预期将在各种情况下支持临床决策和治疗方案，包括以下情况：作为医护人员初步评估的一部分以确定患者是否应该被运送到具有神经外科专业知识的场所、主要创伤中心或当地创伤单位；在医院的急诊科确定合适的治疗方法，包括需要进行CT脑扫描；在场地边，帮助决定是否让球员退出比赛，并评估是否需要将球员送往医院；在体育诊所，确认脑震荡事件，并就重返赛场做出决策；在战斗情形下，确定是否需要派遣救援队并撤离受害者。因此，本发明为其提供特殊益处的受试者包括事故受害者、运动员和军事人员。

在任何情况下，但也许特别是当受试者面临更大的TBI风险时(例如，当受试者是专业运动员或应征入伍时)，可以在任何已知或最近的创伤之前(例如，在运动生涯开始之前或军事部署之前)从受试者获得样本，并且当所述受试者经历可能的TBI时，可以在此时或之后评估任何目标miRNA。因此，这样的样本可以提供内部参考标准。

在一些实施方案中，所述的受试者为人。

所述的TBI可以为轻度TBI(mTBI)、中度TBI或重度TBI(sTBI)。在一些实施方案中，所述的TBI是中度至重度TBI(m-sTBI)。

可以定量或半定量地确定样本中miRNA或每种miRNA的水平。所述“定量”，可以理解为确定样本中miRNA或每种miRNA的绝对量或浓度。然后可以将样本中miRNA或每种miRNA的所述绝对量与预定阈值(例如，预期正常水平的公开文献值)、取自健康受试者的对照样本中的相同或参照miRNA的已知水平、或取自受试者的样本中的参照miRNA的量进行比较。在一些实施方案中，当miRNA的水平低于所述的预定阈值或者相对于参照或对照样本下降时，受试者被诊断为患有TBI。在其他实施方案中，当miRNA的水平与所述的预定阈值相比增加时，所述受试者被诊断为患有TBI。

所述“半定量”，可以理解为测量目标miRNA或每种miRNA相对于参照的水平。

所述的参照可以为不变的miRNA，即在健康受试者和具有TBI的受试者之间保持基本不变的表达水平的miRNA。如果受试者的miRNA或每种目标miRNA的水平相对于不变的miRNA的水平增加或下降，则其可被诊断为患有TBI。合适的不变的miRNA包括miR-331、miR-223*、miR-23a-3p和miR148b-3p。miR-23a-3p和miR148b-3p仅在唾液中不变。

在一些实施方案中，从受试者获得的样本中miRNA或每种miRNA的水平可以是低于或者高于比对照样本中的水平、参考水平或公布值的约0.01倍至约100倍、约0.05倍至约50倍、约0.1倍至约10倍、约0.5倍至约5倍、约1倍至约3倍或者约1.5倍至约2倍。

当采用装置或方法产生一个值时，我们可以使用术语“约”来限定该值，以便捕获规定值和所使用装置或方法固有的该值的任何变化。当具体公开值的值或范围时，“约”可以表示规定值或范围的±10％。例如，大约10分钟可能表示9-11分钟。

可以使用本领域技术人员已知的方法确定目标miRNA或每种目标miRNA的水平。在一些实施方案中，确定该目标miRNA或每种目标miRNA的水平包括扩增miRNA。在一些实施方案中，可以首先使用标准技术，例如使用miRNeasy迷你试剂盒(Qiagen)从样本中分离总miRNA。然后可以确定目标miRNA的量。在一些实施方案中，使用PCR(聚合酶链式反应)确定样本中该目标miRNA或每种目标miRNA的水平。例如，定量PCR可用于定量确定该目标miRNA或每种目标miRNA的水平。通过比较样本中该目标miRNA或每种目标miRNA的水平与参照(例如不变的miRNA)的水平，PCR也可以用于半定量确定。

用于miRNA检测和/或定量的合适技术，包括qPCR、miRNA测定、二代测序(NGS)和多重miRNA分析测定，是本领域技术人员已知的。

在一些实施方案中，使用原位杂交，例如使用对miRNA特异的探针(例如，标记的探针)确定该目标miRNA或每种目的miRNA的水平。

miRNA的水平可以在创伤后立即(即创伤后不到1小时)获自受试者的样本和/或在创伤后几小时或几天的一个或多个时间点获得的样本中确定。因此，可以随时间检测miRNA水平的变化以实现对TBI的监测。在miRNA水平随时间变化的情况下，本发明描述的用于监测TBI的方法可以扩展到包括相应地维持或调整受试者的治疗方案。

根据特定的miRNA以及TBI的类型，受试者中miRNA的水平可能随时间推移而显著变化。因此，在一些实施方案中，在创伤后相对较快地测量miRNA以实现准确的诊断可能是有利的。在一些实施方案中，在获自受伤后不超过72小时、不超过48小时、不超过36小时、不超过24小时、不超过12小时、不超过6小时、不超过4小时、不超过2小时或不超过1小时的受试者的样本中确定miRNA的水平。

一些miRNA的水平随着时间推移基本稳定，因此允许在损伤几小时后、几天后甚至几周后进行诊断。在一些实施方案中，直至损伤20天后、18天后、15天后、12天后、10天后、8天后、5天后或2天后，在从受试者获得的样品中确定miRNA的水平。

在一些实施方案中，在创伤后立即(例如在T＝0h)、创伤后4-12小时、创伤后48-72小时或创伤后15天从受试者获得的样本中确定miRNA的水平。

在一些实施方案中，在损伤后至少24小时从受试者获得的样品中测定miRNA的水平。在一些实施方案中，在损伤后15天或更短时间内从受试者获得的样品中测定miRNA的水平。在一些实施方案中，在损伤后24小时至15天之间，或损伤后24小时至10天之间，或损伤后24小时至7天之间，或损伤后48小时至5天之间从受试者获得的样品中测定miRNA的水平。

在一些实施方案中，所述TBI是轻度TBI(mTBI)或中度至重度TBI(m-sTBI)，并且所述至少一种miRNA选自由miR-505、miR-203、miR-654-3p、miR-655、miR-184、miR-301b、miR-425-5p、miR-502、miR-21、miR-let-7g、miR-335、hsa-miR-126*、miR-193a-5p、miR-144*、miR-190、miR-194、miR-365、miR-590-3p、miR-624、miR-625*和miR-671-3p构成的群组。

在一些实施方案中，所述的TBI为轻度TBI(mTBI)，且所述的miRNA选自由miR-425-5p和miR-502构成的群组。当miR-425-5p和/或miR-502的水平被确定低于预定阈值或者相对于参照下降时，所述的受试者则被诊断为患有mTBI。

在一些实施方案中，当在受伤后不到48小时内获得的样本中确定水平时，若miR-425-5p和/或miR-502的水平低于预定阈值或者相对于参照下降则被诊断为mTBI。

在一些实施方案中，所述的TBI为中度至重度TBI(m-s TBI)，且所述miRNA选自由miR-21和miR-335构成的群组。当miR-21和/或miR-335的水平被确定高于预定阈值或者相对于参照增加时，所述的受试者被诊断为患有中度至重度TBI。

在一些实施方案中，当在受伤后达15天获得的样本中确定水平时，若miR-21和/或miR-335的水平高于预定阈值或者相对于参照增加则被诊断为中度至重度TBI。

在一些实施方案中，所述的TBI为中度至重度TBI(m-s TBI)，且所述的至少一种miRNA选自由miR-10a、miR-132、miR-223、miR-143、miR-148b、miR-18a、miR-192、miR-429、miR-618、miR-95、miR-130a、miR-152、miR-194、miR-27b、miR-301、miR-326、miR-345、miR-361、miR-422a、miR-579、miR-642、miR-99a、miR-520D-3p以及miR-629构成的群组。

当miR-10a、miR-132、miR-223、miR-143、miR-148b、miR-18a、miR-618、miR-95、miR-130a、miR-152、miR-194、miR-27b、miR-301、miR-326、miR-345、miR-361、miR-422a、miR-579、miR-642和/或miR-99a的水平被确定高于预定阈值，或者相对于参照增加时，所述的受试者被诊断为患有m-s TBI。

当miR-192、miR-429、miR-520D-3p和/或miR-629的水平被确定低于预定阈值，或者相对于参照下降时，所述的受试者被诊断为患有m-s TBI。

所述的miRNA可以单独用于诊断TBI。例如，在运动脑震荡中，miR-502或miR-425-5p可被用于确认已发生创伤性脑损伤。

因此，本发明的另一方面是确定TBI严重程度的方法，并且所述方法的步骤可以被重复以随时间监测受试者。应当理解，单个miRNA的阳性结果(例如，确定单个miRNA的水平高于/低于预定阈值，或相对于参照增加/下降)足以确定TBI的严重程度。例如，如果miR-425-5p的水平低于预定阈值，或相对于参照下降，则所述TBI的严重程度被确定为轻度(mTBI)。然而，组合不同的miRNA(例如在测试板中)以便于评估TBI的严重程度可能是合适的。

在一些实施方案中，所述的方法包括确定样本中多种(例如，两种或更多种)miRNA的水平。在一些实施方案中，所述两种或更多种miRNA选自由miR-425-5p、miR-502、miR-21和miR-335构成的群组。

在一些实施方案中，所述的方法包括确定(i)选自miR-425-5p和miR-502的第一miRNA，和(ii)选自miR-21和miR-335第二miRNA的水平。

当miR-425-5p或miR-502的水平被确定低于预定阈值或者相对于参照下降时；或者miR-21或miR-335被确定高于预定阈值或者相对于参照增加时，所述的受试者可能被诊断为患有TBI。

在一些实施方案中，所述的TBI为轻度TBI(mTBI)，且所述的至少一种miRNA选自由let-7c-5p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-148a-3p、miR-15b-5p、miR-16-5p、miR-181a-5p、miR-20a-5p、miR-20b-5p、miR-221-3p、miRmmiR-29a-3p、miR-29c-3p、miR-424-5p、miR-30a-5p、miR-107、miR-135b-5p、miR-199b-5p、miR-324-5p以及miR-652-3p构成的群组，或其任意组合。当相对于参照，microRNA水平的倍数变化为至少0.5、至少1.0、至少1.5、至少2.0、至少2.5、至少3.0、至少3.5或者至少4.0时，所述的受试者被诊断为患有mTBI。在一些实施方案中，当所述微小RNA的水平相比于参照增加时，所述的受试者被诊断为患有mTBI。

在一些实施方案中，TBI是mTBI或脑震荡，并且至少一种miRNA选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组，或其任何组合。在实施方案中，所述至少一种miRNA的水平上调、高于预定阈值的增加或相对于对照的增加表明患有mTBI或脑震荡。

在表1中提供了本文描述的miRNA的序列和登录号：

表1

方便起见，所述样本可以是从受试者获得的任何合适的流体或组织样本。例如，生物样本可以包括由以下构成的群组中的至少一种：尿液、唾液、全血、血浆、血清、痰、精液、粪便、鼻拭子、泪液、阴道拭子、直肠拭子、宫颈涂片、组织活检和尿道拭子。在一些实施方案中，所述的样本为流体。合适地，所述的样本为可容易地从个体获得的样本，例如尿液、唾液、血液和痰。在一些实施方案中，所述的样本包括唾液、血液、血浆或血清。应理解，在一些实施方案中，获得样本的过程不构成此处所描述的本发明的一部分。

在一些实施方案中，所述的样本包括血清或者由血清构成。血清不仅具有实际优势，而且还不含抗凝血剂如肝素，其为一种潜在的PCR反应抑制剂。与血浆相比，血清也可能受溶血的影响较小。

在一些实施方案中，所述的样本为唾液。无需专业培训或医疗设备，就可以从患者(例如，场边或野外)容易地获得唾液。

已发现唾液中指示mTBI的miRNA包括：hsa-let-7ca-5p、hsa-let-7i-5p、hsa-miR-1421-3p、hsa-miR-148a-3p、hsa-miR-15b-5p、hsa-miR-16-5p、hsa-miR-181a-5p、hsa-miR-20a-5p、hsa-miR-20b-5p、hsa-miR-221-3p、hsa-miR-24-3p、hsa-miR-27b-3p、hsa-miR-29a-3p、hsa-miR-29c-3p、hsa-miR-340-5p；hsa-miR-424-5p，miR-30A-5P，miR-107，miR-135B-5P，miR-199b选自由-5p、miR-324-5p和miR-652-3p构成的群组。

已发现唾液中表明患有mTBI的miRNA包括：miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p。

本发明提供了一种用于诊断和/或监测受试者的轻度创伤性脑损伤(mTBI)的方法，该方法包括测定从受试者获得的唾液样品中至少一种miRNA的水平，其中所述至少一种miRNA是选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组，或其任意组合。

任选地，至少一种miRNA是miR-27b-3p。可选地，至少一种miRNA是let-7i-5p。方便起见，至少一种miRNA是miR-142-3p。在实施方案中，至少一种miRNA是miR-107。在其他实施方案中，至少一种miRNA是miR-135b-5p。

在实施方案中，唾液中选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组中的至少一种miRNA的水平上调表明患有mTBI或脑震荡。在实施方案中，如果至少一种miRNA的水平高于预定阈值或相对于对照增加，则受试者被诊断为患有mTBI。

表明患有mTBI的所述水平上调可以相当于通过2-^ΔΔCT方法获得的2.0或更大的倍数变化。在实施方案中，表明患有mTBI的上调水平可以相当于通过2-^ΔΔCT方法获得的至少一种选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组的miRNA的2.0或更大的倍数变化。

在受试者中诊断和/或监测mTBI的方法可以包括使得来自受试者的唾液样品与至少一种具有与选自SEQ ID No：25、26、35、39或40的序列的互补序列至少70％同一性的miRNA特异性寡核苷酸探针接触。

该方法可以进一步包括定量至少一种miRNA特异性寡核苷酸探针，并将所述表达水平与从健康受试者获得或衍生的参考miRNA或对照表达水平进行比较。受试者和对照之间有1.5倍或更大的差异，例如2.0倍或更大的差异，表明患有mTBI。

本发明的方法可以包括确定从受试者获得的唾液样品中的至少一个第二miRNA的水平。

本发明的方法可以包括测定从受试者获得的唾液样品中至少两种miRNA的水平。在实施方案中，所述至少两种miRNA中的第一种选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组。在实施方案中，所述至少两种miRNA选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组。

任选地，至少两种miRNA是let-7i-5p和miR-142-3p。

可选地，至少两种miRNA是let-7i-5p和miR-27b-3p。

方便起见，至少两种miRNA是let-7i-5p和miR-107。

在实施方案中，至少两种miRNA是let-7i-miR-135b-5p。

在进一步的实施方案中，至少两种miRNA是miR-142-3p和miR-27b-3p。

任选地，至少两种miRNA是miR-142-3p和miR-107。

可选地，至少两种miRNA是miR-142-3p和miR-135b-5p。

方便起见，至少两种miRNA是miR-27b-3p和miR-107。

在实施方案中，至少两种miRNA是miR27b-3p和miR-135b-5p。

在进一步的实施方案中，至少两种miRNA是miR-107和miR-135b-5p。

在实施方案中，该方法包括测定miRNAmiR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p的水平。

在实施方案中，该方法还包括测定选自由let-7c-5p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-148a-3p、miR-15b-5p、miR-16-5p、miR-181a-5p、miR-20a-5p、miR-20b-5p、miR-221-3p、miR-24-3p、miR-27b-3p、miR-29a-3p、miR-29c-3p和miR-424-5p、miR-30a-5p、miR-107、miR-135b-5p、miR-199b-5p、miR-324-5p和miR-652-3p构成的群组中的一种或多种额外miRNA的水平。

表明患有mTBI的两种或更多种miRNA的水平上调可以相当于通过2-^ΔΔCT方法获得的1.5倍或更多倍，或2.0倍或更多倍的倍数变化。

在实施方案中，在损伤后至少24小时从受试者获得的唾液样品中测定miRNA的水平。在一些实施方案中，在损伤后15天或更短时间内从受试者获得的唾液样品中测定miRNA的水平。在一些实施方案中，在损伤后24小时至15天之间，或损伤后24小时至10天之间，或损伤后24小时至7天之间，或48至5天之间，从受试者获得的唾液样品中测定miRNA的水平。

miRNA的水平可用于跟踪受试者的损伤恢复。因此，本发明包括监测受试者患有TBI的恢复情况，作为初始诊断的替代或补充。

在一些实施方案中，所述的方法包括监测TBI，并且在获自受伤后至少2天、至少3天、至少5天、至少7天、至少10天或至少14天的受试者的样本中确定所述至少一种miRNA的水平。在一些实施方案中，在获自受伤后15天的受试者的样本中确定所述至少一种miRNA的水平。在一些实施方案中，在创伤后的不同时间间隔获得的至少两个样本中测定所述至少一种miRNA的水平，从而实现监测恢复。例如，可以在创伤后7天和14天，或在创伤后5、10和15天确定miRNA水平。miRNA水平恢复正常可指示受试者从TBI恢复。

在一些实施方案中，当miR-425-5p和/或miR-502的水平不再低于预定阈值或者不再相对于参照下降时，受试者被确定已经从mTBI恢复。

在一些实施方案中，当miR-21和/或miR-335的水平不再高于预定阈值或者不再相对于参照增加时，受试者被确定已经从中度至重度TBI恢复。

患有TBI，特别是轻度TBI或中度至重度TBI的受试者的诊断有助于确定合适的治疗。因此，本发明提供了一种测试，所述测试能够使医疗保健工作者，例如内科医生、临床医生、护理人员，甚至非医务人员(例如教师、体育教练和军事人员)为疑似患有TBI的受试者选定合适的行动。因此，被确定为患有TBI的受试者可以通过诊断得到最合适的治疗。因此，本发明的方法可以进一步包括给被诊断患有TBI的受试者指导合适的疗法。

可以进一步评估例如通过CT扫描被诊断患有TBI的受试者。在一些实施方案中，所述受试者被送入医院。在一些实施方案中，如果可以排除中度至重度TBI，则可能不需要将所述受试者送入医院进行评估。被诊断患有中度至重度TBI的受试者可以入院或去具有神经创伤专业知识的专科中心。

在医院环境之外，例如，在体育赛事期间、在战斗或比赛期间，可以直接将被诊断出患有TBI(特别是mTBI)的受试者从比赛或战斗中撤离。所述受试者可以随后分期返回以开始游戏或战斗。

在另一方面，提供了一种用于确定向受试者施用疗法以缓解TBI是否合适的方法，所述方法包括：

确定来自受试者的样本中至少一种miRNA的水平；和

基于所述至少一种miRNA的水平，确定向所述受试者施用缓解TBI的疗法是否合适。

应当理解，除非特别说明，否则向所述受试者施用疗法的步骤不构成要求保护的方法的一部分。

在一些实施方案中，所述的方法可以进一步包括向所述受试者施用合适的治疗。在一些实施方案中，所述的治疗可包含用于缓解TBI的疗法。因此，本发明的重点在于诊断和治疗受试者TBI的方法，所述的方法包括以下步骤：(a)从所述受试者获得样本(例如，血液、血浆、尿液或唾液的样品)；(b)检测一种或多种miRNA(选自本发明所述的那些)；当所述miRNA的水平与参考标准(如本发明所述)不同时，所述患者被诊断为患有TBI；并且对所述TBI施用治疗。

在另一方面，本发明提供了确定针对疑似患有TBI的受试者的合适治疗的方法，所述方法包括通过确定来自受试者的样本的至少一种miRNA的水平来鉴定受试者是否患有TBI。

如果受试者被鉴定为患有TBI，则合适的治疗可包括以下一项或多项：进一步评估所述受试者，例如通过进一步测试(例如口头测试、认知测试、运动测试和/或光学测试)、CT和/或MRI扫描；将所述受试者从活动(例如发生TBI的活动)中撤离；将所述受试者送入医院或专科诊所；手术，以及向所述受试者施用缓解TBI的疗法。

所述缓解TBI的疗法可包括神经保护药物，例如用于治疗脑肿胀的药物，如甘露醇和高渗盐水，和/或其他神经保护措施，如避免高血压复苏，和使用镇静剂。

在一些实施方案中，可以随后例如在医院或诊所中，监测所述的受试者以跟踪他们的恢复。

根据本发明的另一方面，提供了检测和/或确定受试者中靶miRNA水平的方法，所述方法包括以下步骤：(a)从所述受试者获得样本；(b)通过使所述样本与对所述靶miRNA特异的探针接触来检测和/或确定样品中所述靶miRNA的水平。

如上所定义，所述样本可以是获自受试者的任何合适的流体或组织样本。在一些实施方案中，所述样本为血液、血清、血浆、尿液或唾液。

在一些实施方案中，所述方法可以包括确定样本中两种或多种靶miRNA的水平。

根据本发明的另一方面，提供了用于缓解TBI的疗法，其被用于治疗有此需要的受试者的方法，其中，通过确定来自所述受试者的样本中的至少一种miRNA的水平来鉴定所述受试者患有TBI。

确定所述靶miRNA水平的步骤可包括使样本与用探针功能化的基板例如包含探针的芯片接触。方便起见，基板或芯片可以包括多个探针，每个探针对不同的靶miRNA具有特异性。

受试者可能损伤，特别是头部损伤。受试者可能被怀疑患有TBI。受试者可能被怀疑患有mTBI或脑震荡。在一些实施方案中，在损伤后不超过72小时，不超过48小时，不超过36小时，不超过24小时，不超过12小时，不超过6小时，不超过4小时，伤后不超过2小时或不超过1小时获得样品。在一些实施方案中，在损伤后24小时或更长时间获得样品。在进一步的实施方案中，在损伤后15天或更短时间内从受试者获得样品。在一些实施方案中，在损伤后24小时至15天之间，或损伤后24小时至10天之间，或损伤后24小时至7天之间，或损伤后48小时至5天之间，从受试者获得样品。

在一些实施方案中，所述方法还包括治疗所述受试者。所述治疗可包括以下一项或多项：进一步评估受试者，例如通过进一步测试(例如口头测试、认知测试、运动测试和/或光学测试)、CT和/或MRI扫描；将所述受试者从活动(例如发生TBI的活动)中撤离；将所述受试者送入医院或专科诊所；并且向所述受试者施用疗法以缓解TBI。在一些实施方案中，所述治疗包括施用有效量的神经保护药物。

因此，在另一方面，本发明提供了治疗TBI的方法，所述方法包括：

确定来自受试者的样本中的至少一种miRNA的水平；和

当至少一种miRNA的水平指示mTBI时，施用适于mTBI的治疗；或者当至少一种miRNA的水平指示m-sTBI时，施用适于m-sTBI的治疗。

本领域技术人员将理解，针对mTBI和m-sTBI可以使用不同的治疗途径。

在又一方面，本发明提供了治疗疑似mTBI受试者的方法，该方法包括：

i)确定在从受试者获得的唾液样品中是否可检测到至少一种选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p组成的组的miRNA的上调水平，和

ii)如果检测到至少一种miRNA的上调水平，则向受试者提供mTBI的治疗。

具有mTBI的受试者可以如下处理：

·被诊断患有mTBI的运动员通常会以逐步返回比赛方案开始(由柏林脑震荡损伤共识会议和个人运动机构定义，例如RFU)。这将涉及一段时间的休息，然后逐渐增加劳累的水平和接触程度。根据医疗监督的水平和年龄，患有mTBI的运动员通常无法在6至23天内进行比赛。相反，如果排除患有mTBI，运动员将没有任何限制，并且可以在第二天正常训练。

·如果在院前诊断，mTBI将指示患者寻求医疗护理(例如在医院中或初级保健)，而如果排除患有mTBI，则不会指示医学审查。

·患有mTBI的人员不得24-48小时无人监管，并且在恢复之前不得驾驶或操作叉车或打开机器。

·被诊断患有mTBI的军事人员将调离战区并将休息，而如果被排除患有mTBI，则该人将继续执行现役。

·在NHS中，患有mTBI的人可能会被留在医院观察或根据NICE发布的指导进行CT扫描，而如果可以被排除患有mTBI，则该患者可以立即出院。

·被诊断患有mTBI的人通常会被要求在一段时间内不返回工作或学习。

·被诊断患有mTBI的人可能会被转诊至轻度TBI门诊或神经病学门诊或神经外科门诊。mTBI的典型干预措施包括教育，工作、学习和驾驶方面的建议，典型后遗症的医疗管理例如头痛或焦虑或情绪障碍或创伤后应激障碍，必要时进行药物和/或心理干预，并转诊至如所指示的其他服务，例如神经心理学、神经前庭学或眼科学。

·根据英国神经外科学会发布的指南，需要对患有mTBI的患者进行延迟创伤后垂体功能障碍的监测。

在医学-法律背景下，mTBI的诊断通常是不清楚的和推测的，因为放射学的研究通常是标准的，症状是非特异性的。mTBI的客观确认可能会导致损害赔偿和护理需求。对mTBI的合适治疗可包括：从活动中撤出所述受试者；在原地或社区中进行治疗；进一步评估医院中不过夜(mTBI患者通常带着头部创伤建议及时出院)的所述受试者；或进入院观察一段时间(通常1-2天)。可以使用测试(例如，口头测试、认知测试、运动测试和/或光学测试)进一步评估所述受试者。根据NICE指南，CT扫描通常仅在存在特定适应症时才需要，包括疑似颅骨骨折、创伤后癫痫发作、局灶性神经功能障碍、反复呕吐、初始评估时GCS评分少于13(儿童少于14、或1岁以下婴儿少于15)。

对m-sTBI的合适治疗可包括：MRI或CT扫描(特别是在受伤后1小时内)；入院(可能包括进入重症监护室和/或转入专科诊所或有神经外科设施的主要创伤中心)；神经监测；手术；施用缓解TBI的疗法，例如施用神经保护药物如治疗脑肿胀的药物，例如甘露醇和高渗盐水，和/或其他神经保护措施，例如避免高血压复苏和使用镇静剂。

因此，本发明能够快速将具有TBI的受试者分为mTBI或m-sTBI，从而使他们可以接受最合适的治疗。

根据本发明的另一方面，提供了一种用于诊断和/或监测TBI的检测系统，所述检测系统包括传感器元件，所述传感器元件包括用对靶miRNA特异的探针功能化的基板。所述检测系统还可包括检测能够检测靶miRNA与探针结合的装置。

根据本发明的又一方面，提供了一种用于诊断和/或监测TBI的检测系统的传感器元件，所述传感器元件包括用对靶miRNA特异的探针功能化的基板。

所述传感器元件还可包括用于在其上接收样本(例如流体样本)的样本添加区。

所述探针能够选择性地结合目的miRNA。可以用多个探针功能化所述基板。所述探针可以全部相同，或者可以提供两种或更多种不同的探针。例如，在一些实施方案中，可以用对第一miRNA特异的第一探针和对第二miRNA特异的第二探针功能化所述基板。所述第一和所述第二探针可以组合在一起，例如在所述传感器元件的不同部分上。

根据本发明的另一个方面，提供了一种用于诊断和/或监测受试者创伤性脑损伤(TBI)的方法的组合物，所述组合物包含针对靶miRNA特异的探针。所述的组合物可包含任何一种列出的miRNA或任何多种列出的miRNA(例如，2、3、4或者更多种列出的miRNA)。

在一些实施方案中，所述的目标miRNA选自由miR-505、miR-203、miR-654-3p、miR-655、miR-184、miR-301b、miR-425-5p、miR-502、miR-21、miR-let-7g、miR-335、miR-126*、miR-193a-5p、miR-144*、miR-190、miR-194、miR-365、miR-590-3p、miR-624、miR-625*、miR-671-3p、hsa-let-7c-5p、hsa-let-7i-5p、miR-142-3p、miR-148a-3p、miR-15b-5p、miR-16-5p、miR-181a-5p、miR-20a-5p、miR-20b-5p、miR-221-3p、miR-24-3p、miR-27b-3p、miR-29a-3p、miR-29c-3p、miR-30a-5p，miR-107，miR-135b-5p，miR-199b-5p，miR-324-5p，miR-652-3p、miR-424-5p,miR-10a、miR-132、miR-223、miR-143、miR-148b、miR-18a、miR-192、miR-429、miR-618、miR-95、miR-130a、miR-152、miR-27b、miR-301、miR-326、miR-345、miR-361、miR-422a、miR-579、miR-642、miR-99a、miR-520D-3p以及miR-62构成的群组。

在一些实施方案中，所述的靶miRNA选自由miR-505、miR-203、miR-654-3p、miR-655、miR-184、miR-301b、miR-425-5p、miR-502、miR-21、miR-let-7g、miR-335、hsa-miR-126*、miR-193a-5p、miR-144*、miR-190、miR-194、miR-365、miR-590-3p、miR-624、miR-625*以及miR-671-3p构成的群组。已发现这些microRNA是在所有TBI患者(轻度或重度)中表达的生物标志物。

在一些实施方案中，所述的靶miRNA选自由miR-505、miR-203、miR-654-3p、miR-655、miR-184、miR-301b、miR-425-5p、miR-502、miR-21、miR-let-7g以及miR-335构成的群组。

在一些实施方案中，所述的靶miRNA选自由let-7c-5p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-148a-3p、miR-15b-5p、miR-16-5p、miR-181a-5p、miR-20a-5p、miR-20b-5p、miR-221-3p、miR-24-3p、miR-27b-3p、miR-29a-3p、miR-29c-3p、和miR-424-5p，miR-30a-5p，miR-107，miR-135b-5p，miR-199b-5p，miR-324-5p以及miR-652-3p构成的群组。

在一些实施方案中，靶miRNA选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组。在一些实施方案中、两种靶miRNA选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组。

在一些实施方案中，靶miRNA选自由miR-10a、miR-132、miR-223、miR-143、miR-148b、miR-18a、miR-192、miR-429、miR-618、miR-95、miR-130a、miR-152、miR-194、miR-27b、miR-301、miR-326、miR-345、miR-361、miR-422a、miR-579、miR-642、miR-99a、miR-520D-3p和miR-629构成的群组。

在一些实施方案中，靶miRNA选自由miR-425-5p、miR-502、miR-21和miR-335组成的组。

所述的探针可包含生物分子，例如蛋白质(如抗体)或核酸。在一些实施方案中，所述探针包含核酸。所述核酸可以包含与所述靶miRNA的完整序列的互补序列至少70％、至少75％、至少80％、至少85％、至少90％或至少95％相同的序列。在一些实施方案中，所述核酸包含与靶miRNA序列的互补序列100％相同的序列(即受体包含与靶miRNA序列精确互补的核酸序列)。

可以通过任何合适的方法，例如通过本领域技术人员已知的耦合化学使所述探针附着到所述基板的表面上。在一些实施方案中，每个探针通过接头附着于所述基板的表面。在一些实施方案中，所述探针包含用于将所述探针固定在所述基板上的部分，或用于使所述探针附着到固定在所述基板上的接头的部分。

可选择地或者另外，所述探针可包含可检测的标记。所述的可检测的标记可以为例如放射性的、荧光的、发光的或基于抗体的(例如，它可以构成常规的四聚体抗体或其可检测的片段)。

所述传感器元件的所述基板可以由任何合适的材料形成。在一些实施方案中，所述基板包含或者由金属、塑料、玻璃、二氧化硅、硅、石墨、石墨烯或其任何组合形成。在一些实施方案中，所述的基板包括多层。例如，可以通过在碳化硅或二氧化硅层上形成石墨烯表面或石墨烯层来制备基板。所述的石墨烯表面可以是化学改性的，例如改性为氧化石墨烯(GO)或胺化石墨烯(GA)。用于形成石墨烯层的方法，例如外延生长和升华生长，对于本领域技术人员来说是已知的。

方便地，包含核酸或由核酸构成的探针可以使用酰胺偶联试剂[例如(O-(7-氮杂苯并三唑-1-基)-N，N，N，N'-四甲基脲六氟磷酸盐)(HATU)]通过接头连接至GO表面。然后可以使用包含用核酸探针功能化的表面的传感器元件来选择性地检测其互补miRNA。

合适的接头可包含苯胺部分(或其衍生物)、苯甲酸部分(或其衍生物)或乙二胺部分(或其衍生物)。苯胺接头可以通过使硝基苯分子(或衍生物)附着到石墨烯表面(例如使用重氮盐)，并将硝基苯还原成苯胺来形成。然后可以使用所述苯胺的胺基团附着到所述探针上。类似地，重氮盐(例如4-苯甲酸重氮四氟硼酸盐)可用于使苯甲酸或苯甲酸衍生物附着到石墨烯表面。可以使乙二胺部分附着到羧基化石墨烯或氧化石墨烯上。

所述的传感器元件可以被包含在测试条内。所述的测试条可以是一次性的。

通过本领域技术人员已知的任何合适的方法，可以将所述的检测装置配置成检测靶miRNA与受体的结合，例如通过检测电阻抗的变化、氢离子浓度或由杂交导致的构象变化。

所述的检测设备还可以包括向用户输出数据的用户界面。

在一些实施方案中，所述的检测装置包括治疗信息的数据库。所述装置可能能够根据目标miRNA或每种目标miRNA的水平从数据库中识别合适的治疗选择。所述治疗信息可以通过用户界面向所述用户提供。

方便地，所述的检测装置可以是便携式的，例如手持式的。所述检测装置可包括用于存储miRNA水平和与所述受试者有关的其他信息的数据存储单元。在一些实施方案中，所述装置包括用于向其他设备传送数据的数据通信装置，例如WiFi、3G、4G、蓝牙或通过移动应用程序无线传送数据。如果需要，这可以方便地使医疗专业人员容易地访问数据。

因此，可以设想，本发明的检测装置提供了一种可负担得起的便携式护理点装置，用于无创地诊断和监测TBI。所述装置可供救护人员、军队、学校、体育俱乐部和医疗保健专业人员使用，从而能够对疑似患有TBI的患者进行正确的评估和分类。

本发明的另一方面是一种用于检测和/或监测受试者中mTBI的系统。

一种检测系统基于靶miRNA和核酸探针之间的互补性，所述核酸探针通常是寡核苷酸探针。因此，本发明包括用于检测和/或监测受试者中mTBI的检测系统，其包括一种与能够结合miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107或miR-135b-5p中的至少一种的寡核苷酸功能化的基板。寡核苷酸可以具有与miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107或miR-135b-5p中的至少一种的至少一部分互补的序列，或者寡核苷酸可以具有与SEQ IDNO：25、26、35、39或40中的至少一部分互补的序列。互补或碱基配对区域的长度可以是7个或8个或更多个核苷酸。在实施方案中，互补或碱基配对区域的长度可以是9个、10个、12个、15个或更多个核苷酸，或者互补或碱基配对区域可以是miRNA的全长。用寡核苷酸功能化的基板可以是珠子或纳米颗粒。检测系统可以具有能够将结合的核酸探针-miRNA转化为可检测信号的其他组件。

另一种类型的检测系统基于RT-PCT。因此，本发明包括用于检测和/或监测受试者中mTBI的检测系统，其包括设计用于扩增至少一种选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107或miR-135b-5p构成的群组的miRNA的cDNA互补物的引物对。

在另一方面，提供了用于本方法的试剂盒。所述试剂盒可以包含至少能够选择性结合目标miRNA的探针(例如蛋白质如抗体，或者核酸)。在一些实施方案中，所述试剂盒包含含有多个探针的阵列。在一些实施方案中，所述的至少一种探针是用于进行PCR的引物。所述试剂盒还可以包括使用说明书，例如用于诊断和/或监测TBI的说明书。所述试剂盒还可以包含合适的缓冲液和试剂，例如扩增引物和酶(例如DNA聚合酶，用于将miRNA转变为cDNA的逆转录酶)。

应当理解，本申请关于本发明的任何方面所作的陈述可以适当地同样适用于本发明的任何其他方面。

具体实施方式

现在将通过示例同时参考附图来描述本发明的实施例。

随着miRNA在一系列不同病理学中成为有前景的生物标志物，本发明人试图探索它们在TBI中的作用。

实施例1

材料和方法

患者和样本收集

从英国伯明翰伊丽莎白女王医院的外科重建和微生物学研究中心(SRMRC)招募研究参与者，其作为创伤后(黄金时段研究)的脑生物标志物研究(Ethics Ref.13/WA/0399)的一部分。

首先，我们在创伤后第1天和第15天对带有颅外损伤(EC)的5例mTBI患者、5例sTBI+EC创伤患者和健康志愿者(HV)中的754个miRNA进行筛选，旨在选择能够区分轻度和重度TBI并预测15天后mTBI的恢复的特定候选生物标志物。根据这些信息(表2)，才有可能在40例不同患者的扩大队列中确认结果研究，这些患者被分为4个不同类别：HV(n＝10)、EC(n＝10)、mTBI+EC(n＝10)和sTBI+EC(n＝10)。健康志愿者同意并参加RECOS研究。EC创伤患者有放射学证实的骨折，无头部创伤、无感染、无神经或精神疾病史且无酒精或药物依赖性。带有EC的轻度TBI包括那些非穿透性头部创伤和格拉斯哥昏迷量表(GCS)评分>13的患者。带有EC的重度TBI包括GCS评分为8或以下的患者。所有患者的性别和年龄均与HV相匹配。

样本处理

在每位患者的创伤后第1天和15天取出外周血样品。血液样本抽取后2小时内用于血清分离处理。将全血在室温下静置约30分钟，然后在4℃下以3000rpm离心10分钟。将血清分成等分试样并储存在-80℃直至分析。

通过TaqMan低密度阵列(TLDA)进行RNA分离、逆转录和miRNA分析

对5例mTBI+EC和5例sTBI+EC患者进行初始筛选(发现组)，在两个不同的时间点(创伤后1天和15天)将其与HV进行比较。这些患者的血清用于分析754个miRNA的转录组。将血清样本以2000rpm离心10分钟以沉淀并除去任何循环细胞或碎片。根据Qiagen从血清和血浆中纯化小RNA的补充方案，使用Qiagen miRNeasy mini试剂盒(Qiagen，GmbH，Hilden，Germany)从400μl血清样品中提取miRNA，最后在30μl体积的无RNase水中洗脱。用ND-1000UV-可见分光光度计(NanoDrop)测定所得RNA的浓度和纯度。根据制造商的说明，将20ng血清RNA逆转录并预扩增。将预扩增产物加载到TLDAs，TaqMan Human MicroRNA Arrayv3.0 A和B(Applied Biosystems LifeTechnologies ^TM)上。在7900HT Fast RealTime PCRSystem(Applied Biosystem，LifeTechnologies ^TM)上进行TLDA的PCR。

数据分析

为了获得准确的miRNA分析，我们使用全局中位数归一化法。与微阵列分析类似，将来自每个样本的Ct值标准化为阵列的中位数Ct。此外，通过计算Ct中位数和每个阵列的平均值以及每个miRNA的Ct之间的Pearson相关性，我们确定了两个表达谱接近TLDAs的中位数和平均值的miRNA，即miR-331和miR-223*。通过应用两种不同的方法[DataAssistv.3software(AppliedBiosystemLife Technologies^TM)]和geNorm算法证实这些miRNA是TLDA中最稳定的。因此，miR-331和miR-223*作为参照基因，用于通过单一TaqMan测定进行验证。通过2-ΔΔCT方法计算表达倍数变化。通过Multi experiment viewerv4.8.1计算的微阵列分析(SAM)的显著性、在ΔCt中应用组间非配对检验并使用基于100个排列的p值、插补工具(imputation engine)：K-最近邻算法(10个邻近样本)鉴定差异表达的miRNA(DE miRNA)，错误发现率<0.15用作多重比较的校正。通过使用所有内源性对照，我们接受了仅作为可靠的DE miRNAs一致性。

单一TaqMan测定

从阵列中选择10种差异表达的miRNA作为潜在的候选生物标志物，旨在区分轻度和重度TBI并监测轻度的恢复。这些候选者用于在两个不同时间点(创伤后1天和15天)通过单次TaqMan测定(AppliedBiosystems，Life Technologies^TM)验证30例患者(验证集)的扩大队列中的数据，该队列分为3个不同类别(mTBI+EC、sTBI+EC以及仅EC)和10例对照(HV)。如上所述，提取样本并进行逆转录，并在Bio-Rad iQ5实时PCR检测系统(Bio-Rad，CA，USA)中进行RT-qPCR分析。通过2-ΔΔCT方法计算表达倍数变化。

统计分析

检查数据是否正态分布，并对数据进行转换以执行参数测试。通过对转化数据的单因素方差分析和Tukey事后检验法，对每个时间的不同组和组内的不同时间进行比较。使用接受者操作特征分析来计算每种生物标志物在诊断mTBI或sTBI(表示为曲线下面积(AUC))时的灵敏度和特异性。所有分析均在SPSS v.20(IBM)上进行。在p值小于0.05时，则差异被认为在统计学上是显著的。

结果

TaqMan低密度阵列(TLDA)的表达谱

从TLD4的754个可筛选的miRNA中，我们在患者受伤后1天于mTBI+EC中鉴定了10个表达不同的循环miRNA，受伤后15天鉴定了13个；在sTBI+EC中受伤后1天鉴定了19个，受伤后15天鉴定了22个(表2)。从该列表中排除hsa-miR-126*、miR-193a-5p、miR-144*、miR-190、miR-194、miR-365、miR-590-3p、miR-624、miR-625*和miR-671-3p，将其用于进一步分析，因为它们在大多数患者中表达，因此不适合仅用于轻度或严重创伤的候选生物标志物。然而，上述microRNA可以鉴定任何严重程度的TBI，因此是有用的TBI生物标志物。另一方面，选择单独在患者受伤1天后于mTBI+EC中差异表达的miR-184、miR-301b、miR-502和miR-505作为mTBI的早期候选生物标志物。此外，选择在患者受伤15天后于mTBI+EC差异表达的miR-203、miR-425-5p、miR-654-3p和miR-655作为能够追踪mTBI恢复的候选生物标志物。

最后，选择在上述两个时间点于sTBI+EC中持续表达的两种miRNA，miR-21和miR-335用于进一步研究

表2：通过TLDA进行检测与5例HV组相比，在5例mTBI+EC(1天和15天)和5例sTBI+EC(1天和15天)患者中差异表达的微小RNA的倍数变化。

单一TaqMan测定mTBI的候选生物标志物

为了验证这些发现，我们随后通过使用单TaqMan分析在两个选定的时间点(创伤后1天和15天)测试了三个分离和独立的组(10例mTBI+EC、10例sTBI+EC、10例EC)中所选miRNA的表达。将结果与10例HV进行比较。使用miR-331和miR-223*作为参照基因，通过2-ΔΔCT方法计算倍数变化。

在两个时间点的mTBI候选生物标志物(miR-184、miR-301b、miR-502、miR-505、miR-203、miR-425-5p、miR-654-3p和miR-655)中，两个显示出有趣的结果，且与在HV中相比，在三个不同的类别中显着和差异表达。特别地，miR-425-5p和miR-502显示出类似的趋势(图1)。与在HV(p<0.001)、EC(p<0.001)和sTBI+EC(p<0.001)中相比，在创伤后1天两者在mTBI+EC(平均值分别为0.387±0.201和0.314±0.146)中均显著下调。在轻度创伤后15天，miR425-5p和miR-502恢复到正常水平(0.886±0.310和1.157±0.258)。在创伤后1天和15天，还发现miR-425-5p和miR-502在EC样本中的表达与在HV中相似，因此表明这两种生物标志物仅在脑损伤患者中差异表达。此外，在两个时间点，与在HV中相比，它们在sTBI+EC中都没有显示出任何显著差异。因此，miR-425-5p和miR-502可被认为是对创伤后15天早期诊断和监测mTBI最有希望的候选生物标志物。表3显示这些生物标志物的AUC。

单TaqMan测定sTBI的候选生物标志物

分析miR-21和miR-335作为sTBI的潜在生物标志物，因为它们在初始筛选中在两个时间点于sTBI+EC中均出现上调。它们在患者的第二个数据集中也显示为强势候选生物标志物(图2)。相比于在HV(p＜0.001)、EC(p<0.001)和mTBI(p<0.001)中，Mir-21在带有EC的sTBI中两个时间点均显著上调(7.106±4.192和4.012±1.577)。与HV相比，其余类别未发现显著差异。miR-335在sTBI+EC中两个时间点均显示出上调(分别为16.824±14.195和12.324±8.931)。在创伤后1天，该组与对照(p＝0.001)和mTBI+EC(p＝0.031)而非EC显著不同。有趣的是，发现在创伤后1天(7.951±4.870)而非15天(1.260±0.531)，在EC患者中显著上调。因此，在创伤后15天，相对于在HV(p＝0.002)、EC(p＝0.007)和mTBI+EC(p＝0.001)中，在sRBI+EC组中miR335显著更高。与在HV中相比，miR-335在两个时间点的mTBI+EC没有显示出任何显著差异。这些生物标志物的AUC也显示在表3中。

表3：曲线下面积

讨论

本研究调查了miRNA水平的变化是否可用于TBI的诊断，并评估其严重程度。鉴定出四种miRNA在TBI中差异表达：miR-425-5p、miR 502、miR-21和miR-335。

与在HV中相比，miR-425-5p在创伤后1天于mTBI+EC中显示出显著结果，并且在所有其他类别中获得了类似的结果。其在轻度创伤后的前24小时内下调，且15天后恢复正常水平，这使miR-425-5p成为轻度创伤的合适候选生物标志物。

还发现miR-502在mTBI+EC中差异表达。该miRNA的趋势与miR-425-5p非常相似。它显示出对脑损伤患者的特异性，并且由于它在轻度创伤后15天恢复到正常值，因此还可用于追踪恢复。

追踪sTBI，注意到2个miRNA(miR-21、miR-335)在创伤后1天和创伤后15天均有表达，因此被选择作为sTBI的潜在生物标志物。与sTBI+EC的对照相比，miR-21和miR-335在两个时间点均显著上调。因此，过表达证实了阵列的结果，并显示了这些分子作为sTBI生物标志物的潜力。

选定的miRNA组具有准确诊断TBI的潜力，并根据严重程度对患者进行分层，从而可以提供最合适的治疗。

实施例2

患者和样本收集

从英国伯明翰伊丽莎白女王医院的外科重建和微生物学研究中心(SRMRC)招募研究参与者，其作为SIR(从受伤到康复的类固醇和免疫)研究(Ethics Ref.11/SW/0177)、ReCoS(运动中反复出现的脑震荡)研究(Ethics Ref.11-0429AP28)以及黄金时间研究(Ethics Ref.13/WA/0399)的一部分。在纳入研究之前，已收到参与者或有效代理人(家庭或未直接参与研究的专业人士)的书面知情同意书。

第二个样本数据集使用来自分为4个不同类别的总共120个人的血清样本，4个不同类别为HV(n＝30)、EC(n＝30)、mTBI+EC(n＝30)以及sTBI+EC(n＝30)。并且不同时间点(T0-1h、T4-12h、T48-72h、15天)从每个患者采集血液。健康志愿者同意并参加ReCoS研究。EC创伤患者有放射学证实的骨科骨折，无头部创伤、无感染、无神经或精神疾病史且无酒精或药物依赖性。带有EC的轻度TBI包括那些非穿透性头部创伤和格拉斯哥昏迷量表(GCS)评分≥13的患者。带有EC的重度TBI包括GCS≤8的患者。

样本处理

抽取血液样本，在2小时内进行血清分离处理。将全血在室温下静置约30分钟，然后在4℃下以3000rpm离心10分钟。将血清分成等分试样并储存在-80℃直至分析。

如实施例1中所述进行RNA分离、数据分析、测定以及统计分析。

结果

单一TaqMan测定mTBI的候选生物标志物

为了验证实施例1的发现，使用单TaqMan分析在不同的时间点(T0-1h、T4-12h、T48-72h、15天)测定三个分离和独立的组(30例mTBI+EC、30例sTBI+EC、30例EC)中所选miRNA的表达。将结果与10例HV进行比较。使用miR-331和miR-223*作为参照基因，通过2-ΔΔCT方法计算倍数变化。

在两个时间点的mTBI候选生物标志物(miR-184、miR-502、miR-505、miR-301b、miR-203、miR-425-5p、miR-654-3p和miR-655)中，仅有两个显示出有趣的结果，且与在HV中相比，在三个不同的类别中显著和差异表达。特别地，miR-425-5p和miR-502显示出类似的趋势(图3)。两者在mTBI+EC中均显著下调，针对miR-425-5p，是在T0-1h(p＝0.01845)和T4-12h(p＝0.01962)与在HV中相比，或者与在EC和sTBI+EC(p<0.05)中相比；针对miR-502是在T0-1h和T4-12h，与在HV中相比(分别为p＝0.02538和p＝0.03718)，或者与在EC和sTBI+EC(p<0.01)中相比。在中度创伤后48小时，miR425-5p和miR-502恢复至正常水平。还发现miR-425-5p和miR-502在EC组中的表达与在HV中相似，因此表明这两种生物标志物仅在脑损伤患者中下调。此外，在所有时间点，与在HV中相比，它们在sTBI+EC中都没有显示出任何显著下调。因此，miR-425-5p和miR-502可被认为是早期诊断和监测mTBI最有希望的候选生物标志物。表4显示这些生物标志物在最相关的时间点的AUC。

单一TaqMan测定sTBI的候选生物标志物

分析miR-21和miR-335作为sTBI的潜在生物标志物，因为它们在初始筛选中在两个时间点于sTBI+EC中均出现上调。它们在患者的第二个数据集中也显示为强势候选生物标志物(图4)。相比于在HV、EC和mTBI+EC(在T4-12h，p＝0.00306；在T48-72h，p＝0.00844；在15天，p＝0.00077)中，在创伤后4h，Mir-21在两个时间点于带有EC的sTBI中均显着上调。与HV相比，其余类别未发现显著差异。与在HV(在T0-1h，p＝0.00109；在T4-12h，p＝0.00284；在T48-72h，p＝0.00012；在15天，p＝0.01284)和mTBI+EC中相比，MiR-335在所有时间点于sTBI+EC中显示上调，但与在EC中相比，没有发现显著的上调。这些生物标志物的AUC也显示在表4中。

表4：在不同时间点TBI的四种候选生物标志物的曲线下面积。

仅显示出最相关的时间点。

讨论

该研究验证了先前的发现，即miRNA水平的变化可用于TBI的诊断，并评估其严重程度。该研究证实，以下4种miRNA在TBI中差异表达：miR-425-5p、miR 502、miR-21和miR-335。

与在HV中相比，miR-425-5p在T0和T4-12h于mTBI+EC中显示出显著结果，并且在所有其他类别中获得了类似的结果。在T48-72h后其下调回到正常水平，证实miR-425-5p是轻度创伤的合适候选生物标志物。

还证实miR-502在mTBI+EC中差异表达。该miRNA的趋势与miR-425-5p非常相似。它显示出对脑损伤患者的特异性，并且由于它在中度创伤后T48-72h恢复到正常值，因此还可用于追踪恢复。

追踪sTBI，注意到2个miRNA(miR-21、miR-335)在所有时间点均有表达，因此被证实作为sTBI的潜在生物标志物。与在sTBI+EC中的对照相比，miR-21和miR-335均显著上调。因此，过表达证实了这些分子作为sTBI生物标志物的潜力。

实施例3

在损伤后2-3天从受伤专业运动员收集唾液样本，并分析唾液中存在的microRNA。这些运动员在临床上被诊断为患有mTBI。

材料和方法

使用nCounter技术分析microRNA，该技术使用分子“条形码”和显微镜成像在一个杂交反应中检测和计数多达数百个独特的转录物。每个颜色编码的条形码附着于与目标microRNA对应的单个靶特异性探针。

根据制造商的实验方法进行分析，该实验方法包括以下步骤：

杂交：该技术每个microRNA使用2～20个碱基的探针，在溶液中杂交。报告探针携带信号，而捕获探针使复合物被固定用于数据收集。

纯化和固定：杂交后，除去过量的探针，使探针/靶复合物对齐并将其固定在nCounter柱中。

数据收集：将样本盒放置在数字分析仪器中以进行数据收集。对盒表面上的颜色代码进行计数并将每个目标分子列成表格。

结果

下面的表4是与在健康志愿者中相比，在有脑震荡的运动员中发现的显著和差异表达的microRNA的列表。该表显示了相比于对照组，患者中microRNA表达的倍数变化。使用miR-23a-3p和miR-148b-3p作为参照基因计算倍数变化。与健康志愿者相比，在患脑震荡的运动员中差异化表达。该表显示了与对照组相比，患者中microRNA表达的倍数变化。使用miR-23a-3p和miR-148b-3p作为参考基因计算倍数变化。

表5

microRNA	倍数变化
		hsa-let-7c-5p	2.80
hsa-let-7i-5p	1.82
		hsa-miR-142-3p	1.41
hsa-miR-148a-3p	1.72
		hsa-miR-15b-5p	2.30
hsa-miR-16-5p	2.32
		hsa-miR-181a-5p	1.54
hsa-miR-20a-5p+hsa-miR-20b-5p<sup>§</sup>	2.16
		hsa-miR-221-3p	2.90
hsa-miR-24-3p	1.94
		hsa-miR-27b-3p	3.45
hsa-miR-29a-3p	4.03
		hsa-miR-29c-3p	1.44
hsa-miR-424-5p	2.88
		hsa-miR-30a-5p	2.16
hsa-miR-107	1.72
		hsa-miR-135b-5p	1.97
hsa-miR-199b-5p	1.88
		hsa-miR-324-5p	5.61
hsa-miR-652-3p	3.43

^§由于nCounter技术无法区分miR-20a-5p和miR-20b-5p，它们的值被合并。

讨论

该研究表明，唾液中存在的microRNA是脑震荡/mTBI的指标。这是有意义的，因为唾液比血液更容易获得，因此唾液microRNA的检测提供了特别是在场边，用于诊断TBI快速且方便的手段。

实施例4

材料和方法

研究批准

通过位于英国伯明翰伊丽莎白女王医院的外科重建和微生物学研究中心(SRMRC)招募研究的参与者，作为ReCoS(运动中的持续性脑震荡)研究的一部分(伦理参考号11-0429AP28)。在参与者被纳入研究之前，已收到其书面知情同意书。

分析来自总共20名受试者(探索组)的唾液样品。特别是，使用10名患脑震荡的运动员和10名非脑震荡运动员的唾液样品来筛选蛋白质，使用6名患脑震荡的运动员和6名非脑震荡运动员进行microRNA分析。根据相关运动的现行方案，由参加的强化护理团队证实是在脑震荡后48-72小时收集脑震荡运动员的唾液。根据这些数据，我们计算了在α＝0.05和功率＝0.9的更大患者队列中进行验证所需的样品量。基于发现组中鉴定的大多数变体miRNA，所需的样品大小为29名受试者。

第二组样品(验证组)是从总共22个已患有脑震荡的和10个非脑震荡的运动员中获得的。在脑震荡后2至5天收集样品。

样品处理

收集5ml唾液于50ml无菌塑料通用容器管中，保持在冰上不超过30'。然后将样品在2600×g时4℃离心15分钟。然后将唾液分成等分试样，并向每ml唾液中加入RNase抑制剂(500单位/mL)用于miRNA的分析。

分析前将样品储存在-80℃。

RNA分离

根据从血清或血浆中纯化RNA(包括小RNA)的Qiagen补充实验方案，使用QiagenmiRNeasy Mini试剂盒(Qiagen，GmbH，Hilden，Germany)从400μl唾液中分离总RNA。最后，在200μl无RNA酶的水中洗脱RNA，随后通过添加20μg糖原、0.1体积3M乙酸钠和2.5体积冷冻的100％乙醇使其沉淀。在-80℃孵育过夜后，将RNA离心并在冷冻的75％乙醇中洗涤两次，并在7μl无RNA酶的水中重悬。通过Nanodrop定量RNA。

通过NanoString技术循环进行miRNA分析

根据制造商的说明，在nCounter FLEX(预设位置和自动分析)(NanoStringTechnologies)中使用nCounter Human v3miRNA表达分析试剂盒(NanoStringTechnologies)，通过NanoString技术进行唾液中的miRNA的表达分析。对6名患脑震荡的运动员和6名非脑震荡运动员进行了分析。将3μl(约150ng)总RNA用于样品的制备。通过nSolver 2.6软件进行数据分析；通过全局中位值归一化(GMN)方法选出用作内源性对照的miRNA：我们计算每个泳道的计数平均值与每个miRNA的计数之间的Pearson相关性，鉴定那些表达更接近数据库(miR-23a-3p，miR-29b-3p，miR-148b-3p)的计数平均值的miRNA。使用基于100个排列的p值、插补工具(imputation engine)：K-最近邻算法(10个邻近样本)、错误发现率(FDR)<0.05，通过微阵列显著性分析(SAM)(http://www.tm4.org)进行统计学分析。

单一TaqMan分析

从阵列中选择21个差异表达的miRNA作为脑震荡的潜在候选的生物标志物。这些候选被用于在22名患脑震荡的运动员和10名非脑震荡运动员(验证组)的扩大的队列中进行数据验证。在损伤后2-5天收集唾液，并通过单一TaqMan测定法(AppliedBiosystems，Life Technologies^TM)进行分析。如上所述提取样品，逆转录(AppliedBiosystems，LifeTechnologies^TM)，并在Bio-Rad iQ5实时PCR检测系统(Bio-Rad，CA，USA)中进行RT-qPCR分析。使用miR-23a-3p和miR-148b-3p作为参考基因，通过2^-ΔΔCT方法计算表达倍数的变化。

统计分析

使用非参数检验(Mann-Whitney U检验)比较两个独立组中miRNA的水平。p值<0.05被认为是具有显著差异的。

此外，利用接受者操作特征(ROC)分析来计算每种生物标志物在诊断脑震荡中的灵敏度和特异性，表示为曲线下面积(AUC)。所有分析均在SPSS v.22(IBM)上进行。

结果

Nanostring分析

在通过nCounter NanoString分析患脑震荡的运动员和非脑震荡运动员的唾液中的800个microRNA中，选出21个miRNA在两个群体中有差异表达：hsa-let-7c-5p、hsa-let-7i-5p、hsa-miR-15b-5p、hsa-miR-16-5p、hsa-miR-20a-5p+hsa-miR-20b-5p、hsa-miR-24-3p、hsa-miR-27b-3p、hsa-miR-29a-3p、hsa-miR-29c-3p、hsa-miR-30a-5p、hsa-miR-107、hsa-miR-135b-5p、hsa-miR-142-3p、hsa-miR-148a-3p、hsa-miR-181a-5p、hsa-miR-199b-5p、hsa-miR-221-3p、hsa-miR-324-5p、hsa-miR-424-5p、hsa-miR-652-3p。结果显示上述所有miRNA均显著上调。

单一TaqMan测定

为了验证这些发现，我们随后在一个分开的和独立的组中测试了21种选择的miRNA的表达，该组由22名患脑震荡的运动员和10名非脑震荡运动员组成。在损伤后2-5天收集唾液，通过使用单一TaqMan测定。使用miR-23a-3p和miR-148b-3p作为参考标记，通过2^-ΔΔCT方法(2-delta delta CT方法)计算倍数变化。

在这些脑震荡患者的候选生物标志物中，其中5种在验证组中显著上调。具体而言，miR-27b-3p(p＝0.02)、let-7i-5p(p＝0.001)、miR-142-3p(p＝0.008)，miR-107(p＝0.03)、miR-135b-5p(p＝0.02)证实了通过Nanostring分析获得的结果(图5)。这些结果也显示在表6中，其显示了对照组的倍数变化在0.6和1.4之间。高于此的倍数变化被认为是表明患有脑震荡。对于患脑震荡的运动员中所鉴定的5种miRNA中的每一种的中位值的倍数变化是大约2.5的倍数变化。对于任何这些鉴定的5种生物标志物，通过2^-ΔΔCT方法计算的2.0倍或更大的倍数变化值将给出患有脑震荡的诊断。

表6

	miR 27b-3p	let 7i-5p	miR 142-3p	miR 107	miR 135b-5p
						对照	0.6-1.4	0.6-1.4	0.6-1.4	0.6-1.4	0.6-1.4
患脑震荡的平均值	4.494754264	4.691358	5.35579639	3.33647	6.022724008
						患脑震荡的中位值	2.462406429	3.266526	2.98367692	2.387747	2.539442

图6和表7中显示了这些生物标志物的相对表达的箱形图和AUC(分别为0.755、0.845、0.791、0.732和0.755)。

表7：被选为脑震荡生物标志物的miRNA的曲线下面积(AUC)

变量	AUC
		miR-27b-3p	0.755
let-7i-5p	0.845
		miR-142-3p	0.791
miR-107	0.732
		miR-135b-5p	0.755

讨论

在这项研究中，我们检验了唾液，其是一种潜在的用于检查头部损伤和脑震荡(mTBI)背景下的生物标志物的新型液体。

仅在脑震荡群体的唾液中发现5种miRNA显著上调。miRNA-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p均在患脑震荡的运动员中显著上调。这五种生物标志物中的均都能够区分患脑震荡的运动员和非脑震荡的运动员，尤其是在损伤后2-5天。

SEQUENCE LISTING

<110> 伯明翰大学

<120> 创伤性脑损伤的生物标志物

<130> P19112231WP

<150> PCT/GB2017/050231

<151> 2017-01-30

<160> 69

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 1

uagcuuauca gacugauguu ga 22

<210> 2

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 2

aaugacacga ucacucccgu uga 23

<210> 3

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 3

auccuugcua ucugggugcu a 21

<210> 4

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 4

ucaagagcaa uaacgaaaaa ugu 23

<210> 5

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 5

cagugcaaug auauugucaa agc 23

<210> 6

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 6

uggacggaga acugauaagg gu 22

<210> 7

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 7

cgucaacacu ugcugguuuc cu 22

<210> 8

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 8

gugaaauguu uaggaccacu ag 22

<210> 9

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 9

uaugucugcu gaccaucacc uu 22

<210> 10

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 10

auaauacaug guuaaccucu uu 22

<210> 11

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 11

gccccugggc cuauccuaga a 21

<210> 12

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 12

cguguauuug acaagcugag uu 22

<210> 13

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 13

ugagguagua guuuguacag uu 22

<210> 14

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 14

cauuauuacu uuugguacgc g 21

<210> 15

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 15

ugggucuuug cgggcgagau ga 22

<210> 16

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 16

ggauaucauc auauacugua ag 22

<210> 17

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 17

cuauauauca aacauauucc u 21

<210> 18

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 18

uguaacagca acuccaugug ga 22

<210> 19

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 19

uaaugccccu aaaaauccuu au 22

<210> 20

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 20

uaauuuuaug uauaagcuag u 21

<210> 21

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 21

uaguaccagu accuuguguu ca 22

<210> 22

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 22

gacuauagaa cuuucccccu ca 22

<210> 23

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 23

uccgguucuc agggcuccac c 21

<210> 24

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 24

ugagguagua gguuguaugg uu 22

<210> 25

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 25

ugagguagua guuugugcug uu 22

<210> 26

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 26

uguaguguuu ccuacuuuau gga 23

<210> 27

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 27

ucagugcacu acagaacuuu gu 22

<210> 28

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 28

uagcagcaca ucaugguuua ca 22

<210> 29

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 29

uagcagcacg uaaauauugg cg 22

<210> 30

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 30

aacauucaac gcugucggug agu 23

<210> 31

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 31

uaaagugcuu auagugcagg uag 23

<210> 32

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 32

caaagugcuc auagugcagg uag 23

<210> 33

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 33

agcuacauug ucugcugggu uuc 23

<210> 34

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 34

uggcucaguu cagcaggaac ag 22

<210> 35

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 35

uucacagugg cuaaguucug c 21

<210> 36

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 36

uagcaccauc ugaaaucggu ua 22

<210> 37

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 37

uagcaccauu ugaaaucggu ua 22

<210> 38

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 38

uguaaacauc cucgacugga ag 22

<210> 39

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 39

agcagcauug uacagggcua uca 23

<210> 40

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 40

uauggcuuuu cauuccuaug uga 23

<210> 41

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 41

cccaguguuu agacuaucug uuc 23

<210> 42

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 42

cgcauccccu agggcauugg ugu 23

<210> 43

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 43

aauggcgcca cuaggguugu g 21

<210> 44

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 44

cagcagcaau ucauguuuug aa 22

<210> 45

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 45

uacccuguag auccgaauuu gug 23

<210> 46

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 46

uaacagucua cagccauggu cg 22

<210> 47

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 47

ugucaguuug ucaaauaccc ca 22

<210> 48

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 48

ugagaugaag cacuguagcu c 21

<210> 49

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 49

ucagugcauc acagaacuuu gu 22

<210> 50

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 50

uaaggugcau cuagugcaga uag 23

<210> 51

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 51

cugaccuaug aauugacagc c 21

<210> 52

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 52

uaauacuguc ugguaaaacc gu 22

<210> 53

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 53

aaacucuacu uguccuucug agu 23

<210> 54

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 54

ucaauaaaug ucuguugaau u 21

<210> 55

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 55

cagugcaaug uuaaaagggc au 22

<210> 56

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 56

agguucugug auacacuccg acu 23

<210> 57

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 57

uucacagugg cuaaguucug c 21

<210> 58

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 58

cagugcaaua guauugucaa agc 23

<210> 59

<211> 20

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 59

ccucugggcc cuuccuccag 20

<210> 60

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 60

gcugacuccu aguccagggc uc 22

<210> 61

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

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uuaucagaau cuccaggggu ac 22

<210> 62

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<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 62

acuggacuua gggucagaag gc 22

<210> 63

<211> 23

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 63

uucauuuggu auaaaccgcg auu 23

<210> 64

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 64

gucccucucc aaaugugucu ug 22

<210> 65

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 65

aacccguaga uccgaucuug ug 22

<210> 66

<211> 22

<212> RNA

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<400> 66

aaagugcuuc ucuuuggugg gu 22

<210> 67

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 67

uggguuuacg uugggagaac u 21

<210> 68

<211> 21

<212> RNA

<213> Homo sapiens

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aucacauugc cagggauuuc c 21

<210> 69

<211> 22

<212> RNA

<213> Homo sapiens

<400> 69

ucagugcauc acagaacuuu gu 22

Claims

1.一种诊断和/或监测受试者的轻度创伤性脑损伤(mTBI)的方法，所述方法包括测定从所述受试者获得的唾液样品中的至少一种miRNA的水平，其中所述至少一种miRNA选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组或其任意组合。

2.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述至少一种miRNA的水平上调表明患有mTBI。

3.如权利要求1所述的方法，其特征在于，如果所述至少一种miRNA的水平高于预定阈值或相对于对照增加，则所述受试者被诊断为患有mTBI。

4.如权利要求3所述的方法，其特征在于，所述预定阈值相当于2-delta delta CT(2-ΔΔCT)方法中的2倍或更大的倍数变化。

5.如权利要求1～4任一项所述的方法，其中所述至少一种miRNA是miR-27b-3p。

6.如权利要求1～4任一项所述的方法，其中所述至少一种miRNA是let-7i-5p。

7.如权利要求1～4任一项所述的方法，其中所述至少一种miRNA是miR-142-3p。

8.如权利要求1～4任一项所述的方法，其中所述至少一种miRNA是miR-107。

9.如权利要求1～4任一项所述的方法，其中所述至少一种miRNA是miR-135b-5p。

10.如前述任一项权利要求中所述的方法，其特征在于，所述方法包括测定从受试者获得的唾液样品中至少两种miRNA的水平。

11.如权利要求10所述的方法，其特征在于，所述至少两种miRNA选自miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107或miR-135b-5p。

12.如权利要求10或11所述的方法，其特征在于，所述至少两种miRNA的水平上调表明患有mTBI。

13.如权利要求10或11所述的方法，其特征在于，如果所述至少两种miRNA的水平高于预定阈值或相对于对照增加，则所述受试者被诊断为患有mTBI。

14.如权利要求13所述的方法，其特征在于，所述预定阈值相当于2-delta delta CT(2-ΔΔCT)方法中的1.5倍或更大的倍数变化。

15.如前述任一项权利要求中所述的方法，其特征在于，在损伤后24小时至15天获得所述唾液样品。

16.如权利要求15所述的方法，其特征在于，在损伤后24小时至7天获得所述唾液样品。

17.如权利要求16所述的方法，其特征在于，在损伤后2天至5天获得所述唾液样品。

18.如前述任一项权利要求中所述的方法，其特征在于，所述方法包括确定miRNAmiR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p的水平。

19.如前述任一项权利要求中所述的方法，其特征在于，所述方法还包括确定选自let-7c-5p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-148a-3p、miR-15b-5p、miR-16-5p、miR-181a-5p、miR-20a-5p、miR-20b-5p、miR-221-3p、miR-24-3p、miR-27b-3p、miR-29a-3p、miR-29c-3p和miR-424-5p、miR-30a-5p、miR-107、miR-135b-5p、miR-199b-5p、miR-324-5p或miR-652-3p中的一种或多种额外miRNA的水平。

20.一种用于诊断和/或监测mTBI的检测系统的传感器元件，所述传感器元件包括用对miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107或miR-135b-5p中的至少一种具有特异性的探针功能化的基板。

21.如权利要求20所述的传感器元件，其特征在于，所述探针包含能够结合所述至少一种miRNA的核酸。

22.如权利要求20或21所述的传感器元件，其特征在于，所述探针包含一种核酸，其序列与所述靶miRNA序列的互补序列具有至少70％的同一性。

23.如权利要求20或21所述的传感器元件，其特征在于，所述探针包含一种核酸，其与SEQ ID NO：25、26、35、39或40的互补序列具有至少70％的同一性。

24.一种用于诊断和/或监测mTBI的检测系统，其包括：

-如权利要求20～23任一项所述的传感器元件，和

-能够检测靶miRNA与探针的结合的检测装置。

25.如权利要求24所述的检测系统，其还包括确定所述靶miRNA是否上调的装置。

26.一种用于确定疑似患有mTBI的受试者的治疗方案的方法，其包括将从所述受试者获得的唾液样品应用于如权利要求24或25所述的检测系统，如果检测到所述至少一种miRNA的水平上调，则提供mTBI治疗。

27.一种治疗疑似患有mTBI的受试者的方法，该方法包括：

i)确定从受试者获得的唾液样品中是否能够检测到选自由miR-27b-3p、let-7i-5p、miR-142-3p、miR-107和miR-135b-5p构成的群组中至少一种miRNA的水平上调，和

ii)如果检测到至少一种miRNA的水平上调，则向受试者提供mTBI的治疗。