CN110283767A - 一种趋氧受体基因aer功能丧失的大肠杆菌菌株及制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种趋氧受体基因aer功能丧失的大肠杆菌菌株及制备方法。属于生物技术工程领域,具体涉及利用λ‑Red重组酶方法,对编码大肠杆菌趋氧性受体基因aer进行敲除,使之丧失趋氧性,构建一个大肠杆菌趋氧受体基因aer功能丧失菌株模型。用于研究细菌的侵染过程,治理病害;为治理环境污染,净化污水提供理论依据。
Description
技术领域
本发明属于生物技术工程领域,具体涉及通过大肠杆菌aer基因被敲除而丧失趋氧受体基因,致使该菌丧失对氧气的趋化性功能。
背景技术
趋化性是细菌调控对外界环境做出适应性反应的感受系统之一,有运动能力的细菌对浓度不同的化学物质做出反应,使之趋向有利的环境,或逃避有害与不利的环境。趋氧性(或者能量趋性)是趋化性的一种,是一种能引导细菌自动定位并移动于某处,从而使它们可以达到最佳胞内氧水平。这种趋氧性是通过呼吸链完成的,由此可见趋氧性传感器对各类细菌的生命活动极为重要。运动型细菌大多具有这种趋氧性,并且趋氧性在细菌的生命周期中具有重要的生物学功能。大肠杆菌中编码趋氧性受体基因是aer。研究细菌的趋化性,构建大肠杆菌趋氧受体基因aer功能丧失模型,对研究控制细菌的侵染过程,治理病害;治理环境污染,净化污水;以及研究治疗癌症等疾病都有重要意义。
发明内容
为了克服现有技术中存在的不足,本发明的目的是提供一种趋氧受体基因aer功能丧失的大肠杆菌菌株,利用λ-Red重组酶方法,对编码大肠杆菌趋氧性受体基因aer进行敲除,使之丧失趋氧性,构建一个大肠杆菌趋氧受体基因aer功能丧失菌株模型。用于研究细菌的侵染过程,治理病害;为治理环境污染,净化污水提供理论依据。
本发明的另一目的是提供制备上述大肠杆菌菌株的方法。
为了实现上述目的本发明采用如下技术方案:
第一方面,提供一种趋氧受体基因aer功能丧失的大肠杆菌菌株的制备方法,包括以下步骤:
(1)设计引物:
用于同源重组的引物为Aer-tet-R和Aer-tet-F;设计原则是5'端为aer基因的同源区(未加下划线),3'端为四环素抗性基因tetRA的同源序列(加下划线),重组体的检测所用引物为JC-Aer-R及JC-Aer-F,这些引物的序列如下所示:
Aer-tet-R:ATCAGGCATTGTGCTCCAACCGCCCGGATCCGGCATACCGACTAAGCA CTTGTCTCCTG;
Aer-tet-F:CAAGAAGTTAACAACCATATAACCTGCACAGGACGCGAACTTAAGACC CACTTTCACA;
JC-Aer-R:AAGATGCGCCAGCATCGC;
JC-Aer-F:GGCCGACATAAACTCTGA;
(2)含tetRA基因的DNA片段的扩增:
以含有四环素抗性基因的大肠杆菌DH10Bac(Tet+,Kan+,购自武汉淼灵生物科技有限公司)的DNA为模板,Aer-tet-R和Aer-tet-F为引物进行PCR扩增,获得两端分别与aer基因上、下游同源,中间为四环素抗性基因tetRA的DNA片段。将该片段进行琼脂糖凝胶回收,以用于下一步电转化。
(3)感受态细胞的制备:
将含有pKD46质粒的MG1655菌株在含有20μg/mL Amp的LB培养基中30℃下过夜培养,之后以1:100的比例接种到含20μg/mL Amp的LB中30℃下震荡培养,当OD600达到0.6时加入0.2%的阿拉伯糖进行诱导,4小时后4℃下收集细胞,用1/2体积预冷的无菌去离子水洗2次,并浓缩为原体积的1/40,作为感受态细胞备用。
(4)电转及目的菌株的筛选与鉴定
将胶回收的DNA片段(100ng)与80μL感受态细胞在电转杯中混合,冰浴5-10min后,用2200V电击,电击后迅速加入1000μL LB培养液,30℃下震荡培养30min后在20μg/mL的四环素平板上涂板,37℃下过夜培养,平板上长出的菌落为抗四环素的菌落,对其进一步在四环素平板上划线纯化,并用JC-Aer-R及JC-Aer-F引物对这些菌落进行菌落PCR鉴定,有四环素抗性基因tetRA的DNA片段的菌落即为大肠杆菌基因aer敲除的菌株。
获得大肠杆菌趋氧受体基因aer敲除菌株,还可以通过部分敲除aer基因或在aer基因中插入外源DNA片段来实现。部分敲除aer基因引物设计原则是先确定要敲除的序列,引物的5'端为待敲除序列相邻的同源区,3'端为四环素抗性基因tetRA的同源序列;插入外源DNA序列使aer基因失活的引物设计原则是先确定插入外源DNA的位置,引物的5'端为待插入位置相邻的同源区,3'端为四环素抗性基因tetRA的同源序列。用来敲除、替换或插入的基因片段,出来可以选用四环素抗性基因tetRA的DNA片段外,还可以选择其它抗性基因片段,如氨苄青霉素抗性基因、羧苄青霉素抗性基因、甲氧西林抗性基因、卡那霉素抗性基因、氯霉素抗性基因、链霉素抗性基因等抗性基因;或者其它便于筛选的标记基因如绿色/红色荧光蛋白基因等。
第二方面,提供上述制备方法获得的趋氧受体基因aer功能丧失的大肠杆菌菌株。
本发明相对于现有技术的优势在于:
构建大肠杆菌趋氧受体基因aer功能丧失模型,用于研究细菌的侵染过程,治理病害;为治理环境污染,净化污水提供理论依据。
附图说明
图1PCR产物切胶回收电泳检测;
M:DL2000DNA标样;1:四环素抗性基因胶回收产物。
图2菌落PCR鉴定图;
M:DL2000DNA标样;1-4:实验组;5对照。
图3A为MG1655菌株在泳动培养基上培养结果;
图3B为aer基因缺失突变株在泳动培养基上培养结果;
具体实施方式
通过以下详细说明结合附图可以进一步理解本发明的特点和优点。所提供的实施例仅是对本发明方法的说明,而不以任何方式限制本发明揭示的其余内容。【实施例1】利用λ-Red重组酶方法对编码大肠杆菌趋氧受体基因aer进行敲除(1)设计引物:
用于同源重组的引物为Aer-tet-R和Aer-tet-F,设计原则是5'端为aer基因的同源区(未加下划线),3'端为四环素抗性基因tetRA的同源序列(加下划线),重组体的检测所用引物为JC-Aer-R及JC-Aer-F。这些引物的序列如表1所示,由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
表1本发明所用的引物
(2)含tetRA基因的DNA片段的扩增:
以含有四环素抗性基因的大肠杆菌DH10Bac的DNA为模板,Aer-tet-R和Aer-tet-F为引物进行PCR扩增,获得两端分别与aer基因上、下游同源,中间为四环素抗性基因tetRA的DNA片段。将该片段进行琼脂糖凝胶回收,以用于下一步电转化,如图1所示。
(3)感受态细胞的制备:
将含有pKD46质粒的MG1655菌株在含有20μg/mL Amp的LB培养基中30℃下过夜培养,之后以1:100的比例接种到含20μg/mL Amp的LB中30℃下震荡培养,当OD600达到0.6时加入0.2%的阿拉伯糖进行诱导,4小时后4℃下收集细胞,用1/2体积预冷的无菌去离子水洗2次,并浓缩为原体积的1/40,作为感受态细胞备用。
(4)电转及目的菌株的筛选与鉴定
将胶回收的DNA片段(100ng)与80μL感受态细胞在电转杯中混合,冰浴5-10min后,用2200V电击,电击后迅速加入1000μL LB培养液,30℃下震荡培养30min后在20μg/mL的四环素平板上涂板,37℃下过夜培养,平板上长出的菌落为抗四环素的菌落,对其进一步在四环素平板上划线纯化,并用JC-Aer-R及JC-Aer-F引物对这些菌落进行菌落PCR鉴定,有四环素抗性基因tetRA的DNA片段的菌落即为大肠杆菌基因aer敲除的基因增变菌株,如图2所示。
【实施例2】大肠杆菌MG1655aer基因缺失突变株泳动检测
配制泳动培养基:称取NaCl 5g,胰蛋白胨5g,琼脂粉2g,加蒸馏水1L,121℃灭菌20min,倒平板,待琼脂完全凝固后使用。
分别挑取野生型MG1655和【实施例1】经过JC-Aer-R及JC-Aer-F引物PCR鉴定的aer基因敲除菌株在LB培养基平板上划线于37℃过夜培养,用灭菌的牙签挑去单菌落用穿刺方法接种在泳动培养基中,然后在30℃培养16h后,观察菌落的生长状况,如图3所示,图3A为野生型大肠杆菌MG1655在泳动培养基上生长的结果,菌落从接种点向四周生长,同时在培养基表面有菌落生长,这是由于培养基表面氧气含量高,趋氧受体基因作用的结果;图3B为敲除趋氧性受体基因aer的菌种在泳动培养基上生长菌落形态,可以看出细菌可以向四周扩散生长,但没有向培养基表面生长的趋势,菌落主要分布在培养基内部,而且生长扩散的速度比野生型菌株有所减缓。
其它未详细说明的部分均为现有技术。尽管上述实施例对本发明做出了详尽的描述,但它仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部实施例,人们还可以根据本实施例在不经创造性前提下获得其他实施例,这些实施例都属于本发明保护范围。
序列表
<110> 武汉生物工程学院
<120> 一种趋氧受体基因aer功能丧失的大肠杆菌菌株及制备方法
<160> 4
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 59
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
atcaggcatt gtgctccaac cgcccggatc cggcataccg actaagcact tgtctcctg 59
<210> 2
<211> 58
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
caagaagtta acaaccatat aacctgcaca ggacgcgaac ttaagaccca ctttcaca 58
<210> 3
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
aagatgcgcc agcatcgc 18
<210> 4
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
ggccgacata aactctga 18
Claims (2)
1.一种趋氧受体基因aer功能丧失的大肠杆菌菌株的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)设计引物:
用于同源重组的引物为Aer-tet-R和Aer-tet-F; 设计原则是5'端为aer基因的同源区(未加下划线),3'端为四环素抗性基因tetRA的同源序列(加下划线),重组体的检测所用引物为JC-Aer-R及JC-Aer-F,这些引物的序列如下所示:
Aer-tet-R:ATCAGGCATTGTGCTCCAACCGCCCGGATCCGGCATACCGACTAAGCACTTGTCTCCTG;
Aer-tet-F:CAAGAAGTTAACAACCATATAACCTGCACAGGACGCGAACTTAAGACCCACTTTCACA;
JC-Aer-R:AAGATGCGCCAGCATCGC;
JC-Aer-F:GGCCGACATAAACTCTGA;
(2)含tetRA基因的DNA片段的扩增:
以含有四环素抗性基因的大肠杆菌DH10Bac(Tet+,Kan+,购自武汉淼灵生物科技有限公司)的DNA为模板,Aer-tet-R和Aer-tet-F为引物进行PCR扩增,获得两端分别与aer基因上、下游同源,中间为四环素抗性基因tetRA的DNA片段,将该片段进行琼脂糖凝胶回收,以用于下一步电转化;
(3)感受态细胞的制备:
将含有pKD46质粒的MG1655菌株在含有20 µg/mL Amp的LB培养基中30 ℃下过夜培养,之后以1:100的比例接种到含20 µg/mL Amp的LB中30 ℃下震荡培养,当OD600 达到0.6时加入0.2%的阿拉伯糖进行诱导,4小时后4 ℃下收集细胞,用1/2体积预冷的无菌去离子水洗2次,并浓缩为原体积的1/40,作为感受态细胞备用;
(4)电转及目的菌株的筛选与鉴定
将胶回收的DNA片段(100 ng)与80 µL感受态细胞在电转杯中混合,冰浴5-10 min后,用2200V 电击,电击后迅速加入1000 µL LB培养液,30 ℃下震荡培养30 min后在 20 µg/mL的四环素平板上涂板,37 ℃下过夜培养,平板上长出的菌落为抗四环素的菌落,对其进一步在四环素平板上划线纯化,并用 JC-Aer-R及JC-Aer-F引物对这些菌落进行菌落PCR鉴定,有四环素抗性基因tetRA的DNA片段的菌落即为大肠杆菌基因aer敲除的菌株。
2.一种权利要求1所述的制备方法获得的趋氧受体基因aer功能丧失的大肠杆菌菌株。
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