CN109971737A

CN109971737A - 木聚糖酶HoXyn11A的突变体及其制备方法和用途

Info

Publication number: CN109971737A
Application number: CN201711456436.1A
Authority: CN
Inventors: 武国庆; 沈乃东; 熊强; 李文钊; 周娜娜; 张宏嘉; 李冬敏; 陈晓园; 冯鹏; 王慧丽
Original assignee: Cofco Corp; Cofco Nutrition and Health Research Institute Co Ltd
Current assignee: Cofco Corp; Cofco Nutrition and Health Research Institute Co Ltd
Priority date: 2017-12-28
Filing date: 2017-12-28
Publication date: 2019-07-05
Anticipated expiration: 2037-12-28
Also published as: CN109971737B

Abstract

本发明涉及木聚糖酶HoXyn11A的S95T‑S164T突变体、编码该突变体的多核苷酸、重组载体、重组菌、制备该突变体的方法及该突变体的用途。其中，通过对氨基酸序列为SEQ ID No.3的木聚糖酶进行S95T‑S164T突变，获得木聚糖酶HoXyn11A的S95T‑S164T突变体。与野生型的木聚糖酶HoXyn11A相比，木聚糖酶HoXyn11A的S95T‑S164T突变体在保持木糖降解活性的同时，表现出良好的热稳定性。

Description

木聚糖酶HoXyn11A的突变体及其制备方法和用途

技术领域

本发明涉及蛋白质工程领域。具体而言，本发明涉及通过对木聚糖酶HoXyn11A的关键位点进行点突变，获得热稳定性更好的木聚糖酶HoXyn11A的突变体。

背景技术

根据已有的报道，广义上的木聚糖酶分为三种，分别是β-1,4-D-内切木聚糖酶(EC3.2.1.8)、β-1,4-D-外切木聚糖酶(EC 3.2.1.92)以及β-木糖苷酶(EC 3.2.1.37)。其中，β-1,4-D-内切木聚糖酶(EC 3.2.1.8)是降解木聚糖的最主要的酶，该酶作用于β-1,4-木聚糖的主链，并以内切的方式水解木聚糖中的β-1,4-糖苷键，该酶降解木聚糖产生低聚木糖等水解产物。β-1,4-D-外切木聚糖酶(EC 3.2.1.92)作用于寡聚木糖及木聚糖的非还原端。Β-木糖苷酶通过水解低聚木糖的末端来催化释放木糖残基。此外，狭义的木聚糖酶是指β-1,4-D-内切木聚糖酶(EC 3.1.2.8)，该酶目前已广泛应用于生物能源、造纸、食品、饲料行业。

目前已知木聚糖酶属于糖基水解酶的一种，根据其氨基酸序列、三维结构、催化位点的几何学性质，木聚糖酶可归类为第5家族、第7家族、第10家族(即F家族)和第11家族(即G家族)等。

此外，根据现有的研究发现，第10家族木聚糖酶的来源主要包括：地细菌、海洋藻类、真菌、酵母菌；第11家族木聚糖酶的来源主要包括：黑曲霉(Aspergillus niger)、里氏木霉(Trichoderma reesei)、短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus)、枯草芽孢杆菌(Bacillussubtilis)、变青链霉菌(Streptomyces lividans)、哈茨木霉(Trichoderma harzianum)、粪肥纤维单胞菌(Cellulomonase fimi)、环状芽孢杆菌(Bacillus circulans)等。

木聚糖酶具有如下的功能区：催化结构域(Catalytc Domains，CD)、碳水化合物结合结构域(carbohydrate-binding module，CBM)或纤维素结合结构域(Cellulose BindingDomains，CBD)、木聚糖结合结构域(Xylan bindin gDomains，XBD)、连接序列(Linkersequence)和重复序列(Repeated sequences)。其中，F/10家族木聚糖酶的催化结构域具有(β/α)8桶状结构，即TIM桶状结构；(β/α)8桶状结构在酶结构中十分常见，其中，由β折叠和α螺旋构成二级结构的框架，而环包含同其催化活性相关的氨基酸。F/10家族木聚糖酶的疏水核心只包含形成β折叠的残基。β折叠和α螺旋的相对位置主要靠具有支链的疏水氨基酸缬氨酸、异亮氨酸和亮氨酸来维持。F/10家族木聚糖酶一般具有碳水化合物结合结构域CBM，而仅有少数G/11家族木聚糖酶具有CBM。G/11家族木聚糖酶的结构主要为β折叠，蛋白整体呈“右手”型。其中，8种G/11家族木聚糖酶的三维结构为“三明治”形状，包括1个α螺旋和2个β折叠，形成能容纳1个木聚糖聚合物的巨大的间隙。

木聚糖酶三维结构中各功能区一般由富含羟基的连接序列(即，环)相连。所述环包含有较多的丝氨酸、脯氨酸或苏氨酸残基，并高度糖基化，从而能够有效抑制外源蛋白酶对酶分子的降解。连接序列通常富含柔性氨基酸，从而形成柔韧的铰链区，使得各个结构域在空间上分离，并在宏观上表现为无规则卷曲。这样的排列有助于结构域各自发挥功能并维持空间构象的稳定。研究表明，连接肽可辅助木聚糖酶经由CBM锚定于细胞壁表面，以催化降解复杂底物。

就催化机理而言，木聚糖酶参与的水解反应为典型的酸/碱催化的亲核水解反应。根据产物异头构象的不同，木聚糖酶降解木聚糖的催化反应可分为两大类：保持异头构象的双替换反应(图1A)和形成倒位异头构象的一步置换反应(图1B)。第5家族、第7家族、第10家族和第11家族的木聚糖酶可通过活性中心谷氨酸(Glu)残基(分子平均间距)的双替换反应完成催化过程。以褐色高温单孢菌木聚糖酶(Thermomonospora fusca xylanase，Tfx)为例，首先，活性中心的其中一个谷氨酸残基E85作为质子供体，将H⁺提供给C1-O4键的O4上，使C1-O4键断裂，而另一谷氨酸残基E174作为亲核剂与氧碳键相互作用或促使水分子形成羟基，从而生成具有环内碳正离子的中间过渡物。随后，糖片段从活性部位移去，生成的碳正离子促使初始还原糖的环变形，并通过与离子化的Glu/Asp的羧基的共价作用而稳定。最后，水分子从糖苷的氧侧进入，将羟基加到碳正离子，之前产生的离子化的Glu羧基解离，使得羟基与碳正离子反应，从而得以将质子加到亲核基团上，Glu羧基被还原。在该过程中，反应产物可保持异头构象(参见图1A)。

另一催化方式为一步置换反应，由一个普通酸Glu、一个普通碱Glu-/Asp-和亲核水分子的攻击一次完成的。在这个过程中，酸催化剂Glu的羧基提供H给O4，碱催化剂Glu/Asp作用于亲核试剂水，使羟基与碳正离子作用，羟基的异头构象发生倒置。同时，产生的H+通过扩散与离子化的酸催化剂结合，恢复质子状态(参见图1B)。

木聚糖酶的催化关键位点包含组氨酸等极性氨基酸残基或谷氨酸等酸性氨基酸残基。例如，来源于Streptomyces lividans的木聚糖酶XlnA的活性区具有3个组氨酸(H)残基，其中H81和H207为F/10木聚糖酶超家族的4/7保守氨基酸残基(这两个具有催化作用的残基分别位于第4个和第7个β折叠的碳端)。H81和H207与E236通过氢键缔合，形成电荷网，使得两个催化残基保持离子状态，从而有效地对木聚糖的β-1,4-糖苷键进行水解。就XlnA而言，木聚糖酶的作用机制可能是广义的酸碱催化机制，谷氨酸和天冬氨酸等酸性氨基酸残基起着催化残基的作用，它们与空间位置相近的其它极性氨基酸残基相互作用，使得两个催化残基维持离子状态，并保持中间产物的稳定性以及酶的催化活性。一些文献对不同来源的木聚糖酶的晶体结构进行了解析，发现这些木聚糖酶的两个谷氨酸残基(例如Glu93和Glu182、Glu79和Glu170、Glu86和Glu177、Glu120和Glu209)形成一对催化残基。

木聚糖酶的催化活性受到温度、pH等多种因素的影响。特别地，影响不同家族的木聚糖酶热稳定性的影响因素可能不同。例如，使得F/10家族木聚糖酶具有较强热稳定性的因素包括：①疏水中心的有效包埋；②α螺旋的N端存在脯氨酸；③带电侧链与螺旋偶极子的相互作用；④不存在太长的环状结构。另外，氢键和盐桥对于F/10家族木聚糖酶的热稳定性没有太大影响。就G/11家族木聚糖酶热稳定性而言，研究表明，特定位点的突变，如Gly→X、X→Pro，对提高G/11家族木聚糖酶的热稳定性十分有效；而在多种G/11木聚糖酶蛋白的保守区以Val代替Leu或Ile，在α-螺旋区以Ala代替Leu或Ile对木聚糖酶的热稳定性也有影响。另外，与芳香族氨基酸的相互作用相比，盐桥对G/11家族木聚糖酶的热稳定性影响较弱。同源性比较结果还显示，二硫键的形成对G/11家族木聚糖酶热稳定性影响不大。

目前，已有诸多研究致力于改善木聚糖酶的热稳定性。例如，国际专利申请WO2007/115407公开了对G/11家族的木聚糖酶进行修饰来制备具有改善的热稳定性的木聚糖酶。具体而言，通过将99位和/或118位的氨基酸残基替换为半胱氨酸形成分子内二硫键，来改善木聚糖酶的热稳定性。国际专利申请WO01/27252中公开了对Trichoderma reeseiXYNII基因编码第11家族的β-1,4-D-内切木聚糖酶(EC 3.2.1.8)进行如下改性，获得具有改进的热稳定性的木聚糖酶：T2C/T28C、P5C/N19C、T7C/S16C、N10C/N29C突变(以形成将N-末端区与蛋白主体相连的二硫桥)，和/或K58R突变(以形成将C-末端区与蛋白主体相连的盐桥)，或N11D、T26R、G30H、N67R、N97R、A132R、N157R、A106R、T165N、M169H、S186R突变(以形成将α-螺旋与蛋白主体相连的二硫桥)。然而，该突变体酶在65℃下的半衰期仅为约10min至25min。中国专利申请CN1924002A中公开了具有增强的热稳定性的木聚糖酶，通过将来自短小芽孢杆菌G/11家族木聚糖酶XYNHB第214位的天冬酰胺突变成丙氨酸，并在毕赤酵母中表达以实现糖基化修饰，获得木聚糖酶突变体。该木聚糖酶突变体在60℃下的半衰期为65min。作为比较，Biocatalysis and biotransformation，2006，24(5)中公开的XYNHB木聚糖酶在60℃下的半衰期为12min。中国专利申请CN103525793A公开了通过进行S23H和I129Y突变，使得修饰后的木聚糖酶xyn-B230-m的热稳定性得到明显提高(在70℃下处理120min，仍能保留90％的酶活性；在75℃下处理30min，仍能保留65％以上的活性)。另外，中国专利申请CN101392266A公开了通过将201位的甘氨酸残基突变为半胱氨酸残基，从而在201位和50位的半胱氨酸之间形成二硫键并由此得到热稳定性改良的木聚糖酶。

在目前的研究中，针对第11家族的木聚糖酶进行的修饰主要涉及通过氨基酸残基突变而形成二硫键，并由此改善木聚糖酶的热稳定性。然而，如何通过其它方式有效地得到具有改善的热稳定性的G/11家族木聚糖酶、尤其是HoXyn11A酶的突变体，并将其在工业生产中加以应用，并无相应的报道。

发明内容

本发明的发明人通过深入研究发现，通过对已有的G/11家族木聚糖酶HoXyn11A中的特定位点的氨基酸残基进行突变，由突变后的氨基酸残基形成氢键或改变蛋白表面的疏水性，从而能够有效地改善木聚糖酶HoXyn11A的热稳定性，最终适应工业化生产条件中对酶的热稳定性需求。

因此，本发明的一个目的在于提供木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体，其中，所述木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体具有通过SEQID No.1表示的氨基酸序列。

SEQ ID No.1

APAADVAESVAVEKRQTIQPGTGYNNGYFYSYWNDGHGGVTYTNGPGGQFSVNWSNSGNFVGGKGWQPGTKNKVINFSGSYNPNGNSYLSVYGWTRNPLIEYYIVENFGTYNPSTGATKLGEVTSDGSVYDIYRTQRVNQPSIIGTATFYQYWSVRRNHRSSGTVNTANHFNAWAQQGLTLGTMDYQIVAVEGYFSSGSASITVS

本发明的另一目的在于提供一种编码如上所述的木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸，其中，所述多核苷酸具有通过SEQ ID No.2表示的序列。

SEQ ID No.2

GCTCCCGCCGCCGATGTCGCCGAGTCCGTGGCCGTCGAGAAGCGCCAGACGATCCAGCCCGGCACGGGCTACAACAACGGCTACTTCTACTCGTACTGGAACGACGGCCACGGCGGTGTGACGTACACCAACGGCCCCGGCGGACAGTTCTCCGTCAACTGGTCCAACTCGGGCAACTTTGTCGGCGGCAAGGGATGGCAGCCCGGCACCAAGAACAAGGTCATCAACTTCTCGGGCTCCTACAACCCCAACGGCAACAGCTACCTCTCCGTCTACGGCTGGACTCGCAACCCGCTGATCGAGTACTACATCGTCGAGAACTTTGGCACCTACAACCCGTCCACCGGCGCCACCAAGCTGGGCGAGGTCACCTCGGACGGCAGCGTCTACGACATCTACCGCACGCAGCGCGTCAACCAGCCGTCCATCATCGGCACCGCCACCTTTTACCAGTACTGGTCCGTCCGCCGCAACCACCGCTCGAGCGGGACTGTCAACACGGCGAACCACTTCAACGCGTGGGCGCAGCAGGGCTTGACGCTCGGGACTATGGATTACCAGATTGTGGCCGTCGAGGGTTACTTTAGCTCTGGCTCTGCTTCCATCACCGTCAGC

本发明的另一目的在于提供一种重组载体，其中，所述重组载体包含如上所述的编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸。

本发明的进一步的目的在于提供一种重组菌，所述重组菌包含如上所述的重组载体或在该重组菌的基因组中整合有如上所述的多核苷酸。

本发明的又一目的在于提供制备木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的方法，其中，所述方法包括：获得编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸，该多核苷酸具有通过SEQ ID No.2表示的序列；将该多核苷酸与载体进行酶切和连接，得到重组载体；随后，将重组载体导入宿主菌中，得到重组菌；对重组菌进行培养，从而由重组菌产生木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体。

本发明的另外的目的在于提供木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体在制备木聚糖水解酶制剂中的用途。

附图说明

图1示出了木聚糖酶的催化机制。其中，图1A表示双替换反应；图1B表示一步置换反应。

图2A-图2C示出了野生型的HoXyn11A酶(具有通过SEQ ID NO.3表示的氨基酸序列)及HoXyn11A酶的S95T-S164T突变体(具有通过SEQ IDNO.1表示的氨基酸序列)的结构分析图。其中，图2A表示通过Swiss Model同源建模获得的野生型的HoXyn11A酶的结构模型(该野生型酶的氨基酸序列第95位和第164位的氨基酸残基均为S)；图2B表示通过SwissModel同源建模获得的HoXyn11A酶的S95T-S164T突变体的结构模型(该突变体的氨基酸序列的第95位和第164位的氨基酸残基均为T)；图2C表示通过Swiss Model同源建模得到的HoXyn11A酶的S95T-S164T突变体的拉氏构象图。

图3示出了S95T-S164T突变体的引物设计示例图。

图4示出了在pH＝5下测得的野生型的木聚糖酶HoXyn11A和本发明的木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的相对酶活随温度的变化结果。

图5示出了在pH＝6下测得的野生型的木聚糖酶HoXyn11A和本发明的木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的相对酶活随温度的变化结果。

具体实施方式

在本发明中，术语“木聚糖酶HoXyn11A”、“HoXyn11A木聚糖酶”和“HoXyn11A酶”可互换使用。目前已知HoXyn11A酶属于G/11家族木聚糖酶，该酶包括1个α螺旋和2个β折叠，蛋白整体呈“右手”型。天然的G/11家族的木聚糖酶存在热稳定性相对较低的缺陷，而工业生产中往往需要具有较高的热稳定性的木聚糖酶，因此，需要对天然的HoXyn11A酶(也称为“野生型的HoXyn11A酶”、“野生型的HoXyn11A木聚糖酶”或“野生型的木聚糖酶HoXyn11A”)进行突变，以得到具有改进的热稳定性的木聚糖酶。

天然的HoXyn11A酶具有通过SEQ ID No.3表示的氨基酸序列：

SEQ ID No.3

APAADVAESVAVEKRQTIQPGTGYNNGYFYSYWNDGHGGVTYTNGPGGQFSVNWSNSGNFVGGKGWQPGTKNKVINFSGSYNPNGNSYLSVYGWSRNPLIEYYIVENFGTYNPSTGATKLGEVTSDGSVYDIYRTQRVNQPSIIGTATFYQYWSVRRNHRSSGSVNTANHFNAWAQQGLTLGTMDYQIVAVEGYFSSGSASITVS

本发明的发明人在对天然的HoXyn11A酶进行突变的过程中，通过研究天然的HoXyn11A酶的二级结构发现，天然的HoXyn11A酶的氨基酸序列中的氨基酸残基“GG”和“SS”(即Double Glycine/Double Serine结构，在上述序列SEQ ID No.3中以粗体和下划线示出)都位于卷曲(coil)结构上连接着相邻的结构。因此，本发明的发明人在突变后的氨基酸序列中保留了氨基酸残基“GG”和“SS”。

同时，本发明的发明人还发现，天然的HoXyn11A酶的氨基酸序列中的以下位点可能是底物结合位点，并因此在突变时加以保留：S⁸⁰、N⁸²、N⁸⁶、Y⁸⁸、Y¹¹¹、W¹⁵³、Y¹⁹⁴、S¹⁹⁹、A²⁰⁰。

此外，本发明的发明人还保留了天然的HoXyn11A酶的氨基酸序列中的活性位点：S³¹、W³³、N⁵⁹、V⁶¹、Y⁹²、W⁹⁴、E¹⁰¹、Y¹⁰³、R¹³⁷、P¹⁴¹、S¹⁴²、I¹⁴³、F¹⁴⁹、Q¹⁵¹、Y¹⁸⁶、E¹⁹²。

经分析，通过对其突变可能提高天然的HoXyn11A酶(具有通过SEQ IDNO.3表示的氨基酸序列)的热稳定性的氨基酸残基及其位置包括第95位的氨基酸残基S(即，S95)和第164位的氨基酸残基S(即，S164)。具体而言，本发明的发明人发现，通过对野生型的HoXyn11A木聚糖酶进行如下的突变可能提高其热稳定性：将通过SEQ ID No.3表示的氨基酸序列中的第95和164位的氨基酸残基S分别突变为T。

因此，在本发明的一个实施方式中，本发明提供了木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体，其中，所述木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体具有通过SEQ ID No.1表示的氨基酸序列。而且，与本发明的通过SEQID No.1表示的序列具有90％以上的一致性的氨基酸序列也在本发明的保护范围之内。

在本发明的另一实施方式中，本发明提供了编码如上所述的木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸(下文也称为“基因”)，其中，所述多核苷酸具有通过SEQ IDNo.2表示的序列。而且，与本发明的通过SEQ ID No.2表示的序列具有90％以上的一致性的核苷酸序列也在本发明的保护范围之内。

在本发明的另一实施方式中，本发明提供了一种重组载体，其中，所述重组载体包含如上所述的编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸。所述重组载体可采用本领域已知的任何载体(例如质粒载体、噬菌体载体和病毒载体等)构建得到，优选所述重组载体采用选自如下的载体中的一种或多种构建得到：pPIC9K、pPICZα、pGAPZ、pGAPZα、pGAPZαA和pPICZ。进一步优选地，所述重组载体采用pPIC9K构建得到。

在本发明的又一实施方式中，本发明提供了一种重组菌，所述重组菌包含如上所述的重组载体或在该重组菌的基因组中整合有如上所述的多核苷酸。用于构建所述重组菌的宿主菌可为本领域已知的用于基因工程和蛋白质工程的任何合适的菌株，优选包括但不限于：毕赤酵母(Pichia)、假丝酵母(Candida mycoderma)、多型汉逊酵母(Hansenulapolymorpha)、球拟酵母(Torulopsis)、裂殖酵母(Schizosaccharomyces)和克鲁维酵母(Kluyveromyces)。进一步优选地，所述宿主菌为毕赤酵母，更优选为毕赤酵母GS115。

在本发明的另一实施方式中，本发明提供了制备木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的方法，其中，所述方法包括：获得编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸，该多核苷酸具有通过SEQ ID No.2表示的序列；将该多核苷酸与载体进行酶切和连接，得到重组载体；随后，将重组载体导入宿主菌中，得到重组菌；对重组菌进行培养，从而由重组菌产生木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体。

在本发明优选的实施方式中，具有通过SEQ ID No.2表示的核苷酸序列的编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸可通过本领域已知的手段获得，例如overlap-PCR、RACE等。例如，利用下表1中示出的引物对1-F和11-1-R合成核苷酸片段1，利用引物对11-2-F和11-2-R合成核苷酸片段2，利用引物对11-3-F和1-R合成核苷酸片段3，再以核苷酸片段1、2和3的混合物为模板，利用引物对1-F和1-R进行overlap-PCR，合成得到最终的编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸。可采用本领域技术人员已知的常规的overlap-PCR的实验条件和步骤、或者采用可商购的overlap-PCR试剂盒进行所述overlap-PCR。不受限制的，还可采用其它引物对和本领域已知的其它的基因合成手段来获得编码上述突变体的多核苷酸。

随后，将编码该突变体的多核苷酸与载体通过酶切和连接而得到重组载体，如本领域所已知的，根据所采用的载体，本领域技术人员可以选择合适的用于所述酶切和连接的内切酶和连接酶(例如，EcoRI、NotI内切酶；T4DNA连接酶等)。

对于将重组载体导入宿主菌中的具体手段，可采用本领域已知的任何常规手段。例如，使该重组载体通过显微注射、基因枪、转化、感染或转染等本领域已知的方式向宿主菌中导入。对于导入重组载体的宿主菌，通过筛选标记筛选得到阳性的重组菌。优选将阳性的重组菌在相应的液体培养基中进行培养，并任选通过加入合适的试剂诱导重组菌的表达(例如，通过向毕赤酵母培养液中加入甲醇诱导该酵母的表达)。对培养物进行离心并收集得到的菌液，随后通过盐析法、等电点沉淀、亲和层析、超滤等方式纯化蛋白，从而得到木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体。

上述的酶切和连接以及显微注射、基因枪、转化、感染或转染均为本领域已知的常规操作。酶切和连接是指采用限制性核酸内切酶对目的DNA片段与载体DNA分子进行特异性切割，然后使用连接酶将进行酶切后的目的DNA分子和载体分子的粘性末端进行连接，从而得到重组载体。转化是指通过采用分子生物学和基因工程中的一些已知方法处理细胞，使经处理后的细胞处于感受态，并由此与外源DNA接触，从而使外源DNA进入处于感受态的细胞中。常用的转化方法包括原生质体转化法、化学转化法和电穿孔转化法。感染是指用经人工改造的噬菌体活病毒作载体，将该载体与目的DNA序列重组后，在体外用噬菌体或病毒的外壳蛋白将重组DNA包装成有活力的噬菌体或病毒，从而以感染的方式使重组DNA进入宿主细胞中。转染是指通过CaCl₂、电穿孔等方法将细胞处理成感受态细胞，然后使该感受态细胞接受重组的噬菌体DNA。

在本发明的又一实施方式中，本发明提供了木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体在制备木聚糖水解酶制剂中的用途。

在本发明优选的实施方式中，所述木聚糖水解酶制剂能够用于在68-75℃下水解木聚糖而不会失活。

实施例

实施例1HoXyn11A酶的S95T-S164T突变体的制备

本实施例使用的PCR仪为BIO-RAD(购自北京元业伯乐科技发展有限公司)，电转化仪为Eppendorf Eporator(购自艾本德中国有限公司)。如无特别说明，本实施例使用的试剂购自SIGMA。

LB培养基：蛋白胨(Tryptone)10g/L，酵母粉(Yeast extract)5g/L，氯化钠(NaCl)5g/L，调整pH至7.0-7.4。

卡那霉素：称取10g卡那霉素溶于蒸馏水中至体积为100mL，得到浓度为100mg/mL的浓缩液，过滤除菌，分装至1.5mL的Ep管中，-20℃保存待用；使用终浓度为50μg/mL。

YPD液体培养基：蛋白胨(Peptone)20g/L，酵母粉(Yeast extract)10g/L，115℃湿热灭菌30min，随后在使用时加入过滤灭菌的葡萄糖母液至终浓度10g/L。

500×生物素(Biotin，B)：20mg生物素溶于100mL蒸馏水中，过滤除菌，浓度为0.02％(W/V)。

MD液体培养基：无氨基酵母氮源(Yeast Nitrogen Base，YNB)13.4g/L，灭菌；然后在使用时加入过滤灭菌的葡萄糖母液至终浓度为10g/L，并加入2mL 500×B。

MD固体培养基：YNB 13.4g/L，1.5％-1.8％(w/v)的琼脂，灭菌；然后在使用时加入过滤灭菌的葡萄糖母液至终浓度为10g/L，并加入2mL500×B。

BMGY培养基：蛋白胨(Peptone)20g/L，酵母粉(Yeast extract)10g/L，YNB 13.4g/L，100mL 1M pH 6.0磷酸钾缓冲液(提高培养基的pH至6.8，可提高产蛋白能力)，灭菌后使用时添加2mL 500×B，100mL 10×甘油(GY)(10％V/V)。

BMMY培养基：蛋白胨(Peptone)20g/L，酵母粉(Yeast extract)10g/L，YNB(YeastNitrogen Base)13.4g/L，100mL 1M pH6.0的磷酸钾缓冲液(提高pH至6.8可提高产蛋白能力)，灭菌；随后在使用时添加2mL 500×B，1％甲醇(V/V)(诱导酵母表达)。

本发明的HoXyn11A酶的突变体优选通过如下方法获得，但对于本领域技术人员来说，可根据实际需要对如下各操作中的具体参数进行适当调整。

1.编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸的制备

通过定点突变对野生型东方肉座菌(Hypocrea orientalis EU7-22；请参见吴金连等，《生物学杂质》，东方肉座菌GH10家族木聚糖酶基因的克隆及异源表达；Vol.32，No.5，2015年10月)的木聚糖酶HoXyn11A(SEQ ID NO：3)进行相应的突变，以获得所需的突变体，本实施例所采用的方法为在引物上设计突变位点，通过overlap-PCR得到编码突变体的核苷酸序列。

接下来对获取编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸的方法进行具体阐述。首先，如图3所示，共设计六条引物1-F、1-R、11-1-R、11-2-F、11-2-R和11-3-F(见下表1)，引物1-F、1-R分别位于编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的基因的5’端和3’端；S95T突变位点位于引物11-1-R、11-2-F上，S164T突变位点位于引物11-2-R、11-3-F上(以下划线示出)。

以引物对1-F和11-1-R合成片段1，以引物对11-2-F和11-2-R合成片段2，以引物对11-3-F和1-R合成片段3。再将片段1、2、3的混合物利用Gel Extraction Kit(200)试剂盒(购自OMEGA Bio-Tek公司)根据制造商的说明书进行纯化，以片段1、2和3的纯化产物为模板，以引物对1-F和1-R进行overlap-PCR，合成得到最终的编码所述S95T-S164T突变体的基因(其大小为615bp)。将合成得到的编码所述S95T-S164T突变体的基因用于后续的重组载体的构建。

表1引物序列

2.重组载体、重组菌的构建和筛选

2.1载体、克隆菌株和表达菌株的选取

选取毕赤酵母分泌型表达载体pPIC9K(Invitrogen)，该表达载体具有EcoRI/NotI的双酶切位点。选用大肠杆菌DH5α(购自北京全式金生物技术有限公司)作为克隆菌株，毕赤酵母GS115菌株(Invitrogen，C181-00)作为表达菌株。

2.1.1各基因片段的PCR扩增

利用表1的引物对(其中，F表示正向引物，R表示反向引物)，使用KOD Plus酶试剂盒(购自Takara公司，内含5×PCR缓冲液、dNTPs和MgSO₄)根据制造商的说明书进行overlap-PCR扩增，扩增上述基因片段的PCR体系和程序如下所示：

2.1.2突变体基因和载体的双酶切

利用Gel ExtractionKit(200)试剂盒(购自OMEGA Bio-Tek公司)，根据制造商的说明书对overlap-PCR产物进行回收，使用购自NEB公司的EcoRI-HF酶和Not I-HF酶按照制造商的说明书分别对回收后的overlap-PCR产物和pPIC9K载体进行双酶切，酶切反应体系如下所示：

37℃过夜酶切。

2.1.3经酶切的突变体基因和载体的连接

利用Gel ExtractionKit(200)试剂盒(购自OMEGA Bio-Tek公司)，根据制造商的说明书对经酶切的突变体基因和pPIC9K表达载体进行胶回收后，按照基因:载体＝1:6的质量比，使用购自NEB的T4DNA连接酶按照制造商的说明书进行连接反应，反应体系和条件如下所示：

16℃连接2h。

2.1.4连接产物的转化及阳性克隆的筛选

将连接产物转化至大肠杆菌DH5α感受态细胞，转化步骤如下：

①从-80℃冰箱中取出感受态细胞置于冰浴中，待其完全融化；

②往100μl感受态细胞中加入10μl连接产物，轻轻混匀，在冰浴中静置30min；

③将冰浴后的感受态细胞置于42℃水浴中热激60s，然后快速转移到冰浴中，静置5min；

④加入800μl的无抗LB培养基，置于37℃摇床中于150rpm下振荡培养45min；

⑤将离心管3000rpm离心3min，轻轻吸去多余的上清，留下约100μl培养基，轻轻的悬浮细胞，将100μl细胞全部均匀涂布至含有50μg/ml卡那霉素的LB平板上，37℃过夜培养。

将平板上长出的克隆使用通用引物α-Factor(购自上海生工生物工程股份有限公司)和3’AOX1(SEQ ID No.10)进行菌落PCR验证，PCR鉴定体系及程序如下所示：

在菌落PCR后，对得到的产物进行琼脂糖凝胶电泳，PCR产物大小为807bp，表明所获得的大肠杆菌包含阳性克隆的重组质粒，并送至上海生工生物工程股份有限公司通过测序加以验证。

2.2重组酵母菌株的构建及筛选

2.2.1载体的线性化

利用Plasmid Mini Kit I(200)试剂盒(购自OMEGA Bio-Tek公司)，根据制造商的说明书对上述经测序确认的重组质粒(即，重组载体)进行提取，随后使用购自NEB的Sal I酶和CutSmart缓冲液对上述获得的重组质粒进行线性化，用于下一步的电转化，线性化体系及条件如下所示：

37℃过夜酶切。

2.2.2线性化产物的乙醇沉淀

为了使最后回收得到的线性化产物浓度尽可能的高，将线性化后的产物进行乙醇沉淀，具体步骤如下。

①加入1/10体积的3M乙酸钠(PH＝5.2)于DNA溶液中充分混匀，使其最终浓度为0.3M；

②加入2倍体积用冰预冷的乙醇混合后再次充分混匀，置于-20℃中过夜；

③12,000g离心10min，小心移出上清液，吸去管壁上所有的液滴；

④加入1/2离心管容量的70v/v％乙醇，12000g离心2min，小心移出上清液，吸去管壁上所有的液滴；

⑤室温下将开盖的EP管的置于实验桌上使残留的液体挥发干净；

⑥加适量的ddH₂O溶解DNA沉淀。

2.2.3毕赤酵母的电转化

毕赤酵母的电转化步骤具体如下：

①接种GS115单菌落到含有5mL YPD液体培养基的三角瓶中，30℃过夜培养。

②转接到含有100mL YPD液体培养基的500ml三角瓶中，接种量为1v/v％，30℃培养过夜，直到OD₆₀₀＝1.3-1.5，得到培养液；

③1500g、4℃条件下离心20ml培养液5min，弃上清液，再用20mL冰浴的双蒸水重悬细胞；加入8ml的预处理液，室温放置30min；

④1500g、4℃条件下离心5min，弃上清液，然后用1.5mL冰浴的1M山梨醇(购自上海阿拉丁生化科技股份有限公司)重悬细胞，转移到1.5ml的EP管中；

⑤1500g、4℃条件下离心5min，弃上清液，然后重复两次操作，共用1.5mL冰浴的1M山梨醇洗涤三次；

⑥1500g、4℃条件下离心5min，弃上清液，然后用80μL冰浴的1M山梨醇重悬细胞，使菌悬液终浓度达到10¹⁰个细胞/ml；

⑦将80μL处理好的感受态细胞和5-20μg线性化的重组质粒(溶解在双蒸水中，体积为5-10μL)加入1.5mL预冷离心管中，混匀。然后把混合液转移入预先冰浴的转化杯中(0.2cm型)；冰浴装有转化混合液的转化杯5min；

⑧按照如下参数设置电转化仪，并启动电脉冲：

⑨脉冲后立即往转化杯中加入1mL冰浴的1M的山梨醇溶液，然后把转化液转入新的1.5mL离心管中；30℃静置培养1-2h；

⑩吸取50-200μL的GS115的转化液涂布MD平板；30℃培养，直到转化子出现。

2.2.4重组酵母的鉴定

使用5’AOX1引物和3’AOX1引物进行PCR鉴定，将PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳，阳性重组酵母显示出两个条带：①约2.2kb的AOX1基因的条带；②比目的基因略大的条带。

5’AOX1引物：GACTGGTTCCAATTGACAAGC(SEQ.ID.No.11)

3’AOX1引物：AGGATGTCAGAATGCCATTTGCC(SEQ.ID.No.10)

2.2.5多拷贝的筛选——G418筛选

不同拷贝数的重组菌能够耐受的G418浓度不同，一般一个拷贝的重组子能够耐受0.25mg/ml的G418(购自上海前尘生物科技有限公司)。因此，将鉴定得到的阳性重组酵母分别接种至含2mg/ml G418的YPD平板上，置于30℃下培养。

3.重组酵母的诱导表达

3.1重组酵母的诱导表达

①挑选采用G418筛选后的单菌落，置于含有60ml BMGY培养基的500ml摇瓶中，于30℃、250rpm下培养至OD₆₀₀＝2-6(16-18h)；

②室温下1500g离心5min，收集菌体，用BMMY液体培养基重悬菌体，使OD₆₀₀＝1.0左右；

③将步骤②所得的菌液置于2L的摇瓶中，用八层纱布封口，放置于28℃、250rpm的摇床上继续生长；

④每24h向培养基中添加100％的甲醇至终浓度为1.0v/v％；

⑤按如下时间点分别取1ml菌液样品，置于1.5ml EP管中，12,000rpm离心3min，收集上清，用于分析目的蛋白的表达量和菌液最佳收获时间：0h、6h、12h、24h、36h、48h、60h、72h、84h、96h、120h、144h、168h；

3.2诱导表达样品的分析

依照如下实验方案进行SDS-PAGE检测。

3.2.1制备SDS-PAGE凝胶：

分离胶的制备：

在烧杯中依次加入所需的溶液成分，灌入预先装配好的双层玻璃板的间隙中，室温放置20min以上，直至凝胶聚合完全。

浓缩胶的制备：

在烧杯中依次加入所需的溶液成分，灌入双层玻璃板间已凝聚的分离胶上方的间隙，室温放置20min以上，直至凝胶聚合完全。

3.2.2将上述得到的重组酵母的培养物在12,000g离心1min，得到上清液，吸取上清液加入到如上制备的凝胶的加样孔道中，上样量为10μL。同时加入蛋白质分子量标准(PageRuler Plus Prestained Protein Ladder 26619，Thermo Scientific，250-10KDa)。

200V恒压电泳1.5h后，卸下凝胶。按下表所示配制染色液和脱色液，进行考马斯亮蓝染色，观察样品中的目的蛋白条带。

从电泳图谱可以看出，重组酵母表达出分子量约为23KDa大小的条带(即，HoXyn11A酶的S95T-S164T突变体)。可以说，采用本发明所述的方法能够制备得到木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体。

实施例2重组酵母表达产物的活性分析

基于如下方法，分析上述不同时间点取样得到的重组酵母的上清液中的酶活变化。

酶活测定的方法具体如下：在试管中加入采用DNS试剂稀释50-100倍的上述上清液0.5ml，加入1w/v％山毛榉木聚糖(购自北京中生瑞泰科技有限公司)底物1ml，盖紧试管塞，放入50℃水浴中10min，取出立即加入3mlDNS试剂终止反应，沸水浴5min；取出至冰水中冷却，加蒸馏水定容至25ml，上下颠倒试管充分混匀，在540nm的波长下测定吸光度A540。其中，1个酶活单位(IU)定义为：在50℃和pH 7.0下每分钟催化降解底物木聚糖生成1μmol还原糖(以木糖计算)所需的酶量。

3.3不同pH和温度下的酶活测定

在pH 5.0的50mM柠檬酸缓冲液中，将野生型的木聚糖酶HoXyn11A(其中，按照与实施例1相同的方法，在毕赤酵母中表达得到该野生型的木聚糖酶HoXyn11A)和木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体按照上文所述方法测定在不同温度下的相对活性并进行比较。其中，野生型的木聚糖酶HoXyn11A的编码基因为利用如下引物对扩增东方肉座菌(Hypocreaorientalis EU7-22)的基因组，并利用PrimerSTAR Max DNA Polymerase试剂盒进行PCR扩增获得：

正向引物：ATAGAATTCGCTCCCGCCGCCGATGTCGC(SEQ ID NO：12)

反向引物：TTAGCGGCCGCGCTGACGGTGATGGAAGCAGAG C(SEQ ID NO：13)。

结果在图4中示出，以各自最高的酶活作为100，野生型的木聚糖酶HoXyn11A在60℃下测得的酶活为96，木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体在70℃测得的酶活仍可为98。

另外，在pH 6.0的50mM柠檬酸缓冲液中，将野生型的木聚糖酶HoXyn11A和木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体按照上文所述方法测定在不同温度下的相对活性并进行比较，将结果在图5中示出。以各自最高的酶活作为100，野生型的木聚糖酶HoXyn11A在60℃下测得的酶活为96，木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体在70℃测得的酶活仍可为95。

由此可见，本发明所述的木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体具有显著更好的热稳定性。

实施例3：木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的结构分析

如图2所示，利用Swiss Model同源建模对野生型的木聚糖酶HoXyn11A及上述实施例中制备的S95T-S164T突变体的结构进行分析。

在进行突变前，天然的HoXyn11A酶的氨基酸序列中的第95位的Ser(S)与第182位的Gly(G)之间形成氢键；在进行突变后，HoXyn11A酶的S95T-S164T突变体的氨基酸序列中的第95位的Thr(T)与第182位的Gly(G)、第183位的Thr(T)、第100位的Ile(I)之间形成氢键，而第100位的Ile(I)与第101位的催化活性基团Glu(E)相邻，该氢键使得E101所处的β片层结构更为稳定，从而可有利于提高酶的热稳定性。同时，在进行突变前，天然的HoXyn11A酶的氨基酸序列中的第164位的Ser(S)与相邻的β片层上的第76位的Asn(N)之间形成一个氢键，并且S164靠近C末端；在进行突变后，在HoXyn11A酶的S95T-S164T突变体中，所形成的氢键数目虽然没有变化，但是Thr相比于Ser基团在尺寸上更大，从而可有助于C末端的空间折叠，因此有利于提高酶的热稳定性。通过分析双点突变体的拉氏构象图(图2C)，本发明的发明人发现经突变的酶分子稳定性良好。因此，通过实施S95T-S164T双点突变能够在基本不影响酶的活性的前提下提高HoXyn11A酶分子的热稳定性。

基于相应的拉氏构象图(图2C)中的结果，本发明的发明人发现HoXyn11A酶的S95T-S164T突变体的稳定性更好。

序列表

<110> 中粮集团有限公司、中粮营养健康研究院有限公司

<120> 木聚糖酶HoXyn11A的突变体及其制备方法和用途

<160> 13

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 205

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 1

Ala Pro Ala Ala Asp Val Ala Glu Ser Val Ala Val Glu Lys Arg Gln

1 5 10 15

Thr Ile Gln Pro Gly Thr Gly Tyr Asn Asn Gly Tyr Phe Tyr Ser Tyr

20 25 30

Trp Asn Asp Gly His Gly Gly Val Thr Tyr Thr Asn Gly Pro Gly Gly

35 40 45

Gln Phe Ser Val Asn Trp Ser Asn Ser Gly Asn Phe Val Gly Gly Lys

50 55 60

Gly Trp Gln Pro Gly Thr Lys Asn Lys Val Ile Asn Phe Ser Gly Ser

65 70 75 80

Tyr Asn Pro Asn Gly Asn Ser Tyr Leu Ser Val Tyr Gly Trp Thr Arg

85 90 95

Asn Pro Leu Ile Glu Tyr Tyr Ile Val Glu Asn Phe Gly Thr Tyr Asn

100 105 110

Pro Ser Thr Gly Ala Thr Lys Leu Gly Glu Val Thr Ser Asp Gly Ser

115 120 125

Val Tyr Asp Ile Tyr Arg Thr Gln Arg Val Asn Gln Pro Ser Ile Ile

130 135 140

Gly Thr Ala Thr Phe Tyr Gln Tyr Trp Ser Val Arg Arg Asn His Arg

145 150 155 160

Ser Ser Gly Thr Val Asn Thr Ala Asn His Phe Asn Ala Trp Ala Gln

165 170 175

Gln Gly Leu Thr Leu Gly Thr Met Asp Tyr Gln Ile Val Ala Val Glu

180 185 190

Gly Tyr Phe Ser Ser Gly Ser Ala Ser Ile Thr Val Ser

195 200 205

<210> 2

<211> 615

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

gctcccgccg ccgatgtcgc cgagtccgtg gccgtcgaga agcgccagac gatccagccc 60

ggcacgggct acaacaacgg ctacttctac tcgtactgga acgacggcca cggcggtgtg 120

acgtacacca acggccccgg cggacagttc tccgtcaact ggtccaactc gggcaacttt 180

gtcggcggca agggatggca gcccggcacc aagaacaagg tcatcaactt ctcgggctcc 240

tacaacccca acggcaacag ctacctctcc gtctacggct ggactcgcaa cccgctgatc 300

gagtactaca tcgtcgagaa ctttggcacc tacaacccgt ccaccggcgc caccaagctg 360

ggcgaggtca cctcggacgg cagcgtctac gacatctacc gcacgcagcg cgtcaaccag 420

ccgtccatca tcggcaccgc caccttttac cagtactggt ccgtccgccg caaccaccgc 480

tcgagcggga ctgtcaacac ggcgaaccac ttcaacgcgt gggcgcagca gggcttgacg 540

ctcgggacta tggattacca gattgtggcc gtcgagggtt actttagctc tggctctgct 600

tccatcaccg tcagc 615

<210> 3

<211> 205

<212> PRT

<213> 东方肉座菌(Hypocrea orientalis)

<400> 3

Ala Pro Ala Ala Asp Val Ala Glu Ser Val Ala Val Glu Lys Arg Gln

1 5 10 15

Thr Ile Gln Pro Gly Thr Gly Tyr Asn Asn Gly Tyr Phe Tyr Ser Tyr

20 25 30

Trp Asn Asp Gly His Gly Gly Val Thr Tyr Thr Asn Gly Pro Gly Gly

35 40 45

Gln Phe Ser Val Asn Trp Ser Asn Ser Gly Asn Phe Val Gly Gly Lys

50 55 60

Gly Trp Gln Pro Gly Thr Lys Asn Lys Val Ile Asn Phe Ser Gly Ser

65 70 75 80

Tyr Asn Pro Asn Gly Asn Ser Tyr Leu Ser Val Tyr Gly Trp Ser Arg

85 90 95

Asn Pro Leu Ile Glu Tyr Tyr Ile Val Glu Asn Phe Gly Thr Tyr Asn

100 105 110

Pro Ser Thr Gly Ala Thr Lys Leu Gly Glu Val Thr Ser Asp Gly Ser

115 120 125

Val Tyr Asp Ile Tyr Arg Thr Gln Arg Val Asn Gln Pro Ser Ile Ile

130 135 140

Gly Thr Ala Thr Phe Tyr Gln Tyr Trp Ser Val Arg Arg Asn His Arg

145 150 155 160

Ser Ser Gly Ser Val Asn Thr Ala Asn His Phe Asn Ala Trp Ala Gln

165 170 175

Gln Gly Leu Thr Leu Gly Thr Met Asp Tyr Gln Ile Val Ala Val Glu

180 185 190

Gly Tyr Phe Ser Ser Gly Ser Ala Ser Ile Thr Val Ser

195 200 205

<210> 4

<211> 35

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

ccggaattcg ctccagctgc tgacgttgct gaatc 35

<210> 5

<211> 39

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 5

ataagaatgc ggccgcttaa gaaacagtga tagaagcag 39

<210> 6

<211> 29

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 6

caatgggttt ctagtccaac cgtaaacag 29

<210> 7

<211> 29

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 7

ctgtttacgg ttggactaga aacccattg 29

<210> 8

<211> 27

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 8

gcagtgttaa cagtaccaga cgatctg 27

<210> 9

<211> 27

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 9

cagatcgtct ggtactgtta acactgc 27

<210> 10

<211> 23

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 10

aggatgtcag aatgccattt gcc 23

<210> 11

<211> 21

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 11

gactggttcc aattgacaag c 21

<210> 12

<211> 29

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 12

atagaattcg ctcccgccgc cgatgtcgc 29

<210> 13

<211> 34

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 13

ttagcggccg cgctgacggt gatggaagca gagc 34

Claims

1.一种木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体，其中，所述木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体具有通过SEQ ID No.1表示的氨基酸序列。

2.一种编码权利要求1所述的木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸，其中，所述多核苷酸具有通过SEQ ID No.2表示的序列。

3.一种重组载体，其中，所述重组载体包含权利要求2所述的编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸；

优选地，所述重组载体采用选自质粒载体、噬菌体载体和病毒载体中的任一种构建；

进一步优选，所述重组载体采用选自如下的载体中的一种或多种构建得到：pPIC9K、pPICZα、pGAPZ、pGAPZα、pGAPZαA和pPICZ；

更优选，所述重组载体采用pPIC9K构建得到。

4.一种重组菌，所述重组菌包含权利要求3所述的重组载体或在所述重组菌的基因组中整合有权利要求2所述的多核苷酸；

优选地，用于构建所述重组菌的宿主菌选自毕赤酵母、假丝酵母、多型汉逊酵母、球拟酵母、裂殖酵母和克鲁维酵母；

进一步优选地，所述宿主菌为毕赤酵母；

更优选地，所述宿主菌为毕赤酵母GS115。

5.一种制备权利要求1所述的木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的方法，其中，所述方法包括：获得编码木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体的多核苷酸，所述多核苷酸具有通过SEQ ID No.2表示的序列；将所述多核苷酸与载体进行酶切和连接，得到重组载体；随后，将所述重组载体导入宿主菌中，得到重组菌；对所述重组菌进行培养，从而由所述重组菌产生木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体。

6.如权利要求5所述的方法，其中，所述载体选自质粒载体、噬菌体载体或病毒载体；

优选地，所述载体为选自如下的载体中的一种或多种：pPIC9K、pPICZα、pGAPZ、pGAPZα、pGAPZαA和pPICZ；

更优选地，所述载体为pPIC9K。

7.如权利要求5或6所述的方法，其中，所述宿主菌选自毕赤酵母、假丝酵母、多型汉逊酵母、球拟酵母、裂殖酵母和克鲁维酵母；

优选地，所述宿主菌为毕赤酵母；

更优选地，所述宿主菌为毕赤酵母GS115。

8.权利要求1所述的木聚糖酶HoXyn11A的S95T-S164T突变体在制备木聚糖水解酶制剂中的用途。

9.如权利要求8所述的用途，其中，所述木聚糖水解酶制剂用于在68-75℃下水解木聚糖。