CN107603966A - 一种热紫链霉菌几丁质酶及其制备方法和应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)及其制备方法和应用。本发明根据毕赤酵母密码子偏爱性,利用全基因合成方法获得了热紫链霉菌(Streptomyces thermoviolaceus)中的几丁质酶编码基因序列,优化后的核酸序列如SEQ ID NO.2所示。进一步利用毕赤酵母表达系统对该所述优化的几丁质酶编码基因进行高效分泌表达,获得热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族),其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。本发明获得的热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)对低脱乙酰度的壳聚糖底物有较高的水解活性,摇瓶发酵产生的粗酶液即具有1mL(蛋白质含量约0.30mg)降解0.5g壳聚糖的水解能力,而降解相同量的壳聚糖约需要商品纤维素酶100mg,理论上效率提高300倍以上;具有良好的工业应用前景。

Description

一种热紫链霉菌几丁质酶及其制备方法和应用
技术领域
本发明属于几丁质酶技术领域,具体涉及一种热紫链霉菌(Streptomycesthermoviolaceus)几丁质酶(GH19家族)及其制备方法和应用。
背景技术
几丁质酶(Chitinase,EC.3.2.1.14)广泛存在于古菌、细菌及真核生物中,主要分布在糖苷水解酶(Glycoside Hydrolases,GH)家族18及19中。在工业上,由于缺乏经济高效的特异性壳聚糖水解酶类(包括几丁质酶及壳聚糖酶),往往使用蛋白酶及纤维素酶等非特异性商品酶类水解壳聚糖以制备壳寡糖。由于具有壳聚糖水解活性的酶类在这些商品酶中所占比例极低,用酶量较大,壳寡糖的生产成本也相应增加。因此,迫切需要研发出一系列经济高效的壳聚糖水解酶类以满足工业壳寡糖生产的需求。
发明内容
本发明的目的是,提供一种热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)及其制备方法和应用;旨在提供一种经济高效的特异性几丁质酶。
本发明为实现上述目的所采用的技术方案如下:
本发明通过对热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)编码基因的密码子进行优化,以利于其在毕赤酵母中实现分泌表达,从而高效快速的获得水解活性高的热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)。
本发明提供的一种热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族),其氨基酸序列如SEQ IDNO.1所示:
SEQ ID NO.1:
LEKREAEAAPATGGGSTPAPSGFVVSEAQFNQMFPNRNPFYTYQGLVQALSAFPGFANTGDDTTKKQEAAAFLANVNHET
GGLQYVVELNTANYPTYCDWGQSYGCPAGQAAYYGRGPIQLSWNYNYKAAGDAIGVDLLNNPWLVENDPAIAWKTGLWFW
NTQSGAGTMTPHNAMVNHVGFGETIRSINGSLECNGRNQAQVQSRVDAYQRFTSILGVSPGGNLYC。
本发明还提供了一种热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)基因,编码上述的热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)。优选地,所述热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示:
SEQ ID NO.2:
ctcgagaagagagaggctgaggctgctccagctactggtggtggttccactccagctccatccggtttcgttgtttccga
ggctcaattcaaccaaatgttcccaaacagaaacccattctacacttaccaaggtttggttcaagctttgtccgctttcc
caggtttcgctaacactggtgacgacactactaagaagcaagaggctgctgctttcttggctaacgttaaccacgagact
ggtggtttgcaatacgttgttgagttgaacactgctaactacccaacttactgtgactggggtcaatcctacggttgtcc
agctggtcaagctgcttactacggtagaggtccaatccaattgtcctggaactacaactacaaggctgctggtgacgcta
tcggtgttgacttgttgaacaacccatggttggttgagaacgacccagctatcgcttggaagactggtttgtggttctgg
aacactcaatccggtgctggtactatgactccacacaacgctatggttaaccacgttggtttcggtgagactatcagatc
catcaacggttccttggagtgtaacggtagaaaccaagctcaagttcaatccagagttgacgcttaccaaagattcactt
ccatcttgggtgtttccccaggtggtaacttgtactgttaagcggccgcg。
本发明还提供了包含上述热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)基因的重组表达载体。优选地,所述表达载体为pGBG1,表达载体pGBG1通过如下方式获得:
通过对表达载体pPIC9中的信号肽序列(详见SEQ ID NO.4所示)进行密码子优化,获得适合在毕赤酵母中表达的新的信号肽序列(详见SEQ ID NO.5所示),并利用Nsi I/XhoI双酶切将SEQ ID NO.5所示的信号肽序列替代原先的SEQ ID NO.4所示信号肽,得到表达载体pGBG1。该表达载体pGBG1能够使目的蛋白在毕赤酵母中更高效的分泌表达。
其中,表达载体pPIC9和毕赤酵母细胞GS115均为商业化产品。
本发明所述的热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)的制备方法为:将上述的重组表达载体(例如,核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示的几丁质酶基因构建至表达载体中)导入毕赤酵母细胞,诱导并获得分泌表达的几丁质酶。优选地,所述毕赤酵母为GS115。
进一步地,本发明所述热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)的具体制备步骤包括:(1)根据毕赤酵母密码子使用的偏好性,对来源于热紫链霉菌的几丁质酶基因原始序列进行密码子优化;(2)将优化后的基因进行全合成并构建至表达载体pGBG1中;(3)对构建的表达载体进行酶切线性化后,舍弃含有抗性基因的片段,回收含有几丁质酶基因的片段并导入毕赤酵母细胞GS115中,诱导并获得分泌表达的几丁质酶。
利用诱导表达的几丁质粗酶上清对壳聚糖底物进行水解并使用MALDI-TOF质谱方法对产物的聚合度及组成进行分析。结果表明,本发明所述的热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)可单独用于壳聚糖的降解制备壳寡糖;或者所述热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)与其他几丁质酶或壳聚糖酶混合使用,协同降解壳聚糖或几丁质。
本发明还提供了上述热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)在壳聚糖或几丁质降解中的应用。优选地,热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)单独用于壳聚糖降解制备获得壳寡糖;或者所述热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)与其他几丁质酶或壳聚糖酶混合使用,协同降解壳聚糖或几丁质。
本申请的发明人前期在多种食品级商品酶中筛选具有壳聚糖水解酶活性的酶制剂时发现,来源于里氏木霉或绿色木霉的商品纤维素酶具有壳聚糖水解活性(1g粗酶干粉约可彻底水解10g壳聚糖)。我们进一步使用MALDI-TOF质谱方法对产物壳寡糖的组分进行鉴定,发现所有壳寡糖产物单糖组成中均带有N-乙酰氨基葡萄糖,说明该单糖可能是水解酶识别的必要组分,我们因此推测纤维素酶中水解壳聚糖的主要为几丁质酶。因此,为获得更安全高效的几丁质酶用于降解壳聚糖或几丁质,我们选取来源于热紫链霉菌的属于GH19家族的几丁质酶,根据毕赤酵母密码子的偏好性,通过全基因合成方法获得其编码基因并在毕赤酵母中进行分泌表达。表达的几丁质酶能够替代现有的商品纤维素酶用于壳寡糖或几丁寡糖等的规模生产。
与现有技术相比,本发明的有益效果为:
1.本发明的几丁质酶基因来源于热紫链霉菌,使用巴斯德毕赤酵母表达系统分泌表达。热紫链霉菌本身为非致病菌,而巴斯德毕赤酵母(Pichia pastoris)表达系统也已被用于乳糖酶及磷脂酶C等食品级酶制剂的表达,其自身也被用于木聚糖酶的生产(GB2760-2014)。因此,使用热紫链霉菌来源的几丁质酶基因在毕赤酵母中分泌表达,其产物几丁质酶可成为食品级壳寡糖或几丁寡糖的生产用酶制剂。
2.本发明中的几丁质酶基因由于根据毕赤酵母的密码子偏爱性进行了优化,可实现在毕赤酵母中高效分泌表达。经活性测定及换算,1mL粗酶液(含有0.30mg酶蛋白)可完全水解0.5g壳聚糖,而商品纤维素酶的对应用量则为100mg。因此,与商品纤维素酶相比,本发明分泌表达的几丁质酶效率提高超过300倍,具有替代现有商品酶用于规模制备壳寡糖的巨大应用潜力。
附图说明
图1为本发明实施例中的重组表达载体stchi19-pGBG1及其酶切产物凝胶电泳图谱;
图2为本发明实施例中含热紫链霉菌几丁质酶(GH19家族)基因的毕赤酵母工程菌发酵液上清的SDS-PAGE图谱,其中,箭头所指为目标产物;
图3为本发明实施例中壳寡糖COS-62-STCHI19的MALDI-TOF质谱图。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明的技术方案进行详细说明。以下采用的试剂和生物材料如未特别说明,均为商业化产品。实施例中未注明具体条件者,按照常规条件或制造商建议的条件进行。
实施例1几丁质酶基因的密码子优化及全基因合成
在不改变氨基酸序列的前提下,使用毕赤酵母的偏爱密码子,人工设计了热紫链霉菌的几丁质酶(GH19家族)(如序列SEQ ID NO.1所示,GenBank accession number:BAA88833)的编码基因,具体核苷酸序列见SEQ ID NO.2。优化后的核苷酸序列与原始编码基因序列(如序列SEQ ID NO.3所示,GenBank accession number:AB016842.1)同源性最高,为78%。优化后的基因序列委托生工进行全合成,合成获得的基因序列命名为几丁质酶基因stchi19。
实施例2几丁质酶基因stchi19的表达载体构建
首先使用限制性内切酶Xho I及Not I对含有几丁质酶基因stchi19的克隆载体进行双酶切,获得目的基因片段,同时使用相同的内切酶对表达载体pGBG1进行双酶切,回收大片段。两个回收产物进行连接,获得重组载体,命名为stchi19-pGBG1。为确定目标几丁质酶基因已经构建至载体中,我们分别使用Xho I/Not I及Bgl II对该重组载体进行双酶切及单酶切,并对产物进行琼脂糖凝胶电泳,结果如图1所示:经双酶切后,在500bp-750bp之间出现了目的基因片段,与stchi19的片段690bp相符;经Bgl II酶切后,出现了预期的两个片段,依次为含有目的基因的大片段和含有抗性基因的小片段。
实施例3几丁质酶毕赤酵母工程菌的筛选及几丁质酶制备
将获得的重组质粒stchi19-pGBG1经限制性内切酶BglII线性化后,凝胶电泳分离并切取含有目的基因的核苷酸片段(如图2所示的较大的片段),电击导入毕赤酵母GS115中,将通过组氨酸营养缺陷MD平板上筛选得到的重组子平铺在含有胶体壳聚糖(0.5%)的BMMY琼脂平板上进行培养,从中筛选出水解圈最大的单克隆菌株。将筛选的单克隆菌株的单菌落接种于200mL BMGY培养基中,30℃及250rpm下培养48小时,离心弃上清,加入等量的BMMY进行诱导表达。24h后补加甲醇至其终浓度为1%,以后每隔24h补加一次,共计诱导120h后离心,上清液即为含有几丁质酶(记为几丁质酶STCHI19)的粗酶液。使用SDS-PAGE检测蛋白表达情况,其结果如图2所示。Bradford法测定粗酶液中的蛋白质浓度为0.30mg/mL;DNS法测定其比酶活为0.58U/mL。上述的MD琼脂平板、BMMY琼脂平板、BMGY培养基、BMMY培养基为酵母表达系统常用的培养基,可直接购买或者按照现有文献技术配制均可。
实施例4几丁质酶STCHI19水解低脱乙酰度壳聚糖制备壳寡糖
称取50g壳聚糖(脱乙酰度:62%),加至1000mL 1.5%乙酸水溶液中(pH 5-6)。充分溶解后,加入100mL发酵的几丁质酶STCHI19粗酶液,40℃下搅拌反应48小时。反应结束后,离心去除不容物,上清经旋转蒸发仪在40℃下浓缩至约300mL,后经冷冻干燥得成品壳寡糖命名为COS-62-STCHI19。由于该产物组分较为复杂,难以通过液相对组分进行有效分离,因此采用MALDI-TOF质谱方法对其组分进行分析。具体方法为:称取一定量制备的壳寡糖,配制成浓度为2mg/mL的水溶液,过滤后吸取1μL点样至样品板上,待其自然干燥后,加入1μL基质2,5-二羟基苯甲酸(DHB)溶液,待其干燥后使用autoflexⅢsmartbeam型MALDI-TOF质谱仪(Bruker公司)进行检测(正离子反射模式)。质谱检测结果如图3所示:为便于区分,以A代表N-乙酰氨基葡萄糖,D代表氨基葡萄糖,随后的数字代表含有该单糖的个数,二者加和为寡糖的聚合度。从结果来看,低脱乙酰度壳寡糖COS-62-STCHI19在使用MALDI-TOF质谱可检测到的聚合度范围为2-13,同一个聚合度下存在不同乙酰度的壳寡糖,所有寡糖组分中均含有N-乙酰氨基葡萄糖。
最后所应说明的是,以上实施例仅用以说明本发明的技术方案而非限制。尽管参照实施例对本发明进行了详细说明,本领域的普通技术人员应该理解,对本发明的技术方案进行修改或者等同替换,都不脱离本发明技术方案的精神和范围,其均应涵盖在本发明的权利要求范围当中。
序列表
<110> 中国科学院过程工程研究所
<120> 一种热紫链霉菌几丁质酶及其制备方法和应用
<160> 5
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 226
<212> PRT
<213> artificial
<400> 1
Leu Glu Lys Arg Glu Ala Glu Ala Ala Pro Ala Thr Gly Gly Gly Ser
1 5 10 15
Thr Pro Ala Pro Ser Gly Phe Val Val Ser Glu Ala Gln Phe Asn Gln
20 25 30
Met Phe Pro Asn Arg Asn Pro Phe Tyr Thr Tyr Gln Gly Leu Val Gln
35 40 45
Ala Leu Ser Ala Phe Pro Gly Phe Ala Asn Thr Gly Asp Asp Thr Thr
50 55 60
Lys Lys Gln Glu Ala Ala Ala Phe Leu Ala Asn Val Asn His Glu Thr
65 70 75 80
Gly Gly Leu Gln Tyr Val Val Glu Leu Asn Thr Ala Asn Tyr Pro Thr
85 90 95
Tyr Cys Asp Trp Gly Gln Ser Tyr Gly Cys Pro Ala Gly Gln Ala Ala
100 105 110
Tyr Tyr Gly Arg Gly Pro Ile Gln Leu Ser Trp Asn Tyr Asn Tyr Lys
115 120 125
Ala Ala Gly Asp Ala Ile Gly Val Asp Leu Leu Asn Asn Pro Trp Leu
130 135 140
Val Glu Asn Asp Pro Ala Ile Ala Trp Lys Thr Gly Leu Trp Phe Trp
145 150 155 160
Asn Thr Gln Ser Gly Ala Gly Thr Met Thr Pro His Asn Ala Met Val
165 170 175
Asn His Val Gly Phe Gly Glu Thr Ile Arg Ser Ile Asn Gly Ser Leu
180 185 190
Glu Cys Asn Gly Arg Asn Gln Ala Gln Val Gln Ser Arg Val Asp Ala
195 200 205
Tyr Gln Arg Phe Thr Ser Ile Leu Gly Val Ser Pro Gly Gly Asn Leu
210 215 220
Tyr Cys
225
<210> 2
<211> 690
<212> DNA
<213> artificial
<400> 2
ctcgagaaga gagaggctga ggctgctcca gctactggtg gtggttccac tccagctcca 60
tccggtttcg ttgtttccga ggctcaattc aaccaaatgt tcccaaacag aaacccattc 120
tacacttacc aaggtttggt tcaagctttg tccgctttcc caggtttcgc taacactggt 180
gacgacacta ctaagaagca agaggctgct gctttcttgg ctaacgttaa ccacgagact 240
ggtggtttgc aatacgttgt tgagttgaac actgctaact acccaactta ctgtgactgg 300
ggtcaatcct acggttgtcc agctggtcaa gctgcttact acggtagagg tccaatccaa 360
ttgtcctgga actacaacta caaggctgct ggtgacgcta tcggtgttga cttgttgaac 420
aacccatggt tggttgagaa cgacccagct atcgcttgga agactggttt gtggttctgg 480
aacactcaat ccggtgctgg tactatgact ccacacaacg ctatggttaa ccacgttggt 540
ttcggtgaga ctatcagatc catcaacggt tccttggagt gtaacggtag aaaccaagct 600
caagttcaat ccagagttga cgcttaccaa agattcactt ccatcttggg tgtttcccca 660
ggtggtaact tgtactgtta agcggccgcg 690
<210> 3
<211> 1134
<212> DNA
<213> artificial
<400> 3
atggtcggac actctccgca ccgctcgacc ctcgtgaaga gcggtctggc ggcgaccgtg 60
ctcgccctgt cggcggccct gatgaccgcc gctccggctc aggccgccac cggctccatc 120
accggcctgg acggcaagtg cctcgacgtc gcgggcgccg actccgccaa cggcaccccc 180
gtgcagatct acgactgcaa cggcaccaac gcccagcagt ggaccgtcgg ctccgacggc 240
accatccgcg ccctcggcaa gtgcctcgac gtcgtcgacc gctccaccgc cgacggcgcc 300
aaggtgcaat tgtgggactg caccggcggc gccaaccaga agtgggtcgt caccgcggcc 360
cacgacatcg tcaaccccgc cgccgacaag tgcctcgacg tcaccgaccg caacagcgcc 420
aacggcaccc gcgtgcagat ctggacctgc accggcggct ccaaccagaa gtggaacgca 480
ccggccaccg gcggcggcag cactccggca ccctcgggct tcgtggtctc cgaggcccag 540
ttcaaccaga tgttcccgaa ccggaacccg ttctacacct accagggtct ggtccaggcg 600
ctgagcgcgt tcccgggctt cgccaacacc ggcgacgaca cgacgaagaa gcaggaggcc 660
gccgccttcc tggccaacgt caaccacgag accggcggcc tgcagtacgt ggtcgagctg 720
aacaccgcca actacccgac ctactgcgac tggggtcagt cgtacggctg cccggcgggt 780
caggccgcct actacggccg cggccccatc cagctgagct ggaactacaa ctacaaggcc 840
gcgggtgacg cgatcggcgt ggacctgttg aacaacccct ggctggtcga gaatgacccg 900
gcgatcgcct ggaagaccgg cctgtggttc tggaacaccc agtccggcgc cggcaccatg 960
accccgcaca acgccatggt gaaccacgtc ggcttcggcg agaccatccg ctccatcaac 1020
ggctcgctgg agtgcaacgg ccggaaccag gcacaggtgc agagccgcgt cgacgcctac 1080
cagcgcttca cctcgatcct cggggtgagc ccgggcggca acctgtactg ctga 1134
<210> 4
<211> 525
<212> DNA
<213> artificial
<400> 4
atgcattgtc tccacattgt atgcttccaa gattctggtg ggaatactgc tgatagccta 60
acgttcatga tcaaaattta actgttctaa cccctacttg acagcaatat ataaacagaa 120
ggaagctgcc ctgtcttaaa cctttttttt tatcatcatt attagcttac tttcataatt 180
gcgactggtt ccaattgaca agcttttgat tttaacgact tttaacgaca acttgagaag 240
atcaaaaaac aactaattat tcgaaggatc caaacgatga gatttccttc aatttttact 300
gcagttttat tcgcagcatc ctccgcatta gctgctccag tcaacactac aacagaagat 360
gaaacggcac aaattccggc tgaagctgtc atcggttact cagatttaga aggggatttc 420
gatgttgctg ttttgccatt ttccaacagc acaaataacg ggttattgtt tataaatact 480
actattgcca gcattgctgc taaagaagaa ggggtatctc tcgag 525
<210> 5
<211> 526
<212> DNA
<213> artificial
<400> 5
atgcattgtc tccacattgt atgcttccaa gattctggtg ggaatactgc tgatagccta 60
acgttcatga tcaaaattta actgttctaa cccctacttg acagcaatat ataaacagaa 120
ggaagctgcc ctgtcttaaa cctttttttt tatcatcatt attagcttac tttcataatt 180
gcgactggtt ccaattgaca agcttttgat tttaacgact tttaacgaca acttgagaag 240
atcaaaaaac aactaattat tcgaaacgat ggctatccca agattcccat ccatcttcac 300
tgctgttttg ttcgctgctt cctccgcttt ggctgctcca gttaacacta ctactgagga 360
cgagactgct caaatcccag ctgaggctgt tatcggttac tccgacttgg agggtgactt 420
cgacgttgct gttttgccat tctccaactc cactaacaac ggtttgttgt tcatcaacac 480
tactatcgct tccatcgctg ctaaggagga gggtgtttcc ctcgag 526

Claims (9)

1.一种热紫链霉菌几丁质酶,其特征在于:所述热紫链霉菌几丁质酶的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。
2.一种热紫链霉菌几丁质酶基因,其特征在于:编码权利要求1所述的热紫链霉菌几丁质酶。
3.根据权利要求2所述的热紫链霉菌几丁质酶基因,其特征在于:该基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
4.包含权利要求2或3所述热紫链霉菌几丁质酶基因的重组表达载体。
5.根据权利要求4所述的重组表达载体,其特征在于:所述表达载体为pGBG1,表达载体pGBG1通过如下方式获得:
将表达载体pPIC9中的如SEQ ID NO.4所示信号肽序列进行密码子优化,获得适合在毕赤酵母中表达的如SEQ ID NO.5所示信号肽序列;
利用Nsi I/Xho I双酶切,将表达载体pPIC9中如SEQ ID NO.4所示的信号肽序列替换为如SEQ ID NO.5所示的信号肽序列,得到表达载体pGBG1。
6.一种权利要求1所述的热紫链霉菌几丁质酶的制备方法,所述制备方法包括以下步骤:将权利要求4或5所述的重组表达载体导入毕赤酵母细胞,诱导并获得分泌表达的热紫链霉菌几丁质酶。
7.根据权利要求6所述的制备方法,其特征在于:所述毕赤酵母细胞为GS115。
8.权利要求1所述的热紫链霉菌几丁质酶在壳聚糖或几丁质降解中的应用。
9.根据权利要求8所述的应用,其特征在于:所述热紫链霉菌几丁质酶单独用于壳聚糖降解制备获得壳寡糖;或者所述热紫链霉菌几丁质酶与其他几丁质酶或壳聚糖酶混合使用,协同降解壳聚糖或几丁质。
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