CN109943544A - 一种提高重组染料脱色过氧化物酶酶活的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种提高重组染料脱色过氧化物酶酶活的方法,属于生物工程技术领域。本发明先将染料脱色过氧化物酶在大肠杆菌中进行异源表达,获得重组菌株,进行发酵,通过在发酵培养基中添加外源物质Glu和/或FeCl2,提高了重组DyP中血红素饱和度,当向培养基中添加100μmol/L的Glu+FeCl2时,可将比酶活提高为对照的1.37倍;当向培养基中添加80μmol/L的FeCl2时,可将酶活提高为对照的1.45倍。该方法简单易操作,添加的外源物质如Glu、FeCl2价格便宜,经济实用。
Description
技术领域
本发明涉及一种提高重组染料脱色过氧化物酶酶活的方法,属于生物工程技术领域。
背景技术
染料脱色过氧化物酶(DyP)是过氧化物酶家族的新成员,以血红素为辅基,利用过氧化氢作为电子受体催化各种有机物,可以蒽醌染料及木质素模型化合物等为底物,具有潜在的应用价值,可以实现生物法对染料污水的彻底降解,从而避免化学、物理等方法降解的二次污染问题。
目前DyP主要来源于微生物,但是从原始菌中获取DyP,不仅含量低,而且不易与胞内其他蛋白相分离,所以常通过构建基因工程菌的方法生产DyP,如在大肠杆菌中异源表达DyP,但重组蛋白的含量偏低,一般在10mg/L以下。最近有研究发现,DyP与修饰蛋白融合表达,重组蛋白量可增至约200mg/L,然而高度过表达的融合DyP几乎没有活性。通过紫外-可见吸收光谱法和高分辨率质谱法对酶的分析表明,大部分高度过表达的酶只包含有铁缺乏的血红素前体原卟啉IX(PPIX)而不是血红素。在大肠杆菌中血红素合成始于谷氨酸(Glu),经由关键前体5-氨基乙酰丙酸(5-ALA),和多步生化反应生成原卟啉IX(PPIX),PPIX螯合铁后形成血红素。改造血红素合成基因提高血红素含量是提高DyP产量的一种方式,但因途径中涉及多个基因且存在反馈控制,提升幅度有限。
在培养基中添加5-ALA是提高DyP产量的另一种方式,但成本较高,不适于大规模推广应用。
因此,提供一种经济、简单、有效的提高DyP产量的方法,对于染料脱色过氧化物酶的进一步应用有重要意义。
发明内容
本发明的一个目的是提供一种提高重组染料脱色过氧化物酶酶活的方法,其特征在于,在大肠杆菌中异源表达染料脱色过氧化物酶,获得重组菌株,应用所述重组菌株进行发酵,在发酵培养基中添加Glu和/或Fe2+。
在本发明的一种实施方式中,添加的Glu和/或Fe2+的终浓度为40-100μmol/L。
在本发明的一种实施方式中,添加的Glu和/或Fe2+的终浓度为60-100μmol/L。
在本发明的一种实施方式中,所述染料脱色过氧化物酶的NCBI accessionnumber为Q47KB1。
在本发明的一种实施方式中,所述重组菌株以大肠杆菌BL21为宿主。
在本发明的一种实施方式中,所述重组菌株以pET系列载体为载体。
在本发明的一种实施方式中,发酵条件为:种子培养后,以1-5%(v/v)的接种量转接至LB培养基中,200-220r/min、35-38℃培养至菌体OD600达到0.6~0.8,向培养基中添加终浓度为0.1-0.5mmol/L IPTG,28-30℃诱导培养12-20h。
在本发明的一种实施方式中,种子培养是将重组菌株接种到LB培养基中,200-220r/min、35-38℃培养10-15h。
在本发明的一种实施方式中,LB培养基的配方如下:胰蛋白胨10g/L,酵母提取物5g/L,氯化钠10g/L。
本发明的另一个目的是提供上述方法在生物、纺织或化工领域内的应用。
本发明的有益效果:
本发明提供了一种提高重组染料脱色过氧化物酶酶活的方法,先将染料脱色过氧化物酶在大肠杆菌中进行异源表达,获得重组菌株,进行发酵,通过在发酵培养基中添加外源物质Glu和/或Fe2+,提高了重组DyP中血红素饱和度,当向培养基中添加100μmol/L的Glu+FeCl2时,可将比酶活提高为对照的1.37倍;当向培养基中添加80μmol/L的FeCl2时,可将酶活提高为对照的1.45倍。该方法简单易操作,添加的外源物质如Glu,FeCl2价格便宜,经济实用。
附图说明
图1:添加剂对酶活与血红素饱和度的影响。
图2:金属离子和氨基酸对重组DyP酶活性的影响。
图3:FeCl2浓度对重组DyP酶活性的影响。
具体实施方式
(一)酶活的定义及检测方法
向反应体系中依次加入100mmol/L醋酸钠缓冲溶液(pH 4.5),100μmol/L活性蓝19和适量的酶液,最后加入终浓度为0.1mM过氧化氢启动反应,酶促反应10min,然后通过加入200μL 2%SDS终止反应。在室温下,于波长595nm处检测吸光值变化。蛋白质浓度测定采用BCA法,以牛血清蛋白为标准蛋白。
DyP酶活定义:在25℃,pH 4.5条件下,每分钟氧化1μmol活性蓝19所需的酶量为1U。
比酶活(U/mg)=酶活(U/mL)×[蛋白浓度(mg/mL)]-1。
实施例1
利用National Center for Biotechnology Information(NCBI)数据库获得DyP(accession number:Q47KB1)全长蛋白序列,合成编码该蛋白的目的基因,以已购的质粒pET-28a(+)为载体,将含有目的基因的质粒转化到E.coli BL21进行异源表达,获得一株重组菌。
将重组菌株接种到含有卡那霉素的LB培养基中,200r/min、37℃培养12h,以4%(v/v)接种量转接至含有100mL新鲜的LB培养基的500mL摇瓶中,相同条件培养至菌体OD600达到0.6~0.8时。向培养基中添加终浓度为0.3mmol/L异丙基-β-D-硫代半乳糖吡喃苷(Isopropylβ-D-thiogalactopyranoside,IPTG),30℃诱导培养14h,8000rpm离心20min得到菌体,用50mmol/L的pH 7.4磷酸钾缓冲溶液重新悬浮细胞,超声破碎30min,10000rpm离心30min收集上清液,过0.22μm水系滤膜得到粗酶液,通过1mL His TrapTM HP亲和镍柱分离纯化,收集目的蛋白,进行SDS-PAGE电泳以鉴定重组DyP纯度。
实施例2外源添加物对血红素饱和度的影响
分别将100μmol/L的Glu、FeCl2、CoCl2、MnCl2、Glu+FeCl2加入培养基中,添加的IPTG终浓度为0.3mmol/L,在30℃下诱导培养14h,收集菌体离心、悬浮、破碎、离心,收集上清液过0.22μm水系滤膜得到粗酶液,通过1mL His TrapTM HP亲和镍柱分离纯化,用10个柱体积的洗脱缓冲液进行线性洗脱,对目的蛋白进行全波长扫描和比酶活的计算。
血红素饱和度定义为在408nm处的吸光值与280nm处之比,即A408/A280。
结果表明,CoCl2的加入降低了血红素饱和度,添加MnCl2没有显著影响(表1),而添加Glu+FeCl2,显著提高了重组DyP中血红素的饱和度。
表1不同外源添加剂对重组DyP中血红素饱和度的影响
注:B为不加任何添加剂的对照组。
实施例3外源添加物对重组DyP表达的影响
向培养基中分别添加终浓度为100μmol/L的His、Glu以及FeCl2、CoCl2、MnCl2、Glu+FeCl2,添加的IPTG终浓度为0.3mmol/L,在30℃下诱导培养14h,收集菌体离心、悬浮、破碎、离心,收集上清液过0.22μm水系滤膜得到粗酶液,通过1mL His TrapTM HP亲和镍柱分离纯化,用10个柱体积的洗脱缓冲液进行线性洗脱,对目的蛋白进行全波长扫描和比酶活的计算。
其中不添加任何添加剂为对照组(B),考察氨基酸和金属离子对重组DyP酶活和菌体生长的影响。
如图2所示,CoCl2对重组DyP酶活有一定抑制作用,添加His对重组DyP酶活和菌体的生长基本保持不变,外源添加FeCl2、MnCl2以及Glu都能提高重组DyP酶活和菌体生长量。当向培养基中添加100μmol/L的FeCl2时,重组DyP酶活从22.34U/L提高至26.20U/L,菌体生长量从5.45g/L提高至6.17g/L;当向培养基中添加100μmol/L的Glu时,重组DyP酶活从22.34U/L提高至23.33U/L,菌体生长量从5.45g/L提高至5.78g/L。
如图1所示,当向培养基中添加100μmol/L的Glu+FeCl2时,比酶活提高为对照(101U/g)的1.37倍。
实施例4添加不同浓度的FeCl2对重组DyP表达的影响
向培养基中分别添加终浓度为40、60、80、100、120μmol/L的FeCl2,其中不添加任何添加剂为对照组(B)。如图3所示,随着FeCl2浓度增加,酶活先增后降,当浓度为80μmol/L时,酶活达到31.31U/L,是对照的1.45倍,血红素饱和度提高近21.8%。
虽然本发明已以较佳实施例公开如上,但其并非用以限定本发明,任何熟悉此技术的人,在不脱离本发明的精神和范围内,都可做各种的改动与修饰,因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。
Claims (10)
1.一种提高重组染料脱色过氧化物酶酶活的方法,其特征在于,在大肠杆菌中异源表达染料脱色过氧化物酶,获得重组菌株,应用所述重组菌株进行发酵,在发酵培养基中添加Glu和/或Fe2+。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,添加的Glu和/或Fe2+的终浓度为40-100μmol/L。
3.如权利要求1或2所述的方法,其特征在于,添加的Glu和/或Fe2+的终浓度为60-100μmol/L。
4.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述染料脱色过氧化物酶的NCBI accessionnumber为Q47KB1。
5.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述重组菌株以大肠杆菌BL21为宿主。
6.如权利要求1或5所述的方法,其特征在于,所述重组菌株以pET系列载体为载体。
7.如权利要求1所述的方法,其特征在于,发酵条件为:种子培养后,以1-5%(v/v)的接种量转接至LB培养基中,200-220r/min、35-38℃培养至菌体OD600达到0.6-0.8,向培养基中添加终浓度为0.1-0.5mmol/L IPTG,28-30℃诱导培养12-20h。
8.如权利要求7所述的方法,其特征在于,种子培养是将重组菌株接种到LB培养基中,200-220r/min、35-38℃培养10-15h。
9.如权利要求7所述的方法,其特征在于,LB培养基的配方如下:胰蛋白胨10g/L,酵母提取物5g/L,氯化钠10g/L。
10.权利要求1-9任一所述的方法在生物、纺织或化工领域内的应用。
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