CN109913502A - 一种Cas9-gRNA表达系统及其应用 - Google Patents

一种Cas9-gRNA表达系统及其应用 Download PDF

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CN109913502A
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sfyfp
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cas9
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sfyfp10
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潘讴东
杨佳丽
杨兴林
刘晓芬
夏清梅
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Abstract

本发明属于基因工程领域,更具体地说,本发明涉及一种Cas9‑gRNA表达系统及其应用。本发明公开了一种构建split‑sfYFP双载体的方法,包括将基因片段sfYFP10和sfYFP11与载体相连接,所述sfYFP10和sfYFP11的核苷酸序列分别如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示。本发明利用含有split‑sfYFP双载体的Cas9‑gRNA表达系统只能在共同转入同一个细胞的条件下才能完成超折叠并发光的特性,可以快速、准确的对打靶效率进行判断和评价。此外,本发明公开的sfYFP10和sfYFP11编码的蛋白质的发光能力和发光强度明显强于普通YFP蛋白,且具有融合后不易丢失荧光等优点。

Description

一种Cas9-gRNA表达系统及其应用
技术领域
本发明属于基因工程领域,更具体地说,本发明涉及一种Cas9-gRNA表达系统及其应用。
背景技术
双分子荧光互补(bimolecular fluorescence complementation,BiFC)分析技术,是由Hu等在2002年最先报道的一种直观、快速地判断目标蛋白在活细胞中的定位和相互作用的新技术。该方法利用荧光蛋白及其突变体的特性,将荧光蛋白分割成两个不具有荧光活性的分子片段,分别与不同目标蛋白连接。如果两个目标蛋白存在相互作用,就使得荧光蛋白的两个分子片段在空间上相互靠近,重新形成活性的荧光基团而发出荧光。在荧光显微镜下,根据荧光就能直接观察到两目标蛋白是否具有相互作用,并且在最接近活细胞生理状态的条件下观察到其相互作用发生的时间、位置、强弱、所形成蛋白质复合体的稳定性,以及细胞信号分子对其相互作用的影响等,有助于研究蛋白质相互作用。
GFP的一些定点突变能明显的改变其波长性质,由此产生的突变体,具有产生多色光的特性,如:66位的酪氨酸突变为色氨酸后成为青色荧光蛋白(cyan fluorescenceprotein,CFP),203位的苏氨酸突变为酪氨酸后成为黄色荧光蛋白(yellow fluorescenceprotein,YFP),145位酪氨酸突变为苯丙氨酸后成为蓝色荧光蛋白(blue fluorescenceprotein,BFP)。GFP、YFP、CFP和BFP都是由238个氨基酸组成的单体蛋白质,荧光的产生主要归功于分子内第65、66、67位丝氨酸、酪氨酸、甘氨酸自环化形成生色团的功效,而该过程大约在蛋白质形成后约4h完成。Superfolder YFP蛋白,简称sfYFP蛋白,是荧光蛋白家族的重要成员。和其他荧光蛋白相比,superfolder YFP具有更强的折叠能力和红绿都发光的特性。
CRISPR/Cas9系统是目前用于靶向基因特定DNA修饰的重要工具,具有快速、高效及特异性靶向等优势。携带CRISPR/Cas9系统的慢病毒不仅能够感染多种难感染的细胞,比如原代细胞,干细胞,神经元细胞等,而且能够将外源基因插入细胞基因组内,实现稳定转染。但是,Cas9基因的序列大约4kbp,接近慢病毒载体所容纳的包装量,这就导致在构建含有Cas9的慢病毒载体时很难再加入完整的荧光标记或抗性标记,为后续细胞的感染和突变克隆的筛选造成了一定的困难。
发明内容
为了解决现有技术中含有Cas9的慢病毒载体很难再加入完整的荧光标记或抗性标记的难题,本发明利用双分子荧光互补系统,将CRISPR/Cas9与慢病毒载体结合,构建双载体系统,一个载体包含Cas9和sfYFP10,另一个载体包含gRNA和sfYFP11,将其共同转染动物细胞,有荧光的细胞即为打靶成功的细胞,而荧光效率则可以反映打靶效率,而且由于sfYFP的红绿均发光的特性,有利于快速、准确的对打靶效率进行评价。
具体的,本发明的技术方案如下:
本发明一方面公开了一种split-sfYFP双载体,包括基因片段sfYFP10和sfYFP11,所述sfYFP10和sfYFP11的核苷酸序列分别如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示。
其中,基因片段sfYFP10和sfYFP11的合成思路为:基于superfolder YFP(sfYFP)荧光蛋白,从其第214和第215氨基酸残基分离得到两个荧光蛋白片段,分析编码该荧光蛋白片段的RNA,再逆转录为DNA,接着进行人工修饰等方法,设计出基因片段sfYFP10和sfYFP11。
应该理解,本发明并不限于基因片段sfYFP10和sfYFP11,本领域技术人员根据需要能够选择任何合适基因片段来完成本发明,并且在本发明的保护范围之内。
应该理解,在保持功能不变的情况下,与上述序列(及本发明中的其他序列)具有至少91%、至少92%、至少93%、至少94%、至少95%、至少96%、至少97%、至少98%、至少99%序列同一性的序列也在本发明的保护范围之内。所述的序列的差异由碱基的取代、缺失或添加所致,本领域技术人员有能力,例如通过非保守碱基的替换,获得功能相似的序列,这样的序列在本发明的保护范围之内。
优选的,所述基因片段sfYFP10和sfYFP11均与载体相连接。
基因载体,即gene delivery或gene vector,是作为基因导入细胞的工具。基因载体可以把目的基因送入靶细胞内,然后将目的基因释放出来,有的目的基因还可以整合到细胞核中,从而发挥目的基因的特定功能。
在本发明的一实施例中,将sfYFP10和sfYFP11分别与saCas9蛋白表达载体和sgRNA携带载体连接。
优选的,所述saCas9蛋白表达载体包括空载质粒pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-EGFP-S11。
优选的,所述sgRNA携带载体包括空载质粒pLenti-U6-sagRNA V2.0-CAG-EGFP-S10。
应当理解,发明并不限于空载质粒pLenti-U6-sagRNA V2.0-CAG-EGFP-S10和空载质粒pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-EGFP-S11,本领域技术人员根据需要能够选择任何合适载体来完成本发明,并且在本发明的保护范围之内。
本发明第二个方面公开了一种基于荧光分析的试剂盒,所述试剂盒包括如上述任意一项所述的split-sfYFP双载体。
本发明第三个方面公开了一种Cas9-gRNA表达系统,包括上述的split-sfYFP双载体。
本发明第四个方面公开了上述的split-sfYFP双载体、上述的试剂盒或者上述的Cas9-gRNA表达系统在判断目标蛋白在活细胞中的定位和相互作用技术中的应用。
本发明第五个方面公开了一种构建上述的Cas9-gRNA表达系统的方法,包括以下步骤:
S1:合成sfYFP10和sfYFP11;
S2:合成saCas9 gRNA的寡核苷酸链,其核苷酸序列如SEQ ID NO:3所示;
S3:将saCas9蛋白表达载体单酶切后与S2得到的寡核苷酸链连接,进行回收纯化得到第一酶切产物;
S4:将sgRNA携带载体双酶切后进行回收纯化得到第二酶切产物;
S5:将S2中得到的第一酶切产物和sfYFP10连接得到第一载体,将S3中得到的第二酶切产物和sfYFP11连接得到第二载体,即得到含有split-sfYFP双载体的Cas9-gRNA表达系统。
优选的,在S3中,采用XbaI进行单酶切。具体的,在本发明的一个实施例中,将质粒pLenti-U6-sagRNA V2.0-CAG-EGFP-S10用XbaI进行单酶切。酶切反应体系包括pLenti-U6-sagRNA V2.0-CAG-EGFP-S10 10μg、10×Cutsmart(NEB)5μL、XbaI2μL,用水补足至50μL。37℃下酶切4h后进行1%琼脂糖凝胶电泳,紫外灯下用刀片将大片段切下并进行回收纯化。
优选的,在S4中,采用SpeI和XbaI进行双酶切。具体的,在本发明的一个实施例中,将质粒pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-EGFP-S11用SpeI和XbaI进行双酶切。酶切反应体系包括pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-EGFP-S11 10μg、10×Cutsmart(NEB)5μL、SpeI和XbaI各2μL,用水补足至50μL。37℃下酶切4h后进行1%琼脂糖凝胶电泳,紫外灯下用刀片将大片段切下并进行回收纯化。
应当理解,发明并不限于限制性内切酶SpeI和XbaI,本领域技术人员根据需要能够选择任何合适限制性内切酶来完成本发明,并且在本发明的保护范围之内。
本发明第五个方面公开了上述的Cas9-gRNA表达系统在快速判断Cas9打靶效率中的应用,包括以下步骤:
构建split-sfYFP双载体后将其共同转染细胞,显微镜下观察有荧光的细胞即为打靶成功的细胞。
优选的,所述细胞为293T细胞。
在本发明的一个实施例中,所述细胞为哺乳动物细胞,具体的,所述细胞为293T细胞(购买于美国ATCC细胞库)。应当理解,在本发明的教导之下,本领域技术人员能够选择任何其他合适的细胞种类,并且在本发明的保护范围之内。
在符合本领域常识的基础上,上述各优选条件,可任意组合,而不超出本发明的构思与保护范围。
本发明相对于现有技术具有如下的优点和效果:
本发明利用含有split-sfYFP双载体的Cas9-gRNA表达系统只能在共同转入同一个细胞的条件下才能完成超折叠并发光的特性,可以快速、准确的对打靶效率进行判断和评价。此外,本发明公开的sfYFP10和sfYFP11编码的蛋白质的发光能力和发光强度明显强于普通YFP蛋白,且具有融合后不易丢失荧光等优点。
附图说明
图1为本发明实施例中pLenti-U6-sagRNA V2.0-CAG-sfYFP-S10表达载体结构示意图。
图2为本发明实施例中pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-sfYFP-S11表达载体结构示意图。
图3为本发明实施例中pLenti-U6-NCsagRNA V2.0-CAG-sfYFP-S10表达载体结构示意图。
图4为本发明实施例中split-sfYFP双载体转染293T细胞效果图。
具体实施方式
下面结合附图和实施例对本发明的技术方案进行详细描述,但并不因此将本发明限制在所述的实施例范围之中。下列实施例中未注明具体条件的实验方法,按照常规方法和条件,或按照商品说明书选择。本发明所用试剂和原料均市售可得。
实施例1
本实施例公开了一种构建含有split-sfYFP双载体的Cas9-gRNA表达系统的方法,包括以下步骤:
S1:合成带有酶切位点及上下游同源臂的sfYFP-S10(序列如SEQ ID NO:1所示)和sfYFP-S11(核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示);
S2:将质粒pLenti-U6-sagRNA V2.0-CAG-EGFP-S10用XbaI进行单酶切。50μL酶切反应体系包括:pLenti-U6-sagRNA V2.0-CAG-EGFP-S10 10μg、10×Cutsmart(NEB)5μL、XbaI2μL,用水补足至50μL,37℃酶切4h后进行1%琼脂糖凝胶电泳,紫外灯下用刀片将大片段切下并进行回收纯化;
S3:将质粒pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-EGFP-S11用SpeI和XbaI进行双酶切。50μL酶切反应体系含pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-EGFP-S11 10μg、10×Cutsmart(NEB)5μL、SpeI和XbaI各2μL,用水补足至50μL,37℃酶切4h后进行1%琼脂糖凝胶电泳,紫外灯下用刀片将大片段切下并进行回收纯化;
S4:将S2得到的纯化的酶切产物和S1的sfYFP-S10序列进行无缝克隆,将S3步得到的纯化的酶切产物和S1的sfYFP-S11合成序列进行无缝克隆,具体的,50μL反应体系分别含S2或S3酶切产物102.2ng,sfYFP-S10或sfYFP-S11 14.3ng,1μl酶,25μl buffer,用水补足至50μL,50℃反映15min后置于冰上进行转化涂板;
S5:挑取单菌落,进行质粒小提及测序鉴定。经测序,表达载体pLenti-U6-sagRNAV2.0-CAG-sfYFP-S10(核苷酸序列如SEQ ID NO:4所示)和pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-sfYFP-S11构建成功(核苷酸序列如SEQ ID NO:5所示),两者结合即是含有split-sfYFP双载体Cas9-gRNA表达系统,其中,表达载体pLenti-U6-sagRNA V2.0-CAG-sfYFP-S10和pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-sfYFP-S11的结构示意图分别如图1和图2所示。
实施例2
本实施了公开了Cas9-gRNA表达系统在快速判断Cas9打靶效率中的应用,包括以下步骤:构建split-sfYFP双载体后将其共同转染细胞,显微镜下观察有荧光的细胞即为打靶成功的细胞。
详细分步步骤如下:
(1)合成saCas9 gRNA NC序列的寡核酸链(核苷酸序列如SEQ ID NO:3所示)
首先设计针对saCas9 gRNA的NC的引物对:
NCsgRNAoligo1:5’-ACCGGCACTACCAGAGCTAACTCA-3’(SEQ ID NO:6);
NCsgRNAoligo2:5’-AAACTGAGTTAGCTCTGGTAGTGC-3’(SEQ ID NO:7);
将上述引物对用退火buffer溶解成20μM的浓度,于95℃水浴锅中孵育5min,再开水浴锅盖子慢慢自然冷却至室温。
(2)构建含有saCas9 gRNA NC序列的表达载体
用BsmB I酶切pLenti-U6-sagRNA V2.0-CAG-sfYFP-S10(NEBuffer3,55℃中酶切8h),得到324bp和9kb的片段,回收9kb的载体,将退火产物与酶切回收的载体片段连接得到目的质粒,将连接后的质粒转化至感受态细胞DH5α中,均匀涂至LB固体培养基平板中,置于37℃培养箱中培养12-16小时,单个菌落即可出现。
(3)挑取单个菌落扩大培养并质粒小提。
(4)测序鉴定质粒构建成功,并命名为pLenti-U6-NCsagRNA V2.0-CAG-sfYFP-S10(结构示意图如图3所示)。
(5)双载体转染用含10%胎牛血清的高糖DMEM培养基于5%CO2,37℃恒温培养293T细胞(购于美国ATCC细胞库)。取对数期细胞以2.6×105/孔接种到12孔板培养。待细胞融合度达到60%~70%时更换成Opti-MEM培养基培养,1小时后将1μg Lenti-U6-NCsagRNAV2.0-CAG-sfYFP-S10载体和1μg pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-sfYFP-S11载体在Lipo 2000转染试剂的作用下,共同转染293T细胞,转染24小时后拍荧光照片,转染结果如图4所示。
本实施例利用含有split-sfYFP双载体的Cas9-gRNA表达系统只能在共同转入同一个细胞的条件下才能完成超折叠并发光的特性,可以快速、准确的对打靶效率进行判断和评价。此外,本实施例公开的sfYFP10和sfYFP11编码的蛋白质的发光能力和发光强度明显强于普通YFP蛋白,且具有融合后不易丢失荧光的优点。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。
序列表
<110> 和元生物技术(上海)股份有限公司
<120> 一种Cas9-gRNA表达系统及其应用
<160> 7
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 756
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
tctagagcct ctgctaacca tgttcatgcc ttcttctttt tcctacagct cctgggcaac 60
gtgctggtta ttgtgctgtc tcatcatttt ggcaaagaag ccaccatgag caagggcgag 120
gagctgttca ccggggtggt gcccatcctg gtcgagctgg acggcgacgt aaacggccac 180
aagttcagcg tgagaggcga gggcgagggc gatgccacca tcggcaagct gaccctgaag 240
ttcatctgca ccaccggcaa gctgcccgtg ccctggccca ccctcgtgac caccttcggc 300
tacggcctgc agtgcttcgc ccgctacccc gaccacatga agagacacga cttcttcaag 360
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tacaagaccc gcgccgtggt gaagttcgag ggcgacaccc tggtgaaccg catcgagctg 480
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gtgctgagca aagaccccaa cgagaagtaa tctaga 756
<210> 2
<211> 714
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
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<210> 3
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
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<211> 9322
<212> DNA
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tgctgtcaga taaagtctcc cgtgaacttt acccggtggt gcatatcggg gatgaaagct 2640
ggcgcatgat gaccaccgat atggccagtg tgccggtctc cgttatcggg gaagaagtgg 2700
ctgatctcag ccaccgcgaa aatgacatca aaaacgccat taacctgatg ttctggggaa 2760
tataacgtct cagtttaagt actctgtgct ggaaacagca cagaatctac taaaacaagg 2820
caaaatgccg tgtttatctc gtcaacttgt tggcgagatt tttacgcgta ttaatagtaa 2880
tcaattacgg ggtcattagt tcatagccca tatatggagt tccgcgttac ataacttacg 2940
gtaaatggcc cgcctggctg accgcccaac gacccccgcc cattgacgtc aataatgacg 3000
tatgttccca tagtaacgcc aatagggact ttccattgac gtcaatgggt ggagtattta 3060
cggtaaactg cccacttggc agtacatcaa gtgtatcata tgccaagtac gccccctatt 3120
gacgtcaatg acggtaaatg gcccgcctgg cattatgccc agtacatgac cttatgggac 3180
tttcctactt ggcagtacat ctacgtatta gtcatcgcta ttaccatggg tcgaggtgag 3240
ccccacgttc tgcttcactc tccccatctc ccccccctcc ccacccccaa ttttgtattt 3300
atttattttt taattatttt gtgcagcgat gggggcgggg gggggggggg cgcgcgccag 3360
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gaccctttta gtcagtgtgg aaaatctcta gcagtagtag ttcatgtcat cttattattc 8280
agtatttata acttgcaaag aaatgaatat cagagagtga gaggccttga cattgctagc 8340
gttttaccgt cgacctctag ctagagcttg gcgtaatcat ggtcatagct gtttcctgtg 8400
tgaaattgtt atccgctcac aattccacac aacatacgag ccggaagcat aaagtgtaaa 8460
gcctggggtg cctaatgagt gagctaactc acattaattg cgttgcgctc actgcccgct 8520
ttccagtcgg gaaacctgtc gtgccagctg cattaatgaa tcggccaacg cgcggggaga 8580
ggcggtttgc gtattgggcg ctcttccgct tcctcgctca ctgactcgct gcgctcggtc 8640
gttcggctgc ggcgagcggt atcagctcac tcaaaggcgg taatacggtt atccacagaa 8700
tcaggggata acgcaggaaa gaacatgtga gcaaaaggcc agcaaaaggc caggaaccgt 8760
aaaaaggccg cgttgctggc gtttttccat aggctccgcc cccctgacga gcatcacaaa 8820
aatcgacgct caagtcagag gtggcgaaac ccgacaggac tataaagata ccaggcgttt 8880
ccccctggaa gctccctcgt gcgctctcct gttccgaccc tgccgcttac cggatacctg 8940
tccgcctttc tcccttcggg aagcgtggcg ctttctcata gctcacgctg taggtatctc 9000
agttcggtgt aggtcgttcg ctccaagctg ggctgtgtgc acgaaccccc cgttcagccc 9060
gaccgctgcg ccttatccgg taactatcgt cttgagtcca acccggtaag acacgactta 9120
tcgccactgg cagcagccac tggtaacagg attagcagag cgaggtatgt aggcggtgct 9180
acagagttct tgaagtggtg gcctaactac ggctacacta gaagaacagt atttggtatc 9240
tgcgctctgc tgaagccagt taccttcgga aaaagagttg gtagctcttg atccggcaaa 9300
caaaccaccg ctggtagcgg tttttttgtt tgcaagcagc agattacgcg cagaaaaaaa 9360
ggatctcaag aagatccttt gatcttttct acggggtctg acgctcagtg gaacgaaaac 9420
tcacgttaag ggattttggt catgagatta tcaaaaagga tcttcaccta gatcctttta 9480
aattaaaaat gaagttttaa atcaatctaa agtatatatg agtaaacttg gtctgacagt 9540
taccaatgct taatcagtga ggcacctatc tcagcgatct gtctatttcg ttcatccata 9600
gttgcctgac tccccgtcgt gtagataact acgatacggg agggcttacc atctggcccc 9660
agtgctgcaa tgataccgcg agacccacgc tcaccggctc cagatttatc agcaataaac 9720
cagccagccg gaagggccga gcgcagaagt ggtcctgcaa ctttatccgc ctccatccag 9780
tctattaatt gttgccggga agctagagta agtagttcgc cagttaatag tttgcgcaac 9840
gttgttgcca ttgctacagg catcgtggtg tcacgctcgt cgtttggtat ggcttcattc 9900
agctccggtt cccaacgatc aaggcgagtt acatgatccc ccatgttgtg caaaaaagcg 9960
gttagctcct tcggtcctcc gatcgttgtc agaagtaagt tggccgcagt gttatcactc 10020
atggttatgg cagcactgca taattctctt actgtcatgc catccgtaag atgcttttct 10080
gtgactggtg agtactcaac caagtcattc tgagaatagt gtatgcggcg accgagttgc 10140
tcttgcccgg cgtcaatacg ggataatacc gcgccacata gcagaacttt aaaagtgctc 10200
atcattggaa aacgttcttc ggggcgaaaa ctctcaagga tcttaccgct gttgagatcc 10260
agttcgatgt aacccactcg tgcacccaac tgatcttcag catcttttac tttcaccagc 10320
gtttctgggt gagcaaaaac aggaaggcaa aatgccgcaa aaaagggaat aagggcgaca 10380
cggaaatgtt gaatactcat actcttcctt tttcaatatt attgaagcat ttatcagggt 10440
tattgtctca tgagcggata catatttgaa tgtatttaga aaaataaaca aataggggtt 10500
ccgcgcacat ttccccgaaa agtgccacct gacgtcgacg gatcgggaga tcaacttgtt 10560
tattgcagct tataatggtt acaaataaag caatagcatc acaaatttca caaataaagc 10620
atttttttca ctgcattcta gttgtggttt gtccaaactc atcaatgtat cttatcatgt 10680
ctggatcaac tggataactc aagctaacca aaatcatccc aaacttccca ccccataccc 10740
tattaccact gccaattacc tagtggtttc atttactcta aacctgtgat tcctctgaat 10800
tattttcatt ttaaagaaat tgtatttgtt aaatatgtac tacaaactta gtagttttta 10860
aagaaattgt atttgttaaa tatgtactac aaacttagta gt 10902
<210> 6
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
accggcacta ccagagctaa ctca 24
<210> 7
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
aaactgagtt agctctggta gtgc 24

Claims (13)

1.一种split-sfYFP双载体,其特征在于,包括基因片段sfYFP10和sfYFP11,所述sfYFP10和sfYFP11的核苷酸序列分别如SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示。
2.根据权利要求1所述的split-sfYFP双载体,其特征在于,所述基因片段sfYFP10和sfYFP11均与载体相连接。
3.根据权利要求2所述的split-sfYFP双载体,其特征在于,将sfYFP10和sfYFP11分别与saCas9蛋白表达载体和sgRNA携带载体连接。
4.根据权利要求3所述的split-sfYFP双载体,其特征在于,所述saCas9蛋白表达载体包括空载质粒pLenti-CMV-SaCas9-P2A-Puro-linker-EGFP-S11。
5.根据权利要求3所述的split-sfYFP双载体,其特征在于,所述sgRNA携带载体包括空载质粒pLenti-U6-sagRNA V2.0-CAG-EGFP-S10。
6.基于荧光分析的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括如权利要求1-5中任意一项所述的split-sfYFP双载体。
7.一种Cas9-gRNA表达系统,其特征在于,包括权利要求1-5任意一项所述的split-sfYFP双载体。
8.根据权利要求1-5任意一项所述的split-sfYFP双载体、权利要求6所述的试剂盒或者权利要求7所述的Cas9-gRNA表达系统在判断目标蛋白在活细胞中的定位和相互作用技术中的应用。
9.一种构建权利要求7所述的Cas9-gRNA表达系统的方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1:合成sfYFP10和sfYFP11;
S2:合成saCas9 gRNA的寡核苷酸链,其核苷酸序列如SEQ ID NO:3所示;
S3:将saCas9蛋白表达载体单酶切后与S2得到的寡核苷酸链连接,进行回收纯化得到第一酶切产物;
S4:将sgRNA携带载体双酶切后进行回收纯化得到第二酶切产物;
S5:将S2中得到的第一酶切产物和sfYFP10连接得到第一载体,将S3中得到的第二酶切产物和sfYFP11连接得到第二载体,即得到含有split-sfYFP双载体的Cas9-gRNA表达系统。
10.根据权利要求9所述的方法,其特征在于,在S3中,采用XbaI进行单酶切。
11.根据权利要求9所述的方法,其特征在于,在S4中,采用SpeI和XbaI进行双酶切。
12.根据权利要求7所述的Cas9-gRNA表达系统在快速判断Cas9打靶效率中的应用,其特征在于,包括以下步骤:
构建split-sfYFP双载体后将其共同转染细胞,显微镜下观察有荧光的细胞即为打靶成功的细胞。
13.根据权利要求12所述的应用,其特征在于,所述细胞为293T细胞。
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