CN109320571A - 提取木犀草素类化合物和菜蓟苦素的方法 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了一种提取木犀草素类化合物和菜蓟苦素的方法。所述方法:将朝鲜蓟粉碎后浸提后得到粗提液;上样至AB‑8型大孔树脂层析柱,收集洗脱液,浓缩冻干得到第一粗提物和第二粗提物;第一粗提物用甲醇水溶液溶解上样至RP‑C18层析柱,收集洗脱液,浓缩冻干得第一预分离物和第二预分离物;将第一预分离物用乙腈水溶液溶解,进行第一液相半制备,收集流分段,浓缩冻干得第一目标化合物和第二目标化合物;将第二粗提物和第二预分离物重结晶,用50%甲醇溶解,进行第二液相半制备,收集流分段,浓缩冻干得第三目标化合物。本申请提供的方法,从朝鲜蓟中有效分离出目标化合物,提取纯度高,提取方法简单,有利于朝鲜蓟的深度开发。

Description

提取木犀草素类化合物和菜蓟苦素的方法
技术领域
本发明涉及提取纯化领域,具体而言,涉及一种提取木犀草素类化合物和菜蓟苦素的方法。
背景技术
朝鲜蓟为菊科菜蓟属多年生草本植物,又名菜蓟、洋蓟、菊蓟、荷花百合、法国百合,学名Cynara scolymus L.。原产于地中海沿岸,欧洲南部及北非,19世纪由法国传入中国上海,现主要分布在上海、浙江、云南、湖南、山东及北京等地。朝鲜蓟食用价值极高,有“蔬菜之皇”的美誉。
朝鲜蓟叶提取物长期以来一直用于民间医药,其体外和临床试验表明,朝鲜蓟提取物具有抗氧化、抑菌、抗癌抗肿瘤、保肝、降血糖、改善消化及改善高胆固醇血症等功效,愈创木烷半倍萜内酯作为其主要功效成分有望被开发为治疗炎症性疾病(如风湿性关节炎)、特异性抗乙型肝炎病毒、II型糖尿病相关的新型PTP-1B抑制剂、血管生成抑制剂和治疗多种癌症的新药物以及促进胃动力和治疗胃溃疡的新药物。
木犀草素是3',4',5,7-四羟基黄酮类化合物,其B环中的邻二酚羟基对黄酮类化合物的抗氧化活性起主要作用,它是朝鲜蓟中含量丰富,是主要的抗氧化成分,具有抗肿瘤、心脏保护作用、呼吸系统影响、免疫调节、抗炎作用。近年来,天然中草药活性成分的抗肝细胞癌作用成为国内外研究的热点,相关的研究表明木犀草素在抗肝细胞癌方面有多机制、多途径、多靶点的作用。
但是现有技术对于其有效成分的分离纯化研究有限,导致朝鲜蓟的深度开发利用难以开展。如何从朝鲜蓟中提取出愈创木烷半倍萜内酯等生物活性成分,对深度开发朝鲜蓟作物极其重要。
有鉴于此,特提出本发明。
发明内容
本发明的目的在于提供一种提取木犀草素类化合物和菜蓟苦素的方法,从朝鲜蓟中提取出目标化合物,而且快速有效、纯度高。
为了实现本发明的上述目的,特采用以下技术方案:
一种提取木犀草素类化合物和菜蓟苦素的方法,所述方法包括以下步骤:
A.将朝鲜蓟粉碎后用乙醇水溶液浸提后得到粗提液;
B.所述粗提液上样至AB-8型大孔树脂层析柱,依次用水、体积分数为20%、50%、80%的乙醇水溶液进行梯度洗脱,经色谱检测,收集洗脱液,浓缩冻干得到第一粗提物和第二粗提物;
C.所述第一粗提物用甲醇水溶液溶解后上样至RP-C18层析柱,依次用体积分数为30%、48%和100%的甲醇水溶液进行梯度洗脱,经色谱检测,收集洗脱液,浓缩冻干得到第一预分离物和第二预分离物;
D.将所述第一预分离物用乙腈水溶液溶解,使用Venusil MP C18色谱柱、以流动相A为乙腈、流动相B为甲酸水溶液作为流动相进行第一液相半制备,收集流分段,浓缩冻干得到第一目标化合物和第二目标化合物,所述第一目标化合物的结构式为:
所述第二目标化合物的结构式为:
E.将所述第二粗提物和所述第二预分离物用乙醇水溶液重结晶,然后用体积分数为50%的甲醇水溶液溶解,使用所述Venusil MP C18色谱柱、以流动相C为乙腈、流动相D为甲酸水溶液作为流动相进行第二液相半制备,收集流分段,浓缩冻干得到第三目标化合物,所述第三目标化合物的结构式为:
优选地,所述AB-8型大孔树脂层析柱的制作方法为:先将AB-8型大孔树脂颗粒用无水乙醇浸泡20-24h进行预处理,然后装柱,用水冲洗至无醇味。
优选地,所述RP-C18层析柱的制备方法为:将RP-C18颗粒放入甲醇中进行超声处理,并不断搅拌,去除气泡;然后将处理好的所述RP-C18颗粒和甲醇一同装柱。
更加优选地,所述RP-C18颗粒的规格为:40-60μm,
优选地,所述Venusil MP C18色谱柱的规格为:10mm×250mm,5μm;所述流动相B中甲酸水溶液的体积分数为0.1%。
进一步优选地,所述第一液相半制备的洗脱梯度为:初始-40分钟,所述流动相A与所述流动相B的体积比为23:77;45分钟-55分钟,所述流动相A与所述流动相B的体积比为100:0。
优选地,步骤E中,所述乙醇水溶液的体积分数为50%。
进一步优选地,所述流动相D中甲酸水溶液的体积分数为0.1%;所述第二液相半制备的洗脱梯度为:初始-40分钟,所述流动相C与所述流动相D的体积比为27:73;41分钟-50分钟,所述流动相C与所述流动相D的体积比为100:0。
优选地,所述步骤A中:所述朝鲜蓟与所述乙醇水溶液的料液比为1:8-10,浸提时间为70-72h。
可选地,所述乙醇水溶液的体积分数为70%。
与现有技术相比,本发明的有益效果为:
(1)从朝鲜蓟中分离出了目标化合物;
(2)本申请提供的提取方法简单、有效,适合于推广应用。
(3)目标化合物提取纯度高。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,以下将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍。
图1为实施例1进行第一液相半制备的谱图;
图2为实施例1进行第二液相半制备的谱图;
图3为实施例1制备得到的第一目标化合物的纯度测定图;
图4为实施例1制备得到的第二目标化合物的纯度测定图;
图5为实施例1制备得到的第三目标化合物的纯度测定图;
图6为本申请制备得到的第一目标化合物的正离子模式质谱图;
图7为本申请制备得到的第一目标化合物的负离子模式质谱图;
图8为本申请制备得到的第一目标化合物的H谱图;
图9为本申请制备得到的第一目标化合物的C谱图;
图10为本申请制备得到的第二目标化合物的正离子模式质谱图;
图11为本申请制备得到的第二目标化合物的H谱图;
图12为本申请制备得到的第二目标化合物的C谱图;
图13为本申请制备得到的第三目标化合物的质谱图;
图14为本申请制备得到的第三目标化合物的H谱图;
图15为本申请制备得到的第三目标化合物的C谱图。
具体实施方式
下面将结合实施例对本发明的实施方案进行详细描述,但是本领域技术人员将会理解,下列实施例仅用于说明本发明,而不应视为限制本发明的范围。实施例中未注明具体条件者,按照常规条件或制造商建议的条件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市售购买获得的常规产品。
实施例1
将朝鲜蓟晒干并用粉碎机进行粉碎,在室温条件下,将朝鲜蓟粉末按料液比1:10加入体积分数为70%的乙醇水溶液中浸提72小时,浸提期间要不断搅拌,然后提取液先用滤布真空抽滤,再用滤纸真空抽滤,将滤液减压浓缩得粗提液。粗提液的含固量为0.1g/ml。
将AB-8型大孔树脂用无水乙醇浸泡24h,浸泡期间须不断搅拌。之后,将树脂颗粒和无水乙醇一同装柱(柱体积为1L),并用无水乙醇洗至流出液加水(1:5)不浑浊,再用纯水冲洗至无醇味。将柱子内的纯水放至与树脂相平时,将1L粗提液缓慢加入到层析柱中,到柱子下层的树脂全部被染上颜色后开始接收有明显颜色的流出液(浅绿色、棕黄色),进液相分析,以免样品过多,大孔树脂吸附不完全,出现过载现象。待样品被完全吸附后,依次用水、体积分数为20%的乙醇水溶液、体积分数为50%的乙醇水溶液和体积分数为80%的乙醇水溶液进行洗脱,洗脱至无色(一直不变),同时用干净玻璃瓶接出流分(每400mL接一个流分)。将接出的流分编号为A1、A2、A3……。将收集的流分过0.45μm滤膜过滤,然后进行高效液相色谱检测。液相色谱检测条件:色谱柱型号为Venusil MP C18,4.6mm×250mm,5μm;检测波长为205nm,流动相A为甲醇,流动相B为0.1%甲酸水,进样量20μL。洗脱梯度为:初始,流动相A与流动相B的体积比为5:95;至30分钟变化为100%甲醇。根据检测结果进行合并,选择活性组分A27-29和A35-36进一步分离和纯化,浓缩冻干得到第一粗提物和第二粗提物。
将RP-C18填料放入甲醇中进行超声处理,在超声过程中需要不断搅拌,去除气泡。然后将处理好的RP-C18填料和甲醇一同装柱(柱体积1.2L)。将第一粗提物用体积分数为50%的甲醇水溶液溶解,然后缓慢上样。依次用体积分数为30%甲醇、48%甲醇和100%甲醇进行洗脱。洗脱的同时接收洗脱液,每400mL接一个流分,并依次编号为:C1、C2、C3……。根据HPLC检测结果进行合并,取C16-19,合并,后减压浓缩、冷冻干燥得到第一预分离物;取C25-29,合并,后减压浓缩、冷冻干燥得到第二预分离物。
将第一预分离物用体积分数为23%的乙腈水溶液溶解,使用LC3000型高效液相色谱仪、Venusil MP C18色谱柱(10mm×250mm,5μm)、以流动相A为乙腈、流动相B为体积分数0.1%的甲酸水溶液作为流动相,洗脱梯度为:初始-40分钟,流动相A与流动相B的体积比为23:77;45分钟-55分钟,流动相A与流动相B的体积比为100:0。控制进样量50μL、流速3mL/min、检测波长205nm,进行第一液相半制备,收集含有目标化合物的流分段,浓缩冻干得到第一目标化合物(见图1,1号峰)和第二目标化合物(见图1,2号峰)。
将第二粗提物和第二预分离物加入少量体积分数为50%的乙醇水溶液,稍微加热使之溶解,冷却后放置冰箱静置,待下层有大量晶体析出后,用布氏漏斗抽滤,收集重结晶得到的固体,然后用体积分数为50%的甲醇水溶液溶解,使用LC3000型高效液相色谱仪、Venusil MP C18色谱柱(10mm×250mm,5μm)、以流动相C为乙腈、流动相D为体积分数为0.1%的甲酸水溶液作为流动相进行第二液相半制备,洗脱梯度为:初始-40分钟,流动相C与流动相D的体积比为27:73;41分钟-50分钟,流动相C与流动相D的体积比为100:0;控制进样量60μL、流速3mL/min、检测波长205nm,收集流分段,浓缩冻干得到第三目标化合物(见图2,4号峰)。
对目标化合物进行纯度测定:
以乙腈-甲酸水溶液(乙腈与甲酸水溶液的体积比为23:77,甲酸水溶液的体积分数为0.1%)作为流动相,用LC3000型高效液相色谱仪,Venusil MP C18(4.6mm×250mm,5μm),检测器:UV205nm,控制流速1ml/min。测得第一目标化合物的纯度为97.8%(见图3),提取得率为54.5mg/kg;第二目标化合物的纯度为96.5%(见图4),提取得率为27.3mg/kg。
以乙腈-甲酸水溶液(乙腈与甲酸水溶液的体积比为27:73,甲酸水溶液的体积分数为0.1%)作为流动相,用LC3000型高效液相色谱仪,Venusil MP C18(4.6mm×250mm,5μm),检测器:UV205nm,控制流速1ml/min。测得纯度为98.1%(见图5),提取得率为10.0mg/kg。
实施例2
将朝鲜蓟晒干并用粉碎机进行粉碎,在室温条件下,将朝鲜蓟粉末按料液比1:8加入体积分数为70%的乙醇水溶液中浸提70小时,浸提期间要不断搅拌,然后提取液先用滤布真空抽滤,再用滤纸真空抽滤,将滤液减压浓缩得粗提液。
将AB-8型大孔树脂用无水乙醇浸泡20h,浸泡期间须不断搅拌。之后,将树脂颗粒和无水乙醇一同装柱(柱体积为1L),并用无水乙醇洗至流出液加水(1:5)不浑浊,再用纯水冲洗至无醇味。将柱子内的纯水放至与树脂相平时,将1L粗提液缓慢加入到层析柱中,到柱子下层的树脂全部被染上颜色后开始接收有明显颜色的流出液(浅绿色、棕黄色),进液相分析,以免样品过多,大孔树脂吸附不完全,出现过载现象。待样品被完全吸附后,依次用水、体积分数为20%的乙醇水溶液、体积分数为50%的乙醇水溶液和体积分数为80%的乙醇水溶液进行洗脱,洗脱至无色(一直不变),同时用干净玻璃瓶接出流分(每400mL接一个流分)。将接出的流分编号为A1、A2、A3……。将收集的流分过0.45μm滤膜过滤,然后进行高效液相色谱检测。液相色谱检测条件:色谱柱型号为Venusil MP C18,4.6mm×250mm,5μm;检测波长为205nm,流动相A为甲醇,流动相B为0.1%甲酸水,进样量20μL。洗脱梯度为:初始,流动相A与流动相B的体积比为5:95;至30分钟变化为100%甲醇。根据检测结果进行合并,选择活性组分A27-29和A35-36进一步分离和纯化,浓缩冻干得到第一粗提物和第二粗提物。
将RP-C18填料放入甲醇中进行超声处理,在超声过程中需要不断搅拌,去除气泡。然后将处理好的RP-C18填料和甲醇一同装柱(柱体积1.2L)。将第一粗提物用体积分数为50%的甲醇水溶液溶解,然后缓慢上样。依次用体积分数为30%甲醇、48%甲醇和100%甲醇进行洗脱。洗脱的同时接收洗脱液,每400mL接一个流分,并依次编号为:C1、C2、C3……。根据HPLC检测结果进行合并,取C16-19,合并,后减压浓缩、冷冻干燥得到第一预分离物;取C25-29,合并,后减压浓缩、冷冻干燥得到第二预分离物。
将第一预分离物用体积分数为23%的乙腈水溶液溶解,使用LC3000型高效液相色谱仪、Venusil MP C18色谱柱(10mm×250mm,5μm)、以流动相A为乙腈、流动相B为体积分数0.1%的甲酸水溶液作为流动相,洗脱梯度为:初始-40分钟,流动相A与流动相B的体积比为23:77;45分钟-55分钟,流动相A与流动相B的体积比为100:0。控制进样量50μL、流速3mL/min、检测波长205nm,进行第一液相半制备,收集含有目标化合物的流分段,浓缩冻干得到第一目标化合物和第二目标化合物。
将第二粗提物和第二预分离物加入少量体积分数为50%的乙醇水溶液,稍微加热使之溶解,冷却后放置冰箱静置,待下层有大量晶体析出后,用布氏漏斗抽滤,收集重结晶得到的固体,然后用体积分数为50%的甲醇水溶液溶解,使用LC3000型高效液相色谱仪、Venusil MP C18色谱柱(10mm×250mm,5μm)、以流动相C为乙腈、流动相D为体积分数为0.1%的甲酸水溶液作为流动相进行第二液相半制备,洗脱梯度为:初始-40分钟,流动相C与流动相D的体积比为27:73;41分钟-50分钟,流动相C与流动相D的体积比为100:0;控制进样量60μL、流速3mL/min、检测波长205nm,收集流分段,浓缩冻干得到第三目标化合物。
实施例3
将朝鲜蓟晒干并用粉碎机进行粉碎,在室温条件下,将朝鲜蓟粉末按料液比1:9加入体积分数为70%的乙醇水溶液中浸提71小时,浸提期间要不断搅拌,然后提取液先用滤布真空抽滤,再用滤纸真空抽滤,将滤液减压浓缩得粗提液。
将AB-8型大孔树脂用无水乙醇浸泡22h,浸泡期间须不断搅拌。之后,将树脂颗粒和无水乙醇一同装柱(柱体积为1L),并用无水乙醇洗至流出液加水(1:5)不浑浊,再用纯水冲洗至无醇味。将柱子内的纯水放至与树脂相平时,将1L粗提液缓慢加入到层析柱中,到柱子下层的树脂全部被染上颜色后开始接收有明显颜色的流出液(浅绿色、棕黄色),进液相分析,以免样品过多,大孔树脂吸附不完全,出现过载现象。待样品被完全吸附后,依次用水、体积分数为20%的乙醇水溶液、体积分数为50%的乙醇水溶液和体积分数为80%的乙醇水溶液进行洗脱,洗脱至无色(一直不变),同时用干净玻璃瓶接出流分(每400mL接一个流分)。将接出的流分编号为A1、A2、A3……。将收集的流分过0.45μm滤膜过滤,然后进行高效液相色谱检测。液相色谱检测条件:色谱柱型号为Venusil MP C18,4.6mm×250mm,5μm;检测波长为205nm,流动相A为甲醇,流动相B为0.1%甲酸水,进样量20μL。洗脱梯度为:初始,流动相A与流动相B的体积比为5:95;至30分钟变化为100%甲醇。根据检测结果进行合并,选择活性组分A27-29和A35-36进一步分离和纯化,浓缩冻干得到第一粗提物和第二粗提物。
将RP-C18填料放入甲醇中进行超声处理,在超声过程中需要不断搅拌,去除气泡。然后将处理好的RP-C18填料和甲醇一同装柱(柱体积1.2L)。将第一粗提物用体积分数为50%的甲醇水溶液溶解,然后缓慢上样。依次用体积分数为30%甲醇、48%甲醇和100%甲醇进行洗脱。洗脱的同时接收洗脱液,每400mL接一个流分,并依次编号为:C1、C2、C3……。根据HPLC检测结果进行合并,取C16-19,合并,后减压浓缩、冷冻干燥得到第一预分离物;取C25-29,合并,后减压浓缩、冷冻干燥得到第二预分离物。
将第一预分离物用体积分数为23%的乙腈水溶液溶解,使用LC3000型高效液相色谱仪、Venusil MP C18色谱柱(10mm×250mm,5μm)、以流动相A为乙腈、流动相B为体积分数0.1%的甲酸水溶液作为流动相,洗脱梯度为:初始-40分钟,流动相A与流动相B的体积比为23:77;45分钟-55分钟,流动相A与流动相B的体积比为100:0。控制进样量50μL、流速3mL/min、检测波长205nm,进行第一液相半制备,收集含有目标化合物的流分段,浓缩冻干得到第一目标化合物和第二目标化合物。
将第二粗提物和第二预分离物加入少量体积分数为50%的乙醇水溶液,稍微加热使之溶解,冷却后放置冰箱静置,待下层有大量晶体析出后,用布氏漏斗抽滤,收集重结晶得到的固体,然后用体积分数为50%的甲醇水溶液溶解,使用LC3000型高效液相色谱仪、Venusil MP C18色谱柱(10mm×250mm,5μm)、以流动相C为乙腈、流动相D为体积分数为0.1%的甲酸水溶液作为流动相进行第二液相半制备,洗脱梯度为:初始-40分钟,流动相C与流动相D的体积比为27:73;41分钟-50分钟,流动相C与流动相D的体积比为100:0;控制进样量60μL、流速3mL/min、检测波长205nm,收集流分段,浓缩冻干得到第三目标化合物。
对实施例1-3得到的化合物单体均进行LC-MS测定和核磁共振检测。
第一目标化合物:
如图6所示,正离子模式下,质谱数据m/z595.1657[M+H]+;如图7所示,负离子模式下,质谱数据m/z593.1492[M-H]-、m/z1187.3104[2M-H]-,推测其,分子式为C27H30O15
对H谱(见图8)和C谱(见图9)的峰进行归属:
1H-NMR中,δ4.90处的峰为水峰;δ7.50-6.20之间共有5组信号为苯环或者烯烃质子,由此可推断该化合物中包含不止一个苯环;δ4.00-3.00之间共有多组信号符合连氧碳上质子特征,推测化合物中包含不止一个糖苷;δ1.20处为甲基特征信号,根据积分面积,可推断该化合物中包含一个甲基。13C-NMR中,合计含有27组碳信号,该结果与质谱结论相吻合;其中δ17.91为甲基特征信号,该结果与氢谱结论相吻合;δ67.47到77.73之间共有9组信号符合糖苷上连氧碳信号特征,因此推测化合物中包含有两个糖苷;δ100附近有两个信号归属于糖苷端基碳,其余15组信号符合木犀草素特征信号;因此推断化合物为木犀草素与两个糖苷组成。
对H谱和C谱的峰进行归属如下:
1H-NMR:6.52(1H,s,H-2),6.46(1H,d,J=2Hz,H-6),6.63(1H,d,J=2Hz,H-8),7.33(2H,m,H-2’,6’),6.88(1H,s,H-5’),5.00(1H,H-1”),3.64(1H,m,H-6”),4.05(1H,d,J=9.7Hz,H-6”),4.73(1H,s,H-1”’),3.93(1H,s,H-2”’),3.76(1H,d,J=9.4Hz,H-3”’),1.20(3H,d,J=5.8Hz,H-6”’)。
13C-NMR:166.73(C-2),104.14(C-3),183.85(C-4),162.76(C-5),101.07(C-6),164.57(C-7),96.16(C-8),158.67(C-9),107.00(C-10),123.37(C-1’),116.85(C-2’),146.84(C-3’),151.06(C-4’),114.29(C-5’),120.62(C-6’),102.05(C-1”),74.71(C-2”),77.73(C-3”),71.31(C-4”),77.09(C-5”),67.47(C-6”),101.54(C-1”’),72.37(C-2”’),72.03(C-3”’),74.03(C-4”’),69.77(C-15”’),17.91(C-6”’)。
综合所有核磁谱图及质谱结果,化合物鉴定为Luteolin 7-O-α-L-Rhamnosyl(1-6)-β-D-Glucoside(木犀草素7-O-α-L-鼠李糖(1-6)-β-D-葡萄糖苷)。第一目标化合物结构式为:
第二目标化合物:
如图10所示,m/z449.1094[M+H]+、碎片离子287.0575+,推测其分子式为C21H20O11
对H谱(见图11)和C谱(见图12)的峰进行归属:
1H-NMR中,δ7.50-6.50之间共有6组信号为苯环或者烯烃质子,由此可推断该化合物中包含不止一个苯环;δ4.00-3.00之间共有多组信号符合连氧碳上质子特征,推测化合物中包含有糖苷,δ5.07处为糖端基信号。13C-NMR中,δ101.64、74.75、77.86、71.29、78.39、62.49为一组葡萄糖基信号,其余碳谱信号与木犀草素特征信号高度吻合。
对H谱和C谱的峰进行归属如下:
1H-NMR:6.56(1H,s,H-2),6.45(1H,d,J=2Hz,H-6),6.74(1H,d,J=2Hz,H-8),7.37(1H,m,H-2’),6.89(1H,s,H-5’),7.37(1H,m,H-6’),5.07(1H,H-1”),3.50-3.60(2H,m,H-2”,H-3”),3.40(1H,m,H-5”),3.96(1H,d,J=12.2Hz,H-6”a),3.72-3.75(1H,dd,J=12.2Hz,5.6Hz,,H-6”b)。
13C-NMR:166.82(C-2),107.08(C-3),183.99(C-4),164.74(C-5),101.16(C-6),162.82(C-7),96.07(C-8),158.93(C-9),104.18(C-10),123.48(C-1’),114.31(C-2’),147.03(C-3’),151.16(C-4’),116.80(C-5’),120.53(C-6’),101.64(C-1”),74.75(C-2”),77.86(C-3”),71.29(C-4”),78.39(C-5”),62.49(C-6”)。
综合所有核磁谱图及质谱结果,化合物鉴定为Luteolin 7-O-β-D-Glucoside(木犀草素7-O-β-D-葡萄糖苷)。第二目标化合物结构式为:
第三目标化合物:
如图13所示,m/z369.1309[M+Na]+、m/z715.2733[2M+Na]+,推测其分子式为C19H22O6
对H谱(见图14)和C谱(见图15)的峰进行归属:
1H-NMR中,δ6.50-5.00有多组信号,其耦合常数与苯环特耦合常数不一致,因此推断为烯烃质子信号。高场部分的信号应该为-CH2-基团质子信号,并且,化合物中包含有多组-CH2-基团。除去溶剂峰,谱图中共有19组碳信号(有一组碳信号(δ48.41)与溶剂峰很接近,不仔细检查的话很容易被当做溶剂峰而忽略),该结论与质谱结论相一致。
对H谱和C谱的峰进行归属如下:
1H-NMR:3.01(1H,m,H-1),1.75(1H,m,H-2),4.51(1H,m,H-3),2.91(1H,m,H-5),4.35(1H,d,J=1.8Hz,H-6),3.31(1H,m,H-7),5.16(1H,m,H-8),2.75(1H,dd,J=14.8Hz,5.2Hz,H-9a),2.43(1H,dd,J=14.8Hz,3.5Hz,H-9b),6.12(1H,d,J=3.5Hz,H-13a),5.65(1H,d,J=3.5Hz,H-13b),5.16(1H,m,H-14a),4.92(1H,m,H-14b),5.44(1H,s,H-15a),5.34(1H,d,J=1.0Hz,H-15b),2.09(1H,m,H-2'),6.32(1H,d,J=1.2Hz,H-3'a),5.98(1H,d,J=1.2Hz,H-3'b),4.32(2H,t,J=1.4Hz,H-4')。
13C-NMR:46.15(C-1),37.61(C-2),75.63(C-3),141.86(C-4),52.00(C-5),80.30(C-6),48.41(C-7),74.13(C-8),39.99(C-9),144.01(C-10),154.01(C-11),171.26(C-12),122.43(C-13),118.18(C-14),112.76(C-15),166.56(C-1'),139.70(C-2'),126.03(C-3'),61.61(C-4')。
综合所有核磁谱图及质谱结果,化合物鉴定为菜蓟苦素(Cynaropicrin)。第三目标化合物结构式为:
本申请提供的从朝鲜蓟中提取木犀草素类化合物和菜蓟苦素的方法,从朝鲜蓟中分离提取出了目标化合物,方法简单实用,用一种方法分离出朝鲜蓟中的两种主要成分,适宜于规模化应用,产品纯度高,对于朝鲜蓟的深度开发利用有着积极意义。
尽管已用具体实施例来说明和描述了本发明,然而应意识到,在不背离本发明的精神和范围的情况下可以作出许多其它的更改和修改。因此,这意味着在所附权利要求中包括属于本发明范围内的所有这些变化和修改。

Claims (10)

1.一种提取木犀草素类化合物和菜蓟苦素的方法,其特征在于,所述方法包括以下步骤:
A.将朝鲜蓟粉碎后用乙醇水溶液浸提后得到粗提液;
B.所述粗提液上样至AB-8型大孔树脂层析柱,依次用水、体积分数为20%、50%、80%的乙醇水溶液进行梯度洗脱,经色谱检测,收集洗脱液,浓缩冻干得到第一粗提物和第二粗提物;
C.所述第一粗提物用甲醇水溶液溶解后上样至RP-C18层析柱,依次用体积分数为30%、48%和100%的甲醇水溶液进行梯度洗脱,经色谱检测,收集洗脱液,浓缩冻干得到第一预分离物和第二预分离物;
D.将所述第一预分离物用乙腈水溶液溶解,使用Venusil MP C18色谱柱、以流动相A为乙腈、流动相B为甲酸水溶液作为流动相进行第一液相半制备,收集流分段,浓缩冻干得到第一目标化合物和第二目标化合物,所述第一目标化合物的结构式为:
所述第二目标化合物的结构式为:
E.将所述第二粗提物和所述第二预分离物用乙醇水溶液重结晶,然后用体积分数为50%的甲醇水溶液溶解,使用所述Venusil MP C18色谱柱、以流动相C为乙腈、流动相D为甲酸水溶液作为流动相进行第二液相半制备,收集流分段,浓缩冻干得到第三目标化合物,所述第三目标化合物的结构式为:
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述AB-8型大孔树脂层析柱的制作方法为:先将AB-8型大孔树脂颗粒用无水乙醇浸泡20-24h进行预处理,然后装柱,用水冲洗至无醇味。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述RP-C18层析柱的制备方法为:将RP-C18颗粒放入甲醇中进行超声处理,并不断搅拌,去除气泡;然后将处理好的所述RP-C18颗粒和甲醇一同装柱。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述RP-C18颗粒的规格为:40-60μm,
5.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述Venusil MP C18色谱柱的规格为:10mm×250mm,5μm;所述流动相B中甲酸水溶液的体积分数为0.1%。
6.根据权利要求5所述的方法,其特征在于,所述第一液相半制备的洗脱梯度为:初始-40分钟,所述流动相A与所述流动相B的体积比为23:77;45分钟-55分钟,所述流动相A与所述流动相B的体积比为100:0。
7.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤E中,所述乙醇水溶液的体积分数为50%。
8.根据权利要求7所述的方法,其特征在于,所述流动相D中甲酸水溶液的体积分数为0.1%;所述第二液相半制备的洗脱梯度为:初始-40分钟,所述流动相C与所述流动相D的体积比为27:73;41分钟-50分钟,所述流动相C与所述流动相D的体积比为100:0。
9.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述步骤A中:所述朝鲜蓟与所述乙醇水溶液的料液比为1:8-10,浸提时间为70-72h。
10.根据权利要求1-9任一项所述的方法,其特征在于,所述乙醇水溶液的体积分数为70%。
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