CN109061169A - 一种检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒及其应用 - Google Patents

一种检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN109061169A
CN109061169A CN201811104470.7A CN201811104470A CN109061169A CN 109061169 A CN109061169 A CN 109061169A CN 201811104470 A CN201811104470 A CN 201811104470A CN 109061169 A CN109061169 A CN 109061169A
Authority
CN
China
Prior art keywords
acetamiprid
kit
liquid
solution
enzyme
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201811104470.7A
Other languages
English (en)
Other versions
CN109061169B (zh
Inventor
范子彦
陈黎
鲁亚辉
李旭
刘惠民
唐纲岭
潘立宁
颜权平
刘二战
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Beijing Kwinbon Biotechnology Co Ltd
Zhengzhou Tobacco Research Institute of CNTC
National Tobacco Quality Supervision and Inspection Center
Original Assignee
Beijing Kwinbon Biotechnology Co Ltd
Zhengzhou Tobacco Research Institute of CNTC
National Tobacco Quality Supervision and Inspection Center
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Beijing Kwinbon Biotechnology Co Ltd, Zhengzhou Tobacco Research Institute of CNTC, National Tobacco Quality Supervision and Inspection Center filed Critical Beijing Kwinbon Biotechnology Co Ltd
Priority to CN201811104470.7A priority Critical patent/CN109061169B/zh
Publication of CN109061169A publication Critical patent/CN109061169A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN109061169B publication Critical patent/CN109061169B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/58Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
    • G01N33/581Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances with enzyme label (including co-enzymes, co-factors, enzyme inhibitors or substrates)
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/531Production of immunochemical test materials
    • G01N33/532Production of labelled immunochemicals
    • G01N33/535Production of labelled immunochemicals with enzyme label or co-enzymes, co-factors, enzyme inhibitors or enzyme substrates
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

本发明提供了一种检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒,包括:包被有啶虫脒偶联抗原的酶标板、啶虫脒特异性抗体、酶标记抗抗体、啶虫脒标准品溶液、底物显色液、终止液、洗涤液、复溶液;所述啶虫脒特异性抗体是以啶虫脒偶联抗原作为免疫原制备获得,所述啶虫脒偶联抗原是由啶虫脒半抗原与载体蛋白偶联得到,所述啶虫脒半抗原是由N‑去甲啶虫脒与氨基丁酸反应得到。本发明还公开了一种应用上述试剂盒检测啶虫脒残留量的方法,它包括:首先进行样品前处理,然后用试剂盒进行检测,最后分析检测结果。本发明提供的酶联免疫试剂盒可用于检测烟草中啶虫脒的残留量,其操作简便、费用低廉、灵敏度高、能够现场监控且适合大量样本的筛查。

Description

一种检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒及其应用
技术领域
本发明涉及酶联免疫检测技术,具体涉及一种用于检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒,其特别适于烟草及食品中啶虫脒残留量的检测。
背景技术
新烟碱类农药是继有机磷、氨基甲酸酯和拟除虫菊酯类杀虫剂之后的一类重要杀虫剂,其主要通过选择性控制昆虫中枢神经系统烟碱型乙酰胆碱酯酶受体(nAChRs),从而阻断昆虫中枢神经系统的正常传导,导致害虫出现全身麻痹进而死亡。啶虫脒是新烟碱类杀虫剂的代表性药剂,在农业生产上被广泛用于种子、叶面和土壤中多种害虫的防治,对蚜虫、叶蝉、烟粉虱、潜叶蛾等害虫防治效果较为理想,在烟草上主要用于烟蚜的防治。农药残留控制是产品质量安全控制的重要内容,是政府机构、生产企业及消费者共同关注的重点。啶虫脒近年来使用广泛,检出率高,屡有超限情况发生。为严把质量关,GB 2763-2016《食品安全国家标准 食品中农药最大残留限量》中规定啶虫脒在蔬菜中的最大残留限量(MRL)在0.2~1 mg/kg之间,在水果中的最大残留限量在0.5~2 mg/kg之间,在糙米、小麦、棉籽、茶叶中的最大残留限量分别为0.5、0.5、0.1和10 mg/kg,我国尚未制定烟草中啶虫脒的最大残留限量,国际烟草科学研究合作中心(CORESTA)规定烟草中啶虫脒的指导性残留限量为3mg/kg。因此,为避免啶虫脒残留对人体造成危害以及突破国外贸易壁垒,建立简单、快速、准确、可靠的啶虫脒残留量的检测方法很有必要。
目前,有关啶虫脒残留分析的研究主要集中于气相色谱、液相色谱及气相色谱-质谱联用技术、液相色谱-质谱联用技术。仪器分析方法虽可以实现准确定性定量,但需要复杂昂贵的仪器设备及专业操作人员,加之样品前处理繁琐费时、检测时间长、检测费用高,对于现场检测工作的开展具有局限性。因此,能否提供一种用酶联免疫法测定烟草等样品中啶虫脒残留量的试剂盒,正是本发明的研究重点。
发明内容
本发明的目的正是基于上述现有技术状况,提供一种结构简单、使用方便、价格便宜、便于携带的用于啶虫脒残留量检测的酶联免疫试剂盒,并提供一种高效、准确、简便、适于大批量样本筛选的定性、定量检测方法。
本发明试剂盒,包括:包被有啶虫脒偶联抗原的酶标板、啶虫脒特异性抗体、酶标记抗抗体、啶虫脒标准品溶液、底物显色液、终止液、洗涤液、复溶液;所述啶虫脒特异性抗体是以啶虫脒偶联抗原作为免疫原制备获得;所述啶虫脒偶联抗原是由啶虫脒半抗原与载体蛋白偶联得到,所述啶虫脒半抗原是由N-去甲啶虫脒与氨基丁酸反应得到,其分子结构式为:
所述啶虫脒半抗原的具体制备方法包括以下步骤:
取N-去甲啶虫脒0.50 g,加甲醇50 mL溶解,加氨基丁酸0.30 g,搅拌,加37%甲醛水溶液0.37 mL,搅拌,混匀,80℃反应4 h;停止反应,旋蒸除去甲醇,加水50 mL,加100 mL乙酸乙酯萃取,萃取三次,合并有机相,旋蒸蒸干,上硅胶柱,二氯甲烷/甲醇(V/V,10/1)洗脱分离,得到半抗原产物羧基啶虫脒0.69 g。
所述载体蛋白为牛血清白蛋白、人血清白蛋白、卵清蛋白或血蓝蛋白。
所述啶虫脒特异性抗体为啶虫脒单克隆抗体或啶虫脒多克隆抗体,其中优选啶虫脒单克隆抗体。
所述酶标记抗抗体中的抗抗体为羊抗鼠抗抗体。
所述酶标记抗抗体的标记酶为辣根过氧化物酶或细菌提取碱性磷酸酯酶,其中优选辣根过氧化物酶;酶标记的抗抗体是采用戊二醛法或过碘酸钠法将标记酶与抗抗体进行偶联得到的。
为了更方便现场监控和大量样本筛查,所述试剂盒还包括啶虫脒标准品溶液、底物显色液、终止液、洗涤液、复溶液。
所述啶虫脒标准品溶液6瓶,浓度分别为0 µg/L、1 µg/L、3 µg/L、9 µg/L、27 µg/L、81 µg/L。
当标记酶为辣根过氧化物酶时,所述底物显色液由底物显色液A液和底物显色液B液组成,底物显色液A液为过氧化氢或过氧化脲,底物显色液B液为邻苯二胺或四甲基联苯胺,所述终止液为1~2 mol/L的硫酸或盐酸溶液;当标记酶为细菌提取碱性磷酸酯酶时,所述底物显色液为对硝基磷酸盐缓冲液,所述终止液为1~2 mol/L氢氧化钠溶液。
所述洗涤液优选为pH值为7.4,含有0.05%吐温-20、0.01‰硫柳汞的0.02 mol/L磷酸盐缓冲液。所涉百分比均为质量体积百分比,单位g/ml。
所述复溶液优选为pH值为7.0、0.1 mol/L的磷酸盐缓冲液。
本发明中酶标板的制备过程为:用包被缓冲液将包被原稀释成20 μg/mL,每孔加入100 μL,37℃避光孵育2 h或4℃过夜,倾去孔中液体,用洗涤液洗涤2次,每次30 s,拍干,然后在每孔中加入150~200 μL封闭液,37℃避光孵育1~2 h,倾去孔内液体拍干,干燥后用铝膜真空密封保存。
其中,在酶标板制备过程中所用到的包被缓冲液优选为pH值为9.6的0.05 mol/L碳酸盐缓冲液,封闭液优选为pH值为7.4,含有1%~3%(g/ml)酪蛋白、0.1~0.3 mol/L的磷酸盐缓冲液。
本发明的检测原理为:
在微孔条上预包被啶虫脒偶联抗原,加入样本溶液或标准品溶液后,再加入啶虫脒特异性抗体溶液,样本中的啶虫脒与酶标板上包被的啶虫脒偶联抗原竞争啶虫脒特异性抗体,加入酶标记抗抗体进行放大作用,用底物显色液显色,样本吸光度值与啶虫脒的残留量呈负相关,与标准曲线比较即可得到样本中啶虫脒的残留量;同时根据酶标板上颜色的深浅,与系列浓度的标准品溶液颜色的比较可粗略判断样本中啶虫脒残留量的浓度范围。
本发明还提供了一种应用上述酶联免疫试剂盒检测啶虫脒残留量的方法,它包括步骤:
(1)样本前处理;
(2)用试剂盒进行检测;
(3)分析检测结果。
本发明检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒主要采用间接竞争ELISA方法定性或定量检测样本中啶虫脒的残留量;对样本的前处理要求低,样本前处理过程简单,能同时快速检测大批量样本;主要试剂以工作液的形式提供,检验方法方便易行,检测速度快、检测成本低,非常容易推广。本发明的半抗原具有适当末端活性基团,修饰位点及间隔臂长度选择合适,且能最大程度模拟啶虫脒的分子结构,以此半抗原为基础开发的试剂盒具有特异性高、灵敏度高、精确度高、准确度高等特点。本发明的酶联免疫试剂盒,结构简单、使用方便、价格便宜、携带便利、检测方法高效、准确、简便、适于大批量样品筛选的定性、定量。
附图说明
图1:啶虫脒半抗原合成路线图,
图2:试剂盒标准曲线图(该图在摘要附图)。
具体实施方式
下面结合具体的实施例来进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明,而不用来限制本发明的范围。另外,本领域的技术人员在所附权利要求书限定的范围内可能会对本发明进行各种改动或修饰,这些改动或修饰同样应落入本发明的保护范围。
实施例1 检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒的制备
1、啶虫脒半抗原的合成及鉴定
取N-去甲啶虫脒0.50 g,加甲醇50 mL溶解,加氨基丁酸0.30 g,搅拌,加37%甲醛水溶液0.37 mL,搅拌,混匀,80℃反应4 h;停止反应,旋蒸除去甲醇,加水50 mL,加100 mL乙酸乙酯萃取,萃取三次,合并有机相,旋蒸蒸干,上硅胶柱,二氯甲烷/甲醇(V/V,10/1)洗脱分离,得到半抗原产物羧基啶虫脒0.69 g,收率92.81%。
取上述半抗原经核磁共振氢谱鉴定,1H NMR(CDCl3, 300MHZ)δ:11.0 (1H, -COOH), 8.53 (1H, s, ArH), 7.86 (1H, d, ArH), 7.21 (1H, d, ArH), 4.16 (1H, dd,=CH-), 3.91 (1H, s, -CH2-), 3.21 (2H, d, -CH2-), 2.82 (2H, t, -CH2-), 2.49(2H, t, -CH2-), 2.26 (3H, s, -CH3), 2.0 (1H, s, -NH-)。化学位移δ=11的为间隔臂上羧基氢的共振吸收峰,δ=2.82, 2.49为间隔臂上亚甲基氢的共振吸收峰,这些峰的存在,证明间隔臂偶联成功。
2、啶虫脒偶联抗原的合成及鉴定
免疫原制备——啶虫脒半抗原与牛血清白蛋白(BSA)偶联得到免疫原。
取半抗原羧基啶虫脒11 mg,加二甲基亚砜1 mL溶解,加氯甲酸异丁酯0.18 mL,三乙胺0.1 mL,0~4℃反应1 h,得到半抗原活化液A液;取BSA 50 mg,加0.8%盐水3 mL溶解,得到B液;将A液滴加到B液中,继续搅拌反应5 h,0.02 mol/L PB透析纯化3天,每天换液3次,得到免疫原,分装,-20℃保存。
包被原制备——啶虫脒半抗原与卵清蛋白(OVA)偶联得到包被原。
取半抗原羧基啶虫脒5 mg,加二甲基亚砜1 mL溶解,加二环己基碳二亚胺(DCC)9mg,N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)6 mg,室温反应1 h,得到半抗原活化液A液;取OVA 50 mg,加0.8%盐水3 mL溶解,得到B液;将A液滴加到B液中,继续搅拌反应5 h,0.02 mol/L PB透析纯化3天,每天换液3次,得到包被原,分装,-20℃保存。
按合成啶虫脒偶联抗原反应所用半抗原、载体蛋白与偶联产物的比例,进行紫外(200 nm ~ 400 nm)扫描测定,通过比较三者分别在260 nm和280 nm的吸光值计算其结合比。偶联物啶虫脒半抗原-载体蛋白的最大吸收峰与啶虫脒半抗原、载体蛋白的最大吸收峰相比发生了明显的变化,表明啶虫脒半抗原-载体蛋白的合成是成功的。经计算,半抗原与BSA的结合比为14:1,与OVA的结合比为9:1。
3、啶虫脒单克隆抗体的制备
(1)杂交瘤细胞的获得
1)首次免疫:将啶虫脒半抗原-BSA偶联物(免疫原)与等量的弗氏完全佐剂充分乳化,皮下注射6周龄的Balb/c小鼠,每只0.2 mL;
2)加强免疫两次:从首次免疫开始,每两周加强免疫一次,用弗式不完全佐剂代替弗氏完全佐剂,方法和剂量同首次免疫;
3)最后一次加强免疫一周后眼底静脉采血测效价和抑制,有抑制且效价达到1:10000以上时进行如下末次免疫:腹腔注射不加任何佐剂的免疫原溶液0.1 mL,三天后处死小鼠,取其脾脏与骨髓瘤细胞融合;
4)采用间接竞争酶联免疫分析方法测定细胞上清液,筛选阳性孔。利用有限稀释法对阳性孔进行克隆化,得到并建立稳定分泌啶虫脒单克隆抗体的杂交瘤细胞株,取处于对数生长期的杂交瘤细胞用冻存液制成细胞悬液,分装于冻存管,在液氮中长期保存。
(2)单克隆抗体的制备
1)细胞复苏:取出啶虫脒单克隆抗体杂交瘤细胞株冻存管,立即放入37℃水浴中速融,离心去除冻存液后,移入培养瓶内培养;
2)制备腹水与抗体纯化:采用体内诱生法,将Balb/c小鼠(8周龄)腹腔注入灭菌石蜡油0.5 mL/只,7天后腹腔注射杂交瘤细胞5×105个/只,7天后采集腹水。用辛酸-饱和硫酸铵法进行纯化,得到啶虫脒单克隆抗体溶液(-20℃保存)。
(3)单克隆抗体效价的测定
用间接竞争 ELISA法测定抗体的效价为1:(100000~300000)。
间接竞争ELISA方法:用啶虫脒半抗原-OVA偶联物包被酶标板,加入啶虫脒标准品溶液、啶虫脒单克隆抗体溶液和辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠抗抗体溶液,25℃反应30min,倒出孔内液体,用洗涤液洗涤3~5次,用吸水纸拍干;加入底物显色液,25℃反应15 min后,加入终止液终止反应;设定酶标仪于波长450 nm处测定每孔吸光度值。
(4)单克隆抗体特异性的测定
抗体特异性是指它同特异性抗原结合的能力与同该类抗原类似物结合能力的比较,常用交叉反应率作为评价标准。交叉反应越小,抗体的特异性则越高。
本实验将烟碱类杀虫剂(啶虫脒、吡虫啉、烯啶虫胺、噻虫啉、噻虫嗪、噻虫胺、呋虫胺)做系列稀释,分别与单克隆抗体进行间接竞争ELISA,制作标准曲线,分析得到IC50,然后按下式计算交叉反应率:
结果显示各类似物的交叉反应率为:啶虫脒100%、吡虫啉<1%、烯啶虫胺<1%、噻虫啉<1%、噻虫嗪<1%、噻虫胺<1%、呋虫胺<1%。本发明抗体对吡虫啉、烯啶虫胺、噻虫啉、噻虫嗪、噻虫胺、呋虫胺等其他烟碱类杀虫剂无交叉反应,只针对啶虫脒有特异性结合。
4、羊抗鼠抗抗体的制备
以羊为免疫动物,以鼠源抗体为免疫原免疫无病原体羊,得到羊抗鼠抗抗体。
5、酶标记抗抗体的制备
将羊抗鼠抗抗体与辣根过氧化物酶(HRP)采用改良后的过碘酸钠法进行偶联。传统的过碘酸钠法要求反应体系中酶与抗体的摩尔浓度比为4:1,由于辣根过氧化物酶在强氧化作用下产生许多与抗体结合的位点,这样活化的辣根过氧化物酶分子充当了连接各分子的桥梁,降低了酶标记物的酶活性,使制备的偶联物中混有许多聚合体。为了解决这个问题,我们将传统的方法进行了改良,即:
(1)省去了氨基的封闭过程,因为能产生自身氨基连接的氨基实际很少;
(2)降低辣根过氧化物酶与抗体的摩尔浓度比率至2:1,改良后的方法比传统的方法简便,对酶活性的损失减少。
6、酶标板的制备
用包被缓冲液将包被原(啶虫脒半抗原-OVA偶联物)稀释成20 μg/mL,每孔加入100 μL,37℃避光孵育2 h,倾去孔中液体,用洗涤液洗涤2次,每次30 s,拍干,然后在每孔中加入200 μL封闭液,37℃避光孵育2 h,倾去孔内液体拍干,干燥后用铝膜真空密封保存。
包被缓冲液优选为pH值为9.6的0.05 mol/L碳酸盐缓冲液,封闭液优选为pH值为7.4,含有1%~3%酪蛋白、0.1~0.3 mol/L的磷酸盐缓冲液。
实施例2 检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒的组建
组建检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒,使其包含下述组分:
(1)包被有啶虫脒偶联抗原的酶标板;
(2)啶虫脒标准品溶液,浓度分别为0 µg/L、1 µg/L、3 µg/L、9 µg/L、27 µg/L、81 µg/L;
(3)啶虫脒特异性抗体;
(4)用辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠抗抗体;
(5)底物显色液由底物显色液A液和底物显色液B液组成,底物显色液A液为过氧化脲,底物显色液B液为四甲基联苯胺;
(6)终止液为2 mol/L的硫酸溶液;
(7)洗涤液为pH值为7.4,含有0.05%吐温-20、0.01‰硫柳汞的0.02 mol/L磷酸盐缓冲液;
(8)复溶液为pH值为7.0、0.1 mol/L的磷酸盐缓冲液。
实施例3 烟叶样本中啶虫脒残留量的检测
1、样本前处理
称取1.0g±0.05 g样本至50 mL聚苯乙烯离心管中,加入5 mL甲醇,用匀浆机将其充分打碎;3000 rpm室温(20~25℃)离心5 min;移取25 μL上清至2 mL洁净干燥聚苯乙烯离心管中,加入475 μL复溶液,用涡旋仪涡动混匀,取50 μL用于分析。
2、用试剂盒检测
将啶虫脒特异性抗体与辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠抗抗体以1:10的体积比混合;向包被有啶虫脒偶联抗原的酶标板微孔中加入啶虫脒标准品溶液或经前处理的样本溶液50μL/孔,然后加入啶虫脒特异性抗体与辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠抗抗体的混合液50 μL/孔,轻轻振荡混匀,用盖板膜盖板后置25℃避光环境中反应30 min;倒出孔内液体,每孔加入250 μL洗涤液充分洗涤4~5次,每次间隔10 s,用吸水纸拍干;每孔加入底物显色液A液过氧化脲50 μL,底物显色液B液四甲基联苯胺50 μL,轻轻振荡混匀,用盖板膜盖板后置25℃避光环境中显色15 min,每孔加入终止液2 mol/L硫酸50 μL,轻轻振荡混匀,用酶标仪波长设定在450 nm处,测定每孔吸光度值(OD值)。
3、检测结果分析
用所获得的每个浓度的标准品溶液的吸光度平均值(B)除以第一个标准品溶液(0标准)的吸光度值(B0)再乘以100%,得到百分吸光度值。以啶虫脒标准品浓度(μg/L)的对数值为X轴,百分吸光度值为Y轴,绘制标准曲线,如图2所示。用同样的办法计算样本溶液的百分吸光度值,相对应每一个样本的啶虫脒残留量则可从标准曲线上读出。
实施例4 啶虫脒酶联免疫试剂盒技术参数的确定试验
1、试剂盒灵敏度和检测限
按照常规方法测定试剂盒灵敏度,试剂盒标准曲线最低点为1 μg/L,标准曲线的范围为1~81 μg/L,IC50(50%抑制浓度)浮动范围为2.8~4.1 μg/L;对空白烟叶样本20份进行检测,从标准曲线上查出对应于各百分吸光度值的浓度,以20份样本浓度的平均值加上3倍标准差表示检测限,结果得该方法对烟叶样本的检测限为0.1 μg/g。
2、样本精密度和准确度试验
以回收率作为准确度评价指标,以重复测定某一浓度样本的检测结果相对标准偏差(RSD%)作为精密度评价指标。计算公式为:回收率(%)= 实际测定值/理论值×100%,其中理论值为样本的添加浓度;相对标准偏差RSD% = SD/X×100%,其中SD为标准偏差,X为测定数据的平均值。
按0.1 μg/g、0.2 μg/g、0.4 μg/g三个浓度啶虫脒对空白烟叶样本进行添加回收测定,每个样本做4个平行,用三批不同试剂盒进行测定,计算样本的平均回收率及精密度,结果见下表。
表1 精密度及准确度试验
以0.1、0.2、0.4 µg/g三个浓度的啶虫脒对空白烟叶样本进行添加,平均回收率在70%~110%之间;批内、批间相对标准偏差均小于15%。
3、试剂盒稳定性试验
试剂盒保存条件为2~8℃,经过12个月的测定,试剂盒的最大吸光度值(零标准)、50%抑制浓度、啶虫脒添加实际测定值均在正常范围之内。考虑在运输和使用过程中,会有非正常保存条件出现,将试剂盒在37℃保存条件下放置7天,进行加速老化实验,结果表明该试剂盒各项指标完全符合要求。考虑到试剂盒冷冻情况发生,将试剂盒放入-20℃冰箱冷冻7天,测定结果也表明试剂盒各项指标完全正常。从以上结果可得出试剂盒可以在2~8℃至少保存12个月以上。

Claims (10)

1.一种检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒,包括:包被有啶虫脒偶联抗原的酶标板、啶虫脒特异性抗体、酶标记抗抗体、啶虫脒标准品溶液、底物显色液、终止液、洗涤液、复溶液,其特征在于:所述啶虫脒特异性抗体是以啶虫脒偶联抗原作为免疫原制备获得;所述啶虫脒偶联抗原是由啶虫脒半抗原与载体蛋白偶联得到,所述啶虫脒半抗原是由N-去甲啶虫脒与氨基丁酸反应得到,其分子结构式为:
2.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述啶虫脒半抗原的制备反应过程如下:
3.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述载体蛋白为牛血清白蛋白、人血清白蛋白、卵清蛋白或血蓝蛋白。
4.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述啶虫脒特异性抗体为啶虫脒单克隆抗体或啶虫脒多克隆抗体,其中优选啶虫脒单克隆抗体。
5.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述酶标记抗抗体中的抗抗体为羊抗鼠抗抗体。
6.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述酶标记抗抗体的标记酶为辣根过氧化物酶或细菌提取碱性磷酸酯酶,其中优选辣根过氧化物酶。
7.如权利要求1或6所述的试剂盒,其特征在于:当所述标记酶为辣根过氧化物酶时,所述底物显色液由底物显色液A液和底物显色液B液组成,底物显色液A液为过氧化氢或过氧化脲,底物显色液B液为邻苯二胺或四甲基联苯胺,所述终止液为1~2 mol/L的硫酸或盐酸溶液;当所述标记酶为细菌提取碱性磷酸酯酶时,所述底物显色液为对硝基磷酸盐缓冲液,所述终止液为1~2 mol/L氢氧化钠溶液。
8.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述洗涤液优选为pH值为7.4,含有0.05%吐温-20、0.01‰硫柳汞的0.02 mol/L磷酸盐缓冲液;所述复溶液优选为pH值为7.0、0.1mol/L的磷酸盐缓冲液。
9.如权利要求1所述的试剂盒,其特征在于:所述啶虫脒标准品溶液的浓度分别为0 µg/L、1 µg/L、3 µg/L、9 µg/L、27 µg/L、81 µg/L。
10.一种应用权利要求1-9任一所述试剂盒检测啶虫脒残留量的方法,其特征在于:包括以下步骤:
(1)样品前处理;
(2)用试剂盒进行检测;
(3)分析检测结果。
CN201811104470.7A 2018-09-21 2018-09-21 一种检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒及其应用 Active CN109061169B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201811104470.7A CN109061169B (zh) 2018-09-21 2018-09-21 一种检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201811104470.7A CN109061169B (zh) 2018-09-21 2018-09-21 一种检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒及其应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN109061169A true CN109061169A (zh) 2018-12-21
CN109061169B CN109061169B (zh) 2021-07-23

Family

ID=64762346

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201811104470.7A Active CN109061169B (zh) 2018-09-21 2018-09-21 一种检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN109061169B (zh)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109917127A (zh) * 2019-03-18 2019-06-21 辽宁大学 一种杀虫脒检测试剂盒及其应用
CN110133306A (zh) * 2019-05-09 2019-08-16 北京勤邦生物技术有限公司 检测西马特罗的酶联免疫试剂盒及其应用
CN111533744A (zh) * 2020-05-14 2020-08-14 德州学院 一种非病毒载体、制备方法及其应用
CN112595850A (zh) * 2020-11-18 2021-04-02 北京勤邦生物技术有限公司 一种噻虫胺人工抗原在酶联免疫试剂盒中的应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1413463A (zh) * 2002-09-29 2003-04-30 天津大学 一种啶虫脒的生产方法
JP2006282547A (ja) * 2005-03-31 2006-10-19 Horiba Ltd ニテンピラムのハプテン化合物、抗体、ハイブリドーマ、およびその測定手段、測定用キットまたは測定方法
CN105158461A (zh) * 2015-09-22 2015-12-16 浙江大学 适用于茶叶中啶虫脒残留的速测方法及相应的试纸条

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1413463A (zh) * 2002-09-29 2003-04-30 天津大学 一种啶虫脒的生产方法
JP2006282547A (ja) * 2005-03-31 2006-10-19 Horiba Ltd ニテンピラムのハプテン化合物、抗体、ハイブリドーマ、およびその測定手段、測定用キットまたは測定方法
CN105158461A (zh) * 2015-09-22 2015-12-16 浙江大学 适用于茶叶中啶虫脒残留的速测方法及相应的试纸条

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MOVRIN MARIJA ET AL.: "1,3-Benzoxazine-2,4-dione and 1,4-benzoxazine-2,3-dione derivatives, as biologically active compounds", 《ACTA PHARMACEUTICA JUGOSLAVICA》 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109917127A (zh) * 2019-03-18 2019-06-21 辽宁大学 一种杀虫脒检测试剂盒及其应用
CN109917127B (zh) * 2019-03-18 2023-04-28 辽宁惠康检测评价技术有限公司 一种杀虫脒检测试剂盒及其应用
CN110133306A (zh) * 2019-05-09 2019-08-16 北京勤邦生物技术有限公司 检测西马特罗的酶联免疫试剂盒及其应用
CN110133306B (zh) * 2019-05-09 2023-04-07 北京勤邦生物技术有限公司 检测西马特罗的酶联免疫试剂盒及其应用
CN111533744A (zh) * 2020-05-14 2020-08-14 德州学院 一种非病毒载体、制备方法及其应用
CN111533744B (zh) * 2020-05-14 2022-10-04 德州学院 一种非病毒载体、制备方法及其应用
CN112595850A (zh) * 2020-11-18 2021-04-02 北京勤邦生物技术有限公司 一种噻虫胺人工抗原在酶联免疫试剂盒中的应用

Also Published As

Publication number Publication date
CN109061169B (zh) 2021-07-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN109061169A (zh) 一种检测啶虫脒的酶联免疫试剂盒及其应用
AU2007257105B2 (en) Elisa kit for detecting Sudan red and method thereof
JP4980536B2 (ja) ネオニコチン殺虫剤のイムノアッセイ
CN105388281B (zh) 检测异菌脲的酶联免疫试剂盒及其应用
CN106771137B (zh) 检测尼卡巴嗪的酶联免疫试剂盒及其应用
CN105807055B (zh) 一种检测二氯喹啉酸的试纸条及其制备方法和应用
CN106324240B (zh) 检测毒死蜱的酶联免疫试剂盒及其应用
CN109061146B (zh) 一种检测啶虫脒的试纸条及其制备方法和应用
CN105572348B (zh) 检测三唑醇的酶联免疫试剂盒及其应用
CN109324182A (zh) 一种检测二甲戊灵的荧光微球免疫层析试纸条及其制备方法和应用
CN105675858B (zh) 检测二氯喹啉酸的酶联免疫试剂盒及其应用
CN108205060A (zh) 检测烯酰吗啉的酶联免疫试剂盒及其应用
CN110133306A (zh) 检测西马特罗的酶联免疫试剂盒及其应用
CN109061158A (zh) 一种检测啶虫脒的时间分辨荧光免疫层析试纸条及其制备方法和应用
CN109061171A (zh) 一种检测氟节胺的酶联免疫试剂盒及其应用
CN109061149A (zh) 一种检测仲丁灵的时间分辨荧光免疫层析试纸条及其制备方法和应用
CN109061156A (zh) 一种检测二甲戊灵的时间分辨荧光免疫层析试纸条及其制备方法和应用
CN105823872B (zh) 检测抑芽丹的酶联免疫试剂盒及其应用
CN107228939B (zh) 检测吗啡及可待因的酶联免疫试剂盒及其应用
CN109061157A (zh) 一种检测氟节胺的时间分辨荧光免疫层析试纸条及其制备方法和应用
CN111443202B (zh) 一种检测抗凝血杀鼠剂的酶联免疫试剂盒及其制备和应用
CN108051583A (zh) 一种氯唑磷半抗原制备方法及其应用
CN109324187B (zh) 一种检测甲霜灵的酶联免疫试剂盒及其应用
CN109061153A (zh) 一种检测异菌脲的时间分辨荧光免疫层析试纸条及其制备方法和应用
CN109541216A (zh) 检测伊维菌素和阿维菌素的酶联免疫试剂盒及其应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant