CN111533744B - 一种非病毒载体、制备方法及其应用 - Google Patents

一种非病毒载体、制备方法及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种非病毒载体,所述非病毒载体结构如式Ⅰ所示,所述式Ⅰ中,R1和R2均独立地选自下述任意一种:C6~C20的直链或支链烷基;R3和R4均独立地选自下述任意一种:叠氮基1,5,9‑三氮杂环十二烷基、葡萄糖、季铵盐。上述非病毒载体可在780nm的激光的照射下产生单线态氧,且产生热量使温度升至大约45℃;该载体可以在激光的刺激下,释放DNA,快速发生内含体逃逸,从而提高非病毒载体的转染率;同时,基于该非病毒载体运载基因的药物可实现基因、光动力学、光热的协同治疗,能够成功抑制了肿瘤的增长,因此该载体在癌症多模态治疗方面具有较大的应用潜力。

Description

一种非病毒载体、制备方法及其应用
技术领域
本发明属于基因疗法药物技术领域,具体涉及一种非病毒载体、制备方法及其应用。
背景技术
恶性肿瘤,是威胁人类健康与生命的重大疾病之一。针对恶性肿瘤,一些单一的疗法已在临床中使用或仍在初步临床研究中,包括化学疗法、放射疗法(Radiation Therapy,RT)、基因疗法(Gene Therapy,GT)、光热疗法(Photothermal Therapy,PTT)、光动力疗法(Photodynamic Therapy,PDT)、磁热疗法(Magnetic Heat Therapy,MHT)、免疫疗法(Immunotherapy)以及其他非主流疗法。然而,在许多实验程序中,单一治疗方法不能消除整个肿瘤,并且在预防癌症转移和复发方面无效。因此,科学家们希望通过利用协同疗法来实现更优异的治疗效果,克服多药耐药性(Multidrug Resistance,MDR)和癌细胞基因突变等缺点。
基因疗法是指将外源正常基因/药物通过载体导入靶细胞,以纠正或补偿缺陷和异常基因引起的疾病,以达到治疗目的,其成功的关键在于载体的高效和安全性。目前,应用于基因疗法的载体包括病毒载体和非病毒载体两大类。病毒载体可以高效率地进入特定的细胞类型,复制所携带DNA并表达自身蛋白产生新的病毒粒子,但病毒载体存在免疫原性(Immunogenicity)和病毒性重组(Viral Recombination)等安全性问题,此外还存在自身容量有限、制备滴度不高的缺陷。非病毒载体是利用非病毒载体材料的物化性质来介导基因的转移,其主要基于阳离子单元通过静电作用与阴离子核酸连接,与病毒载体相比,具有无传染性、不限制载体容量、材料来源广泛、化学结构可控以及可大量制备等优点。但是,由于细胞内部和外部的各种障碍,现有的非病毒载体的转染率低,目的基因只能实现瞬间表达,因此具有高转染效率的非病毒基因载体的研发仍然具有挑战性。
发明内容
本发明针对传统的非病毒载体转染率低的技术问题,提供一种非病毒载体、制备方法及其应用。
本发明提供的一种非病毒载体,所述非病毒载体结构如式Ⅰ所示:
Figure GDA0003798594310000021
所述式Ⅰ中,R1和R2均独立地选自下述任意一种:C6~C20的直链或支链烷基、C6~C20的直链或支链烯基、芳基;R3和R4均独立地选自下述任意一种:3-[3-(1,5,9-三氮杂环十二烷-1-基)丙基]-1,2,3-三氮杂环戊熳-4-基、葡萄糖、季铵盐。
在其中的一个实施例中,所述非病毒载体在激光刺激下产生单线态氧及光热。
在其中的一个实施例中,所述非病毒载体的结构如式Ⅱ所示:
Figure GDA0003798594310000031
所述式Ⅱ中,R1和R2均独立地选自下述任意一种:C6~C20的直链或支链烷基、C6~C20的直链或支链烯基、芳基。
在其中的一个实施例中,所述非病毒载体的结构如式Ⅲ所示:
Figure GDA0003798594310000032
所述式Ⅲ中,R1和R2均为辛烷基;R3和R4均为3-[3-(1,5,9-三氮杂环十二烷-1-基)丙基]-1,2,3-三氮杂环戊熳-4-基。
本发明还提供了一种如上所述的非病毒载体的制备方法,所述制备方法包括以下步骤:
Figure GDA0003798594310000041
Figure GDA0003798594310000051
第一步,将式Ⅳ所示化合物、CuI、PdCl2(PPh3)2、三甲基硅乙炔进行反应,得到式Ⅴ所示化合物;
第二步,在惰性气氛中,将式Ⅴ所示化合物、碳酸钾进行反应,得到式Ⅵ所示化合物;
第三步,将式Ⅵ所示化合物、式Ⅶ所示9-(3-叠氮丙基)-1,5,9-三氮杂环十二烷-1,5-二羧酸二叔丁酯、CuBr(PPh3)4进行反应,得到式Ⅷ所示化合物;
第四步,将式Ⅷ所示化合物、盐酸、乙酸乙酯进行反应,得到式Ⅰ所示化合物。
在其中的一个实施例中,所述3-[3-(1,5,9-三氮杂环十二烷-1-基)丙基]-1,2,3-三氮杂环戊熳-4-基具有Boc酸酐保护。
在其中的一个实施例中,所述第一步为在冰水浴中,将式Ⅳ所示化合物、CuI、PdCl2(PPh3)2、二氯甲烷、三乙胺混合20min~40min后,加入三甲基硅乙炔继续混合20min~40min后,转至室温条件下继续混合20min~40min后,于50℃~60条件下反应搅拌反应20.0h~28.0h,反应产物经柱层色谱分离纯化得到式Ⅴ所示化合物;
所述第二步为将式Ⅴ所示化合物溶解到含有二氯甲烷以及甲醇的混合溶剂中,与碳酸钾在室温条件下搅拌反应10.0h~14.0h,反应产物经柱层色谱分离纯化得到式Ⅵ所示化合物;
所述第三步为将式Ⅵ所示化合物、式Ⅶ所示9-(3-叠氮丙基)-1,5,9-三氮杂环十二烷-1,5-二羧酸二叔丁酯、CuBr(PPh3)4以及二氯甲烷混合,于40.0℃~60.0℃条件下回流反应20.0h~28.0h,反应产物经柱层色谱分离纯化得到式Ⅷ所示化合物;
所述第四步为将式Ⅷ所示化合物、盐酸、乙酸乙酯混合,于室温条件下搅拌反应1.0h~3.0h,反应产物经抽滤、洗涤得到式Ⅰ所示化合物。
本发明还提供了一种上述的非病毒载体的应用,其特征在于,所述非病毒载体用于运载药物或基因。
在其中的一个实施例中,所述非病毒载体用于运载p53基因。
本发明还提供了一种用于治疗癌症的药物所述用于治疗癌症的药物包括如上所述的非病毒载体以及所述非病毒载体运载的基因或药物。
上述非病毒载体可在780nm的激光的照射下产生单线态氧,且产生热量使温度升至大约45℃;该载体可以在激光的刺激下,释放DNA,快速发生内含体逃逸,从而提高非病毒载体的转染率;同时,基于该非病毒载体运载基因的药物可实现基因、光动力学、光热的协同治疗,能够成功抑制了肿瘤的增长,因此该载体在癌症多模态治疗方面具有较大的应用潜力。
进一步地,上述非病毒载体还可通过荧光共聚焦显微镜技术追踪该非病毒载体的基因递送和释放过程。
上述非病毒载体的制备方法中,以含噻吩基团的吡咯并吡咯二酮衍生物为初原料,通过铜(I)催化的“click”反应将带正电的3-[3-(1,5,9-三氮杂环十二烷-1-基)丙基]-1,2,3-三氮杂环戊熳-4-基引入到骨架中合成具有光响应的非病毒载体。从而使制备的非病毒载体不仅能够运载基因或药物,而且其含有的噻吩基团具有光学活性,可在780nm的激光的照射下产生单线态氧,且产生热量使温度升至大约45℃;该载体可以在激光的刺激下,释放DNA,快速发生内含体逃逸,从而提高非病毒载体的转染率;同时,基于该非病毒载体运载基因的药物可实现基因、光动力学、光热的协同治疗,能够成功抑制了肿瘤的增长。
附图说明
图1为本发明非病毒载体的制备方法流程示意图;
图2为1-2凝胶电泳实验的电泳结果照片;
图3为1-3单线态氧检测荧光强度曲线图;
图4为1-3单线态氧检测非病毒载体的单线态氧量子产率曲线图;
图5为1-4光热检测结果曲线图;
图6为1-5细胞毒性实验细胞存活率率柱形图;
图7为1-6基因递送变化照片;
图8为1-7在Hela中的绿色荧光蛋白表达共聚焦显影图;
图9为1-7在Hela中的绿色荧光蛋白表达柱形图;
图10为1-7在Hela中的荧光素酶的表达柱形图;
图11为1-8肿瘤抑制对比实验小鼠体重变化曲线图;
图12为1-8肿瘤抑制对比实验小鼠肿瘤体积变化曲线图;
图13为1-8肿瘤抑制对比实验小鼠肿瘤体积变化趋势照片。
具体实施方式
为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合具体实施方式对本发明进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施方式仅仅用以解释本发明,但并不用于限定本发明。
为了清楚说明本发明非病毒载体制备方法各步骤化合物的结构变化,请参阅表1所示,对比了非病毒载体各步骤化合物的结构变化。
表1非病毒载体制备方法各步骤化合物结构式对比表
Figure GDA0003798594310000081
Figure GDA0003798594310000091
请参阅表1和附图1所示,为本发明一实施例的非病毒载体的制备方法包括以下步骤:
第一步,将式Ⅳ所示化合物、CuI、PdCl2(PPh3)2、三甲基硅乙炔进行反应,得到式Ⅴ所示化合物;
第二步,在惰性气氛中,将式Ⅴ所示化合物、碳酸钾进行反应,得到式Ⅵ所示化合物;
第三步,将式Ⅵ所示化合物、式Ⅶ所示9-(3-叠氮丙基)-1,5,9-三氮杂环十二烷-1,5-二羧酸二叔丁酯、溴化亚铜进行反应,得到式Ⅷ所示化合物;
第四步,将式Ⅷ所示化合物、盐酸、乙酸乙酯进行反应,得到式Ⅰ所示化合物。
其中,可选的,第一步为在冰水浴中,将式Ⅳ所示化合物、CuI、PdCl2(PPh3)2、二氯甲烷、三乙胺混合20min~40min后,加入三甲基硅乙炔继续混合20min~40min后,转至室温条件下继续混合20min~40min后,于50℃~60条件下反应搅拌反应20.0h~28.0h,反应产物经柱层色谱分离纯化得到式Ⅴ所示化合物。
第二步为将式Ⅴ所示化合物溶解到含有二氯甲烷以及甲醇的混合溶剂中,与碳酸钾在室温条件下搅拌反应10.0h~14.0h,反应产物经柱层色谱分离纯化得到式Ⅵ所示化合物。
第三步为将式Ⅵ所示化合物、式Ⅶ所示9-(3-叠氮丙基)-1,5,9-三氮杂环十二烷-1,5-二羧酸二叔丁酯、CuBr(PPh3)4以及二氯甲烷混合,于40.0℃~60.0℃条件下回流反应20.0h~28.0h,反应产物经柱层色谱分离纯化得到式Ⅷ所示化合物。
第四步为将式Ⅷ所示化合物、盐酸、乙酸乙酯混合,于室温条件下搅拌反应1.0h~3.0h,反应产物经抽滤、洗涤得到式Ⅰ所示化合物。
上述非病毒载体的制备方法中,以含噻吩基团的吡咯并吡咯二酮衍生物为初原料,通过铜(I)催化的“click”反应将带正电的3-[3-(1,5,9-三氮杂环十二烷-1-基)丙基]-1,2,3-三氮杂环戊熳-4-基引入到骨架中合成具有光响应的非病毒载体。从而使制备的非病毒载体不仅能够运载基因或药物,而且其含有的噻吩基团具有光学活性,可在780nm的激光的照射下产生单线态氧,且产生热量使温度升至大约45℃;该载体可以在激光的刺激下,释放DNA,快速发生内含体逃逸,从而提高非病毒载体的转染率;同时,基于该非病毒载体运载基因的药物可实现基因、光动力学、光热的协同治疗,能够成功抑制了肿瘤的增长。
进一步地,制备的非病毒载体还可通过荧光共聚焦显微镜技术追踪该非病毒载体的基因递送和释放过程。
实施例1
1-1、式Ⅱ所示非病毒载体的制备
第一步,式Ⅴ所示化合物的合成:冰水浴下,将式Ⅳ所示化合物(164.1mg,0.24mmol),CuI(4.04mg,5mol%),PdCl2(PPh3)2(14.9mg,5mol%)加入到100mL的双口瓶中,向双口瓶中注射进二氯甲烷(10mL)和三乙胺(10mL),0℃条件下搅拌30min后,加入三甲基硅乙炔(TMSA,0.35mL,2.5mmol)继续在0℃条件下搅拌30min,转至室温条件下搅拌30min后,于55℃条件下继续搅拌反应24h。冷却至室温,蒸出溶剂后,柱层色谱分离(展开剂:PE/CH2Cl2=3:1,v/v),得300mg紫色固体,为式Ⅴ所示化合物。
第二步,式Ⅵ所示化合物的合成:N2保护下,将式Ⅴ所示化合物(300mg)的溶解到二氯甲烷(20mL)和甲醇(20mL)组成的混合溶液中,加入K2CO3(100.1mg,0.72mmol),于室温条件下搅拌过夜,柱层色谱分离(展开剂:PE/CH2Cl2=3:1,v/v),得266.2mg紫色固体,为式Ⅵ所示化合物,其产率为50%。
1H NMR(400MHz,CDCl3)1H NMR(400MHz,CDCl3)δ8.86(d,J=4.1Hz,2H),7.38(d,J=4.1Hz,2H),4.12–3.94(m,4H),3.59(s,2H),1.25(s,24H),0.86(s,6H)。
第三步,式Ⅷ所示化合物的合成:
将式Ⅵ所示化合物(57mg,0.1mmol),式Ⅶ所示化合物9-(3-叠氮丙基)-1,5,9-三氮杂环十二烷-1,5-二羧酸二叔丁酯(101mg,0.22mmol),溶解在40mL DCM中,加入CuBr(PPh3)4(60mg,0.06mmol),于50℃回流搅拌24h,蒸出溶剂DCM,柱层色谱分离(展开剂:DCM/MeOH=100/1,30/1,20/1,v/v),得到油状物,少量乙醚溶解后,加入5mL环己烷,得到62mg紫色固体,为式Ⅷ所示化合物,其产率42%。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ8.99(s,2H),7.84(s,2H),7.47(dd,J=3.9,2.4Hz,2H),4.43(s,4H),4.12(t,J=7.4Hz,4H),3.42–3.27(m,16H),2.45(s,10H),2.09(s,4H),1.80(dd,J=33.9,6.5Hz,16H),1.44(s,36H),1.41(d,J=0.8Hz,4H),1.24(s,18H),0.84(s,6H).13C NMR(100MHz,CDCl3)δ161.37,156.38,141.99,139.60,138.43,136.38,129.04,125.29,120.23,108.23,79.53,50.61,49.83,48.81,45.06,44.19,42.37,31.85,30.19,29.34,29.25,28.56,28.52,28.51,27.15,26.99,26.98,26.97,26.96,26.47,22.69,22.67,14.16.HRMS-ESI:m/zcalcd.[M+2H]2+for C78H126N14O10S2 2+,741.4611;found,741.4610。
第四步,式Ⅲ所示化合物非病毒载体的合成:
将式Ⅷ所示化合物(60mg)溶解于EA/HCl(5mL),于室温下搅拌反应2h,减压抽滤,得到40mg的紫色固体,为式Ⅲ所示化合物,记为化合物4-2,其产率91%。其表征如下:
1H NMR(600MHz,CDCl3)δ9.00(d,J=3.8Hz,2H),8.03(s,2H),7.48(s,2H),4.50(s,4H),4.11(d,J=7.0Hz,4H),2.77(d,J=38.8Hz,16H),2.54(d,J=4.9Hz,10H),2.15(d,J=6.9Hz,4H),1.64(s,20H),1.42(s,4H),1.24(s,18H),0.83(s,6H).13C NMR(101MHz,CDCl3)δ161.41,142.04,141.76,139.65,138.63,136.53,136.41,129.02,128.90,125.50,125.31,121.12,121.10,108.20,54.19,49.56,49.16,48.89,48.78,47.93,42.37,31.87,30.22,29.55,29.37,29.26,27.08,27.00,26.89,26.84,25.15,22.70,14.17.HRMS-ESI:m/zcalcd.[M+H]+for C58H93N14O2S2 +,1081.7047;found,1081.7036。
此外,本发明还采用同样的方法得到了式Ⅱ所示化合物的R1,R2均为6个碳和均12个碳的目标分子,分别记为化合物4-1和化合物4-3其表征分别如下:
1H NMR(600MHz,CDCl3)δ8.99(s,2H),8.23(s,1H),7.54(s,2H),7.47(s,2H),4.50(s,4H),4.12(s,4H),2.95(s,8H),2.84(s,8H),2.59(d,J=5.8Hz,8H),2.21(s,4H),1.89(s,2H),1.77(s,11H),1.57(s,8H),1.44(s,4H),1.31–1.28(m,10H),0.87(s,6H).13C NMR(125MHz,CDCl3)δ161.32,141.84,139.56,138.54,136.42,128.86,125.24,120.64,108.11,53.80,49.65,49.32,48.85,47.62,42.31,31.48,30.09,29.70,26.60,26.07,22.56,14.06.HRMS-ESI:m/z calcd.[M+H]+for C54H85N14O2S2 +,1025.6421;found,1025.6429。
1H NMR(600MHz,CDCl3)δ9.01(s,2H),8.01(s,2H),7.47(s,2H),4.50(s,4H),4.14(s,4H),2.79(s,8H),2.73(s,8H),2.54(s,8H),2.46(s,4H),2.16(s,4H),2.00(d,J=5.9Hz,2H),1.77(s,4H),1.63(s,12H),1.43(s,4H),1.33(s,6H),1.23(s,28H),0.84(s,6H).13C NMR(151MHz,CDCl3)δ161.44,141.96,139.68,138.61,136.48,129.99,129.96,128.97,125.34,120.69,108.25,53.91,49.50,48.90,47.81,42.40,31.98,30.24,29.85,29.76,29.68,29.62,29.41,27.30,27.03,26.07,22.75,14.18.HRMS-ESI:m/z calcd.[M+H]+for C66H108N14O2S2 +,1193.8299;found,1193.8298。
1-2、凝胶电泳实验
采用琼脂糖凝胶电泳法检测式Ⅱ所示化合物的非病毒载体下对质粒DNA(pUC-18)的凝集能力,将不同浓度的式Ⅱ所示化合物(5,10,20,30,40,50μM)与10μg/mL pUC-18混合后,在37℃水浴下孵育30min,在1×TAE电泳缓冲液中电压150V,电流80mA,电泳30min。然后在Vilber Lourmat显像系统的紫外灯下照射,请参阅附图2所示,当式Ⅱ所示化合物R1、R2为辛烷基(化合物4-2)和12烷基(化合物4-3)时在30μM完全凝聚DNA,当式Ⅱ所示化合物R1、R2为己烷基(化合物4-1)时在40μM完全凝聚DNA,说明随着烷基链的延长对载体对DNA的凝聚能力增强。
1-3、单线态氧检测实验
1,3-联苯基异香豆酮(1,3-Diphenylisobenzofuran,DPBF)是一种检测单线态氧的荧光探针,它在428nm的光激发下,在479nm处产生蓝色荧光,DPBF会和1O2反应生成其氧化物,从而破坏了DPBF的共轭结构,所以,通过研究DPBF吸收光谱或荧光光谱的变化证明单线态氧的产生。将浓度为1×10-5mol/L DPBF与载体按浓度为1:1混合,用780nm的激光照射一定时间后测试其吸收光谱,观察DPBF在410nm处的吸光度变化。请参与图3所示,光敏分子存在时,在激光的照射下,DPBF 400nm处吸收峰随着照射时间的延长逐渐减弱,说明载体可以产生单线态氧。
利用DPBF为检测标准,测定分子产生单线态氧的量子产率,利用亚甲基蓝作为参比,将DPBF分别与参比和待测物混合后,测试DPEF在479nm处的荧光发射强度变化,按以下公式计算单线态氧的量子产率。
K=(-Δ[DPBF])/t=(Io-It)/t=I_inΦ_abΦ_ΔΦ_r (1)
其中Φab为光敏剂的吸光效率,Φr为DPBF的反应效率,ΦΔ为待测化合物的反应效率,Iin,Io,It为入射单色光强度,所以,K/Ks=Φ/Φs,其中K,Ks为式Ⅱ所示非病毒载体与参比的斜率。请参阅图4所示,经过计算可知化合物4-1、4-2以及4-4的单线态氧量子产率分别为0.37,0.38,0.43。
1-4、光热检测实验
请参阅附图5所示,利用红外热成像仪观察浓度为40mg/mL的式Ⅱ所示非病毒载体,在780nm功率以1W/cm2的激光照射不同时间的温度变化。结果表明随着照射时间的延长,激光功率的增大,随着载体烷基链的增长,温度逐渐升高,温度可以达到45℃。
1-5、细胞毒性实验
在开始细胞试验之前,我们首先研究了式Ⅱ所示非病毒载体的细胞毒性,由于式Ⅱ所示非病毒载体为光敏分子,低暗细胞毒性和高光细胞毒性是光敏分子在光动力学治疗中的应用的关键。首先,我们测试式Ⅱ所示非病毒载体在避光下的细胞毒性,如图6所示,在浓度为0–50μM范围内,24h后细胞得存活率均在80%以上,说明载体的生物相容性较好。
1-6、基因递送实验
利用激光共聚焦显微镜技术,将式Ⅱ所示非病毒载体与FITC标记的DNA混合,与细胞共孵育,追踪载体1/DNA在激光照射下,DNA进入细胞的情况。
请参阅图7所示,首先,我们用式Ⅱ所示非病毒载体与FITC标记的DNA形成的复合物与Hela细胞孵育4h后,与溶酶体的商业染料Lyso Tracker Blue共定位,观察到复合物目前进入到溶酶体中;在激光照射2min后,式Ⅱ所示非病毒载体与溶酶体重合说明载体携带绿色荧光标记的核酸进入溶酶体,绿色的荧光点说明部分DNA在溶酶体释放,并进入细胞核;激光照射5min后,大量的DNA进入到细胞核中;在细胞培养液中加入1mM的Vc,DNA没有进入细胞核,说明单线态氧被Vc消耗掉后,其作用也被消除。外加喹啉后,不同实验组刺激后的细胞显影图。结果表明在激光的照射下溶酶体膜被破坏后,溶酶体被破坏,DNA能够更好地释放,从而进入细胞核中,该实验说明单线态可以促进核酸的释放。
1-7、基因表达实验
请参阅图8所示,其中A1-A5,B1-B5,C1-C5:4-1,4-2,4-3在Hela中的绿色荧光蛋白表达共聚焦显影图,浓度依次为10μM,20μM,30μM,40μM,50μM;D1:Lipofectamine 2000(10μM)在Hela中的绿色荧光蛋白表达共聚焦显影图;[DNA]=10μg/mL。请参阅图9所示,为化合物4-1,4-2,4-3,Lipofectamine2000在Hela中的绿色荧光蛋白表达的具体数值。请参阅图10所示,为浓度为10-50μM的4-1,4-2,4-3,10μM的Lipofectamine 2000在Hela中的荧光素酶的表达情况[pGL-3DNA]=10μg/mL。
选用绿色荧光蛋白和荧光素酶报告基因来研究三个复合物在Hela细胞中的转染效率。通过激光共聚焦试验测试了三个化合物浓度从10到50μM的三个化合物对绿色荧光蛋白基因的表达情况。在不避光的条件下,化合物在8h后完成了绿色荧光蛋白的表达,随着化合物浓度的增加,绿色荧光蛋白的表达先增大后降低。最佳的转染浓度均为20μM,转染效率均高于Lipofectamine 2000。化合物对荧光素酶的表达实验结果表明化合物4-2在浓度20μM,转染效率高于Lipofectamine 2000。
1-8、肿瘤抑制实验
通过构建小鼠肿瘤模型,待荷瘤鼠的肿瘤体积长到50mm3,分别通过瘤内注射的方式注射50μL PBS(第一组),式Ⅲ所示非病毒载体(第二组),式Ⅲ所示非病毒载体/p53(第三组),式Ⅲ所示非病毒载体/p53(第四组),其中第二组、第四组需要在注射2h后激光照射10min,每隔一天注射一次,持续15天。在整个治疗周期里,注射前称量小鼠的体重,并测量小鼠肿瘤的体积,肿瘤体积的测量公式为:瘤块长直径*瘤块短直径2/2。
实验结果如图11-13所示:式Ⅲ所示非病毒载体加激光照射组(第二组),式Ⅲ所示非病毒载体/p53组(第三组),式Ⅲ所示非病毒载体/p53加激光照射组(第四组)与PBS对照组(第一组)相比,均可以明显抑制肿瘤的生长,其中,式Ⅲ所示非病毒载体/p53加激光照射组小鼠体内的肿瘤抑制效果最佳,是因为基因、光动力、光热联合协同治疗的效果。
尽管上面已经示出和描述了本发明的实施例,可以理解的是,上述实施例是示例性的,不能理解为对本发明的限制,本领域的普通技术人员在本发明的范围内可以对上述实施例进行变化、修改、替换和变型。

Claims (7)

1.一种非病毒载体,其特征在于,所述非病毒载体结构如式Ⅰ所示:
Figure FDA0003789882600000011
所述式Ⅰ中,R1和R2均独立地选自下述任意一种:C6~C20的直链或支链烷基;R3和R4均独立地选自3-[3-(1,5,9-三氮杂环十二烷-1-基)丙基]-1,2,3-三氮杂环戊熳-4-基。
2.根据权利要求1所述的非病毒载体,其特征在于,所述非病毒载体在激光刺激下产生单线态氧及光热。
3.根据权利要求2所述的非病毒载体,其特征在于,所述非病毒载体的结构如式Ⅱ所示:
Figure FDA0003789882600000012
所述式Ⅱ中,R1和R2均独立地选自下述任意一种:C6~C20的直链或支链烷基。
4.根据权利要求2所述的非病毒载体,其特征在于,所述非病毒载体的结构如式Ⅲ所示:
Figure FDA0003789882600000021
所述式Ⅲ中,R1和R2均为辛烷基;R3和R4均为3-[3-(1,5,9-三氮杂环十二烷-1-基)丙基]-1,2,3-三氮杂环戊熳-4-基。
5.一种如权利要求1至4任意一项所述的非病毒载体的非治疗目的应用,其特征在于,所述非病毒载体用于运载p53基因。
6.一种用于制备治疗肿瘤药物的用途,其特征在于,应用如权利要求1至4任意一项所述的非病毒载体以及所述非病毒载体运载的p53基因。
7.一种用于制备治疗肿瘤药物的用途,其特征在于,应用如权利要求1至4任意一项所述的非病毒载体以及所述非病毒载体运载的p53基因加激光照射。
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