CN108192955A - 一种低频突变dna片段检测方法及文库建立方法 - Google Patents

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Abstract

本发明属于基因工程技术领域,具体涉及一种低频突变DNA片段检测方法及文库建立方法。本发明通过采用杂交捕获和分子标签技术,同时结合特殊的文库构建方式,解决现有检测技术中捕获DNA片段效率低、建库过程中引入错误突变、检测限低,灵敏度低技术问题,提高了文库特异性、降低了假阳性率、提高了模板利用率。

Description

一种低频突变DNA片段检测方法及文库建立方法
技术领域
本发明属于基因工程技术领域,具体涉及一种低频突变DNA片段检测方法及文库建立方法。
背景技术
基因突变具有普遍性、随机性、低频性和不定向性的特点。以第二代测序技术(Next Generation Sequencing)为手段检测体细胞突变在肿瘤研究和肿瘤诊断中起到重要作用。在肿瘤样本和循环肿瘤核酸中,由于突变细胞只占很小部分,并且DNA严重碎片化,如果高效且准确利用这些DNA对早期肿瘤的诊断、监测、靶向干预具有重大指导意义。
传统检测碎片化方法主要是通过对待测区域进行PCR扩增富集。因设计的PCR引物分布于待测区域两侧,因此要求待测区域保持完整性。而待测区域碎片化是随机的,保持完整性的很少。因此模板可用量有限,严重影响检测限。
目前用于低频突变DNA样本检测方法有:1)直接PCR法(扩增子法),该方法虽然操作比较简单,但是模板利用率低,以及假阳性率太高;2)杂交捕获法,该方法可以提高模板利用率,但是特异性不强,数据浪费严重;3)基于分子标签的建库方法,可以降低假阳性率,但模板利用率不高。如以贝瑞和康的cSMART为代表的分子标签建库方法相对于普通PCR扩增法,模板利用率提高,分子标签可以错误纠正,降低假阳性。大致步骤如下:1)DNA末端补平;2)3’末端加碱基dA;3)分子标签接头连接;4)文库预扩增;5)分子环化;6)背靠背引物开环;7)通用引物扩增。该流程操作较长,开环需要1对(2条)引物同时反应,模板利用率还有待提高。
发明内容
针对现技术存在的问题,本发明提供一种低频突变DNA片段检测方法及文库建立方法,目的是通过采用杂交捕获和分子标签技术,同时结合特殊的文库构建方式,解决现有检测技术中捕获DNA片段效率低、建库过程中引入错误突变、检测限低,灵敏度低技术问题,提高特异性、降低假阳性率、提高模板利用率。
实现本发明目的的低频突变DNA片段检测方法按照以下步骤进行:
(1)根据碎片化DNA样本的待检位点或待检区域设计引物,所述的引物包括一条特异性引物和二条通用性引物;
(2)采用包含特异性引物的杂交反应液对碎片化DNA进行特异性捕获,得到捕获的特异性DNA片段;
(3)采用延伸反应液对捕获的特异性DNA片段进行延伸,得到特异性延伸产物;
(4)采用连接反应液对特异性延伸产物连接分子标签接头,得到连接接头特异性捕获产物;
(5)对连接接头特异性捕获产物进行PCR富集,得到特异性PCR富集产物;
(6)对特异性PCR富集产物检测。
其中,所述的碎片化DNA样本包括血浆DNA、尿液DNA、汗液DNA、唾液DNA、精液DNA、胸水DNA、腹水DNA、粪便DNA、化石DNA、石蜡包埋(FFPE)DNA、刑侦样本DNA。
所述的碎片化DNA的待检位点或待检区域包括点突变、缺失插入、基因融合和基因扩增区,特异性引物的设计位点或区域为待检位点或待检区域的上游或下游。
所述的特异性引物由三部分组成;第一部分为与目标序列特异性互补序列,命名为靶向序列,靶向序列长度为20~100碱基对,退火温度(Tm)为50~80℃;第二部分由随机核苷酸组成,命名为分子标签序列,分子标签序列由8~20个随机核苷酸组成;第三部分为测序引物序列。
所述的包含特异性引物的杂交反应液包括:25~250mM Tris-HCl、2~20mMMgCl2、0.5~4mM ATP、1~100mM DTT、质量/体积比0.05~1%Tween 20、0.1~100μM特异性引物、5~20%杂交增强剂,其中的百分比以无菌水体积为计算基准。
进一步地,所述的杂交增强剂为核酸变性剂或表面活性剂。
进一步地,所述的杂交增强剂包括二甲基亚砜(DMSO)、甲酰胺、甲醛、尿素、甜菜碱或十二烷基硫酸钠(SDS)。
所述的延伸反应液包括:1~100mM dNTP和5~100U DNA聚合酶。
进一步地,DNA 聚合酶为野生型DNA聚合酶,无3’-5’外切酶活性。
进一步地,DNA聚合酶包括:rTaq DNA Polymerase、2G Robust DNA Polymerase、Glod360DNA Polymerase、、Bst DNA Polymerase,Full Length、Crimson Taq DNAPolymerase、PlatinumTM Taq Green Hot Start DNA Polymerase、DreamTaq DNAPolymerase。
所述的连接反应液包括:10~250mM Tris-HCl、2~20mM MgCl2、1~4mM ATP、1~200Mm DTT、质量/体积比0.05~1%Tween 20、质量/体积比5~50%PEG6000、DNA连接酶,0.1~50μM带有分子标签的接头,其中的百分比以无菌水体积为计算基准。
进一步地,DNA连接酶包括:T4DNA连接酶、Taq DNA连接酶和E·coli DNA连接酶。
所述的分子标签接头为完全或部分互补的双链,包括分子标签序列和测序引物序列,其中分子标签序列由8~20个随机核苷酸组成。
针对DNA含量极低如5ng的DNA样本,在对所述碎片化DNA进行特异性捕获之前,需先连接分子标签接头,再进行预扩增的步骤。
本发明的低频突变DNA片段的文库建立方法按照以下步骤进行:
(1)使用杂交反应液,杂交捕获目标碎片化DNA,获得目标碎片化DNA;
(2)在步骤(1)后直接加入延伸反应液,对捕获碎片化DNA进行延伸,合成双链;
(3)在步骤(2)后直接加入连接反应液,对捕获碎片化DNA双链连上接头,获得预文库;
(4)在步骤(3)后,对预文库进行纯化,以除去未用完的连接接头;
(5)在步骤(4)后,对预文库进行扩增富集,获得完整的文库;
(6)在步骤(5)后,对扩增产物进行纯化,纯化后的产物即为上机文库。
其中,所述的杂交反应液包括:25~250mM Tris-HCl、2~20mM MgCl2、0.5~4mMATP、1~100mM DTT、质量/体积比0.05~1%Tween 20、0.1~100μM特异性引物、5~20%杂交增强剂,其中的百分比以无菌水体积为计算基准。
进一步地,所述的杂交增强剂为核酸变性剂或表面活性剂。
进一步地,所述的杂交增强剂包括二甲基亚砜(DMSO)、甲酰胺、甲醛、尿素、甜菜碱或十二烷基硫酸钠(SDS)。
所述的延伸反应液包括:1~100mM dNTP和5~100U DNA聚合酶。
进一步地,DNA聚合酶为野生型DNA聚合酶,无3’-5’外切酶活性。
进一步地,DNA聚合酶包括:rTaq DNA Polymerase、2G Robust DNA Polymerase、Glod360DNA Polymerase、、Bst DNA Polymerase,Full Length、Crimson Taq DNAPolymerase、PlatinumTM Taq Green Hot Start DNA Polymerase、DreamTaq DNAPolymerase。
所述的连接反应液包括:10~250mM Tris-HCl、2~20mM MgCl2、1~4mM ATP、1~200Mm DTT、质量/体积比0.05~1%Tween 20、质量/体积比5~50%PEG6000、DNA连接酶,0.1~50μM接头,其中的百分比以无菌水体积为计算基准。
进一步地,DNA连接酶包括:T4DNA连接酶、Taq DNA连接酶和E·coli DNA连接酶。
所述的接头为完全或部分互补的双链,包括分子标签序列和测序引物序列,其中分子标签序列由8~20个随机核苷酸组成。
与现有技术相比,本发明的特点和有益效果是:
本发明中DNA突变点检测原理图如图3所示,首次采用特异性单引物对待检区域进行富集,扩大了引物的适用范围、增加有效模板使用量,特别是大大提高检测低频突变样本的检测限。
本发明特异性单引物捕获,可以提高捕获有效模板量,保证文库有足够的测序深度。
本发明中的特异性单引物由靶向序列、分子标签条序列、测序引物序列组成,不仅可以提高单引物的特异性,还降低PCR扩增固有的突变概率,提高检测的灵敏度。
本发明设计的特异性引物,能有效地从含有大量野生型DNA片段中捕获稀少的突变DNA片段。
本发明利用所有捕获碎片化DNA做模板,远高于传统方法;同时采用杂交延伸方法代替PCR方法对目标片段进行富集,减少PCR引入错误,提高检测的灵敏性。
本发明设计的特异性引物,能应用于数据分析中,以便从扩增测序错误中区分真实突变以保证高准确性。
本发明中特异性单引物由靶向序列、分子标签序列和测序引物序列组成,既提高了单引物的特异性,又可提高数据分析质量,提高低频突变检测结果的准确性。
此外,本发明的低频突变DNA片段文库构建方法,步骤简单、大大节省了实验时间,提高建库效率
本发明提供的建库方法,可以可以用于Roche、Illumina、ThermoFisher、PacificBiosciences、华大基因、Oxford Nanopore Technologies、华因康、瀚海基因等不同的高通量测序平台,适用性广,易于推广。
附图说明
图1是本发明中低频突变DNA片段文库构建流程图;
图2是本发明特异性引物设计原理图;
其中:a为传统引物,粗实线为可用模板数;b为本发明设计引物,可利用的模板为粗实线和细实线的碎片化DNA;代表待检测突变位点;代表本发明中特异性引物;→代表传统PCR引物;A为设计特异性引物分布于待检测区域上游;B为设计特异性引物分布于待检测区域下游;
图3是本发明DNA突变点检测原理图;
其中:b为特异性单引物,既可设计于待测区域左侧,又可设计于待测区域右侧;为待测的点突变、插入、缺失以及基因融合;P5、P7为通用引物;
图4是本发明实施例1中2%琼脂糖凝胶电泳检测文库结果图;
图5是本发明实施例2中2%琼脂糖凝胶电泳检测文库结果图;
其中:S0:突变频率0%的EGFR cfDNA标准品文库;
S1:突变频率0.1%的EGFR cfDNA标准品文库;
S2:突变频率1%的EGFR cfDNA标准品文库;
S3:突变频率5%的EGFR cfDNA标准品文库。
具体实施方式
具体实施方式中以Illumina平台为例,结合实施例对本发明进一步说明。
实施例1:
本实施例中目标检测基因为EGFR基因18号外显子,其文库构建流程如图1所示,按照以下步骤进行:
(1)首先对EGFR基因18号外显子进行靶向测序,按照图2的原理,针对EGFR的18号外显子设计特异性引物,本实施例的引物可利用的模板数远高于传统方法,增加捕获有效模板数、提高低频突变样本检测灵敏度。
EGFR 18号外显子序列如下:
CTTGTGGAGCCTCTTACACCCAGTGGAGAAGCTCCCAACCAAGCTCTCTTGAGGATCTTGAAGGAAACTGAATTCAAAAAGATCAAAGTGCTGGGCTCCGGTGCGTTCGGCACGGTGTATAAG
其中下划线碱基为突变位点;
EGFR 18号外显子及其上下游内含子序列如下:
CAGTTAATAGGCGTGGAAACAGACATAGAAATTGTGTTTGTTGAAAGGTAGCTGTTCAGTTAAAGAACACCTGTATCAGAGCCTGTGTTTCTACCAACTTCTGTCAAGCTCTGTAGAGAAGGCGTACATTTGTCCTTCCAAATGAGCTGGCAAGTGCCGTGTCCTGGCACCCAAGCCCATGCCGTGGCTGCTGGTCCCCCTGCTGGGCCATGTCTGGCACTGCTTTCCAGCATGGTGAGGGCTGAGGTGACCCTTGTCTCTGTGTTCTTGTCCCCCCCAGCTTGTGGAGCCTCTTACACCCAGTGGAGAAGCTCCCAACCAAGCTCTCTTGAGGATCTTGAAGGAAACTGAATTCAAAAAGATCAAAGTGCTGGGCTCCGGTGCGTTCGGCACGGTGTATAAGGTAAGGTCCCTGGCACAGGCCTCTGGGCTGGGCCGCAGGGCCTCTCATGGTCTGGTGGGGAGCCCAGAGTCCTTGCAAGCTGTATATTTCCATCATCTACTTTACTCTTTGTTTCACTGAGTGTTTGGGAAACTCCAGTGTTTTTCCCAAGTTATTGAGAGGAAATCTTTTATAACCACAGTAATCAGTGGTCCTGTGAGACCAATTCACAGACCAAAGGCATTTTTATGAAAGGGGCCATT
特异性上游引物:
5’-AGATGTGTATAAGAGACAGNNNNNNNNNNNNAGGAAACTGAATTCAAAAAGATCAAAGTGC-3’
特异性下游引物:
AGATGTGTATAAGAGACAGNNNNNNNNNNNNGACCTTACCTTATACACCGTGCCGAACGCA
通用引物序列如下:
P 5端引物:
5’-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAG3’
P7端引物:
5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGAT-index-GTGACTGGAGTTC
(2)采用包含特异性引物的杂交反应液对碎片化DNA进行特异性捕获,得到捕获的特异性DNA片段;本实施例中碎片化DNA来自正常人血浆,取2ml正常人血浆,按照MagMAXTMCell Free DNA Isolation Kit(ThermoFisher Cat.A29319)说明书操作提取游离DNA:
(a)样本裂解;
(b)磁珠结合;
(c)磁珠洗涤;
(d)洗脱,获得游离DNA;
按照下表配制捕获反应体系:
组分 用量
杂交反应液 5μL
游离DNA 41.5μL
特异性引物 1μL
涡旋震荡混匀,瞬时离心,置于热循环仪上按照下列程序执行杂交捕获:
94℃3min;
92℃2min;以2℃、2min为梯度依次递减,重复2次;
60℃2min;
60℃overnight;
(3)将反应管保持在60℃,加入延伸反应液,轻弹混匀,瞬时离心,72℃孵育30~60min;
(4)将反应管从热循环仪上取下置于室温冷却,加入连接反应液,涡旋混匀,瞬时离心,置于热循环仪上按照下列程序进行孵育:
20℃15min;
65℃10min;
其中连接接头设计如下:
Top-Adapter:
5’-CCTAGTCATCCCTGGCTCTCCGATCTNNNNNNNNT-3’
Bottom-Adapter:
5’P-NNNNNNNNAGATCGGAAGAGCACACGTCTGAACTCCAGTCAC
以上序列需退火成双链;
将反应管从热循环仪上取下,加入30μL Ampure XP beads进行纯化,26μLElution Buffer洗脱;
(5)对连接接头特异性捕获产物进行PCR富集,得到特异性PCR富集产物;
按照下表配制PCR反应体系:
组份 用量
2x KAPA HiFi Hostart buffer 25μL
P5端引物 1μL
P7端引物 1μL
纯化产物 23μL
按照下表,执行PCR扩增程序:
使用60μL Ampure XP beads进行纯化,30μL Elution Buffer洗脱;
(6)对特异性PCR富集产物检测:
取其中5μL纯化产物进行2%琼脂糖凝胶电泳检测,电泳分析结果如图4所示(M:100bp DNA ladder,宝生物工程(大连)有限公司),文库主带清楚且主要分布在300bp左右,条带亮度明亮,与预期结果一致。
qPCR质检:
按照KAPA Library Quantifcation Kit(Kapabiosystems,Cat No.KK4854)说明书进行操作,使用Roche Light Cycler 480实时荧光定量PCR仪检测,参照试剂盒里的标准品进行文库浓度的绝对定量。
qPCR检测结果如下:
样品 1
qPCR浓度(nM) 89.04
建库文库达到上机要求浓度,可用于上机测试。
上机测序:
按照MiSeq测序仪操作流程进行文库变性、稀释以及150bp双端测序。
将高通量测序下机数据经过质控过滤后,进行BWA比对,用于评估文库的特异性,分析结果见下表。
实施例2:
本发明实施例2是对检测方法的检测限进行测试,按照以下步骤进行:
(1)低频突变标准品准备:
使用cfDNA标准品(Horizon Discovery,HD780)进行EGFR基因21外显子L858R位点检测,突变频率分别为0%、0.1%、1%、5%,分别命名为:S0、S1、S2、S3。
(2)文库构建:
S0、S1、S2、S3分别按照实施例1中杂交捕获方法进行捕获,后续步骤按照实施例1中步骤进行文库构建。
(3)qPCR质检及上机测序:
按照实施例1中方法对文库进行qPCR质控和上机测序。
实验结果:
1)文库电泳检测分析结果:
根据电泳分析结果如图5(M:100bp DNA ladder,宝生物工程(大连)有限公司)所示,文库主带清楚且主要分布在200bp左右,条带亮度明亮,与预期结果一致。
qPCR文库定量分析结果:
qPCR检测结果如下:
文库名称 S0 S1 S2 S3
qPCR浓度(nM) 108 110 112 117
建库文库达到上机要求浓度,可用于上机测试。
2)测序数据分析结果:
文库名称 S0 S1 S2 S3
理论突变频率(%) 0 0.10 1.0 5.0
测定突变频率(%) 0 0.095 0.97 4.87
偏差(%) 0 5.0 3.0 2.6
测定数据与理论数据偏差在5%以内,符合检测允许偏差范围;且可以检测突变频率为0.1%以上的样本,方法灵敏度高。

Claims (10)

1.一种低频突变DNA片段检测方法,其特征在于按照以下步骤进行:
(1)根据碎片化DNA样本的待检位点或待检区域设计引物,所述的引物包括一条特异性引物和二条通用性引物;
(2)采用包含特异性引物的杂交反应液对碎片化DNA进行特异性捕获,得到捕获的特异性DNA片段;
(3)采用延伸反应液对捕获的特异性DNA片段进行延伸,得到特异性延伸产物;
(4)采用连接反应液对特异性延伸产物连接分子标签接头,得到连接接头特异性捕获产物;
(5)对连接接头特异性捕获产物进行PCR富集,得到特异性PCR富集产物;
(6)对特异性PCR富集产物检测。
2.根据权利要求1所述的一种低频突变DNA片段检测方法,其特征在于所述的碎片化DNA样本包括血浆DNA、尿液DNA、汗液DNA、唾液DNA、精液DNA、胸水DNA、腹水DNA、粪便DNA、化石DNA、石蜡包埋(FFPE)DNA、刑侦样本DNA。
3.根据权利要求1所述的一种低频突变DNA片段检测方法,其特征在于所述的碎片化DNA的待检位点或待检区域包括点突变、缺失插入、基因融合和基因扩增区,特异性引物的设计位点或区域为待检位点或待检区域的上游或下游。
4.根据权利要求1或权利要求3所述的一种低频突变DNA片段检测方法,其特征在于所述的特异性引物由三部分组成;第一部分为与目标序列特异性互补序列,命名为靶向序列,靶向序列长度为20~100碱基对,退火温度(Tm)为50~80℃;第二部分由随机核苷酸组成,命名为分子标签序列,分子标签序列由8~20个随机核苷酸组成;第三部分为测序引物序列。
5.根据权利要求1、权利要求3或权利要求4所述的一种低频突变DNA片段检测方法,其特征在于所述的包含特异性引物的杂交反应液包括:25~250mM Tris-HCl、2~20mMMgCl2、0.5~4mM ATP、1~100mM DTT、质量/体积比0.05~1%Tween 20、0.1~100μM特异性引物、5~20%杂交增强剂,其中的百分比以无菌水体积为计算基准。
6.根据权利要求1所述的一种低频突变DNA片段检测方法,其特征在于所述的延伸反应液包括:1~100mM dNTP和5~100U DNA聚合酶。
7.根据权利要求1所述的一种低频突变DNA片段检测方法,其特征在于所述的连接反应液包括:10~250mM Tris-HCl、2~20mM MgCl2、1~4mM ATP、1~200Mm DTT、质量/体积比0.05~1%Tween 20、质量/体积比5~50%PEG6000、DNA连接酶,0.1~50μM带有分子标签的接头,其中的百分比以无菌水体积为计算基准。
8.根据权利要求1所述的一种低频突变DNA片段检测方法,其特征在于所述的分子标签接头为完全或部分互补的双链,包括分子标签序列和测序引物序列,其中分子标签序列由8~20个随机核苷酸组成。
9.根据权利要求1所述的一种低频突变DNA片段检测方法,其特征在于针对含量极低的DNA样本,在对所述碎片化DNA进行特异性捕获之前,需先连接分子标签接头,再进行预扩增的步骤。
10.如权利要求1所述的一种低频突变DNA片段的文库建立方法,其特征在于按照以下步骤进行:
(1)使用杂交反应液,杂交捕获目标碎片化DNA,获得目标碎片化DNA;
(2)在步骤(1)后直接加入延伸反应液,对捕获碎片化DNA进行延伸,合成双链;
(3)在步骤(2)后直接加入连接反应液,对捕获碎片化DNA双链连上接头,获得预文库;
(4)在步骤(3)后,对预文库进行纯化,以除去未用完的连接接头;
(5)在步骤(4)后,对预文库进行扩增富集,获得完整的文库;
(6)在步骤(5)后,对扩增产物进行纯化,纯化后的产物即为上机文库。
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