CN108148125A - 一种人eif4h多肽及其抗体制备方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种C端特异的人EIF4H多肽以及抗体的制备方法，属于以抗体为特征的体外实验用的生物制品。C端特异的人EIF4H多肽的氨基酸序列为：GARPREEVVQKEQE。抗人EIF4H多肽抗体按以下方法制备：(1)人EIF4H抗原表位分析；(2)人EIF4H C端多肽合成；(3)合成多肽与载体蛋白交联；(4)制备兔抗人EIF4H多肽抗体；(5)收集、分离得到含有抗体的血清，纯化抗体，即得到抗人EIF4H多肽抗体。本发明制备的C端特异的抗人EIF4H合成多肽抗体效价高、亲和力强、特异性好，可与天然人EIF4H发生特异性结合反应；制备成本低；纯化后的抗体可以用于免疫印迹。该抗体为EIF4H蛋白的基础研究(如对EIF4H的特性、功能、表达谐和含量的分析)及其相关疾病(如威廉斯综合症)的研究提供了一个重要的工具。

Description

一种人EIF4H多肽及其抗体制备方法
1.技术领域
本发明涉及一种多肽及其抗体制备方法，这种抗体主要用于天然蛋白抗原的检测。
2.背景技术
1)EIF4H功能：EIF4H是RNA结合蛋白RRM家族的一个成员，家族成员包括1-4个拷贝的RRM结构域。RRM结构域长度为80-100氨基酸，包括两个叫做RNP1和RNP2短的伸展的保守序列，和一些高度保守的疏水残基。EIF4H在N末端有一个RRM结构域，同时在序列中间有一个HHV-1Vhs结合位点(J Virol.2008Jul；82(13)：6600-9)。该蛋白有两种剪切形式，表达较为广泛，但是作为主要存在形式的短剪切形式只在肝脏和骨骼肌表达。有研究标明，该蛋白能够与EIF4B及EIF4F一起，与EIF4A形成复合物，具有解旋酶活性，在由mRNA合成蛋白质的过程中发挥了重要作用(J.Biol.Chem.276：30914-30922(2001))。
2)EIF4H抗体产品信息：经检索，市场上有Anti-EIF4H多克隆抗体产品，但是相关此抗体产品所用抗原多肽序列与我公司所用抗原多肽序列不同。
3)EIF4H抗体的应用：
EIF4H基因的单一等位基因不足性可能是威廉斯氏症患者心血管及肌肉骨骼异常的诱因。对于正常入和威廉斯氏症患者染色体7q11.23的序列分析结果比较表明，EIF4H基因位于该区域，且在威廉斯氏症患者中表现为单一等位基因。(Mamm Genome.2000Oct；11(10)：890-8)这就提示我们，对于该靶蛋白的功能研究将有助于了解其在威廉斯氏症的作用，对于该病的治疗将有积极作用。
3.发明内容
本发明提供了一种EIF4H多肽，其序列为：GARPREEVVQKEQE。用此多肽制备的抗EIF4H抗体可以在免疫印迹(Western blot)分析中特异识别组织或细胞中的天然EIF4H蛋白。
抗EIF4H抗体是通过以下步骤获得的：
步骤一：多肽序列的分析和设计：利用DNAstar软件对EIF4H蛋白的氨基酸序列进行抗原表位分析，主要评估亲水性，抗原性，表面可能性，柔性区等指数，再结合过去制备抗体的实际经验，最终确定EIF4H蛋白235-248位14个氨基酸作为合成多肽氨基酸序列，序列为GARPREEVVQKEQE。
步骤二：多肽合成和交联：采用ACT396全自动多通道多肽合成仪合成目的多肽，并采用质谱进行鉴定；为增强多肽的抗原性，将EIF4H多肽与载体蛋白KLH采用Sulfo-SMCC交联法进行交联。
步骤三：多肽免疫和抗血清制备：将交联后的EIF4H-KLH与弗氏佐剂混合乳化，在新西兰兔背部进行皮内注射免疫，并反复加强免疫，至取血检测抗体效价达到标准时停止免疫。
步骤四：抗体纯化：实验兔抗体效价达到标准后，采用心脏取血，分离抗血清，采用Protein A纯化全抗体后，进一步采用肽亲和纯化，得到目标抗体。
抗EIF4H抗体是通过以下步骤鉴定的：
免疫印迹：将所获得的EIF4H抗体作为一抗，采用标准的免疫印迹方法，确认该抗体能够与变性后的天然EIF4H蛋白相互作用，可用于免疫印迹试验。
4.附图说明
图1是用该发明多肽去免疫动物，得到的多克隆抗体，在人Jurkat细胞系中检测EIF4H天然蛋白，泳道B中28kDa的条带即为EIF4H蛋白的信号。
5.具体实施方式
1.多肽序列的分析和设计
利用DNAstar软件对EIF4H蛋白的氨基酸序列进行抗原表位分析，主要评估亲水性，抗原性，表面可能性，柔性区等指数，再结合过去制备抗体的实际经验，考虑氨基酸结构复杂程度，易氧化程度，合成难度，氨基酸类别和分布等，最终确定EIF4H蛋白235-248位14个氨基酸作为合成多肽氨基酸序列，序列为GARPREEVVQKEQE。同时，为保证后期多肽交联载体蛋白以及肽亲和纯化，在N末端增加一个半胱氨酸C，最终待合成多肽序列为CGARPREEVVQKEQE。
2.多肽合成和交联
采用ACT396全自动多通道多肽合成仪，按照编制好的程序自动合成目的多肽，将合成后的多肽溶于50％乙腈，采用质谱仪进行鉴定，确认所获得的多肽为目的多肽。采用Sulfo-SMCC作为交联剂将载体蛋白KLH与合成多肽进行交联：取10mg KLH溶于0.5ml超纯水中；取3mg sulfo-SMCC溶于0.5ml超纯水中用3M NaOH调pH值7左右。在混匀情况下，把sulfo-SMCC溶液逐滴缓慢加入KLH溶液中，室温下旋转混匀反应物30min。将反应好的sulfo-SMCC/KLH混合液上样到预先用平衡缓冲液(0.05M PB.pH6.0)平衡过30min的Sephadex G25柱中，收集浅灰色洗脱液，即活化的sulfo-SMCC/KLH溶液。用200ul PBS(pH7.3)溶解待2mg交联多肽，把0.2体积的sulfo-SMCC/KLH复合物溶液加入到多肽溶液中，调pH值到7.3，室温振摇4小时，-70冷冻后，用冻干机冻干24小时后备用。通过Ellman法检测交联前后多肽巯基确定多肽交联效率。
3.多肽免疫和抗血清制备
将交联好的KLH-多肽400μg溶于400μl磷酸缓冲液(0.01M PBS)中，加入等体积弗氏完全佐剂充分乳化(至在水中不扩散为准)。采用兔龄3个月，体重1.75-2.25Kg的健康新西兰兔进行免疫，进行背部皮内注射免疫，至少要注射20点以上。首次免疫3周后，将300μg多肽溶于300μl磷酸缓冲液(0.01M PBS)中，与等量的弗氏不完全佐剂充分乳化后进行皮内免疫，作为第一次加强免疫，要求背部皮内注射免疫，至少要注射15点以上。第二次免疫3周后，进行第二次加强免疫，方法和要求同第一次加强免疫。1周后，采用耳缘静脉微量取血，用未交联的合成多肽包被酶标板，间接ELISA法检测免疫血清效价。重复加强免疫和效价测定，直至血清效价达到1∶60000以上，采用心脏取血，标准方法获得抗血清。
4.抗体亲和纯化
(1)、TIgG纯化：用移液器将50％的Protein-A Sepharose混悬液10ml加到30ml层析柱中，去掉顶盖和底帽，液体流出后的柱床体积即为5ml，然后用25ml去离子水冲洗3遍。取出对应的血清10ml，与2ml PBS混合后加入30ml层析柱中，旋转混合器上室温(20-25℃)混旋1小时，让血清样品流出。再用15ml纯化洗液洗层析柱3次，加入10ml洗脱液进行洗脱。
(2)、肽亲和纯化：在层析柱中加入1ml Sulfo-link凝胶悬液(0.5ml凝胶)，待柱内液体流干，用4ml偶联缓冲液冲洗层析柱。用1ml偶联缓冲液溶解合成的EIF4H多肽，并加入层析柱，再加入1ml偶联缓冲液至层析柱中，室温颠倒混匀1小时。用6ml偶联缓冲液冲洗层析柱，然后加入3ml封闭液，室温混匀1小时。冲洗层析柱3次，然后向层析柱内加入6ml IgG及3ml PBS，室温颠倒混匀1小时。用PBS冲洗层析柱3次，然后用2ml洗脱液洗脱。将所获得的纯化抗体装入透析袋内4℃透析。透析过夜，然后4000rpm×35min离心除沉淀，收集上清。用间接ELISA法测定抗体效价并用Bradford法测定蛋白浓度。
抗EIF4H抗体是通过以下步骤鉴定的：
免疫印迹分析
按照标准方法配制SDS-PAGE凝胶，将5μl蛋白浓度为5mg/ml的细胞或者组织裂解液依次加样，恒压80V约30分钟，待样品跑过浓缩胶基本呈一条直线时，改换160V电压，电泳至溴酚蓝指示剂完全跑出分离胶(约60分钟)时终止电泳，采用电转膜方法恒压100V电转80分钟转膜至PVDF膜。将所获得的EIF4H抗体作为一抗，采用浓度为1μl/ml与上述转膜得到的抗原在室温下杂交1小时，然后用HRP标记的羊抗兔抗体在室温下杂交1小时，采用ECL显色法进行显色，在暗室中用X片进行显色和曝光，得到免疫印迹结果。
氨基酸序列表
GARPREEVVQKEQE。

Claims (6)

1.一种人EIF4H多肽，其特征在于多肽的氨基酸序列为：GARPREEVVQKEQE。
2.一种抗人EIF4H多肽的抗体制备方法，其特征在于按权利要求1所述序列合成中间修饰肽，将合成的N端修饰肽与载体蛋白交联，用交联的肽免疫动物，取免疫动物的血制备抗血清，从血清中分离纯化IgG，其中所述的N端修饰为在氨基酸序列的N端增加一个半胱氨酸残基。
3.根据权利要求2所述的抗体制备方法，其特征在于载体蛋白为匙孔血蓝蛋白(KLH)或牛血清白蛋白(BSA)。
4.根据权利要求2所述的抗体制备方法，其特征在于N端修饰肽通过交联剂将其巯基与载体蛋白氨基共价交联。
5.根据权利要求2所述的抗体制备方法，其特征在于交联肽与免疫佐剂混合乳化后，在兔背部通过多点皮内注射，并经二次以上加强免疫，血清的效价大于1∶60000。
6.根据权利要求2所述的抗体制备方法，其特征在于经过硫酸铵沉淀、蛋白A亲和纯化以及肽亲和纯化可以从抗血清中获得高纯度的IgG。
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