CN107974432B - 高效分泌表达猪瘟e2蛋白的cho细胞株的培养方法及其应用 - Google Patents

高效分泌表达猪瘟e2蛋白的cho细胞株的培养方法及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN107974432B
CN107974432B CN201710687334.4A CN201710687334A CN107974432B CN 107974432 B CN107974432 B CN 107974432B CN 201710687334 A CN201710687334 A CN 201710687334A CN 107974432 B CN107974432 B CN 107974432B
Authority
CN
China
Prior art keywords
culture
fermentation
protein
medium
serum
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201710687334.4A
Other languages
English (en)
Other versions
CN107974432A (zh
Inventor
钱泓
吴有强
卞广林
吴素芳
车影
查银河
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Zhejiang Hailong Biotechnology Co ltd
Original Assignee
Novo Biotech Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Novo Biotech Corp filed Critical Novo Biotech Corp
Priority to CN201710687334.4A priority Critical patent/CN107974432B/zh
Publication of CN107974432A publication Critical patent/CN107974432A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN107974432B publication Critical patent/CN107974432B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0681Cells of the genital tract; Non-germinal cells from gonads
    • C12N5/0682Cells of the female genital tract, e.g. endometrium; Non-germinal cells from ovaries, e.g. ovarian follicle cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2510/00Genetically modified cells
    • C12N2510/02Cells for production

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种高效分泌表达猪瘟E2蛋白的CHO细胞株的培养方法及其应用,所述的培养方法包括以下步骤:1)将高效分泌表达猪瘟E2蛋白的CHO细胞株在1号培养基中逐级放大培养;2)将放大培养后的细胞转入生物反应器中进行发酵培养,在2号培养基中进行搅拌培养,发酵培养初期培养温度为36.5~37.5℃,pH为7.05~7.25,从发酵培养的120±2h开始,将培养温度下调至31.5~32.5℃,并将pH下调至6.90~7.10;在整个发酵培养的过程中,控制溶氧为20%~60%;在生物反应器中发酵的第12天后,收获细胞发酵液。本发明的培养方法获得的猪瘟E2蛋白产高、且具有更好的可操作性和实用性,因此,本发明更有利于扩大培养规模。

Description

高效分泌表达猪瘟E2蛋白的CHO细胞株的培养方法及其应用
技术领域
本发明涉及CHO细胞的发酵培养方法和应用,属于细胞工程领域。
背景技术
猪瘟在欧洲称为古典猪瘟(Classical Swine Fever,CSF)是由猪瘟病毒(Classical Swine Fever Virus,CSFV)引起的一种急性、热性、致死性疾病。猪瘟具有高度接触传染性、发病急、高热稽留和小血管壁变性引起广泛出血、梗塞和坏死等病变特征。家养和野生猪是其唯一的天然宿主。世界动物卫生组织(OIE)将其定为A类传染病,我国《动物防疫法》将其列为一类传染病。猪瘟是目前危害我国养猪业发展的主要疫病之一。
猪瘟病毒属于黄病毒科、瘟病毒属成员,为单链线状RNA病毒。病毒粒子略呈圆形,具有脂蛋白囊膜,病毒粒子表面有脆弱的纤突结构。CSFV基因组长约12.5kb,仅含有1个大的开放性阅读框(ORF),此ORF编码约3898个氨基酸残基,分子量约438kDa的多聚蛋白。此多聚蛋白在翻译的同时和在翻译后经病毒与宿主细胞蛋白酶加工成12种成熟蛋白,依次为Npro,C,Erns,E1,E2,p7,NS2,NS3,NS4A,NS4B,NS5A,NS5B,其中C,Erns,E1和E2为结构蛋白,其余为非结构蛋白。E2是CSFV最主要的免疫原性蛋白,能够诱导机体产生中和抗体并且能够保护猪抵抗CSFV强毒株的攻击,也是研究猪瘟基因工程疫苗的重要靶蛋白。
本发明人在申请号为201710409930.6的发明专利申请构建了一株高效分泌表达猪瘟E2蛋白的CHO细胞株,该细胞株在摇瓶培养时产量能够达到1g/L。为了进一步提高该细胞株的表达产量以降低疫苗生产成本,以及进一步适应规模化的工业化生产以方便后续工业化大规模生产,本发明人在摇瓶发酵的基础上,进一步研究了该细胞株的大规模的细胞培养方法。
发明内容
本发明要解决的技术问题是提供一种高效分泌表达猪瘟E2蛋白的CHO细胞株的大规模培养方法。
根据本发明的一个方面,本发明提供了一种高效分泌表达猪瘟E2蛋白的CHO细胞株的培养方法,所述的培养方法包括以下步骤:1)将高效分泌表达猪瘟E2蛋白的CHO细胞株在无血清培养基中逐级放大培养;2)将放大培养后的细胞转入生物反应器中在无血清培养基中进行发酵培养,所述发酵培养的初期培养温度为36.5~37.5℃,pH为7.05~7.25;从发酵培养的120±2h开始,将培养温度下调至31.5~32.5℃,并将pH下调至6.90~7.10,其中,需在96±2h和216±2h时添加无血清培养基;在整个发酵培养的过程中,控制溶氧为20%~60%;在生物反应器中发酵的第12天后,收获细胞发酵液。
本发明的技术方案中,优先地,步骤1)中的所述无血清培养基为Dynamis和EX-CELL302且含有25μM MSX,所述Dynamis和所述EX-CELL 302体积比为6:4。
本发明的技术方案中,优先地,步骤2)中的所述无血清培养基为Dynamis和EX-CELL302且不含有25μM MSX,所述Dynamis和所述EX-CELL 302体积比为6:4。
本发明的技术方案中,优先地,步骤2)中,在96±2h和216±2h时添加的无血清培养基为CD Efficent Feed C,所述CD Efficent Feed C浓度为79.6g/L。更优选地,每次添加的所述CD Efficent Feed C的体积为步骤1)中的所述无血清培养基和步骤2)中的所述无血清培养基的总体积的10%。
本发明的技术方案中,优先地,步骤1)中逐级放大培养时每48~72小时进行传代摇瓶培养,经过300ml、1.8L摇瓶培养扩增后,转入生物反应器中进行发酵培养,所述摇瓶培养时摇床设置的条件为37℃,100rpm,5%CO2
本发明的技术方案中,优先地,步骤1)中逐级放大培养过程中,每次传代时细胞密度为1~3×106VC/ml,接种时细胞密度为0.2~0.4×106VC/ml。
本发明的技术方案中,优先地,步骤2)中发酵培养的整个过程中,控制溶氧为40%。
本发明的技术方案中,优先地,步骤2)中发酵培养的整个过程中,控制葡萄糖的浓度为2.5~4g/L。
根据本发明的另一个方面,本发明还提供了一种将高效分泌表达猪瘟E2蛋白的培养方法在高效分泌表达其他目的蛋白的CHO细胞株发酵培养中的应用。
本发明通过这些培养条件的综合调控取得了很好的培养效果:与摇瓶发酵相比,调整发酵条件后,最高活细胞密度(1.28×107VC/ml)比摇瓶发酵的(8.1×106VC/ml)高;猪瘟E2蛋白表达量(2.18g/L)远高于摇瓶发酵(1.54);而且本发明还具有更好的可操作性和实用性。因此,本发明更有利于扩大培养规模。
另外,本发明的培养方法相对于其他灌流式培养方法或流加式培养方法都有比较明显的优势,其优势在于:1)本发明的培养方法发酵时间相对较短,只用发酵12天即可收获目的蛋白,而灌流式培养和流加式培养一般都需要近20天或更长时间的发酵培养才收获目的蛋白;2)本发明中仅在第4天和第9天添加补料培养基,比灌流式培养和流加式培养需要持续添加培养基或放出培养基相比,外源的污染概率较小,能适当降低设备要求和人员要求以及提高发酵的成功率;3)本发明针对的表达猪瘟E2蛋白的CHO细胞株表达产量本身就很高(大于1g/L,接近2g/L),采用灌流式培养和流加式培养(本实验室条件有限,未能进行比较实验,只能进行理论推算)虽然表达产量可能相对要高,但是能够提高的幅度非常有限(因为本发明的表达产量相对很高),远不如本发明缩短培养时间和节约培养基(培养时间越长,所耗的培养基越多)所带来的成本低。
附图说明
图1发酵过程活细胞密度变化曲线。
图2发酵过程中细胞活力曲线。
图3Werstern Blotting鉴定第12日细胞发酵上清中CSFV-E2的表达:M表示Marker;N(Negative control)表示阴性对照;P(Positive control)表示阳性对照;1表示发酵上清样品133D,2表示发酵上清样品133D-B,稀释10倍,上样量为4μl。
具体实施方式
以下将结合附图和实施例对本发明做进一步说明,本发明的实施例仅用于说明本发明的技术方案,并非限定本发明。
MSX(甲硫氨酸亚砜亚铵,L-methioninesulfoximine)、EX-CELL 302培养基为Sigma公司产品;
Dynamis培养基、CD FortiCHO培养基、CD CHO培养基、CD Efficent Feed C、葡萄糖为Gibco公司产品;
Max P CHO 100培养基为MabPlex公司产品;
其他试剂均为国产市售产品。
实施例1种子细胞的扩增
从液氮罐中取出高效分泌表达猪瘟E2蛋白的CHO细胞株(细胞株编号为133株,具体参见本发明人提交的申请号为201710409930.6的发明专利申请),置37℃水浴中迅速融化,用50ml 1号培养基(1号培养基为60%Dynamis+40%EX-CELL 302混合培养基,均为无血清培养基,含25μM MSX)重悬细胞,细胞接种密度为0.2-0.4×106VC/ml,接种细胞于250ml的细胞摇瓶,并置于37℃,100rpm,5%CO2摇床中进行摇瓶培养48~72小时,传代时细胞密度为1-3×106VC/ml。将250ml摇瓶中的细胞转移至1L的摇瓶中,补充培养基至300ml,并将摇瓶置于37℃,100rpm,5%CO2摇床中进行摇瓶培养48~72小时,再进行传代,传代细胞密度和过程与上述传代基本一致,此次传代后培养基总体积为1.8L,继续培养48~72小时,待用。
实施例2 15L生物反应器发酵培养
(1)将2号培养基(2号培养基为60%Dynamis+40%EX-CELL 302混合培养基,不含MSX)泵进生物反应器。设置参数:pH设置为7.15,工作范围7.05~7.25;溶氧40%,工作范围20%~60%;温度37.0℃,工作范围36.5~37.5℃;搅拌速度130rpm。溶氧电极过夜饱和。
(2)从CO2恒温摇床取出实施例1中的细胞并计数,用2号培养基稀释细胞至0.2~0.4×106VC/ml,接种到生物反应器。
(3)每隔24h计数细胞密度及活力,用nova生化分析仪测葡萄糖/谷氨酸/谷氨酰胺等,当葡萄糖低于2.5g/L的时候,添加葡萄糖到4g/L。
(4)在96±2h时补料(约第四天):补充CD Efficent Feed C(浓度为79.6g/L)(3号培养基),添加的量为1号和2号培养基总体积的10%。
(5)120±2h(约第五天)开始,pH调至7.00(此处一般通过CO2和NaOH来调节,一般仪器设置好后会自动调节),工作范围6.90~7.10;温度调整至32℃,工作范围31.5~32.5℃。
(6)216±2h时补料(约第九天),补充CD Efficent Feed C(浓度为79.6g/L)(3号培养基),添加的量为1号培养基和2号培养基总体积的10%。
(7)第十二天,收获细胞发酵液。具体细胞发酵液的纯化见本发明人提交的申请号为201710343544.1的发明专利申请。
实施例3 15L生物反应器与摇瓶平行发酵比较实验
为了比较15L生物反应器与摇瓶发酵的差异,我们利用15L生物反应器与摇瓶平行发酵,并比较上述两种发酵过程的细胞密度、活力及蛋白的产量。133D-B表示15L生物反应器发酵,发酵体积为10L,搅拌速度150r/min;133D表示1L摇瓶发酵,发酵体积为250ml。
活细胞密度分析如图1所示,133D-B与133D生长趋势相近。133D-B最高活细胞密度(1.28×107VC/ml)比133D(8.1×106VC/ml)高。
细胞活力分析如图2所示,两组细胞活力无明显差别,均在80%以上。
蛋白鉴定通过Werstern Blotting检测第12日E2蛋白的表达(图3)。结果显示,细胞株表达的蛋白与阳性对照一致,证明表达的蛋白为猪瘟E2蛋白。
蛋白表达量检测(参见表1):HPLC检测发酵上清E2蛋白表达量,均不低于1g/L,生物反应器发酵的蛋白表达量远高于摇瓶发酵。
表1
Figure BDA0001377070280000051
实施例4不同培养基发酵比较实验
为了比较不同培养基对发酵培养的影响,我们利用15L生物反应器进行了四次发酵,具体发酵参见实施例1和实施例2(除了培养基不同以外,其他条件一致),具体培养基信息和猪瘟E2蛋白表达产量参见表2所示:
表2
Figure BDA0001377070280000052
其中,60%CD:60%CD CHO+40%EX-CELL 302;100%M:100%Max P CHO 100;60%D:60%Dynamis+40%EX-CELL 302;60%F:60%CD FortiCHO+40%EX-CELL 302;CD:CDEfficient Feed C。
通过比较133B,133M,133C,133F,在其它条件相同的情况下,133C表达量最高,即60%Dynamis+40%EX-CELL 302作为基础培养基(2号培养基),CD Efficient Feed C作为补料培养基(3号培养基)时,猪瘟E2蛋白表达产量相对最高。
实施例5不同补料(时间和体积)发酵比较实验
为了比较不同补料对发酵培养的影响,我们利用15L生物反应器进行了三次发酵,具体发酵参见实施例1和实施例2(除了补料不同以外,其他条件一致),具体培养基信息和猪瘟E2蛋白表达产量参见表3所示:
表3
Figure BDA0001377070280000061
此处基础培养基体积为1号培养基和2号培养基的总体积;第4天具体时间为96±2h,第9天具体时间为216±2h;第3天具体时间为72±2h,第6天具体时间为144±2h,第9天具体时间为216±2h;第5天具体时间为120±2h,第8天具体时间为192±2h,第11天具体时间为264±2h。
通过比较133#4,133#6,133#8,在其它条件相同的情况下,133#4表达量最高,即在第4天和第9天补料,每次补料体积为基础培养基体积的10%,猪瘟E2蛋白表达产量相对最高。
实施例6基础培养基中是否含MSX发酵比较实验
为了比较MSX对发酵培养的影响,我们利用15L生物反应器进行了两次发酵,具体发酵参见实施例1和实施例2(除了基础培养基中是否含有MSX不同以外,其他条件一致),具体培养基信息和猪瘟E2蛋白表达产量参见表4所示:
表4
Figure BDA0001377070280000062
通过比较133P,133N,在其它条件相同的情况下,133N表达量最高,即基础培养基中不含有MSX(25μM),猪瘟E2蛋白表达产量相对最高。
实施例7不同时间降温和降pH发酵比较实验
为了比较不同时间降温和降pH对发酵培养的影响,我们利用15L生物反应器进行了三次发酵,具体发酵参见实施例1和实施例2(除了降温和降pH时间不同以外,其他条件一致),具体培养基信息和猪瘟E2蛋白表达产量参见表5所示:
表5
Figure BDA0001377070280000071
通过比较133#1,133#2,133#3,在其它条件相同的情况下,133#2表达量最高,即在第5天降温和降pH,猪瘟E2蛋白表达产量相对最高。
实施例8使用实施例1和2的方法发酵培养高效分泌表达其他目的蛋白的CHO细胞株
将实施例1和实施例2的方法应用到表达PEDV-S蛋白的3C5株CHO细胞(具体构建方法详见本发明人提交的申请号为201710242260.3的发明专利申请)的发酵培养中,经过发酵培养,发现使用本方法能够大大提高PEDV-S蛋白的表达产量,即原来的摇瓶发酵产量约为1g/L,使用该方法后表达产量提高到约1.3g/L。
将实施例1和实施例2的方法应用到表达BVDV-E2蛋白的GS-4A2株CHO细胞(具体构建方法详见本发明人提交的申请号为201611208261.8的发明专利申请)的发酵培养中,经过发酵培养,发现使用本方法能够大大提高BVDV-E2蛋白的表达产量,即原来的摇瓶发酵产量约为0.5g/L,使用该方法后表达产量提高到约1.1g/L。
将实施例1和实施例2的方法应用到表达IBRV-gD蛋白的2A2株CHO细胞(具体构建方法详见本发明人提交的申请号为201710023620.0的发明专利申请)的发酵培养中,经过发酵培养,发现使用该方法对IBRV-gD蛋白的表达产量提高的不明显,即原来的摇瓶发酵产量约为2-3g/L,使用本方法后表达产量提高到约2.2-3.2g/L。可能原因是摇瓶发酵本身的表达产量就很高,想在此基础上面再大大提高表达产量很难或不显著。
通过将实施例1和实施例2的培养条件在表达其他目的蛋白的CHO细胞株的发酵培养中的实践,发现该培养方法也很适合表达其他目的蛋白的CHO细胞株的发酵培养。因此其他的CHO细胞株可以在此培养条件的基础上进一步优化适合本细胞株的发酵培养条件,有利于加快其他CHO细胞株的工业化生产进程。
本发明通过上面的实施例进行举例说明,但是,应当理解,本发明并不限于这里所描述的特殊实例和实施方案。在这里包含这些特殊实例和实施方案的目的在于帮助本领域中的技术人员实践本发明。任何本领域中的技术人员很容易在不脱离本发明精神和范围的情况下进行进一步的改进和完善,因此本发明只受到本发明权利要求的内容和范围的限制,其意图涵盖所有包括在由附录权利要求所限定的本发明精神和范围内的备选方案和等同方案。

Claims (5)

1.一种分泌表达猪瘟E2蛋白或BVDV-E2蛋白的CHO细胞株的培养方法,其特征在于,所述培养方法包括以下步骤:
1)将分泌表达猪瘟E2蛋白或BVDV-E2蛋白的CHO细胞株在无血清培养基中逐级放大培养,所述无血清培养基为Dynamis和EX-CELL 302且含有25μM MSX,所述Dynamis和所述EX-CELL 302体积比为6:4;
2)将放大培养后的细胞转入生物反应器中在无血清培养基中进行发酵培养,所述无血清培养基为Dynamis和EX-CELL 302且不含有25μM MSX,所述Dynamis和所述EX-CELL 302体积比为6:4;所述发酵培养的初期培养温度为36.5~37.5℃,pH为7.05~7.25;从发酵培养的120±2h开始,将培养温度下调至31.5~32.5℃,并将pH下调至6.90~7.10,其中,需在96±2h和216±2h时添加无血清培养基,在96±2h和216±2h时添加的无血清培养基为CDEfficent Feed C,所述CD Efficent Feed C浓度为79.6g/L;每次添加的所述CD EfficentFeed C的体积为步骤1)中的所述无血清培养基和步骤2)中的所述无血清培养基的总体积的10%;在整个发酵培养的过程中,控制溶氧为20%~60%;在生物反应器中发酵的第12天后,收获细胞发酵液。
2.根据权利要求1所述的培养方法,其特征在于,步骤1)中,逐级放大培养时每48~72小时进行传代摇瓶培养,经过300ml、1.8L摇瓶培养扩增后,转入生物反应器中进行发酵培养,所述传代摇瓶培养时摇床设置的条件为37℃,100rpm,5%CO2
3.根据权利要求1或2所述的培养方法,其特征在于,步骤1)中,逐级放大培养过程中,每次传代时细胞密度为1~3×106VC/ml,接种时细胞密度为0.2~0.4×106VC/ml。
4.根据权利要求1所述的培养方法,其特征在于,步骤2)中,发酵培养的整个过程中,控制溶氧为40%。
5.根据权利要求1所述的培养方法,其特征在于,步骤2)中,发酵培养的整个过程中,控制葡萄糖的浓度为2.5~4g/L。
CN201710687334.4A 2017-08-11 2017-08-11 高效分泌表达猪瘟e2蛋白的cho细胞株的培养方法及其应用 Active CN107974432B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710687334.4A CN107974432B (zh) 2017-08-11 2017-08-11 高效分泌表达猪瘟e2蛋白的cho细胞株的培养方法及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710687334.4A CN107974432B (zh) 2017-08-11 2017-08-11 高效分泌表达猪瘟e2蛋白的cho细胞株的培养方法及其应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN107974432A CN107974432A (zh) 2018-05-01
CN107974432B true CN107974432B (zh) 2021-04-23

Family

ID=62012306

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201710687334.4A Active CN107974432B (zh) 2017-08-11 2017-08-11 高效分泌表达猪瘟e2蛋白的cho细胞株的培养方法及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN107974432B (zh)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109468268B (zh) * 2018-11-26 2020-08-14 广州伯尼兹生物科技有限公司 一种培养hek-293t细胞株高效分泌表达猪瘟e2蛋白的方法及应用
CN117305393B (zh) * 2023-11-28 2024-02-27 金宇保灵生物药品有限公司 提高csfv-e2蛋白表达量的培养基的应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102382794A (zh) * 2010-09-01 2012-03-21 山东新时代药业有限公司 一种哺乳动物细胞的灌流培养方法
CN102443565A (zh) * 2010-09-30 2012-05-09 成都康弘生物科技有限公司 一种适于培养cho细胞的培养基及其培养工艺
CN103320390A (zh) * 2013-06-17 2013-09-25 齐鲁制药有限公司 一种大规模哺乳动物工程细胞培养方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102382794A (zh) * 2010-09-01 2012-03-21 山东新时代药业有限公司 一种哺乳动物细胞的灌流培养方法
CN102443565A (zh) * 2010-09-30 2012-05-09 成都康弘生物科技有限公司 一种适于培养cho细胞的培养基及其培养工艺
CN103320390A (zh) * 2013-06-17 2013-09-25 齐鲁制药有限公司 一种大规模哺乳动物工程细胞培养方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Production of Classical Swine fever Virus Envelope Glycoprotein E2 as Recombinant Polyhedra in Baculovirus-infected Silkworm Larvase;Kwang Sik LEE,et al;《Mol Biotechnol》;20120331;第50卷;211-220 *
稳定表达猪圆环病毒2型Cap蛋白的CHO-K1细胞系的建立及免疫原性分析;武乐伟,吴素芳 等;《畜牧兽医学报》;20191231;第50卷(第5期);1056-1063 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN107974432A (zh) 2018-05-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN100335619C (zh) 大规模生产病毒抗原的方法
CN110237246B (zh) 一种全悬浮细胞培养禽流感(h9)灭活疫苗的方法
CN107460156B (zh) 无血清全悬浮mdck细胞株及其在生产流感病毒中的应用
RU2007119719A (ru) Не содержащая животных белков среда для культивирования клеток
CN114317405B (zh) 无血清全悬浮培养型f81细胞系及其构建方法与应用
CN107299078B (zh) 一株适应全悬浮培养的猫肾细胞系f-81 s及其应用
CN107974432B (zh) 高效分泌表达猪瘟e2蛋白的cho细胞株的培养方法及其应用
CN106148296A (zh) 一种重组谷氨酰胺转氨酶的生产方法
CN107841482B (zh) Mdck细胞无血清悬浮培养技术生产h9亚型流感疫苗
CN110484465B (zh) 一种vbnc细菌的复苏培养基及其制备方法与应用
WO2022095987A1 (zh) 一种通过灌流培养工艺制备腺病毒载体疫苗的方法
CN114736871A (zh) 一种腺病毒包装wayne293 lvpro动物细胞培养方法
CN103937748B (zh) 可稳定表达人tmprss2蛋白的单细胞自悬浮生长mdck细胞株及其构建方法与应用
CN102406927A (zh) 一种人二倍体细胞乙型脑炎灭活疫苗的生产方法
CN104673814A (zh) 一种来自于阴沟肠杆菌的l-苏氨酸醛缩酶及其应用
CN107858322B (zh) 一种海马原代细胞培养体系的建立方法
CN114736846A (zh) 一种提高腺病毒生产的wayne293 lvpro细胞培养基添加物及制作方法
CN112501091B (zh) 哈维氏弧菌cheA基因沉默细胞株及其应用
CN106676058A (zh) 一种bhk21悬浮细胞高密度流加培养方法及其在口蹄疫病毒增殖中的应用
CN103014166A (zh) 一种植物乳杆菌st-ⅲ耐盐基因的筛选方法
CN105950571A (zh) 一种基于鲤鱼上皮瘤细胞epc的鳜鱼传染性脾肾坏死病毒isknv的增殖方法
CN104805053A (zh) 珍珠龙胆石斑鱼吻端组织细胞系及其构建方法、应用
CN105543123A (zh) 一株生产抗氧化肽的苏云金芽孢杆菌及其筛选方法
CN104745634A (zh) 提高利用昆虫杆状病毒表达系统表达外源蛋白效率的方法
CN111979200A (zh) 一种鸭坦布苏病毒的无血清全悬浮培养方法及其在疫苗中的应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CP02 Change in the address of a patent holder

Address after: 312366 No. 1, Baichuan Road, Binhai New Area, Shaoxing City, Zhejiang Province

Patentee after: NOVO BIOTECH Corp.

Address before: 312000 5th floor, building 2, science and innovation center, 398 mahuan Road, Binhai New Town, Shaoxing City, Zhejiang Province

Patentee before: NOVO BIOTECH Corp.

CP02 Change in the address of a patent holder
CP03 Change of name, title or address

Address after: 312366 No. 1, Baichuan Road, Binhai New Area, Shaoxing City, Zhejiang Province

Patentee after: Zhejiang Hailong Biotechnology Co.,Ltd.

Country or region after: China

Address before: 312366 No. 1, Baichuan Road, Binhai New Area, Shaoxing City, Zhejiang Province

Patentee before: NOVO BIOTECH Corp.

Country or region before: China