CN107075472A - 重置多能干细胞 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了基于包含抑制剂组合的培养基的使用，重置或维持“幼稚”或“基态”状态的人干细胞的方法和材料。示例性的幼稚培养基包含PKC抑制剂、MEK抑制剂。还提供了获得或增殖此类细胞的方法、使用这些方法获得的细胞、和新型的培养基，其可以在这些方法中使用。

Description

重置多能干细胞
技术领域
本发明涉及幼稚状态的细胞、用于将人多能干细胞重置为更为幼稚的状态的方法、维持幼稚状态的细胞的方法、通过所述方法获得的细胞以及用于所述方法的材料。
背景技术
基于干细胞的技术已经鉴定为提供治疗和非治疗应用的巨大潜力。
人多能干细胞(PSC)，无论从超数胚(Reubinoff等,2000；Thomson等,1998)还是通过分子重程序化(Takahashi等,2007；Yu等,2007)衍生，显示与模范的小鼠胚胎干细胞(ESC)相比的几种区别性特征。最初认为是无关紧要的物种特异性特征(Thomson等,1998)，越来越多的证据提示这些差异反映了离散的发育身份(Rossant,2008；Smith,2001)。值得注意的是，植入后上胚层干细胞(EpiSC)的衍生(Brons等,2007；Tesar等,2007)证明可以从小鼠获得多能干细胞的备选表型。
小鼠ESC自我更新受到阻断成纤维细胞生长因子(FGF)受体或下游促细胞分裂剂活化蛋白激酶(Erk)信号传导促进(Burdon等,1999；Ying等,2008)，并且由细胞因子白血病抑制剂量因子(LIF)刺激(Smith等,1988；Williams等,1988)。将Erk途径的和糖原合酶激酶-3(GSK3)的两种抑制剂(2i)与白血病抑制因子(LIF)(2iL)组合提供了一种限定性的培养系统，其对测试的所有小鼠和大鼠品系的ESC是有效的，支持从解离细胞的有效衍生和克隆扩充(Boroviak等,2014；Buehr等,2008；Li等,2008；Wray等,2010；Ying等,2008)。
这种无血清且无生长因子的培养配制剂也是高选择性的；大多数细胞类型(包括EpiSC和人PSC)在单独的2iL中分化或死亡。提出了2iL中的ESC的稳定性和相对同质性(Wray等,2010)代表紧密反映在成熟胚泡中新形成的上胚层的发育基态状态(Boroviak等,2014；Nichols和Smith,2009)。WO2009/101407中还报告了鼠细胞朝向幼稚状态的重程序化(reprogramming)。
EpiSC与原始条纹期后期上胚层群体相关，并且与人PSC一样，在细胞系间和细胞系内都是异质的(Kojima等,2014；Tsakiridis等,2014)。与基态状态细胞不同，EpiSC和人PSC当解离时较差传代，导致低克隆效率(Thomson等,1998)，并且依赖于生长因子，特别是成纤维细胞生长因子(FGF)和TGFβ/激活蛋白(Amit等,2000；Guo等,2009；Vallier等,2005)。相反，它们对LIF无响应。
将小鼠EpiSC转化为ESC可以为生成人基态状态PSC提供了范例(Guo等,2009)。早期试验(Hanna等,2010；Wang等,2011)注意到ESC样形态，但是在缺乏连续转基因表达或选择的情况下，细胞似乎不稳定。新近，已经提出复杂的培养配制剂以允许具有改变特征的人PSC的增殖(Chan等,2013；Gafni等,2013；Ware等,2014)，但这些细胞仍然依赖于FGF、TGFβ和/或血清替代因子，并且缺乏转录控制回路的重新布线的证据。
总之，尽管对此领域很感兴趣，但是以前尚未证明稳定的“基态状态”或“幼稚”人PSC的产生。因此，可以看出，提供可重复制备的稳定的重程序化细胞将为本领域提供贡献。
因此，我们进一步调查了具有基态状态多能性特征性的表型特征和转录因子控制的人细胞的产生和稳定化。
发明内容
本发明旨在解决上述引用的技术中提及的一种或多种低效率或其它问题，并且本发明的一个目的是提供幼稚状态的细胞。
本发明的目的还在于提供将人细胞重置为幼稚状态的方法。
本发明的目的还在于提供维持幼稚状态的人干细胞的方法。
本发明还涉及提供适合于这些事物的培养基。
在下面描述的本发明的各个方面中，本发明人已经显示了，可以将人PSC重程序化成基态状态，例如使用重程序化因子和抑制剂进行。
允许增殖具有改变特征的人PSC的先前提议(Chan等,2013；Gafni等,2013；Ware等,2014)导致仍然依赖于FGF、TGFβ和/或血清替代因子的细胞。此外，本发明人已经通过转录物组分析显示了，通过这些较早的方法获得的细胞未达到基态细胞的转录状态。目前的人多能干细胞缺乏控制小鼠胚胎干细胞(ESC)的基态状态的转录因子回路/网络。
比较而言，本文中定义并且通过本发明的方法可获得或获得的细胞既是与标准人多能干细胞在全局上不同的(例如基于转录物组数据)又是细胞系间高度一致的。
因此，在一方面，本发明提供了幼稚状态的人干细胞。
Theunissen等最近的研究提示需要与激活蛋白(和有时FGF)组合的5或6种抑制剂加饲养物的复杂混合物以重编程化人细胞。此外，这项研究报告了，X染色体实际上在其XX“幼稚”细胞中是灭活的。
本发明人已经证明了，可以采用如本文中所述的适当的培养基和条件将这些人干细胞向基态重置/重编程化。本发明人还鉴定出维持重置状态的细胞的培养条件。
因而，本文中描述了将人干细胞(例如hPSC)向基态状态重程序化的方法。方法是将转录因子控制回路向基态状态重置的方法。如下文解释，方法也可以应用于来自其它物种的干细胞。
证明了本文中所述的重置/重程序化方法可重复地重置多种细胞系。此外，本发明人已经显示了，本文中所述的方法产生具有基态状态特性的稳定的细胞系。在本文中别处更详细地描述产生的细胞的特征。
因此，在一个方面，本发明提供了将细胞向“基态”或“幼稚”状态重置的方法。使细胞重置的方法也可以称为使细胞重程序化的方法。此重程序化将转录因子控制回路向基态状态多能性重置。
可以在第一重置培养基中完成幼稚状态的诱导。可以持续这种幼稚状态，并且在包含PKC抑制剂的第二幼稚培养基中增殖细胞。
本发明提供了将人干细胞重程序化为更为幼稚的状态的方法，包括：
a)提供要重程序化的人干细胞，
b)诱导更为幼稚的状态，其中诱导包括在第一培养基中培养，其中第一培养基包含MEK抑制剂，和优选地STAT3活化剂，以及任选地其它因子，
c)在第二培养基中维持细胞，其中第二培养基包括MEK抑制剂和PKC抑制剂的存在，和优选地GSK3抑制剂和STAT3活化剂，以及任选地其它因子，
d)由此获得重程序化细胞。
因此，本发明提供了将人干细胞重置为更为幼稚的状态的方法，所述方法包括：提供要重置的人干细胞；重置转录因子网络，其中重置包括在第一条件下培养细胞，其中第一条件是在MEK抑制剂和PKC抑制剂的存在，并在第二条件下维持细胞，其中第二条件包括MEK抑制剂和优选STAT3活化剂，和优选地还有GSK3抑制剂和STAT3活化剂的存在。
细胞
本发明人已经使用客观标准和功能测定法来证明将人干细胞重编程化为基态/幼稚状态的实际和实质性进展。本发明人已经证明了，基态状态多能性是人细胞独特的细胞身份。
引入术语“幼稚”和“引发的(primed’)”来描述上胚层个体发育和各自的ESC和EpiSC衍生物的早期和晚期阶段(Nichols和Smith，2009)。通常认为人PSC与引发的EpiSC比与幼稚ESC更相关(Chia等,2010；De Los Angeles等,2012)。在体外或畸胎瘤中，小鼠幼稚ES细胞和引发的EpiSC的分化潜力无可表明的差异。然而，EpiSC与hESC/iPSC一样对特定谱系表现出可变的偏差，但尽管如此它们是多能的。
转录调节物OCT4和SOX2贯穿所有其阶段构成了多能性的核心支柱(Nichols和Smith,2012；Niwa,2007；Young,2011)。这些因子是必不可少的，但不限于ESC基态状态，对于ESC基态状态也不足够。
植入前上胚层和ESC中存在的选择的一组调节物与OCT4/SOX2相互连接以赋予和维持幼稚状态。这些中最重要的是NANOG、KLF2、KLF4、ESRRB、TBX3和TFCP2L1(Dunn等,2014；Ivanova等,2006；Martello等,2013；Niwa等,2009；Ye等,2013)。除了NANOG外，这些因素以非常低的水平表达或者是EpiSC和人PSC缺乏的。
然而，令人瞩目的是，用单一组分转染EpiSC与转移到2iL结合可以点燃整个回路并重置小鼠ESC基态(Guo等,2009；Hanna等,2009；Silva等,2009)。通过形态学、生长因子独立性、克隆扩充、标志物谱、表观基因组重置和对胚泡注射嵌合体的贡献证明细胞状态转化。
除了ESRRB外，根据本发明使细胞重置诱导这些因子在人细胞中的表达。基态状态多能性身份在缺乏ESRRB的情况下较不稳固，并且单一组分TFCP2L1或KLF4的敲低引起崩溃。引入ESRRB稳定化人基态状态，如在小鼠ESC中一样，并且增加对其它因子耗竭(depletion)的抗性。
因而，在方法的一些实施方案中，例如使用表达载体将ESRRB引入细胞。
“基态”和“幼稚状态”在本文中可互换使用。本发明的细胞是幼稚状态的细胞。在本发明的方法中，将细胞重程序化到幼稚状态。使用本发明的方法重程序化的细胞可以称为“重程序化的”或“重置的”细胞。
基态状态细胞是均质多能干细胞的稳定的自我更新培养物，所述细胞在外遗传学上是消除的并且具有植入前上胚层的发育身份和功能能力。
本发明提供了幼稚状态的人干细胞。
本发明提供了重程序化人干细胞(例如hPSC)到幼稚状态的方法。
下面的实施例证明，通过本发明的方法产生的细胞(重置细胞)与基态状态/幼稚小鼠胚胎干细胞(mESC)和人上胚层ICM具有许多相似性。转录物组分析显示，生成的重置细胞既是与标准人多能干细胞在全局上不同的，又是细胞系间高度一致的。
重置细胞已经剧烈改变生长因子响应性、转换代谢活性和功能不同的基因调控网络。
根据本发明的复制或重程序化的细胞表达指示幼稚状态的基因和蛋白质。重置细胞可以表达在胚胎干细胞中维持幼稚状态的调节物。
根据本发明的幼稚状态的一种或多种重置细胞可以具有1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27或全部28种以下特征。在一些实施方案中，幼稚状态的一种或多种重置细胞具有特征1至24和28中的2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24或全部25种。
在优选实施方案中，幼稚状态的细胞的特征包括特征4和8中的一种或多种。在一些实施方案中，细胞包含特征4、5、8和9。在一些实施方案中，细胞包含特征4、5和9。一些实施方案，细胞具有特征5、8和9。在一些实施方案中，细胞具有特征4、5和6。在一些实施方案中，细胞具有特征4、8和9。在一些实施方案中，细胞具有特征4、6、8和9。在一些实施方案中，细胞具有特征1-10。在一些实施方案中，细胞具有特征4-10。在一些实施方案中，细胞具有特征4-10和13-22。
在一些实施方案中，细胞具有所有特征13-22。在一些实施方案中，细胞具有特征4、8和13-22。在一些实施方案中，细胞具有特征1和13-22。
在一些优选实施方案中，细胞具有至少5种以下特征，优选包括特征4。在一些优选实施方案中，细胞具有至少5种以下特征，包括：4、8和9；5、8和9或4和8。在一些实施方案中，细胞具有至少5种以下特征，包括特征6、9和10。
在一些实施方案中，细胞具有至少10种以下特征。在一些实施方案中，细胞具有至少15种以下特征。在优选实施方案中，细胞具有以下所有特征。
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞至少具有特征28。在一些实施方案中，幼稚状态的细胞至少具有特征4。在一些实施方案中，幼稚状态的细胞至少具有特征8。在一些实施方案中，幼稚状态的细胞至少具有特征7。
在以下特征列表中，比较特征，如增强、上调、下调和升高和降低水平是与常规的hPSC或EpiSC(例如同一起源的hPSC或EpiSC)相比。当通过如本文中所述的重置方法获得细胞时，比较可以在重置前和重置后的细胞之间。
特征1
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可在培养物中连续且克隆性自我更新并保持多能性。例如，稚细胞可在幼稚培养基中增殖，如本文中别处所述。
特征2
在一些实施方案中，幼稚状态的人细胞的全局(即全基因组)转录物组与小鼠胚胎干细胞相关，并且与小鼠移植后上胚层干细胞(EpiSC)或常规的人多能干细胞不同。
可以例如使用主成分分析来评估转录物组之间的关系。可以使用基因表达聚簇，如分层聚簇(例如使用RNA-Seq或微阵列数据)评估关系。
换言之，在一些实施方案中，幼稚状态的人细胞的全基因组转录物组与小鼠移植后的上胚层干细胞(EpiSCs)或常规的人多能干细胞的相比，更类似于小鼠胚胎干细胞的全基因组转录物组。
特征3
在一些实施方案中，幼稚状态的人细胞的全局转录物组与植入前的上胚层细胞有关，并且与植入后的上胚层不同。
换言之，在一些实施方案中，幼稚状态的人细胞的全局转录物组与植入后上胚层相比更类似于植入前上胚层。
关于特征2，可以例如使用主成分分析来评估转录物组之间的关系。可以使用基因表达聚簇，如分层聚簇(例如使用RNA-Seq或微阵列数据)评估关系。
特征4
在一个实施方案中，根据本发明的稚细胞表达了植入前上胚层特异性转录因子的mRNA和蛋白质。例如，稚细胞可以表达如下的1、2、3、4、5、6或全部：KLF2、KLF4、TFCP2L1、TBX3、REX1、GBX2和STELLA(DPPA3)。在优选的实施方案中，稚细胞培养物中至少80％、85％、90％或95％，优选至少90％的细胞表达1、2、3、4、5、6种或全部上述转录因子。
在优选的实施方案中，稚细胞另外表达一般多能性因子，如OCT4、SOX2和SALL4的mRNA和蛋白质。在优选实施方案中，与常规hPSC相比，稚细胞表达NANOG的升高的mRNA和蛋白质水平，例如升高为30-100％，如通过mRNA的qRT-PCR或RNA-seq，蛋白质的免疫染色或免疫印迹测量。例如，mRNA和/或蛋白质水平可升高至少30、35、40、50、60、70、80、90或100％。
在优选的实施方案中，稚细胞培养物中至少80％、85％、90％或95％，优选至少90％的细胞表达和/或上调这些因子。
任选地，在幼稚状态的非人细胞中表达ESRRB。
可以相对于使用本文中所述的方法向幼稚状态重程序化前的细胞或与常规hPSC比较而测量重置细胞中因子的上调。
可以使用免疫染色或免疫印迹测量蛋白质的表达。可以使用qRT-PCR或RNA-seq测量mRNA水平。
特征5
在一些实施方案中，幼稚状态的人细胞依赖于在小鼠胚胎干细胞中定义的关键转录因子，特别是TFCP2L1和KLF4。因而，TFCP2L1和KLF4的扰动(例如通过突变、敲低或敲除)可以导致分化或死亡。
例如，当用GSK3抑制剂、MEK抑制剂、PCK抑制剂和Lif培养细胞的情况下扰动TFCP2L1和KLF4时，细胞死亡。如果将细胞转移到FGF/KSR，则它们恢复到常规的hPSC特征。
在一些实施方案中，幼稚状态的人细胞依赖于TFCP2L1、KLF4、KLF2、NANOG和TBX3中的一种或多种。因而，这些因子中的一种或多种的扰动可能导致细胞分化或死亡。
这些因子(例如TFCP2L1和KLF4)的扰动对常规的人多能干细胞几乎没有或没有影响。
特征6
在一些实施方案中，幼稚状态的人细胞表现出TFE3的核定位。在优选实施方案中，幼稚状态的细胞中的至少45％、50％、55％、60％、70％或更多表现出TFE3的核定位。在优选实施方案中，幼稚状态的细胞的超过50％表现出TFE3的核定位。例如，可以通过免疫染色证明TFE3的核定位。
特征7
在一些实施方案中，幼稚状态的人细胞不表达或以低水平表达通常在常规人多能干细胞中表达的早期谱系标志物。例如，幼稚状态的人细胞不表达或仅以低水平表达标志物如AFP、EOMES和/或BRACHURY。在优选的实施方案中，谱系标志物的mRNA以小于15、12、10、9、8、5、2或1，优选小于10 FPKM(每百万定位读段每千碱基转录物的片段)的水平表达。
特征8
在一些实施方案中，人稚细胞具有活性线粒体呼吸。常规的PSC没有此种特性，而小鼠ESC利用线粒体氧化磷酸化和糖酵解两者。
可以通过氧消耗率(OCR)测量线粒体呼吸。
如通过细胞外通量分析测量的基础OCR在幼稚状态的细胞中可为在常规人多能干细胞中的至少2倍高。在非偶联试剂如FCCP存在下的最大OCR可为至少4倍高。
幼稚状态的细胞具有实质性的备用呼吸能力，例如在FCCP的存在下，它们可以具有OCR的4-10倍增加。在FCCP的存在下，常规的人多能干细胞仅显示OCR的边际增加。
因而，在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可以利用线粒体氧化磷酸化和糖酵解两者。幼稚状态的细胞可以在2-脱氧葡萄糖或低葡萄糖的存在下自我更新。常规的hPSC在这些条件下不更新。
特征9
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞具有全基因组低甲基化。优选地，全基因组甲基化水平为hPSC的甲基化水平的70％、60％、50％、40％、30％或更少，优选为50％或更少。
低甲基化是在常规PSC中丧失(Guo等,2014)，但在本发明的重置细胞中重演的人胚胎中原始细胞的独特性质。必须认为全局脱甲基化对于重置为原始幼稚状态(其根据定义是外遗传学上消除的)是必需的。
根据本发明的重置细胞可以显示响应使用本发明的方法的重程序化的全局脱甲基化。例如，5-甲基胞嘧啶(5mC)的免疫荧光染色在重置细胞中比在尚未重程序化的细胞中弱。
重置细胞可以显示CpG全基因组的甲基化的至少10-90％，例如15-80、20-70、30-60、40-50，优选约至少50％的降低。在一些实施方案中，甲基化降低到60％或更少，优选降低至30-40％。可与常规hPSC的甲基化水平相比测量甲基化水平。
可以通过核苷质谱法或通过与深度测序偶联的亚硫酸氢盐修饰(B seq)而量化甲基化水平。
特征10
根据本发明的幼稚状态的细胞可以具有比hPSC或EpiSC更低水平的与基因沉默相关的组蛋白修饰。例如，降低的H3K27me3和H3K9me3的水平。
可以通过定量免疫染色或与深层测序偶联的染色质免疫沉淀(ChIP-seq)测量组蛋白修饰水平。
幼稚状态的雌性细胞可显示X染色体的可逆外遗传学消除，更具体为X染色体的脱甲基化，以及XX重置细胞中，优选在80％以上的XX细胞中缺乏H3K27me3焦点(foci)。在一些实施方案中，幼稚状态的逆转(例如通过KSR/FGF中的培养)在大多数细胞中恢复H3K27me3焦点(优选至少50％、60％或70％以上)。
特征11
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞能够掺入宿主胚胎内细胞团(ICM)和植入前上胚层细胞以形成胚胎嵌合体。可以通过在扩充胚泡期在ICM内的活细胞的存在显现掺入的细胞。
特征12
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可以定植植入后的上胚层和由相同或密切相关的物种形成的嵌合体中的衍生组织。
特征13
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可以在缺乏可检测的Erk/MAP激酶信号传导的情况下自我更新。可以使用针对磷酸化的Erk1和Erk2的免疫印迹来检测信号传导。在缺乏Erk/MAP激酶信号传导的情况下，磷酸化Erk1和Erk2是不可检测的。换言之，在完全抑制Erk/MAP激酶信号传导的存在下，幼稚状态的细胞可以自我更新。
特征14
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可以在生长因子受体酪氨酸激酶信号传导抑制的存在下自我更新。
特征15
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可以在TGF-β/激活蛋白信号传导抑制的存在下自我更新。换言之，幼稚状态的细胞可以不依赖于激活蛋白/TGFβ增殖。例如，在抑制剂A83-01的存在下，重置细胞可以增殖。
特征16
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可以在PKC抑制或敲低的存在下，特别是非典型的PKC(aPKC)抑制，特别是aPKC iota抑制的情况下自我更新。
特征17
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可在(GSK3)糖原合酶激酶-3活性的部分抑制的存在下自我更新。例如，幼稚状态的细胞可在GSK3抑制剂的存在下，例如当抑制剂的浓度为约0.1-5μM，优选约0.5-2μM，优选约1μM时自我更新。
特征18
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可以在白血病抑制因子(LIF)或其它STAT3激动剂/激活剂的存在下自我更新。
功能19
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可以在没有Rho相关激酶抑制(ROCKi)情况下从解离的单细胞自我更新。换言之，幼稚状态的细胞可以在不包含ROCK抑制剂的培养物中自我更新。
特征20
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可在缺乏血清或血清替代物的情况下自我更新。
特征21
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可在缺乏饲养细胞的情况下自我更新
特征22
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可以在缺乏转基因表达或其它遗传扰动的情况下自我更新。例如，幼稚状态的细胞可以在缺乏外源重程序化因子表达的情况下自我更新。
特征23
实施例说明了通过本发明的方法产生的重置细胞是稳定的。优选地，它们在长期传代中显示正常核型(即二倍体)的保留。
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞在超过5、10、15、20、25、30、35、40、50或更多群体倍增中保留二倍体核型，优选不具有重排、插入或缺失，优选地，幼稚状态的细胞在超过40个群体倍增中保留二倍体核型。
特征24
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞在激活蛋白和Erk/MAP激酶信号传导的生长因子刺激的存在下分化成常规引发的多能表型。任选地，可以通过丧失植入前上胚层(或“基态状态”)转录因子和/或通过在mRNA和蛋白质水平上的谱系标志物的上调而测量这种变化，如本文中所述。
特征25
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞能够在体外分化成原生殖细胞(primordialgerm cells)以及体细胞胚层。
特征26
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可以通过从植入前的上胚层直接转化来体外建立连续培养。换言之，可以从植入前的上胚层直接获得幼稚状态的细胞以进行培养。
特征27
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞可通过其形态鉴定。细胞可以具有紧密包装的圆顶外观。细胞也可以描述为形成紧凑的折射(refractile)集落。小鼠ESC具有紧密包装的圆顶外观。
特征28
在一些实施方案中，幼稚状态的细胞具有从头甲基转移酶(DNMT3a和DNMT3b)的表达的降低。在优选的实施方案中，与常规人多能干细胞相比，mRNA和蛋白质水平两者都降低。
在优选的实施方案中，降低是至少2倍，任选地为3倍。换言之，DNMT3a和DNMT3b的表达的降低可为常规人多能干细胞的表达的至少一半。
综上所述，本发明提供了幼稚状态下的人干细胞，其中，幼稚状态的特征在于以下特征(“幼稚状态特征”)的至少1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27或全部：
a)在培养物中持续且克隆性自我更新并保持多能性的能力，
b)与小鼠胚胎干细胞相关并且与小鼠植入后上胚层干细胞(EpiSC)或常规人多能干细胞不同的全基因组转录物组，如通过RNA-seq或微阵列数据的分层聚簇或主成分分析测量，
c)与植入前上胚层相关并且与植入后上胚层不同的全基因组转录物组，如通过RNA-seq或微阵列数据的分层聚簇或主成分分析测量，
d)植入前上胚层特异性转录因子的mRNA和蛋白质的表达，任选下列1、2、3、4、5、6或全部：KLF2、KLF4、TFCP2L1、TBX3、REX1、GBX2和STELLA(DPPA3)，以及一般多能性因子，如OCT4、SOX2和SALL4的mRNA和蛋白质的表达，以及NANOG的mRNA和蛋白质水平的升高，如分别通过qRT-PCR和免疫染色或免疫印迹测量；
e)依赖小鼠胚胎干细胞中定义的关键转录因子，特别是TFCP2L1和KLF4，如通过例如敲低或敲除后的细胞崩溃证明；
f)通过免疫染色证明的在例如超过50％细胞中的TFE3的核定位；
g)通常在常规人多能干细胞中表达的早期谱系标志物，如AFP、EOMES和/或BRACHURY的低水平表达(例如小于10FPKM)或表达缺乏；
h)活性线粒体呼吸，例如通过氧消耗率(OCR)测量；
i)通过核苷质谱术或亚硫酸氢盐修饰与深度测序偶联(BS-seq)测量的至低于50％的全基因组低甲基化；
j)与常规的人多能干细胞或体细胞相比更低的与基因沉默相关的组蛋白修饰水平，如H3K27me3和H3K9me3的水平降低，如通过定量免疫染色或染色质免疫沉淀与深度测序偶联(ChIP-seq)测定；
k)能够掺入宿主胚胎内细胞团和植入前上胚层中以形成胚胎嵌合体，例如如通过在扩充的胚泡阶段时ICM内的活细胞的存在显现；
l)能够在导入相同或紧密相关物种的植入前胚胎后定殖胎儿和成体嵌合体中的植入后上胚层和衍生组织；
m)在缺乏可检测的Erk/MAP激酶信号传导的情况下自我更新，例如如通过磷酸化的Erk1和Erk2的免疫印迹测量；
n)在生长因子受体酪氨酸激酶信号传导抑制的存在下自我更新；
o)在TGFbeta/激活蛋白信号传导抑制的存在下自我更新；
p)在PKC抑制或敲低的存在下自我更新；
q)在部分抑制(GSK3)糖原合酶激酶-3活性的存在下自我更新；
r)在STAT3激动剂，如LIF的存在下自我更新；
s)在没有Rho相关激酶抑制(ROCKi)的情况下从解离的单细胞自我更新；
t)在缺乏血清或血清替代品的情况下自我更新；
u)在缺乏饲养细胞的情况下自我更新；
v)在缺乏转基因表达或其它遗传扰动的情况下自我更新；
w)在长期传代，例如在超过40个群体倍增中保留二倍体核型而不重排；
x)在激活蛋白和Erk/MAP激酶信号传导的生长因子刺激的存在下分化成常规引发的多能表型，例如通过在mRNA和蛋白质水平上基态状态转录因子的下调和谱系标志物的上调测量；
y)能够在体外分化成原生殖细胞以及体细胞胚层；
z)通过从植入前上胚层直接转换而在体外建立连续培养；
aa)培养物具有紧密包装的圆顶外观；
bb)与常规的人多能干细胞相比在mRNA和蛋白质水平两者上从头甲基转移酶(DNMT3a和DNMT3b)的表达的大于两倍降低。
下面描述了幼稚状态的细胞，包括通过本文中所述的方法获得的幼稚状态的细胞的其它任选特征。除了上述那些特征之外，幼稚状态的细胞可具有一种或多种以下特征。
在一个实施方案中，与重程序化前的细胞相比，一种或多种以下因子的表达在重置细胞中上调：
NANOG
KLF2
KLF4
ESRRB
TBX3
TFCP2L1
KLF5
DPPA3(STELLA)
ZFP42(REX1)
GBX2
SALL4
DNMT3L
这些因子的表达指示幼稚状态。因而，除了OCT4、SOX2和NANOG之外，幼稚状态的细胞表达上述一种或多种因子。
在优选实施方案中，2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13种或全部上述因子的表达在重置细胞中上调。在一些实施方案中，以下1、2、3、4、5、6种或全部在重置细胞中上调：OCT4、SOX2、NANOG、KLF2、KLF4、TBX3和TFCP2L1。
在一些实施方案中，在重置细胞中诱导NANOG、KLF2、KLF4、TBX3和TFCP2L1的表达。
在特别优选的实施方案中，根据本发明的重置细胞表达上调水平的内源性KLF4和NANOG。在特别优选的实施方案中，根据本发明的重置细胞表达上调水平的内源TFCP2L1和KLF4。在其它优选实施方案中，重置细胞表达上调水平的NANOG、TFCP2L1和KLF4。
在一些实施方案中，TET1也是上调的。
与未处理的细胞相比，本发明的幼稚状态的一种或多种重置细胞也可以表现出谱系特异性基因的下调。例如，与重程序化前的hPSC相比，一种或多种以下因子的表达在重置细胞中下调。例如，一种以上的下列谱系特异性基因可以是下调的：
ACTC1
CER1
FLT1
NES
NOG
EOMES FOXA2
CTNNB1
BMP2
BRACHYURY
幼稚状态的细胞表达一种或多种指示幼稚状态的上述因子。幼稚状态的细胞也可以具有谱系特异性基因的下调表达，例如下面列出的一种或多种谱系特异性基因的下调。
使用本文中所述方法重置的细胞可以在没有ERK信号传导的情况下连续自我更新，并且在表型上是稳定的。
重置细胞可以在体外分化并形成拟胚体(embroid bodies)。重置细胞可能够分化成所有三种胚层的细胞。
重置细胞可以在体内形成畸胎瘤，例如当整合入小鼠时。
与尚未重程序化的人多能干细胞相比，可观察到性质的变化。
幼稚状态的细胞可表达选自下组的一种或多种(例如2、3、4、5、6或7种)表面标志物：HAVCR1(CD365)、CCR8(CDw198)、ITGAM(CD11B)、IL6R(CD126)、PVR(CD155)、ADGRE5(CD97)和CD53。
在一方面，本发明提供通过本文中所述的方法获得的细胞。
幼稚状态的细胞可以具有上文对重置细胞描述的一种或多种性质。例如，细胞可具有对重置细胞描述的2、3、4、5、6、7、8、9、10、12或更多种性质。换言之，它们可能具有以下一种或多种性质：
-一种或多种在胚胎干细胞中维持幼稚状态的调节物的上调
-一种或多种列出的因子的上调，如上文在重置细胞中上调
-谱系特异性因子的下调
-紧密包装的圆顶外观
-紧凑的折射集落
-体外分化的能力
-能够胚层规格
-利用线粒体氧化磷酸化和糖酵解两者
-全局低甲基化
-X染色体的脱甲基化及CGI脱甲基化中间水平的降低
-组蛋白3赖氨酸9(H3K9me3)的三甲基化的较低水平
-在体内形成畸胎瘤的能力
在另一方面，本发明提供了重置细胞，其具有本文中描述的幼稚状态的一种或多种重置细胞的一种或多种特性。特别地，重置细胞可以表达在胚胎干细胞中维持幼稚状态的调节物。
诱导幼稚状态
可以使用本文中所述的方法获得幼稚状态的本发明的细胞。
幼稚状态的诱导在本文中也可以称为重置为幼稚状态。
诱导更为幼稚的状态可以包括在细胞中表达重程序化因子。提及重程序化因子是指在细胞中表达时导致它被重程序化的因子。通常，重程序化因子包含一种或多种转录因子。
在一些实施方案中，幼稚状态的诱导包括表达KLF4、NR5a1KLF17、NANOG和KLF2中的1、2、3、4或全部。
本发明人已经发现，两种组分NANOG和KLF2的短期表达足以点燃网络的其它要素并且重置人多能状态。
在本发明中，重程序化因子可包含Krüppel样因子2(KLF2)和NANOG，基本上由Krüppel样因子2(KLF2)和NANOG组成或由Krüppel样因子2(KLF2)和NANOG组成。优选地，重程序化因子是人因子。
在这些实施方案中，第一培养基可还包含糖原合酶激酶3(GSK3)抑制剂。
第一培养基还可包含成纤维细胞生长因子(FGF)受体抑制剂，例如PD173074。
第一培养基也可以包含PKC抑制剂。
优选地，STAT3(信号转导物和转录活化剂3)活化剂是LIF，最优选人LIF(hLIF)。第一培养基可含有LIF受体或导致STAT3活化的其它受体的备选激动剂，如IL-6和可溶性IL-6受体或制瘤素(oncostatin)M。
本发明提供了将人干细胞重程序化为更为幼稚的状态的方法，包括：
a)提供要重程序化的人干细胞，
b)诱导更为幼稚的状态，其中诱导包括：表达或引入重程序化因子，其中重程序化因子包含NANOG和KLF2；并在第一培养基中培养，其中第一培养基包含MEK抑制剂和优选地STAT3活化剂，
c)在第二培养基中维持细胞，其中第二培养基包含PKC抑制剂、MEK抑制剂和任选地STAT3活化剂和GSK3抑制剂，
d)由此获得重程序化细胞。
可以在第一培养基中培养细胞之前在细胞中表达重程序化因子。
在转移到第一培养基之前，可以在常规的PSC培养基，如无血清培养基，优选具有成纤维细胞生长因子(FGF)的无血清培养基中培养细胞。例如可以使用FGF/KSR培养基。FGF/KSR是含有敲除血清置换(KSR)和FGF的常规PSC培养基。更详细地，FGF/KSR包括：具有10ng/ml bFGF和20％KSR的MEM/F12，补充有100mM 2-巯基乙醇、MEM非必需氨基酸、2mM L-谷氨酰胺。无血清培养基可以由Rho相关蛋白激酶抑制剂(ROCKi)补充。
当细胞在无血清培养基(例如FGF/KSR)中时，可表达重程序化因子(例如NANOG和KLF2)。可在重程序化因子表达已经开始后长达6天，例如在重程序化因子表达已经开始后长达5天、长达4天、长达3天将细胞转移到第一培养基。优选地，在重程序化因子表达已经开始后半天到两天半，更优选在重程序化因子表达已经开始后1-2天，例如1或2天，将细胞转移到第一培养基。
在一个实施方案中，将细胞诱导到更为幼稚的状态包括在细胞中表达重程序化因子，其中重程序化因子包含NANOG和KLF2，并在重置培养基中培养细胞，其中重置培养基包含MEK抑制剂、GSK3抑制剂和STAT3活化剂。
在另一个实施方案中，将细胞诱导成更为幼稚的状态包括在细胞中表达重程序化因子，其中重程序化因子包含NANOG和KLF2，并在重置培养基中培养细胞，其中重置培养基包含MEK抑制剂、FGF受体抑制剂和STAT3活化剂。
在本文别处更详细地讨论在细胞中表达重程序化因子的方法。
本发明人已经显示，可能在没有NANOG和KLF2或其它重程序化因子的外源表达的情况下将细胞向基态状态重置。在缺乏外源重程序化因子的情况下，优选第一培养基还包含组蛋白脱乙酰酶抑制剂(HDACi)，例如丙戊酸或丁酸钠。优选地，HDACi的浓度为0.1-1mM，优选为0.5-1mM。
在缺乏重程序化因子的情况下，优选的是培养基为基于E6的培养基。
因此，在一些实施方案中，本发明提供了将人干细胞重置为更为幼稚的状态的方法，包括：
a)提供要重程序化的人干细胞，
b)诱导更为幼稚的状态，其中诱导包括在第一培养基中培养，其中第一培养基包含MEK抑制剂、HDAC抑制剂和优选地STAT3活化剂，
c)在第二培养基中维持细胞，其中第二培养基包含PKC抑制剂、MEK抑制剂和任选地GSK3抑制剂和STAT3活化剂，
d)由此获得重程序化细胞。
在一个优选的实施方案中，第一培养基还包含端锚聚合酶抑制剂，例如端锚聚合酶-1抑制剂。在一些实施方案中，端锚聚合酶抑制剂是XAV939。第一培养基也可以包含PKC抑制剂。
在一些实施方案中，第二培养基还包含ROCK抑制剂，例如Y27632。
在一些实施方案中，第一培养基还包含HDAC抑制剂，例如丙戊酸钠盐或丁酸钠。在优选的实施方案中，第一培养基包含丙戊酸钠盐。
在一些实施方案中，HDAC抑制剂以约0.05-10mM，例如0.1-5mM、0.2-2mM，优选约0.5-1mM的浓度存在。
在优选实施方案中，第一培养基不含FGF。在一些实施方案中，第一培养基不含激活蛋白。在一些实施方案中，第一培养基不含FGF或激活蛋白。
在一个实施方案中，诱导更为幼稚的状态包括在重置培养基中培养细胞，其中重置培养基包括以下一种或多种：MEK抑制剂、端锚聚合酶抑制剂、HDAC抑制剂、PKC抑制剂和STAT3活化剂。
在一个实施方案中，诱导更为幼稚的状态包括在重置培养基中培养细胞，其中重置培养基包含MEK抑制剂、端锚聚合酶抑制剂、HDAC抑制剂和STAT3活化剂。优选地，在本实施方案中，在诱导步骤中不表达外源重程序化因子。
“重置”培养基
“第一培养基”在本文中也可称为“重置”或“诱导”培养基。在第一培养基中培养细胞也可称为在第一条件下培养细胞。这些术语和短语都可互换使用。
第一培养基本身构成本发明的一个方面，其在本文中描述的重置方法中的用途亦然。
第一培养基可以包含基础培养基(如N2B27或mTeSRTM-E6)，其补充有例如以下一种、两种、三种或更多种：MEK抑制剂、GSK3抑制剂、STAT3活化剂、FGF抑制剂、HDAC抑制剂、端锚聚合酶抑制剂、ROCK抑制剂和PKC抑制剂。优选地，第一培养基包括补充有例如以下的一种、两种、三种或更多种的基础培养基(如N2B27或mTeSRTM-E6)：MEK抑制剂、STAT3活化剂、FGF抑制剂、HDAC抑制剂、端锚聚合酶抑制剂、ROCK抑制剂和PKC抑制剂。
在一些实施方案中，第一培养基由或基本上由补充有MEK抑制剂、端锚聚合酶抑制剂、STAT3活化剂、ROCK抑制剂、和优选还有HDAC抑制剂的基础培养基组成。
在一些实施方案中，第一培养基由或基本上由补充有MEK抑制剂、FGF抑制剂、STAT3活化剂和ROCK抑制剂的基础培养基组成。
在一些实施方案中，第一培养基由或基本上由补充有MEK抑制剂、STAT3活化剂和ROCK抑制剂的基础培养基组成。
第一培养基优选为无血清培养基，如mTeSRTM-E6基础培养基(可从StemCellTechnologies得到)。可以使用适合于干细胞增殖的其它培养基。例如，可以使用N2B27培养基。或者，可以使用DMEM/F12。
基础培养基包括胰岛素等。
在一些实施方案中，基础培养基包括以下的1、2、3、4、5、6种或优选所有：DMEM/F12(液体)、Neurobasal(液体)，N2补充剂、B27补充剂、β-巯基乙醇、L-谷氨酰胺、胰岛素，和优选还有L-抗坏血酸。
在一些实施方案中，基础培养基由或基本上由DMEM/F12(液体)、Neurobasal(液体)、N2补充剂、B27补充剂、β-巯基乙醇、L-谷氨酰胺、胰岛素、和优选还有L-抗坏血酸组成。
在优选的实施方案中，基础培养基补充有L-抗坏血酸。
在一些实施方案中，第一培养基缺乏血清或生长因子。
在本文中别处给出进一步详情，包括因子和优选因子以及培养条件的实例。
维持幼稚状态
本发明人还已经显示了，ERK和蛋白激酶C信号传导的抑制不依赖于外源NANOG和KLF2维持重置(幼稚)状态。
因而，在一方面，本发明提供维持/保持/增殖幼稚状态的人干细胞的方法，所述方法包括抑制PKC和MAPK/ERK。优选地，方法还包括用STAT3活化剂处理。在优选的方法中，STAT3活化剂是LIF，最优选人LIF。
本发明还提供PKC抑制剂与MAPK/ERK/MEK抑制剂组合用于维持/保持幼稚状态的人细胞的用途。
如对维持幼稚状态所述的浓度和其它药剂适用于这些方法和用途。
稚细胞培养基
“第二培养基”可以称为“幼稚培养物”或“维持”培养基。在第二培养基中培养细胞也可以称为在第二条件下培养细胞。这些术语和短语都可以互换使用。
第二培养基本身构成本发明的一个方面，其在本文中所述的培养方法中的用途亦然。
第二培养基包括MEK抑制剂和PKC抑制剂。在优选实施方案中，第二培养基还包含GSK3抑制剂。在优选的实施方案中，第二培养基还包含STAT3活化剂。在优选的实施方案中，第二培养基包括GSK3抑制剂和STAT3活化剂两者。
在优选实施方案中，第二培养基包括Rock抑制剂，例如Y-27362。
因而，在一些实施方案中，第二培养基包含基础培养基、MEK抑制剂、PKC抑制剂、和优选GSK3抑制剂和STAT3活化剂。在一些实施方案中，第二培养基由或基本上由基础培养基、MEK抑制剂、PKC抑制剂、和优选GSK3抑制剂和STAT3活化剂，以及任选地ROCK抑制剂组成。
本发明人已经显示了，尽管在缺乏GSK3抑制剂的情况下集落形态得到改善，但生长速率降低。因此，在优选实施方案中，在重程序化之前，将第二培养基中的GSK3抑制剂(例如CHIR99021)的量进行滴定。因而，第二培养基中GSK3抑制剂的浓度是足够低以维持基态状态形态的浓度，同时足够高以恢复生长速率。
对于第一培养基可类似地滴定GSK3抑制剂。
在一个实施方案中，以0-3μM，优选0.5-2μM，更优选约1μM的浓度使用GSK3抑制剂。
在优选的实施方案中，PKC抑制剂是非典型PKC(aPKC)的抑制剂，例如PKC iota。在另一个实施方案中，PKC抑制剂可抑制aPCK还有PKC delta”。
优选地，STAT3(信号转导物和转录活化剂3)活化剂是LIF，最优选人LIF(hLIF)。第一培养基可以含有LIF受体或导致STAT3活化的其它受体的备选激动剂，如IL-6和可溶性IL-6受体或制瘤素M。
在一些实施方案中，第二培养基还包含ROCK抑制剂，例如Y27632。
在一些实施方案中，在第二培养基中可以以0.5-5.0ng/ml的浓度包含激活蛋白。
基础培养基优选为无血清培养基，如N2B27培养基。可以使用适合于干细胞增殖的其它培养基。
在一些实施方案中，基础培养基包含以下的1、2、3、4、5、6种或优选所有：DMEM/F12(液体)、Neurobasal(液体)、N2补充剂、B27补充剂、β-巯基乙醇、L-谷氨酰胺、胰岛素、和优选还有L-抗坏血酸。
在一些实施方案中，基础培养基由或基本上由以下组成：DMEM/F12(液体)、Neurobasal(液体)、N2补充剂、B27补充剂、β-巯基乙醇、L-谷氨酰胺、胰岛素、和优选还有L-抗坏血酸。
用于方法的优选细胞
要重程序化的细胞优选为人细胞。人细胞可以是多能干细胞(hPSC)。hPSC可以是诱导的(iPSC)或胚胎衍生的。
细胞可以是最初通过标准方法(Takashi等,2007；Yu等,2007)，优选经由非整合载体系统，如仙台病毒重程序化，然后使用本文中所述方法重置的组织活检样品。
可以在不需要活检的情况下从预先存在的细胞系获得细胞。例如，本发明可应用于预先存在的胚胎干细胞系。人胚胎来源的干细胞可从建立的细胞系如Shef6胚胎细胞系获得。
在一些实施方案中，细胞直接源自胚胎。可以使用本文中所述的方法重置直接源自胚胎的细胞。在一些实施方案中，使用本文中所述的方法增殖/维持直接源自胚胎的细胞。
在一些实施方案中，细胞源自植入前阶段。或保持完整，或在通过显微切割或免疫手术分离内细胞团(ICM)后可以在体外或在子宫内发育胚胎。任选地，在使用本发明的方法之前，将细胞解离成单细胞。
在一些实施方案中，细胞源自晚期胚泡、植入前胚胎或植入后的上胚层。在本发明的方法中使用前，可以将上胚层细胞剖析和/或解离。
可以使用不需要破坏胚胎的方法获得用于本发明的人胚胎干细胞。例如，可以通过活检从人胚胎获得胚胎干细胞。例如在Klimanskaya等2006中公开了在不破坏胚胎的情况下从胚胎获得胚胎干细胞的方法。
在本发明的一些实施方案中，方法和用途不涉及人胚胎的破坏。在一些实施方案中，方法不涉及或不使用通过需要破坏人胚胎的方法获得的细胞。
在一些实施方案中，本发明的方法和用途不涉及人胚胎用于工业/商业目的的用途。在一些实施方案中，方法不涉及通过需要使用人胚胎用于工业/商业目的的用途的方法获得的细胞。
在一些实施方案中，细胞不是人胚胎干细胞。
人iPSC可源自不同的细胞类型。例如，细胞可以从成纤维细胞、角质形成细胞、脂肪细胞、骨髓基质细胞或神经元细胞，特别是神经元干细胞产生。人iPSC可源自二倍体细胞，其可以是“野生型”或非转化的细胞。在其它实施方案中，iPSC源自经转化的(肿瘤)细胞。
可以通过标准技术从个体获得细胞，例如通过皮肤细胞的活检。优选可以从成体获得细胞。用于产生iPSC的方法是本领域已知的，例如如Takahashi等Nature 2007；Yu等,Science 2007中描述的。
要重程序化的细胞也可以是已经表达重程序化因子之一的细胞。
应当理解，本文中所述的方法和用途也适用于其它灵长类动物和非人哺乳动物细胞，并且如本文中所述的方法、用途和重置细胞的特征加以必要的修改适用于非人哺乳动物细胞。换言之，应当理解(除非上限文另有要求)在本文中叙述术语“人”的情况下，它可用“哺乳动物”或以下任何一种替换：灵长类动物；非人哺乳动物非人灵长类；猪；绵羊；猫；狗；山羊；牛；骆驼；马；骆马(llama)；羊驼(alpaca)等。在一个实施方案中，非人哺乳动物细胞不是啮齿动物细胞。
重程序化因子
如上解释，在本发明的一些方面，诱导更为幼稚的状态还包括在细胞中表达重程序化因子(例如KLF2和NANOG)。在优选实施方案中，重程序化因子是人因子。
在一些实施方案中，可以使用其它重程序化因子。例如，可以使用已知在多能干细胞编程中起作用的其它因子。因而，在一些实施方案中，用于本发明的重程序化因子包含OCT3/4、SOX2、Klf4、LIN28、c-MYC、KLF2和NANOG中的一种或多种。在一些实施方案中，用于本发明的重程序化因子包含KLF4、NR5a1KLF17、NANOG和KLF2中的一种或多种。在一些实施方案中，用于本发明的重程序化因子包含KLF4、NR5a1KLF17、NANOG、OCT3/4、SOX2、LIN28、c-MYC和KLF2中的一种或多种。
在一些实施方案中，使用重程序化因子的至少2种、至少3种或至少4种。在优选的实施方案中，至少使用KLF2和NANOG。
这些因子的序列数据可在已建立的数据库，例如Ensembl Gene Browser或UniProt数据库中获得。
程序化因子的表达
可以使用技术人员可获得的任何方法在细胞中表达重程序化因子。
在一些实施方案中，细胞不是永久遗传修饰的。可以瞬时表达(例如自质粒)重程序化因子。
可以将重程序化因子表达至少4、5、6、7、8、9或至少10天。在优选的实施方案中，将重程序化因子表达至少8天。
在这些实施方案中，第一培养基可以包含FGF受体抑制剂。在一些实施方案中，第一培养基包含FGF受体抑制剂，但无GSK3抑制剂。
可使用组成型表达重程序化因子(例如NANOG和KLF2)的质粒。这些方法适当地包括对细胞导入在细胞中表达一种或多种重程序化因子的质粒制备物。
在备选实施方案中，可以通过在体外制备的mRNA或蛋白质的脂质体递送或显微注射而引入重程序化因子。
可以通过整合到基因组中表达因子，例如可以经由逆转录病毒感染或使用转座元件系统引入因子。例如，可以使用piggyBac转座元件系统。可以以mRNA或蛋白质的形式引入因子。
在这些实施方案中，方法可包括整合后的选择步骤，以选择其中整合成功的细胞。
在这些实施方案中，方法可包括添加药剂以诱导基因表达。在这些实施例中，诱导表达重程序化因子。因而，重程序化因子可在诱导型启动子的控制下。在下面的实施例中，本发明人使用了多西环素(DOX)诱导型表达NANOG和KLF2，然而，可使用其它使用不同操纵基因、启动子和诱导物的调节系统。
在下面的实施例中，发明人在整合方法中采用了piggyBac转座元件系统。与这点无关，应当理解，在本发明的实施方案中，可以利用整合载体系统。在此类方法中，可以根据方法任选地除去或切除编码重程序化因子的基因。
本领域技术人员会理解，遗传物质可以是导致表达的任何形式，例如DNA，RNA等。
在一些实施方案中，方法包括用编码重程序化因子的遗传物质转染细胞的步骤。在一些实施方案中，在诱导幼稚状态期间，每2-8、3-7或4-6天再转染细胞。
通常，可将细胞在培养物中维持，直到丧失导入的染色体外遗传物质(如果有的话)，由此提供与为重程序化提供的细胞相比未遗传修饰的重程序化细胞。
因而，在一些实施方案中，与为重程序化提供的细胞相比，通过本发明的方法产生的细胞不是遗传修饰的。
在导入遗传物质以表达重程序化因子之后，优选将细胞在培养物中维持，以允许细胞的重程序化和细胞的生长。
根据本发明的一个方面，转染导致重程序化因子的瞬时表达，并且作为结果重程序化但是产生没有遗传修饰的细胞群。
在此语境中缺乏遗传修饰理解为意味着在细胞的基因组中稳定导入的异源核酸序列(特别是编码重程序化因子的那些)的缺乏。“异源”是指使用遗传工程将所述的核酸导入所述细胞或其祖先中。异源核酸通常可为所述类型的细胞缺乏的(例如逆转录病毒序列)，或者对于细胞的内源基因而言可以是额外的(例如重编程化因子的额外拷贝，其中已经灭活内源拷贝)，但是在每种情况下，通过人为干预导入异源核酸。
转染的性质可为重程序化细胞的延长培养导致转染剂的损失。可以如下实现获得没有遗传修饰的细胞的确认：筛选细胞的克隆，并且分析DNA，例如在单拷贝缺失情况下使用PCR使用这种方法，我们已经确认在通过这些方法获得的细胞中缺乏遗传修饰。
使用遗传材料合适地实现重程序化因子的表达，所述遗传材料导入细胞中，并且含有与启动子可操作连接的重程序化因子的编码序列；优选使用质粒。启动子指导重程序化因子的表达，并且一般地，组成性启动子是合适的，但是启动子的选择不是关键的，只要在细胞中表达重程序化因子。合适的启动子的实例包括CAG、PKG和CMVE。遗传物质(如质粒)进一步优选不复制，并且有效地具有非常低的整合，其可例如用通过使用环状而非线性质粒进一步降低。
优选地，通过使用核转染导入质粒，所述核转染是确立的方案并且已知为有效的。其它化学和电学方法是已知的并且也是有效的，包括电穿孔和脂质转染。不同的转染方法和方案可用于不同的细胞，都是本领域已知的。通常认为质粒和启动子和转染途径的选择对本发明不是至关重要的。质粒制备物包含在细胞中表达一种或多种重程序化因子的一种或多种质粒。可存在用于每种因子的一个质粒或者质粒可以表达超过一种或全部因子。
培养方案
可以在常规PSC培养基，如无血清培养基，例如补充有FGF的血清替代培养基(例如，FGF/KSR)中培养hPSC。可以在重置前每5到7天将细胞传代。可以通过解离将细胞作为小团块(small clumps)传代。
在用第一培养基培养之前，可以例如使用胰蛋白酶解离细胞。可以将细胞作为单细胞铺板。ROCK抑制剂可用于支持初始铺板。
可以在再铺板后长达5天，例如在再铺板后长达4天、3天、2天或1天将培养基更换为第一培养基。在优选的实施方案中，在再铺板后0.5-2天，优选在再铺板后约1天更换培养基。
在一些实施方案中，当在第一培养基中培养细胞时，可至少每天或每天两次替代培养基。可以每1-5、1-4、1-3或1-2天替代第一培养基。在优选的实施方案中，每天替代第一培养基。
在一些实施方案中，当在第一培养基中培养细胞时，可以每3-10、4-8或优选5-7天解离细胞，例如使用accutase。可以以单细胞再铺板细胞。
可以在第一培养基中将细胞培养至少5天，例如6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30天或更长。在一些实施方案中，在第一培养基中将细胞培养1-4周，优选约2周。然后，将细胞转移到第二培养基。
一旦使细胞重置，例如当细胞表现出如本文所述的对重置细胞描述的特性时，可将细胞转移到第二培养基。在优选的实施方案中，在第一培养基中约1-4周后，优选在约2周后将细胞转移至幼稚培养基。
在一些实施方案中，当在第二培养基中培养细胞时，可以至少每天或每天两次替代培养基。可以每1-5、1-4、1-3或1-2天替代第二培养基。在优选的实施方案中，每天替代第二培养基。
在一些实施方案中，当在第二培养基中培养细胞时，可以每3-10、4-8或优选5-7天解离细胞，例如使用accutase。可以以单细胞再铺板细胞。
可在整个重程序化方案中在饲养细胞上，例如在MEF饲养细胞上培养细胞。
在优选的实施方案中，在缺乏饲养细胞的情况下培养细胞。在这些实施方案中，选择蛋白激酶C(PKC)抑制剂(例如)的浓度以允许在缺乏饲养物的情况下培养。例如，浓度可为约1-3μm，例如约2μm。
在重置和/或维持期间，可以在缺乏饲养细胞的情况下培养细胞。在一些实施方案中，在基质涂覆的平板上，例如在基质胶(Matrigel)上培养细胞。
细胞内信号传导级联的抑制剂的用途
在如本文中所述的重程序化方法的至少一部分期间，在激酶抑制剂的存在下维持细胞，所述激酶抑制剂抑制负责胞内信号传导级联的激酶。这些抑制剂可以用于如本文别处所述的本发明的方法中。
可以在存在MEK抑制剂和GSK3抑制剂的情况下维持细胞。这种抑制剂组合共同可以称为2i。可以在包含以下的培养基中培养细胞：
(i)MEK抑制剂和GSK3抑制剂，以及
(ii)LIF。
此组合可以称为2iL。在一些实施方案中，STAT3活化剂是LIF，优选hLIF。
应当理解，在期望的情况下，可用其它激酶抑制剂替换第一或第二培养基中的MEK抑制剂或GSK3抑制剂，所述其它激酶抑制剂抑制负责相同级联(例如MAPK/ERK，例如ERK1或ERK2级联)的细胞内信号传导组分的激酶。这可以包括抑制MAPK途径的上游刺激，特别是经由FGF受体(Ying,Nature,2008)。同样，在期望时，可用LIF替换Stat3或gp130信号传导的其它活化剂。
抑制剂可以由本领域技术人员通过常规方法或从常规来源提供或获得，并且此类抑制剂本身不是本发明的一部分(也参见WO2007113505)。
提到GSK3抑制是指抑制一种或多种GSK3酶。GSK3酶家族是已知的，并且已经描述了许多变体(参见例如Schaffer等；Gene 2003；302(1-2):73-81)。在具体实施方案中，抑制GSK3-β。GSK3-β抑制剂也是合适的，并且通常用于本发明的抑制剂抑制GSK3-α和GSK3-β两者。一大批GSK3抑制剂是已知的，举例而言，抑制剂CHIR 98014、CHIR 99021、AR-AO144-18、TDZD-8、SB216763和SB415286。此外，已表征了GSK3-β的活性位点的结构，并已鉴定了与特异性和非特异性抑制剂相互作用的关键残基(Bertrand等；J Mol Biol.2003；333(2):393-407)。这种结构表征允许容易地鉴定另外的GSK抑制剂。
本文中使用的抑制剂优选对于要靶向的激酶是特异性的。某些实施方案的抑制剂对GSK3-β和GSK3-α是特异性的，基本上不抑制erk2并且基本上不抑制cdc2。优选地，抑制剂对于人GSK3相对于小鼠erk2和/或人cdc2具有至少100倍，更优选至少200倍，非常优选至少400倍的选择性，以IC50值的比率测量；这里，提及GSK3 IC50值是指人GSK3-β和GSK3-α的均值。用对GSK3特异性的CHIR 99021获得了良好的结果。Bennett C等,J.Biol.Chem.,vol.277,no.34,2002年8月23日,pp30998-31004以及Ring DB等,Diabetes,vol.52,2003年3月,pp588-595中描述了GSK3抑制剂的例子。使用CHIR 99021的合适浓度在0.01至10，优选0.1至5，优选0.1至11μM的范围内。
本文中提及MEK抑制剂是指一般的MEK抑制剂。因此，提及MEK抑制剂是指蛋白激酶的MEK家族的成员(包括MEK1、MEK2和MEK5)的任何抑制剂。还提及MEK1、MEK2和MEK5抑制剂。本领域中已经知道的合适的MEK抑制剂的例子包括MEK1抑制剂PD184352和PD98059，MEK1和MEK2的抑制剂U0126和SL327，以及Davies等(2000)(Davies SP,Reddy H,Caivano M,CohenP.Specificity and mechanism of action of some commonly used protein kinaseinhibitors.Biochem J.351,95-105)中讨论的那些。特别地，与其它已知的MEK抑制剂(Bain,Biochem J.2007)相比，已经发现PD184352和PD0325901具有高度的特异性和效力。Zhang等(2000)Bioorganic&Medicinal Chemistry Letters；10:2825-2828中描述了其它MEK抑制剂和MEK抑制剂的类别。优选的抑制剂组合是下列实施例中使用的PD0325901加CHIR99021。
适用于本发明的PKC抑制剂包括3-[1-[3-(二甲基氨基)丙基]-5-甲氧基-1H-吲哚-3-基]-4-(1H-吲哚-3-基)-1H-吡咯-2,5-二酮(Gschwendt等1996)或选择性抑制非典型蛋白激酶C同种型和任选还有PKC delta的其它化合物。
PKC抑制剂可以以0.01至10μM，优选0.1至5μM，优选1至4μM的浓度存在于第二培养基中。优选地，调节PKC抑制剂的浓度以允许在缺乏饲养细胞的情况下培养物生长(例如，对于为约2μM)。
另一种优选的PKC抑制剂是Ro-31-8425，其可以类似于(例如)以0.1μM-1μM的浓度使用。
应当理解，在本文中使用术语“FGF受体抑制剂”的情况下，可以用任何FGF抑制剂，即FGF信号传导的抑制剂替换它。适用于本发明的FGF受体抑制剂包括PD173074。
也可使用RNA介导的干扰(RNAi)方便地实现MEK、GSK3和PKC的抑制。通常，将与全部或部分MEK基因互补的双链RNA分子导入干细胞，从而促进编码MEK的mRNA分子的特异性降解。这种转录后机制导致靶向MEK基因的表达减少或消除。使用RNAi实现MEK抑制的合适技术和方案是已知的。
因而，本文中提及本文的抑制剂涵盖RNAi作为抑制剂。
用于鉴定激酶抑制剂(包括GSK3抑制剂和MEK抑制剂)的许多测定法是已知的。例如，Davies等(2000)描述了激酶测定法，其中在肽底物和放射性标记的ATP存在下温育激酶。通过激酶对底物的磷酸化导致将标记物掺入底物中。将每个反应的等分试样在磷酸纤维素纸上固定化，并在磷酸中清洗以除去游离的ATP。然后，测量温育后的底物活性，并且提供激酶活性的指示。可使用这种测定法容易地确定在存在和缺乏候选激酶抑制剂的情况下的相对激酶活性。Downey等(1996)J Biol Chem.；271(35):21005-21011还描述了激酶活性的测定法，其可用于鉴定激酶抑制剂。
本文中的任何子标题仅为了方便而包括在内，并且不应解释为以任何方式限制本公开。
现在将参照以下非限制性的附图和实施例进一步描述本发明。鉴于这些，本领域技术人员将想到本发明的其它实施方案。
在此通过交叉引用将本文中引用的所有参考文献的公开内容(就本领域技术人员可以使用它实施本发明而言)明确并入本文。
应用
重置或胚胎衍生的基态状态人多能干细胞由于其同质性和缺乏偏向分化行为的谱系引发或外遗传学限制，为各种应用提供了优异的起始材料。
人基态状态细胞可以适用于限定人多能干细胞的基准，并且使该领域能够采用共同的标准，特别是对于通过分子重程序化诱导多能性。
其它用途包括：分化以创建可在药物发现和开发中，以及致畸性和毒理学测试中应用的人发育和疾病的细胞培养模型；用于临床细胞疗法中的应用的组织干细胞和更成熟的细胞的来源；分析遗传学和外遗传学对发育病症、遗传疾病和数目性状的相对贡献，以促进诊断学、预后学和患者治疗的进展；通过体外生物工程或通过对人-动物嵌合体的谱系/器官特异性贡献产生用于移植的组织和器官。
来自非人灵长类动物和其它哺乳动物的重建或胚胎衍生的基态状态多能干细胞可用于精确的基因组工程以增强或修饰动物的种系遗传构成。通过基因组工程或基因组编辑和培养中的基态状态细胞的克隆选择，随后产生嵌合体、增殖和筛选经修饰的基因型的传递来实现种系修饰。期望的遗传改变包括单基因或多基因缺失、点突变或取代。染色体规模的基因组修饰/取代也是可能的。应用包括：疾病模型；行为模式；关于异种移植和器官替代的宿主相容性；制药、抗体和疫苗生产；家畜改良；育种原种保存和改良。也可在细胞疗法的临床前测试和评估中使用非人灵长类动物基态状态细胞。
在一方面，本发明提供了幼稚状态的细胞和使用本文中的方法重置的细胞对于上述应用的用途，以及在上述应用中使用这些细胞的方法。
附图
图1使人PSC表型重置
除非另有指示，本图和其它图中的数据均来自H9细胞，但对于H1和Shef6胚胎衍生细胞和各种iPS细胞系获得了类似的结果(表1、图12、13)。
A.NANOG和KLF2转基因的分别诱导或沉默与2iL和FGF/KSR之间的转换组合支持具有不同形态的集落的扩充。转基因表达由Venus报告符标示。注意，DOX诱导的细胞在FGF/KSR中不扩充，并且相反地，未诱导的细胞在2iL中不繁盛(thrive)。
B.PKC抑制剂维持缺乏转基因表达下的重置状态。在DOX撤除后，2iL中的细胞退化。的添加维持细胞增殖和紧密的集落形态，即使在延长传代后。注意，的内在荧光产生微弱的红色背景信号。
C.不同CH浓度中的重置细胞的扩展。以5x104个细胞/孔铺板细胞，并在PD03(1μM)与LIF和0、1或3μM CH中培养4天。Y轴指示细胞数目(x104)。
D.在PKC抑制剂存在下的集落形成。在指定的条件下以5000个细胞/孔在6孔皿中在MEF饲养物上在无ROCKi的情况下铺板先前在具有DOX的t2iL中培养的细胞。10天后，针对碱性磷酸酶染色集落。
E.集落形成测定法。在加FGF受体抑制剂PD17或TGF-β/激活蛋白受体抑制剂A83-01中在12孔皿中以2000个细胞/孔在无ROCKi的情况下接种在中维持的细胞。7天后，针对碱性磷酸酶染色集落。
F.细胞增殖测定法。X轴显示用于重置的中的累积传代数。H9和H9.8亚克隆以及从脂肪细胞衍生的iPS细胞(AdiPS)和成纤维细胞衍生的iPS细胞(FiPS)产生的重置细胞。将细胞在一式三份孔中培养，以1x105个细胞接种，并且每6天传代，每次传代时计数并以起始密度再接种。
G.在中在第16次传代时的重置H9细胞的G带型核型(在初始传代数40时重置)。
H.基态状态转录因子转录物的上调。对重置H9细胞的qRT-PCR测定法。
I.基态状态多能性标志物的免疫荧光染色。注意，TFE3在重置细胞中移位到细胞核。重置细胞的TFCP2L1图像中红色碎片的点归因于的固有荧光。
J.常规的和重置的H9细胞中基态状态多能性蛋白的免疫印迹。
K.在基质胶或层粘连蛋白511-E8上培养的重置细胞的集落。
L.在重置细胞的无饲养物培养物中的基态状态转录因子的qRT-PCR测定法。在基质胶(Ma)或层粘连蛋白511-E8(La)上5次传代后提取RNA。在在MEF上的培养的重置细胞和mTeSR中基质胶上的常规PSC提供参照对照。
图1A和B中的比例尺为100μM，而小图1I和K中的比例尺为20μM。
图2分化能力
A.在拟胚体中谱系标志物的表达。将在中的重置细胞解离，并且在KSR或血清存在的情况下在V-底96孔板中以10,000个细胞/孔聚集。在第5天和第10天通过qRT-PCR测定10个拟胚体的合并物。
B.畸胎瘤形成。将重置细胞直接从植入到NOD/SCID小鼠(每个肾囊注射105个细胞)。在10只受体小鼠的3只中，到12周形成畸胎瘤。用苏木精和曙红染色肿瘤切片。
C.在转移到FGF/KSR后，中的重置细胞转化为常规的PSC形态。右手小图显示转移后4次传代的典型集落。
D.基态状态多能性因子在FGF/KSR中下调。将在中维持的重置细胞转移至FGF/KSR，并在第5和18代提取RNA。
E.转入FGF/KSR后的集落形成。将重置细胞在FGF/KSR中培养两代，然后在ROCKi存在下将5000个细胞/孔接种在FGF/KSR或中的12孔板中。第7天针对碱性磷酸酶染色集落。
F.激活蛋白和Wnt处理后确定内胚层分化。流式细胞仪显示大约一半的细胞在第3天表达CXCR4和E-钙粘蛋白两者。在第4天进行SOX17和FOXA2的免疫荧光。
G.激活蛋白/TGF-β和BMP途径的双重抑制后的神经元分化。固定细胞并在第10天针对TUJ1和NEUN染色。
小图C、F和G中的比例尺为100μM。
图3线粒体活性
A.氧消耗率(OCR)。使用SeaHorse细胞外通量分析仪获得的测量。
B.线粒体染色。MitoTracker是通用染料，而TMRE染色依赖于线粒体膜活性。右手小图中的比例尺为10μM，而在Mitoracker染色的较高分辨率视图中的比例尺为25μM
C和D。二脱氧葡萄糖中的增殖。单细胞解离后，在12孔上接种3x104个细胞，并且在指定浓度的2-脱氧葡萄糖(2DG)或还原性葡萄糖的情况下培养7天。将ROCKi添加到常规的PSC。
图4外遗传学构造
A.用针对5mC、5hmC和NANOG的抗体的免疫荧光染色。常规PSC表现出明显的5mC染色(白色箭头)。重置细胞具有减少的5mC信号(白色箭头)，而同一孔中的饲养细胞显示强染色(未填充的箭头)。
B.通过质谱法定量全局5mC和5hmC水平。
C.来自全基因组亚硫酸氢盐测序(BS-seq)的定量汇总。
D.以前分类的基因组区域的多达10000次随机取样中的甲基化水平的热图：分成CpG岛(CGI)或非CGI启动子的启动子；基因内和基因间CGI；外显子；内含子；LINE和SINE。(常规的和重置的H9培养物的三个生物学重复)。
E.常规的和重置的H9细胞中CGI甲基化百分比的散布图。在CGI上产生探针，并过滤至少1个甲基化计数/CG和至少5个CG/CGI。甲基化值代表通过染色体过滤的每个CGI上的均值。注意在重置细胞中丧失的常规H9细胞的X染色体上的独特中间甲基化水平。
F.H3K27me3的免疫荧光染色。在中以及在FGF/KSR中的2次传代之后的重置细胞的两个代表性视野。用DAPI复染图像。
F.针对H3K9me3的免疫荧光染色。通过Image J分析强度和分布。显示代表性细胞分析，补充信息中有进一步的例子。
图5比较转录物组分析
A.来自本研究(亲本H9和重置细胞)的RNA-seq和微阵列数据以及来自Chan等(标准条件和3iL)的RNA-seq数据、来自Gafni等(标准条件和NHSM)的微阵列数据、和关于来自Yan等的人胚胎和原代培养物的单细胞RNA-seq数据的主成分分析。在本研究中从重置H9和iPS细胞产生的样品与如Gafni等使用的相同的阵列平台(Affymetrix Human Gene 1.0ST)杂交以便于直接比较。相对于在每项研究中在标准条件下培养的常规人胚胎衍生的PSC(参见方法)标准化数据。重置PSC包含与小鼠基态状态ESC共享特征的独特群体。相比之下，以前研究中报告的备选PSC与标准人PSC身份没有根本改变。相同的聚簇当单独使用RNA-seq数据时是显而易见的(图16)，这打折了平台差异的影响。
B.来自常规人PSC、重置和3iL细胞的RNA-seq数据揭示了两种主要组，其中重置细胞特征在于与ESC最相似的表达模式。可在重置细胞中观察到核心多能性基因的表达和各种谱系标志物的抑制，相反的趋势其它PSC样品中明显。展示的值对应于通过样品间每种基因的平均表达缩放的每种样品中的表达(见方法)。仅展示观察到表达差异的基因(即至少一个样品中的缩放表达>1或<-1)。
C.重置细胞展示基态状态的转录因子标志，并且表达与ESC大致一致的规范多能性标志物。如上文，相对于来自常规人PSC的表达标准化数据。备选培养方案不能诱导关键的基态状态多能性调节物。
D.重置细胞特征在于传统人PSC和分化细胞特征性的谱系标志物的下调。在3iL或NHSM中增殖的PSC表达各种早期谱系标志物，指示它们驻留于类似于常规PSC并与基态状态ESC不同的引发状态。
E.在人内细胞团中KLF4和TFCP2L1的存在。固定扩充的胚泡(第7天)并免疫染色。
F.重置细胞中KLF4、TFCP2L1和NANOG的共表达。用不同物种中制备的抗体的组合免疫染色
E和F中的比例尺为50μM。
图6转录因子回路的功能询问
A.siRNA敲低后的集落形成。将单一siRNA转染到FGF/KSR中的4000个细胞或中的2000个细胞。用碱性磷酸酶染色所得集落，并且在7天后计数。对于常规PSC，集落大小是可变的，但数字是相对一致的。直方图显示来自一式两份测定法的平均克隆计数。
B.shTFCP2L1敲低后(KD)的集落形成。在12孔皿t2iL+DOX或中的每孔接种4000个细胞并培养7天，然后针对碱性磷酸酶染色。
C.通过shTFCP2L1或shKLF4敲低细胞量化碱性磷酸酶阳性集落形成。
D.用人KLF4拯救KLF4敲低。用piggyBac人KLF4表达载体转染通过DOX诱导转基因维持的敲低细胞，并且通过用潮霉素选择建立的转染体合并物。然后，将细胞以2000个细胞/孔在不含DOX的中的24孔板中铺板，并在7天后针对碱性磷酸酶染色。
E.通过用ESRRB表达质粒转染的shTFCP2L1敲低细胞的集落形成。转染和测定与在D中一样。
F.桑椹胚(morula)聚集后对小鼠ICM的整合。将表达Cherry的FiPS衍生的重置细胞与小鼠桑椹胚聚合。体外培养48小时后检查胚泡。42个胚胎中的6个含有Cherry阳性人重置细胞。在用常规FiPS细胞注射的37个胚胎中未检测到贡献。例子显示Cherry阳性重置细胞在晚期胚泡的小鼠上胚层内的整合。
G.胚泡注射后对小鼠ICM的整合。将组成型表达GFP的FiPS衍生的重置细胞注射到小鼠胚泡中。培养72小时后，大多数胚胎已孵出，并开始在基底上长出。32个中的9个在ICM/上胚层中显示GFP阳性细胞。显示了两个例子。
图7通过瞬时转基因作用的重置
A.从常规PSC转换到重置状态的时间过程。在FGF/KSR中6孔板的每孔接种用诱导型NANOG和KLF2构建体稳定转染的1x105个人胚胎衍生的PSC。次日添加Dox，并且24h后将培养基转换成t2iL+Dox。在第8天，将每个培养物解离成单细胞并在12孔的6孔之间铺板。在t2iL+DOX中维持3孔，并且将3孔更换为没有DOX的在第15天，通过AP染色和KLF4免疫染色分析细胞。如果Dox暴露少于6天，则获得很少的AP+集落。比例尺为100μM。
B.通过用非线性化质粒瞬时转染产生重置细胞的方案。
C.通过瞬时转染H9和Shef6细胞产生的重置细胞的相位对比和EOS-GFP图像。
D.无转基因培养物的检测。使用Taqman拷贝数测定探针分析从第4代挑出的集落扩充的9种培养物。TERT和RNA酶P作为参照基因。对每个测定法使用20ng的DNA。含有杀稻瘟素转基因的人iPS细胞提供阳性对照(+)，并且Dox诱导型系充当阴性(-)。分析了四个技术重复。
E.用于扩充的无转基因重置细胞中基态状态转录因子表达的qRT-PCR测定法。
F.扩充的无转基因重置细胞中基态状态多能性标志物的免疫荧光染色。KLF4、TFCP2L1和STELLA是上调的，并且TFE3转位到细胞核。染色与图13中呈现的H1常规PSC染色平行。
G.对无转基因重置细胞的集落形成测定法。在加FGF受体抑制剂PD17或TGF-b/激活蛋白受体抑制剂A83-01中且在无ROCKi的情况下在24孔皿中以2000个细胞/孔接种在中维持的细胞。7天后，针对碱性磷酸酶染色集落。
H.在无转基因重置细胞中siRNA敲低后的集落形成。将单一siRNA转染到中的2000个无转基因重置细胞。用碱性磷酸酶染色所得集落，并且在7天后计数。直方图显示来自一式两份测定法的平均克隆计数。
I.重置人细胞中基态状态转录因子回路的示意图。基态状态小鼠ESC的特征在于表达必需的多能性因子Oct4和Sox2加上转录因子的回路，其协同起作用以维持自我更新，但是个别不是必要的。除了NANOG外，这种回路在传统的人PSC中是缺乏的。除了ESRRB之外，重置诱导人细胞中这些因子的表达。基态状态多能性身份在缺乏ESRRB的情况下不太稳固，并且单一组分TFCP2L1或KLF4的敲低导致崩溃。ESRRB的引入稳定化人基态状态，如在小鼠ESC中一样，并且提高对其它因子的消减的抗性。
图8撤除DOX后的OCT4表达
通过qRT-PCR测量OCT4mRNA表达
图9 ERK1/2和pERK1/2的免疫印迹。
从来自6孔板的单孔(1×106个细胞)的在FGF/KSR中培养或在中重置的H9细胞中提取蛋白质，并通过SDS电泳分级样品的五分之一，进行电印迹，并且用指定的抗体探测
图10图1A中量化的集落形成测定法的图像。
在没有ROCKi的情况下在中的12孔皿中以2000个细胞/孔接种中维持的重置H9细胞。添加FGF受体抑制剂PD173074或TGF-β/激活蛋白受体抑制剂A83-01。7天后，针对碱性磷酸酶染色集落。
图11转基因特异性qRT-PCR测定法
在指定的培养条件下测定含有DOX诱导型NANOG和KLF2转基因的H9细胞。
图12基态状态转录因子转录物的上调。
对重置H1和Shef6细胞的qRT-PCR测定法。
图13基态状态多能性标记物的免疫染色。
用针对指定标志物的抗体染色常规的和重置的H1和Shef6细胞。注意重置细胞中TFE3的核定位。
图14拟胚体长出物中的心脏分化。
根据Moretti等(2010)分化H9重置细胞。在血清(Supplementary Movie)中生长3周后观察到初始跳出细胞。在第21和28天通过qRT-PCR测定心脏基因表达。
图15从RNA-seq分析确定的COX基因表达
从图5中的样品分析中提取的数据
图16低葡萄糖中的增殖。
在单细胞解离后，将3x104个细胞接种在12孔中，并在指定浓度的葡萄糖中培养7天。添加ROCKi用于接种常规PSC。常规PSC未能产生集落。重置细胞对低葡萄糖耐受，产生多个集落。比例尺为200μM。
图17全基因组亚硫酸氢盐测序文库的测序覆盖。
图18常规与重置H9细胞中SOX2基因座的甲基化的BS-seq数据。
图19针对H3K9me3的免疫荧光染色。
A.FGF/激活蛋白中的小鼠植入后上胚层干细胞(EpiSC)和t2iL中的小鼠ESC的图像。H3K9me3以绿色出现，并且DAPI染色为蓝色。
B.在KSR/FGF补充培养基中常规H9细胞中H3K9me3染色的图像分析。随机选择6个细胞，并且通过Image J分析染色强度和分布。
C.重置H9细胞中H3K9me3分布的染色和分析。
与在B中一样分析图像。
D.用于bFGF/激活蛋白中的小鼠EpiSC的H3K9me3染色和分析。
E.用于t2iL中的小鼠ESC的H3K9me3染色和分析。
比例尺为20μM。
图20促成区分重置细胞与常规人PSC的主成分的基因。
从PCA中提取基因符号，并且相对于方差的量值缩放标记。多能性调节物存在于限定重置细胞的最左侧区域中，而可以在右侧找到在常规人PSC培养物中表达的许多谱系特异性基因。
图21来自本研究的微阵列数据和Gafni等报告的数据的主成分分析
将样品与相同的阵列平台杂交以允许直接比较。重置细胞(浅红色)占据右侧的紧密簇，并且常规的PSC(深红色)朝向底部。在Gafni等中描述为幼稚的细胞(紫色)表现出广泛的变化，并且与基态状态细胞似乎无关。
图22标志物基因区分重置细胞与常规人PSC。
热图，基于Affymetrix Human Gene 1.0ST数据，比较在重置细胞、常规PSC培养物和Gafni等中报告的细胞之间由国际干细胞联盟(International Stem Cell Consortium)选择的48种多能性和谱系标志物基因(Adewumi等,2007b)的表达。重置细胞形成独特的、相对一致的群体，具有多能性基因的稳固表达和谱系标志物的抑制。相比之下，据报告，来自Gafni等的稚细胞与常规PSC表现许多相同的性状，所述常规PSC具有谱系标志物的混合表达和关键多能性调节物的显著减少。仅展现观察到表达差异的基因(即在至少一个样品中的缩放表达>1或<-1)。
图23与DNA甲基化和脱甲基化、组蛋白甲基化和乙酰化相关的染色质修饰基因的组。
基态状态ESC的表达趋势在重置细胞中重演，而在备选条件下培养的PSC中，较弱或趋异的转录是明显的。
图24来自重置细胞、常规PSC和来自Chan等的3iL样品的RNA-seq数据的主成分分析
在应用于单一技术时每种细胞类型的聚簇重演图5A中的整合分析。
图25 TFCP2L1和KLF4的shRNA敲低
通过在t2iL+DOX中表达NANOG和KLF2转基因维持敲低细胞和空载体转染的细胞。通过qRT-PCR评估敲除。
图26 FGF/KSR中shTFCP2L1敲低(KD)后的集落形成。
用空载体或shTFCP2L1构建体稳定转染亲本H9细胞，并在嘌呤霉素中选择。在FGF/KSR中用ROCKi在12孔皿中铺板4000个细胞。
图27用小鼠Tfcp2l1拯救TFCP2L1敲低。
通过用小鼠Tfcp2l1表达载体转染的shTFCP2L1敲低细胞的集落形成。用piggyBacmTfcp2l1表达载体转染通过NANOG和KLF2的DOX诱导维持的敲低细胞，并且通过在潮霉素中选择建立转染体合并物。然后，将细胞以2000个细胞/孔在不含DOX的中在24孔板中铺板，并在7天后针对碱性磷酸酶染色。
图28显示通过ChIP-seq测定的Nanog、Oct4、Sox2和Tcf3结合位点的小鼠Esrrb基因座，与标记的等同人基因座具有同源序列。
来自Marson等(Marson等,2008)、Chen等(Chen等,2008)和Ang等(Ang等,2011)的ChIP-seq数据的信号迹线获自最新版本的ES细胞ChIP-seq纲要。(Martello等,2012b)(http://lila.results.cscr.cam.ac.uk/ES_Cell_ChIP-seq_compendium_ UPDATED.html)。
图29 aPKC iota/lambda和zeta的敲低。
使用两种不同的shRNA载体，shPKC iota_1和shPKC iota_4来敲低PKC iota/lambda。使用shPKCzeta_8敲低PKC zeta。比例尺为100μM。
A.在t2iL中培养的shPKC iota KD和shPKC zeta KD细胞的亮视野图像。shPKCiota KD细胞保持未分化形态，而shPKC zeta细胞逐渐分化。
B.每种shRNA的敲低效率。
C.传代10(KD系)或3(对照)的OCT3/4表达。
图30在无转基因的情况下重置人基态状态的时间线
图31具有PB-EOS报告物的常规人ES细胞
A.PB-EOS报告物的结构
红色(堆叠)箭头：Oct4调节元件CR4的三聚体；Etn：早期转座子的LTR
B.显示具有EOS报告物的常规人ES细胞的图像。H9EOS，具有EOS报告物的H9细胞；S6EOS，具有EOS报告物的Shef6细胞。注意：在荧光显微镜下，大多数细胞中的GFP表达是检出不到的。
C.FACS分析，显示在超过80％以上的细胞中的GFP表达。红色：最左峰；绿色：苍白中间峰；蓝色暗色右峰
图32重置中7天后的表达的FACS分析
A：在无HDAX抑制剂丙戊酸(VPC)处理的情况下的PDXL
B：在从第2天到第3天的VPC处理的情况下的PDXL
C：在从第3天到第5天的VPC处理的情况下的PDXL
图33重置后7天GFP表达的FACS分析
A.三天VPC处理将重置效率从1％左右提高到3％(与图3相比)
B.备选的HDAC抑制剂丁酸钠(SB)也是一种有力的重置诱导剂。
图34重置后的GFP阳性集落
A.白色箭头标示铺板后一天的GFP阴性常规ES细胞
B.重置培养基中7天后的GFP阳性集落
C.三次传代后的GFP阳性集落。在第1次传代时将嘌呤霉素选择应用6天。
图35幼稚多能性标志物的定量RT-PCR分析
PDL-SB、PDXL-SB、PDL-VPC、PDXL-VPC代表细胞来自的重置培养基。用于PCR的细胞是重置后7天的FACS分选的GFP高群体。
IS6-VPC-P9：用PDXL-VPC培养基转化并在T2ilGo+Y中维持9代的稚细胞。
Nki：使用诱导型Klf2和Nanog转基因转化的稚细胞。
图36
A.图像显示培养7天后EB的形态
B.定量RT-PCR显示与常规人ES细胞相比EB中分化标志物的表达
图37将FiPS重置为基态状态
A.图像显示人iPS细胞FiPs-2b在重置后形成紧凑的集落。重置培养基含有PD03、LIF(PDL)、具有XAV939的PDL或具有Go6983的PDL。在所有三种条件下添加VPC达3天。
B显示重置细胞的集落形态的更高放大率的图像
图38自解离的人内细胞团细胞的细胞系衍生
(A)第6天胚泡(B)滋养层裂解(C)弃去的滋养层(D)分离的内细胞块(E&F)解离的ICM。(G-I)从个体解离的ICM细胞培养的原代干细胞克隆。(J)第2次传代和第8次传代时的集落。(K)在第21次传代时HNES1的G带型中期分析。(L)HNES细胞、常规人PSC(H9)和体外重置PSC(重置H9)中的幼稚标志物表达的定量(q)RT-PCR分析。
误差棒标示两个PCR反应的标准偏差(s.d.)。(M)HNES1细胞中多能性标志物的免疫荧光染色。比例尺在A-C中为50μm并且在G-M中为25μm。
图39分化；(A)中的幼稚HNES1细胞和在KSR/FGF中12次传代后引发的HNES1细胞的集落。(B)在KSR/FGF中3次传代后幼稚HNES1细胞和衍生物中幼稚标志物表达的qRT-PCR分析。(C)从HNES1和HNES1引发的细胞形成的拟胚体的qRT-PCR分析。误差棒标示两个PCR反应的s.d.。(D)拟胚体长出物的免疫荧光染色：TuJ1，β-III微管蛋白；AFP，α甲胎蛋白和SMA，α平滑肌肌动蛋白(绿色)；FOXA2(红色)。用DAPI将细胞核染成蓝色。比例尺，100μm。
图40转录物组和甲基组(methylome)分析(A)关于由国际干细胞研究组织(International Stem Cell Initiative)选择的一组多能性和谱系标志物的来自HNES、重置和常规hPSC的聚簇表达数据。
展示通过样品间每种基因的平均表达缩放的log2 FPKM值。发表的数据用ENA登录码标记。(B)HNES、重置和常规hPSC的主成分分析以及早期人ICM和PSC外植体的单细胞RNA-seq数据(Yan等,2013)。(C)qRT-PCR分析，其显示HNES细胞中增加的TET1和降低的DNMT3B的表达。误差棒标示两个反应的s.d.。(D)通过亚硫酸氢盐测序(BS-seq)分析得到的全基因组CpG甲基化的比例。从Guo等,2014提取ICM-Guo。(E)散布图，其通过对具有引发衍生物的HNES细胞、重置H9和常规H9细胞中的CpG的500kb窗甲基化水平取平均值比较全局甲基化。
图41在具有替换的Ro-31-8425(0.1μM)的t2iL中培养25天(7次传代)后，重置iH9-EOS细胞的亮视野和荧光图像。
实施例
实施例1
实验方案
细胞培养
在小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)细胞上培养人胚胎衍生的细胞HI、H9(WiCell研究所)(Thomson等,1998)和Shef6(Aflatoonian等,2010)和从成体角质形成细胞(Invitrogen)、成纤维细胞(Invitrogen)、或脂肪衍生的干细胞(Invitrogen)产生的人iPS细胞。常规的PSC细胞培养基(FGF/KSR)包含DMEM/F12(Sigma-Aldrich)，其具有10ng/mlbFGF(内部制备)和20％KSR(Invitrogen)，补充有100mM 2-巯基乙醇(Sigma-Aldrich,Cat.M7522)、MEM非必需氨基酸(Invitrogen,Cat.11140050)、2mM L-谷氨酰胺(Invitrogen,cat.25030024)。作为通过用0.025％胰蛋白酶、1mg/ml胶原酶IV(Invitrogen17104-019)、KSR(最终20％)、1mM CaCl2解离得到的小团块每5至7天传代常规PSC。在整个研究中，在5％氧气的培养箱中维持细胞。
使用Neon转染系统(程序14；Invitrogen)在ROCK抑制剂(Y-27632,Calbiochem)存在下将携带与Venus偶联的多西环素诱导型KLF2或NANOG的piggyBac载体(2μg)与rtTA表达构建体(2μg)和pBase辅助质粒(4μg)一起共转染到解离的细胞中。两天后，应用G418(100μg/ml)。选择两周后，通过流式细胞术分离Venus阴性细胞，从具有渗漏转基因表达的细胞中纯化。
为了诱导重置，用胰蛋白酶解离转染的PSC，并在ROCK抑制剂存在下作为单细胞再铺板。次日添加多西环素(DOX，1μM)，并且在24小时后将培养基更换为具有1μM PD0325901(PD03)、人LIF(内部制备)、DOX和3μM CHIR99021(2iL+DOX)或1μM CHIR99021(t2iL+DOX)的N2B27培养基(Ndiff227,StemCells Inc.,SCS-SF-NB-02)。每天更换培养基。在用Accutase(Life Technologies)解离为单细胞达10分钟后每5至7天分开细胞。DOX诱导后两周左右，将细胞转移至t2iL+5μM PKC抑制剂(Sigma-Aldrich)还每5至7天作为单细胞传代在中培养的重置细胞。转移到的细胞在DOX撤除后缓慢增殖最初几次代。自始至终在MEF饲养物上维持细胞。
对于瞬时表达和重置，我们首先生成具有piggyBac载体中引入的EOS-GFP/puroR报告物(Hotta等,2009)的H9和Shef6细胞。我们已经观察到，在PB而非慢病毒载体背景中，该报告物最初在常规PSC中异质性表达并且逐渐沉默，但在重置期间重新表达。我们使用由含有杀稻瘟素抗性基因的CAG启动子驱动的NANOG和KLF2表达构建体。用3μg非线性化NANOG和KLF2质粒如上述转染6孔板的1个孔。两天后，将培养基转换成具有PD173074(PD17,0.5μM)、PD03(0.5μM)和hLIF的N2B27。在第4天，再次转染细胞，并且在第8天将培养基更换为从第12天开始应用嘌呤霉素选择(0.5μg/ml)达两代。在第4或5次传代时挑出单集落。用于检测CAG启动子的基因组PCR的引物在表S5中，并且如制造商的方案中所述进行针对杀稻瘟素抗性基因的TaqMan拷贝数测定法，使用RNA酶P和TERT作为独立拷贝数参考测定法进行。
表S5 用于qPCR测定法的TaqMan和UPL探针
Taqman
Custom Taqman Assays*：探针由Custom Taqman Assays制造。Endo探针检测NANOG和KLF2的UTR区。在Dox诱导型载体和基因的接合处制备转基因特异性探针。
UPL
基因组PCR
CAG R ATTACCATGGGTCGAGGTGA
CAG L AGAAAAGAAACGAGCCGTCA
拷贝数测定法(Taqman)
BsdR Mr00733720_cn
参照测定法,hRN酶P 4403326
参照测定法,hTERT 4403316
在MEF饲养细胞上实施集落形成测定法，通过铺板24孔板中每孔1000个细胞、对于12孔板的2000个细胞和对于6孔板的5000个细胞进行。ROCKi用于常规但不重置的细胞。在指定的情况下，以0.25μM使用激活蛋白/TGFβ受体抑制剂A83-01。将板固定并针对碱性磷酸酶染色(Sigma-Aldrich，Cat.86R-1KT)。使用CellCelector(Aviso)或CellSens Dimension(Olympus)扫描平板。
对于无饲养物培养，将板在4℃以0.5mg/cm2用稀释的BD基质胶hES合格基质(1:30)或层粘连蛋白511-E8(iMatrix-511；Nippi)涂覆过夜(Nakagawa等,2014)。在ROCKi的存在下解离细胞，并且在具有降低到2μM的的t2iL中铺板。
分化
对于拟胚体形成，对PrimeSurface 96V细胞板(Sumitomo Bakelite,MS-9096V)的每孔在两种分化培养基中铺板用Accutase解离的10,000个重置细胞：具有L-谷氨酰胺、丙酮酸、2ME和10％血清的GMEM；或具有10％KSR的N2B27。每隔一天更换培养基。在第0天、第5天和第10天制备RNA。对于内胚层分化，将重置细胞在mTeSR培养基中的基质胶(生长因子减少，BD，356230)涂覆的板上接种一周，然后转移到具有100ng/ml激活蛋白A(内部制备)和25ng/ml mWnt3A(R&D Systems)的RPMI(Kroon等，2008)中。次日，将培养基更换为具有100ng激活蛋白A和0.2％血清的RPMI。在第3天进行CXCR4和E-钙粘蛋白的流式细胞术，并且在第4天进行SOX17和FOXA2的免疫荧光。对于心肌细胞分化，将重置细胞在FEF/KSR培养基中在MEF饲养细胞上培养6天以上。在含有10μM ROCKi的MEF条件化FGF/KSR培养基中，每V底孔铺板10,000个细胞。在第3天，将培养基更换为具有20％FBS、L-谷氨酰胺、MEM-AA、2ME和50μg/ml抗坏血酸的DMEM/F12(Moretti等,2010)。在第7天，将聚集体在明胶涂覆的孔上接种。每两天更换分化培养基。跳动焦点从21天起出现。对于神经诱导，首先在FGF/KSR中培养重置细胞最少6天。然后，将分离的细胞在mTeSR中的基质胶(生长因子减少，BD 356230)涂覆的板上接种两天，然后将培养基更换为具有10ng/ml FGF、20μM SB431542和260ng/mlNoggin(R&D)的Ndiff227(StemCells Inc.)(Chambers等,2009)。在第5天，将培养基更换为具有10ng/ml FGF，20μM SB431542的Ndiff227。在第10天，将细胞固定并针对TUJ1和NEUN染色。
畸胎瘤形成
根据英国内政部授予的许可，在指定的设施中实施研究。在NOD/SCID小鼠的肾囊下注射约105个细胞。12周后切除畸胎瘤，用4％PFA固定，切成切片并用苏木精和曙红染色。
通过qRT-PCR进行标志物分析
使用RNeasy试剂盒(QIAGEN)分离总RNA，并且使用SuperScriptIII(Invitrogen)和oligo-dT引物从1000ng RNA制备互补DNA(cDNA)。对于实时PCR，我们使用TaqMan FastUniversal Master Mix和TaqMan探针(Applied Biosystems)或Universal Probe Library(UPL，Roche)系统。引物和UPL探针编号详见表S5。测定了两个或三个技术重复和至少两个独立培养物的所有定量PCR反应。使用内源对照(Human GAPD,Applied Biosystems4352934E)标准化表达。
免疫染色
将细胞在4％多聚甲醛中固定10分钟，然后用2％驴血清/PBS+0.1％BSA+0.1％Triton(PBSBT)封闭2小时。将一抗在PBSBT中稀释，并在4℃温育过夜。表S6中提供了抗体的详情。将二抗以1:1000稀释，并在室温温育1小时。用DAPI对细胞核进行复染。如先前(Ficz等,2013)所述，进行甲基化DNA的染色。通过4％PFA将细胞固定10分钟。在通过PBS+0.5％Triton透化1小时后，在2N HCl中将固定的细胞温育30分钟，清洗，然后在PBSBT中封闭2小时。在1:250 5mC(Eurogentec,BI-MECY)和1:500 5hmC(Active Motif,39769)/PBSBT中温育细胞。用DAPI染色细胞核。将从具有知情同意的体外受精程序中捐赠的人胚胎融化并培养至受精后第7天，在4％PFA中固定，并且免疫染色和成像，如先前描述(Roode等,2012)。
表S6 用于免疫染色、免疫印迹和流式细胞术分析的抗体
表S5
核型分析
将KaryoMAX(Invitrogen，终浓度为0.06μg/ml)添加到培养基。并且在37℃将细胞再温育6小时左右。在5ml预热的(37℃)、0.075M氯化钾中将在单细胞悬液中收集并通过PBS清洗的细胞温育10分钟(37℃)。离心后，添加4ml固定剂(3:1甲醇:乙酸)。将该固定步骤重复两次。在医学遗传学实验室剑桥大学医院NHS基金会信托(Medical GeneticsLaboratories Cambridge University Hospitals NHS Foundation Trust)将固定样品分析为G带型核型。
流式细胞术
用Accutase或胰蛋白酶/EDTA处理后，将细胞在驴血清中在冰上封闭20分钟。在冰上用在含有1％BSA的HBSS(Invitrogen)中E-钙粘蛋白抗体和与PE缀合的CXCR4抗体将细胞染色20分钟。清洗后，应用二抗APC大鼠抗小鼠IgG1(BD Pharmingen，550874)。使用具有Summit软件的Dako Cytomation CyAn ADP高性能血细胞计数仪进行流式细胞术分析。
细胞代谢
使用XFe24分析仪(SeaHorse Bioscience)根据制造商的方案测量氧气消耗。简言之，通过用层粘连蛋白涂覆预处理SeaHorse板，并在实验前一晚将80,000个细胞在每孔上接种。将培养基更换为补充有2mM丙酮酸和20mM葡萄糖的XF基础培养基(SeaHorsebioscience)，具有调节的pH 7.4，并将细胞在37℃在大气CO2中温育1小时。在测定法(XF细胞线粒体应激测试试剂盒,Seahorse Bioscience)期间注射寡霉素(2μM)、FCCP(500μM)、抗霉素(1μM)和鱼藤酮(1μM)。用相关培养基中的Mito Tracker Green FM(终浓度50nM，LifeTechnologies)或四甲基罗丹明乙酯(TMRE，终浓度20nM，Life Technologies)染色线粒体10分钟，并通过共焦显微术分析。
核苷的质谱术
使用DNA Degradase Plus(Zymo Research)根据制造商的说明书消化基因组DNA，并且通过液相层析-串联质谱法在装有纳米电喷雾离子源(Proxeon,Odense,Denmark)的LTQ Orbitrap Velos质谱仪(Thermo Scientific,Hemel Hempstead,UK)上进行分析。以高分辨率全扫描模式(对于质子化假分子离子为R>40,000，和对于伴随的质子化基础碎片离子>50,000)以及还有以选择的反应监测(SRM)模式获得关于C、5mC和5hmC的质谱数据。通过使用10质量单位母离子分离窗、20％的相对碰撞能量和R>14,000(对于碎片离子)，通过HCD碎裂产生SRM数据，监测转变228→112.0505(C)、242→126.0662(5mC)和258→142.0611(5hmC)。碎片离子的峰面积从相关扫描的提取离子色谱图获得，并且通过相对于通过消化三磷酸核苷酸获得的标准品的外部校准进行量化。
BS-seq文库准备和分析
使用AllPrep DNA/RNA微型试剂盒(QIAGEN)制备基因组DNA，通过超声处理(Covaris)片段化，并使用Illumina提供的甲基化衔接头和NEBnext文库制备试剂盒连接衔接头。随后，使用Sigma Imprint试剂盒，根据制造商的说明书(一步方案)，对DNA进行亚硫酸氢盐处理。使用KAPA Uracil+(KAPA Biosystems)完成最终的文库扩增(11个循环)，之后使用Ampure珠纯化文库(x1)。使用Trim Galore(www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/trim_galore/)(v0.2.2,，默认参数)修整原始序列读取以消除不良质量调用和衔接头。使用Bismark(Krueger和Andrews,2011)(v0.7.4，默认参数)将剩余序列定位到人GRCh37基因组，并使用SeqMonk(www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/seqmonk/)和定制R脚本提取和分析CpG甲基化调用。通过对由至少30个读段覆盖的CpG的1kb窗甲基化水平取平均值计算全局甲基化比较。
RNA加工
用TRIzol/氯仿法(Invitrogen)提取总RNA，随后在RNAsecure(Ambion)中重悬，在37℃与TURBO DNA酶(Ambion)一起温育1小时，进一步进行酚/氯仿提取和乙醇沉淀。在2100Bioanalyzer(Agilent)上用RNA 6000Nano测定法评估RNA完整性。
转录物组测序
使用Ribo-Zero捕获探针(Epicentre)从5μg总RNA中消耗核糖体RNA。通过在Covaris S2上超声处理80s剪切RNA样品，设置为工作循环10，每爆发的循环200和强度4。用随机六聚体和寡聚dT引物(New England Biolabs)的组合通过SuperScript III(Invitrogen)在存在6μg/ml放线菌素D(Sigma)以抑制第二链产物的情况下在50℃将片段化的RNA逆转录2小时。在RNA酶H的存在下，在16℃通过DNA聚合酶I将第二链cDNA合成2小时，其中用dUTP替换dTTP。使用T4DNA聚合酶和T4多核苷酸激酶(20℃)和在dATP(NewEngland Biolabs)存在下用exo-Klenow片段(65℃)进行cDNA产物的顺序末端修复和3’-腺苷酸化。通过T4DNA连接酶(New England Biolabs)在20℃将这些连接到条形码衔接头(NEXTflex-96,Bioo Scientific)达30分钟。用尿嘧啶DNA糖基化酶(UDG)和内切核酸酶VIII在37℃将第二链DNA消化30分钟。用KAPA HiFi DNA聚合酶(Kapa Biosystems)将第一链文库构建体的PCR扩增进行13个循环。用Ampure XP顺磁珠(Beckman Coulter)进行每个步骤的反应产物的纯化。通过在2100 Bioanalyzer(Agilent)上的DNA 1000测定法评估文库大小分布和摩尔浓度。以100bp配对末端形式在Illumina HiSeq 2000上进行测序。
RNA-seq数据分析
使用STAR剪接对准器将测序读段与人基因组版本hg19/GRCh37进行比对(Dobin等,2013)。基于GENCODE v15(Harrow等,2012)(Ensembl发布70)(Flicek等,2014))人基因注释，使用htseq-计数(HTSeq包(Anders等,2014)的部分)进行转录物定量。从欧洲核苷酸存档(European Nucleotide Archive，ENA)获得来自已发表的RNA-seq实验的测序读段。为了确保数据集之间的最大相容性，以上文描述的方式产生原始计数，并且一起加工所有RNA-seq样品。通过Ensembl v70中注释的一对一直向同源基因联系小鼠和人样品。使用由Bioconductor包DESeq(Anders和Huber,2010)计算的大小因素针对总读段计数校正文库，并且对基因长度标准化以产生FPKM值。为了产生表达加热图，相对于所有样品间基因的平均表达缩放FPKM值。展示热图，其包括观察到表达差异的基因(即至少一个样品中的缩放表达>1或<-1)。通过用R stats包中的princomp函数的奇异值分解计算主成分，使用在每个研究中相对于人胚胎衍生的PSC样品标准化的表达水平进行。
微阵列加工
使用Ambion WT表达试剂盒加工总RNA进行微阵列分析。简言之，用以T7引物加标签的随机六聚体从500ng RNA合成双链cDNA。通过T7 RNA聚合酶对产物进行体外转录以产生反义cRNA。通过SuperScript III(Invitrogen)在dUTP存在下逆转录样品以产生单链DNA。然后，通过RNA酶H降解模板cRNA，并且通过尿嘧啶DNA糖基化酶(UDG)和无嘌呤/无嘧啶内切核酸酶1(APE 1)(Ambion)将cDNA产物片段化。然后，通过末端脱氧核苷酸转移酶(TdT)对片段化的cDNA进行生物素标记。在45℃将Affymetrix人基因阵列1.0ST阵列杂交16小时，清洗，在FS450自动化流体站(Affymetrix)上用链霉亲合素-藻红蛋白(SAPE)缀合物染色，并在GCS3000 7G扫描仪(Affymetrix)上成像。
微阵列数据分析
用寡聚物Bioconductor包(Carvalho和Irizarry，2010)处理Affymetrix人基因阵列1.0 ST阵列以汇总探针组转录物簇。使用经由寡聚物包应用的Robust Multi-ArrayAverage(RMA)法(Irizarry等,2003)，与来自Gafni等(2013)的数据一起标准化来自此研究的微阵列数据。主成分通过奇异值分解的中心化且缩放的表达协方差矩阵计算，所述奇异值分解通过R stats包中的prcomp函数计算。转录物簇与基于GENCODE v15人基因组注释(Ensembl释放70)的靶向基因相关。在阵列上存在给定基因的多个探针组的情况下，使用最大表达值汇总这些。相对于所有样品间每种基因的平均表达，缩放热图的表达数据。Illusion测序和微阵列处理由EMBL Genomics Core Facility，Heidelberg进行。
综合表达分析
将RNA-seq数据与微阵列数据进行交叉参考，将分析限制为由阵列询问的基因。为了解释研究和平台之间的技术差异，相对于来自每个研究的人胚胎衍生的PSC样品计算表达水平。这些值用作全局主成分分析和标志物基因比较分析的基础。
RNAi实验
按照制造商的方案，使用Dharmafect 1(Dharmacon,Cat.T-2001-01)以最终浓度40nM转染siRNA(QIAGEN，表S7)。对于24孔板(2cm2)，我们使用50μl Opti MEM(Invitrogen)中的1μl转染试剂、50μl OptiMEM中的1μl的20μM siRNA溶液、和0.4ml FGF/KSR培养基中的4000个常规PSC或0.4ml中的2000个重置细胞。温育过夜后更换培养基。关于siRNA详情，见表S7。使用Neon Transfection System(Invitrogen)、用于常规PSC的程序14和用于重置细胞的Neon程序20用2μg shRNA载体导入shRNA(Thermo Scientific，表S8)。电穿孔后两天，在嘌呤霉素中选择细胞。对于拯救实验，使用Neon程序14，用1.5μg携带Tfcp2l1、KLF4或ESRRB表达盒的piggyBac载体加上1.5μg pBase转染shRNA敲低细胞，并且在潮霉素中选择。
表S7 用于瞬时敲除实验的siRNA序列
si RNA列表(QIAGEN)
基于通过qPCR对敲低效率的测量，No 1和2用于
单一siRNA敲低
表S8 用于稳定敲低实验的shRNA序列
si RNA列表(QIAGEN)
基于通过qPCR对敲低效率的测量，No 1和2用于
单一siRNA敲低。
结果
NANOG和KLF2使人PSC表型重置
Nanog或Klf2的转基因表达可在2i和LIF(2iL)存在下将小鼠EpiSC转化为基态状态ESC(Hall等,2009；Silva等,2009)。我们测试了在人胚胎衍生的H9细胞中表达这对因子的效应。我们将多西环素(DOX)诱导型KLF2和NANOG/Venus piggyBac构建物与rtTA载体一起导入人胚胎衍生的PCS中。在含有FGF和血清替代物(FGF/KSR)且没有DOX的常规人PSC培养基中用G418选择转染物合并物。然后，在添加DOX前，在Rho相关激酶抑制剂(ROCKi)的存在下解离和再铺板培养物(Watanabe等,2007)。我们观察到，如果在FGF/KSR中维持，则DOX诱导的细胞分化或死亡。相比之下，当暴露于DOX后，当将培养基更换为2iL时，未分化细胞持续存在并形成多个集落，其可通过后续传代容易地扩充。这些集落对Venus呈强阳性，指示稳固的转基因表达，并表现出基态状态小鼠ESC典型的紧密包装的圆顶外观(图1A)。可通过在不使用ROCKi的情况下酶促解离为单细胞在2iL加DOX中连续增殖培养物。然而，在撤除DOX后，培养物退化。DOX撤除的培养物可通过转移到KSR和FGF2中拯救，此后细胞恢复为常规的平坦的PSC集落形态并且变得对解离敏感。可通过撤除和再添加DOX在这两种排他性条件之间循环细胞(图1A)。
我们调查了候选途径的在DOX撤除后支持在2iL中的持续增殖的能力，并且发现了添加可抑制小鼠ES细胞分化的蛋白激酶C(PKC)抑制剂(5μM)(Dutta等,2011)允许维持没有Venus表达的紧凑型折射集落(图1B)。这些培养物表达OCT4(图8)并且连续扩张，尽管与DOX维持的细胞相比增殖降低并且形态学不太一致。
图41显示可以使用PKC抑制剂Ro-31-8425(0.1μM)作为的替代。
调节GSK3抑制改善大鼠ES细胞的自我更新(Chen等,2013a；Meek等,2013)，并且我们还观察到与GSK3抑制剂CH的组合对小鼠ESC增殖是不利的(J.Wray和AS，未发表)。因此，我们滴定了CH。我们观察到，在完全缺乏CH的情况下，集落形态有所改善，但生长速率降低。1μM的中间浓度恢复生长速率，同时保持形态(图1C)。此后，在具有LIF和的滴定2i 中维持细胞。免疫印迹确认Erk信号传导在这种情况下受到完全阻断(图9)。
在缺乏DOX的情况下在没有ROCKi的中从单细胞形成碱性磷酸酶阳性集落，虽然与具有DOX的情况下相比数目更少且大小更小(图1D)。TGF-β/激活蛋白或FGF受体的抑制剂没有抑制集落形成(图1E和图10)。
我们使用不同胚胎衍生和诱导的人PSC系重复NANOG和KLF2诱导转化多于10次(表1)，并且在所有情况下，在DOX存在下获得了大量紧密包装的集落。在DOX撤除和转换到后，表型一般得到保持，尽管培养物最初表现出一些异质性。培养物在2-4次传代后稳定化，此后在每4至6天通过酶促解离的多次传代里容易地维持，并且以1:3至1:5的分开率再铺板。在超过20次传代(4个月)里连续扩充独立培养物，形态或倍增时间没有退化(图1F和表1)。遗传偏差的选择压力是PSC增殖中的关键考虑因素。因此，我们定期分析中期涂片。可以在多次传代里维持二倍体群体(图1G)，尽管偶尔的培养物显示三体性，如经常用常规PSC观察到(Amps等,2011)，并将其弃去。
表1a
内部产生iPS细胞，除了由Shinya Yamanaka博士慷慨赠予的201B7外。*仙台病毒(4种因子)，**PiggyBac(NANOG+OCT3/4+KLF4)，***逆转录病毒4种因子。从20个G带型中期涂片确定染色体计数。ND：未进行
表1.B
Cytoscan HD阵列分析
使用Cytoscan HD阵列分析检测拷贝数变化。在中的传代数指示从重置起的传代。所有样品都是整倍体，并且仅检测到微量的缺失和扩增。注意，在亲本PSC(FGF/KSR)中已经检测到H9中的这些扩增。
在DOX撤除后，转基因产物通过报告物表达或qRT-PCR通常检测不到(图11)。我们对中扩充的细胞剖析了在小鼠ES细胞基态状态为诊断性且在功能上参与小鼠ES细胞基态状态的一组转录因子(Dunn等,2014)。与常规PSC中的无或最小表达相比，除ESRRB外，所有因子都是实质性上调的(图1H和12)。此外，相对于DOX中维持的细胞，内源KLF2和KLF4mRNA增加，提示负反馈调节。通过免疫染色和免疫印迹法用可用抗体确认了蛋白质表达(图1I，J和13)。此外，TFE3与常规PSC中的细胞质定位相比存在于细胞核中，如对小鼠基态状态对引发细胞所述(Betschinger等,2013)。
在饲养物上进行上述实验，并且我们发现了在没有饲养物的情况下，培养物迅速退化。基于对小鼠ESC的观察结果，我们认识到浓度在不用饲养物缓冲的情况下是关键的。因此，我们将降低至2μM，并且在传代前还添加ROCKi。在这些条件下，重置细胞可在基质胶或层粘连蛋白511-E8上形成未分化的集落(Nakagawa等,2014)(图1K)。在这两种底物上，可扩充细胞，尽管在层粘连蛋白上更缓慢，并且在几次传代中保持基态状态多能性因子表达(图1L)。
这些观察结果指示NANOG和KLF2可以重置人PSC中的自我更新需要和转录因子补充物，并且此外可以通过微调2iL与PKC抑制剂组合使此种再接线(rewired)的状态变为不依赖于转基因表达。
分化能力
为了测试重置PSC是否能够有胚层规格，我们产生了拟胚体。解离在没有DOX的中扩充的细胞，并且允许在具有KSR的N2B27中，或者在GMEM和血清中在V-底孔中聚集。在5或10天后收获拟胚体，并且通过qRT-PCR分析。三种胚层诊断性的转录物的上调在这两种情况下是明显的(图2A)。血清中的拟胚体长出物产生跳动焦点和上调的NKX2.2、ISL1、TNNT2和MYOCD心脏标志物(图14)。通过植入到NOD/SCID小鼠进一步测试分化效力。从直接移植的细胞到12周时形成畸胎瘤。这些肿瘤含有神经上皮、软骨和消化道的完全分化的区域(图2B)。
我们注意到，转移到FGF/KSR后，重置细胞分化为标准PSC表型(图2C)。这伴随着基态状态多能性因子的下调(图2D)。通过完全丧失在中形成集落的能力确认了在FGF/KSR中培养超过2代后细胞状态的稳定变化(图2E)。我们调查了重置细胞是否可以通过暴露于FGF/KSR以及应用为常规PSC开发的方案引导为贴壁分化。我们发现了更换到FGF/KSR中达几天的重置细胞通过产生高比例的在ECADHERIN和CXCR4方面呈双重阳性的细胞响应激活蛋白和Wnt3A处理(Kroon等,2008)(图2F)。通过FOXA2和SOX17的免疫染色证实了确定的内胚层身份。相反，使用Noggin和SB431542处理(Chambers等,2009)导致大量TuJ1和NeuN阳性神经元细胞，具有延长的树突过程(图2G)。
在单层分化方案前用FGF/KSR处理是出于下述实际原因：已经设计方案用于在所述条件下培养的常规人PSC。此外，此方案与下述发育逻辑一致：细胞在谱系定型(lineagecommitment)前应经过引发状态。
我们得出结论，重置细胞可以经引发状态进展到胚层分化。
线粒体和代谢调节
小鼠ESC利用线粒体氧化磷酸化和糖酵解两者，而EpiSC/人PSC是几乎完全糖酵解的，并且其线粒体具有非常低的呼吸能力(Zhou等,2012)。我们测量了基础氧消耗率(OCR)，并且发现了它在重置细胞中比在常规PSC中显著更高(图3A)。在线粒体ATP酶抑制剂寡霉素的存在下使此差异最小化。线粒体解联剂FCCP在重置细胞比常规PSC中产生更大的OCR增加，这与更高的线粒体电子传输链(ETC)活性一致(图3A)。重置细胞也表现出用四甲基罗丹明甲酯(TMRE)的强烈染色，指示高水平的线粒体膜去极化(图3B)。此外，复合IV细胞色素c氧化酶(COX)基因家族的分析揭示了对于14/17种表达基因，重置细胞中的转录水平高于常规PSC(图15)，这类似于对小鼠ESC和EpiSc的发现(Zhou等,2012)。
我们通过在2-脱氧葡萄糖中培养以抑制糖酵解以及在降低浓度的葡萄糖中培养以增加对线粒体呼吸的依赖性来检测改变的代谢性质的功能后果。与常规PSC形成对比，重置细胞在2-脱氧葡萄糖(图3C)或低至0.2mM葡萄糖(图16)存在下形成未分化集落。
这些数据指示使人PSC重置伴随着深刻代谢重新调整到与基态状态小鼠ESC(其中氧化磷酸化与糖酵解一起是完全操作性的)相当的状态。
外遗传重组织化
与在EpiSC中观察到的超甲基化(Ficz等,2013；Habibi等,2013；Leitch等,2013)形成对比，全局DNA低甲基化是2i中培养的ESC中重演的早期胚胎细胞的一种特征。我们观察到5-甲基胞嘧啶(5mC)的免疫荧光染色在重置细胞中比在常规H9细胞中明显更弱(图4A)。质谱量化确认了总5mC和还有5-羟甲基胞嘧啶的主要减少(图4B)。通过具有8.8x基因组覆盖的亚硫酸氢盐测序(BS-seq)(图17)，我们鉴定了全基因组CpG甲基化的超过50％的损失(图4C)。我们还检测到较低的非CpG甲基化。脱甲基化在大多数基因组语境(包括基因体、非CpG岛(非CGI)启动子、和SINE和LINE1转座子家族)中是实质性的且普遍的(图4D)，尽管在基因的小子集上，甲基化是保留或甚至增加的。代表性的基因组间隔显示SOX2基因座间的低甲基化(图18)。
X染色体在重置细胞中被脱甲基化为常染色体，但是具有CGI脱甲基化中等水平的特异性降低(图4E)。此类中间水平可能反映了常规PSC中一定比例的X连锁CGI的甲基化。与X染色体的外遗传消除一致，我们观察到H3K27me3的焦点在重置XX细胞中几乎完全缺乏(图4F)，尽管如先前所述(Silva等,2008；Tomoda等,2012)，此修饰已经在许多亲本细胞中丧失。然而，值得注意的是，在将重置细胞转移到KSR/FGF培养条件时，H3K27me3的焦点出现在两次传代内的大多数细胞中。
我们还通过免疫染色检查与基因沉默相关的组蛋白3赖氨酸9(H3K9me3)的组蛋白修饰三甲基化。我们发现与常规人PSC相比，重置细胞表现出此特征的低得多的水平，重演了小鼠基态状态ESC和EpiSC之间观察到的差异(图4H，19)。
这些数据指示使人PSC状态重置伴随着深刻的外遗传解构。已经针对所谓的人幼稚PSC描述了局部脱甲基化(Gafni等,2013)，但是尚未提供关于全局变化或X染色体的脱甲基化的证据，如我们在重置细胞中观察。DNA甲基化水平的全局降低在量值上与在小鼠基态状态ESC中观察到的低甲基化引人注目地相似，并且与目前对人ICM报告的脱甲基化状态(Guo等,2014；Smith等,2014)一致。
全局转录物组的重构(Reconfiguration)
我们通过与深度测序偶联的RNA逆转录(RNA-seq)来评估常规人PSC、人重置细胞和小鼠ESC的转录状态。分析H9和诱导的PSC的多个独立常规培养物以及重置的对应物。通过主成分分析的聚簇揭示了常规人PSC和重置细胞的相互排斥的组，具有小鼠ESC和人重置细胞的独特簇(图5A)。在第一主成分中捕获大量变异(24％)，指示重置细胞与人胚泡ICM之间的相当大的对应性(Yan等,2013)。两组就第二主成分而言趋异，占样品方差的14％。鉴于小鼠ESC携带与晚期胚泡中的上胚层细胞而非不成熟的ICM细胞的最接近相似性(Boroviak等2014)，这不是出乎意料的。在标准条件下增殖的原代外植体ICM细胞呈现常规PSC培养物的属性，并且采用相似的表达谱(浅到深的蓝色圆圈)。这与基态状态小鼠ESC形成对比，所述基态状态小鼠ESC显示出与幼稚上胚层相对较小的偏差(Boroviak等,2014)。
检查促成前两个主要成分的基因确认了在重置细胞中多能性因子的和常规PSC中谱系特异性基因的影响(图20)。差异表达的进一步分析显示了重置细胞和ESC就多能性调节物的上调和谱系标志物的抑制而言共享相似的模式(图5B)。呈现的比较基于由国际干细胞研究组织(Adewumi等,2007)选择的并且通常用于人和小鼠干细胞多能性阵列的基因的独立组。与常规PSC形成对比，在重置细胞和基态状态ESC两者中都观察到基态状态多能性调节物的稳固表达。这伴随着谱系特异性基因的抑制。重置细胞和ESC形成独特的簇，其特征在于幼稚多能性标志物(包括NANOG、KLF4和TFCP2L1)的稳固表达。相比之下，在常规培养基特征或3iL配制剂(Chan等,2013)中培养的PSC表现出谱系标志物如AFP、ACTC1、Brachyury和EOMES的突出表达。差异表达的基因的基因本体论(ontology)分析指示代表发育途径的功能类别的富集。
另外，我们比较了重置的和常规的PSC培养物与在最近的报告(Chan等,2013；Gafni等,2013)中声称已经经历转化到幼稚状态的细胞。为了促进直接比较，将样品与Gafni等中应用的微阵列平台杂交。在通过上述RNA-seq剖析的样品(见方法)外，我们剖析了一组扩展的样品，包括来自H9的重置细胞和标准对应物以及源自成纤维细胞和脂肪干细胞的两种独立的iPS细胞系。将来自每项研究的数据相对于常规人胚胎衍生的PSC标准化以整合微阵列和RNA-seq数据集(参见方法)。与常规状态的显著偏差对于在替代培养方式中增殖的细胞系并不明显，提示它们与标准人PSC尚未根本地变化(图5A)。对关于用NHSM方案衍生的细胞的来自Gafni等(2013)的数据的分析揭示了各系之间的广泛变异，但是与其它常规人PSC培养物的相对较小趋异(图21，22)。
重置细胞表现出基态状态ESC特征性的表达模式，这与NHSM培养物形成对比，其中显著地，关键多能性因子的表达通常是下调或消除的(图5C)。当检查一系列谱系特异性基因时反向趋势是明显的，所述基因在ESC和重置细胞中重度下调，但在NHSM和3iL培养物中表现出假性表达(图5D)。还发现一系列染色质修饰剂表现出对于重置细胞比对于备选培养物与小鼠ESC更相当的趋势，其中NHSM细胞缺乏重要的外遗传调控物如MLL3、NCOA3和TET的表达(图23)。最后，与重置细胞中观察到的DNA低甲基化一致，DNMT3B的转录物大大降低，并且DNMT3L的转录物增加(Neri等,2013)。
我们检测了人胚胎中两个关键因子TFCP2L1和KLF4的表达，以评估小鼠中限定的且在人重置细胞中上调的基态状态多能性因子是否确实是人幼稚多能性的预期特征。
如所述(Roode等,2012)将来自临床体外受精程序的多余冷冻胚胎融化并培养。处理发育到扩张胚泡期的胚胎以免疫染色。我们仅在内细胞团中检测到KLF4染色(图5E)。TFCPL1染色在整个胚胎中是微弱的，但是强烈的染色仅在KLF4阳性细胞的子集中的ICM内是明显的。因此，成熟人胚泡中的ICM含有KLF4和TFCP2L1蛋白的双重阳性细胞，两者在先前描述的人PSC中都不是上调的(图5C)，但两者在重置细胞中与NANOG一起相当一致地共表达(图5F)，如在小鼠ESC中一样。
总之，来自我们自己研究的转录物组数据与Gafni和Chan研究中发表的转录物组数据的宏基因组比较(meta-genomic comparison)显示，我们产生的重置细胞既是在全局上与标准人多能干细胞不同的又是在细胞系间高度一致的。相比之下，基于对自己的数据集的系统分析，来自常规人多能干细胞的细胞身份没有一致或实质性变化在Gafni或Chan研究中是明显的。
基态状态转录因子回路的执行操作
为了测定基态状态转录因子回路是否在重置人细胞中有功能且必要，我们使用RNAi测试了对基态状态转录因子的依赖性。我们在第一个实例中采用合并的siRNA，并为每个基因重复两个单独的siRNA。针对非必需幼稚多能性标志物REX1(ZFP42)和STELLA(DPPA3)的siRNA没有通过重置或常规PSC损害集落形成(图6A)。相比之下，KLF4或TFCP2L1的敲低显著降低通过重置细胞形成碱性磷酸酶(AP)阳性未分化集落，但对常规培养物几乎没有影响。然后，我们使用shRNA实现组成性敲低(图25)。当用DOX维持NANOG和KLF2转基因时，TFCP2L1或KLF4敲低是容许的，但是细胞显示降低的集落形成(图6B)。在DOX撤除后，分化和死亡在中接踵而至，但是如果转移至FGF/KSR，则敲低细胞存活，并且采用与常规PSC一样的平坦形态。在低密度铺板测定法中，集落形成在中通过敲低在很大程度上消除，但在FGF/KSR/ROCKi中不受影响(图6C，26)。TFCP2L1 shRNA靶向编码序列。小鼠Tfcp2l1的表达部分地拯救了敲低表型(图27)。KLF4 shRNA靶向3’UTR，并且人KLF4开读框的表达完全恢复集落形成(图6D)。
在2i和LIF两者存在下，小鼠ESC由于GSK3抑制下游的Esrrb的补偿而可以承受Tfcp2l1耗竭(Martello等,2013)。由于ESRRB的弱表达，可使重置人细胞变得敏感。因此，我们测试转基因ESRRB是否可在TFCP2L1敲低后拯救集落形成。实际上，ESRRB表达使得重置细胞对TFCP2L1 shRNA有抗性，使得它们在中形成多个集落，其具有折射的圆顶形态，并且可以在传代后扩充(图6E)。
这些发现指示重置人细胞而不是常规PSC的自我更新强烈依赖于TFCP2L1和KLF4，而且此外指出了小鼠与人之间的基态状态转录因子的保守功能性，即使个别因子表达的调节可以被改变。
作为幼稚上胚层身份的潜在功能测试，我们将重置细胞引入小鼠植入前胚胎中，并在体外监测发育。为此，我们首先在重置之前和之后使用用CAG-Cherry稳定转染的成纤维细胞衍生的诱导PSC。在使用常规iPSC进行桑椹胚聚集后，我们在37个胚泡中在48小时后未检测到任何Cherry阳性细胞。相比之下，重置细胞在42个胚泡中的6个中促成ICM，并且在一些情况下，似乎在上胚层区室中良好整合(图6F)。我们对重置细胞重复此测试，所述重置细胞含有GFP报告物系，其给出更同质的表达。我们在49个胚泡中的8个中观察到ICM/上胚层内的GFP阳性细胞。然后，我们评估是否可通过胚泡注射将重置细胞掺入ICM中。将注射的胚胎培养72小时以允许孵化、附着和原代ICM长出。在32个注射的胚胎中，9个在成熟的ICM/上胚层内显示GFP阳性细胞(图6G)。
这些数据显示通过桑椹胚聚集和胚泡注射两者引入早期小鼠胚胎后重置细胞进入ICM的可重现的整合。用常规人PSC未观察到掺入。数据提示了人重置细胞与小鼠稚细胞足够相似，以允许掺入ICM和植入前上胚层。
瞬时转基因作用和稳定重置
我们通过用DOX诱导NANOG/KLF2表达进行有限时间，然后测定中的集落形成来调查重置的时间跨度。这揭示了8天的诱导是足够的(图7A)。我们推断等同的转基因表达应该可通过瞬时转基因作用实现。为了鉴定并选择潜在的重置细胞，我们利用EOS构建体(Hotta等,2009)，其基于驱动幼稚而非引发的多能细胞中的表达的小鼠Oct4远端增强子。我们用NANOG和KLF2的组成型表达质粒对携带整合的PB-EOS-GFP/puroR构建体的H9和Shef6细胞进行转染(图7B)。在预实验中，我们观察到CH似乎对重置过程是抑制性的，并且添加FGF受体抑制剂PD17可能有利于重置。因而，转染后两天，将培养基从KSR/FGF转换为N2B27，其补充有PD17以及PDO3加hLIF。在第4天，再次转染细胞，并且在第8天将培养基更换为从第12天起，几个GFP阳性的细胞簇变得可见，并且开始嘌呤霉素选择。培养物保持异质，并且传代4次，之后将集落挑出并且在中扩充(图7C)。使用基因组PCR来筛选CAG启动子区域的整合，并采用Taqman拷贝数测定探针，其针对存在于NANOG和KLF2构建体两者中的杀稻瘟素抗性基因。9种中的7种培养物在单拷贝分辨率下不显示可检测到的转基因(图7D)。这些与检出转基因的培养物或与先前用诱导型转基因产生的重置细胞在形态上是不可区分的。qRT-PCR和免疫染色证实基态状态多能性因子的持续表达(图7E，F)。在没有ROCKi的情况下的单细胞铺板后传代时间和5-10％的集落形成效率与经由诱导型转基因表达产生的重置细胞相当。细胞在存在A83-01的情况下继续增殖而不分化(图7G)，确认对激活蛋白/结点信号传导的不依赖性，与以前描述的人PSC不一样，但与小鼠ESC一致。此外，TFCP2L1或KLF4的siRNA敲低显著损害集落形成(图7H)，指示对基态状态转录因子的功能依赖性。继续传代确认二倍体核型是稳定的。
我们得出结论，重置状态可以通过NANOG和KLF2的短期表达产生，避免永久遗传修饰。
讨论
类似于啮齿动物ESC的自我更新基态状态可以属于灵长类的假设仍然是有争议的。我们的发现指示，可以在NANOG和KLF2转基因的短期表达后在人细胞中安置预期的基态状态特性。所得的细胞可以容易地在缺乏血清产物或生长因子的限定培养基中永久存在。与常规PSC一样，饲养物支持重置细胞的附着和生长，但却是不必要的。
重置的人干细胞显示DNA甲基化和转录的全局变化，提示转化为更原始状态。它们还表现改变的代谢与增加的线粒体呼吸。这一系列特征将重置的人细胞与先前描述的胚胎衍生或诱导的人PSC区分开，并使它们更接近基态状态ESC。最显著的是，对于小鼠ESC身份、自我更新和多能性必不可少的独特转录因子回路在维持重置人多能状态中是功能上操作性的。
最近对推定的幼稚人PSC的主张(Chan等,2013；Gafni等,2013；Ware等,2014)已经采用具有不连贯的一批生长因子和抑制剂的培养基。培养基配方的生物学原理是不清楚的，组合分子的后果依然。然而，一种可能性是此类复合条件可选择包含共存于不同多能性阶段的细胞的异质性培养物的增殖，如对小鼠EpiSC描述(Bernemann等,2011；Han等,2010；Tsakiridis等,2014)。幼稚多能性因子的富集的缺乏和混合谱系标志物的表达(图5C，D)与此类解释一致。
我们专注于除了胰岛素和细胞因子LIF外没有添加的生长因子的简单条件。我们使用浓度(1.0μM)的MEK抑制剂，其确保Erk途径的完全抑制。对Erk信号传导的不依赖性是体外啮齿动物基态细胞和体内植入前上胚层的标志特性(Boroviak等,2014；Nichols和Smith,2009；Ying等,2008)，其在人植入前上胚层中是保守的(Roode等,2012)。
相比之下，GSK3抑制的最佳浓度在小鼠和人细胞之间不同。这可反映TCF3阻遏物功能与规范TCF/LEF因子的激活之间的改变的平衡，如大鼠ESC中描绘(Chen等,2013b)。此外，在小鼠ESC中，GSK3抑制很大程度上通过Esrrb的去阻抑起作用(Martello等,2013)，但ESRRB在重置人PSC中不良表达。NANOG、OCT4、SOX2和TCF3在小鼠Esrrb基因上结合的基因组间隔的不良保守可成为此缺乏对CH的响应的基础(图28)。ESRRB是小鼠ESC中的一种有力的自我更新因子(Festuccia等,2012；Martello等,2012)，且其低表达可贡献于人细胞在2iL中繁盛的有限能力，并且解释了对额外支持物的要求。是一种发现促成小鼠ESC自我更新的宽特异性PKC抑制剂(Dutta等,2011)。
最近，我们显示了非典型PKC iota的突变在很大程度上重演了的此效果(Leeb等,2014)。与此一致，我们发现了aPKC iota的敲低允许在没有的t2iL中增殖重置的人细胞(图29)。aPKC抑制下游的机制仍有待阐明，但吸引人的推测是它可通过干扰上皮极性的获取(植入后上胚层的一种必要特征)来抑制分化。
在中培养的再接线的PSC作为小集落一致地生长，在所述小集落中细胞是紧密包装的。在转移到FGF/KSR时，细胞在数天中逐渐变平，并且采用典型的人PSC外观。它们下调幼稚标志物，并且在2-3次传代后完全丧失在中形成集落的能力。此过程类似于小鼠ESC到EpiSC的体外分化和从植入前到植入后上胚层的体内进展。除了OCT4、SOX2和NANOG外，啮齿动物基态状态ESC通过一组转录因子的表达区分，并且依赖于其表达(Nichols和Smith,2012)。由于灵活的回路中的重叠功能，这些中的每种在个体上对于ESC自我更新不是必要的(Dunn等,2014)。它们在EpiSC和常规人PSC中都是缺乏的或非常低地表达。在人重置细胞中，除了ESRRB外都得到表达(图7)。预期ESRRB的缺乏使基态状态回路更加脆弱。KLF4或TFCP2L1敲低后对自我更新的严重损害与此预测一致，并提供了重置人PSC在功能上受再接线的基态状态转录因子回路支配的证据。通过ESRRB拯救TFCP2L1敲低细胞提供了与小鼠ESC基态状态控制系统的功能保守的进一步证据。
TFCP2L1是在小鼠ES细胞自我更新中证明的关键的因子，其在任何以前描述的人PSC中几乎不表达，但在我们的重置细胞中既是丰富的又是必不可少的。
目前的发现提示了真正的基态状态多能干细胞可以在人中获得，从而支持哺乳动物中多能性的通用幼稚状态的概念。在人中，基态状态转录因子回路似乎在很大程度上是保守的，但需要较大的增强才能稳定增殖。布置到崩溃反映了胚胎中幼稚多能性的瞬时性质(Nichols和Smith，2012)。发育进展的命令在灵长类中可能本质上更强，所述灵长类与小鼠和大鼠不一样尚未进化出胚胎滞育的设施(Nichols等,2001)。尽管如此，可存在精制和进一步改善人基态状态PSC的培养物条件的范围。在转基因诱导条件下获得的集落数目和大小增加可指向此潜力。
然而，对基态状态假设的综合评价仍然是必要的。可认为本文描述的重置细胞是遗传干预的合成产物。因此，直接自人胚泡衍生等同细胞是关键的未来界标。初级嵌合体的形成(啮齿动物中幼稚状态和发育潜力的有力测试)不能在人中进行。然而，可将重置细胞一致地掺入小鼠胚泡的ICM/上胚层中的发现将它们与常规的人PSC或小鼠EpiSC区分开并且与植入前的身份一致。令人感兴趣的是，在进一步培养以模拟植入后小鼠上胚层发育(Bedzhov和Zernicka-Goetz,2014)时，不再检测到人细胞的贡献。
这些数据是初步的，但可提示人细胞不能调节至与人相比小鼠移植后上胚层发育的快得多的速率和/或独特的形态发生组织化。作为有效的替代，可在非人灵长类动物中探索对同一物种嵌合体的贡献。然而，或许最重要的问题，至少从翻译角度来看，在于再接线转录回路也是否消除外遗传学规格。尽管有人遗传变异，可预期幼稚表观基因组赋予未分化表型和分化行为两者的升高的一致性。降低的H3K9me3和全基因组DNA低甲基化指向重置细胞中的重程序化和去限制的表观基因组，潜在地与早期人胚胎相当(Reik和Kelsey,2014)。确定此类广泛的表观基因组清洁的精确功能影响会是非常令人感兴趣的。
总之，本发明人已经证明了，基态状态多能性是人细胞的独特的细胞身份，其类似于真正的小鼠胚胎干细胞。他们显示了控制小鼠胚胎干细胞的转录因子回路可以在人细胞中激活，并且对全局代谢、外遗传和转录物组程序进行执行控制。
本发明人已经证明了他们在差异hPSC中的方法的可重复性和在长期传代中的稳定性，其中保留了几个重置系的正常核型。事实上，已经将用于转录物组分析的三种重置细胞系传代多次。
本发明人已经显示了，使用5种不同测定系统，重置细胞不是较不多能的。
这些发现证明了人细胞中基态状态多能性的设置和增殖功能控制回路的可行性。
实施例2
材料
FGF/KSR培养基：补充有20％KSR、1mM谷氨酰胺、1％非必需氨基酸、0.1mM 2ME和10ng/ml FGF2的DMEM/F12基础培养基
重置培养基和缩写；
PDL-HDACi包含补充有1μM PD0325901、人LIF(10ng/ml，内部制备)和HDAC抑制剂，如丙戊酸钠盐(VPC,0.5-1mM,Sigma,)或丁酸钠(SB,0.5-1mM,Sigma)的mTeSRTM-E6基础培养基(Stem Cell Technologies)。
任选地，可包括构成PDXL的Wnt途径抑制剂，如XAV939(2μM)。在XAV939的存在下，集落产率对于一些细胞系可更高，但是集落也是更异质的。
因此，PDXL含有补充有1μM PD0325901、2μM XAV939、人LIF(内部制备)的mTeSRTM-E6基础培养基(Stem cell Technologies)。
PDXL-HDACi是二者之一：
PDXL-VPC：含有丙戊酸钠盐(Sigma,0.5-1mM)的PDXL培养基。
PDXL-SB：具有丁酸钠(Sigma,0.5-1mM)的PDXL培养基。
优选在5％氧气的培养箱中进行重置。
幼稚维持培养基：-Y含有补充有250μM L-抗坏血酸-2-磷酸镁酸(Sigma)、1μM PD0325901、1mM Chiron、2.5μM (2.5uM,Sigma)、人LIF和10μM ROCK抑制剂Y27632的N2B27基础培养基。
ROCK抑制剂对于持续培养是任选的，并且可撤除或者仅在传代后应用24小时。
结果
在不使用转基因的情况下重置为基态状态多能性
在补充有10μM ROCK抑制剂(Y-27632)的KSR/FGF培养基中对6孔组织培养皿以每孔50,000至100,000个细胞的密度铺板携带EOS报告物[Hotta]的人ES细胞Shef6和H9。次日，对于接下去三天将培养基更换为重置培养基(PDL-HDACi或PDXL-HDACi)。此后，将细胞在幼稚维持培养基+ROCKi中维持(图30)。
EOS报告物含有由早期转座子的LTR和小鼠Oct4远端增强子的三聚体驱动的GFPIresPuro盒。通过显微镜，大多数常规人ES细胞中的EOS报告物以低至检测不到的水平表达。通过流式细胞术分析(FACS)，超过80％的细胞确实显示出低至中等的GFP表达(图31)。重置培养基在三天后诱导巨大的细胞死亡和分化。圆顶形GFP阳性集落出现在第5至第7天左右，并且在第10天至第12天后达到顶峰(图32、图33、图34)。然后，可使用TrypLETMExpress批次传代或单一挑出集落。如果需要的话，将嘌呤霉素选择应用于一次或两次传代以排除分化的细胞。重置细胞在重置期间从第7天起表达升高的幼稚状态标志物TFCP2L1和DPPA3(图35)。已经在15次传代内维持两种合并物iS6-N和iS6-E，并且通过G带分析是核型正常的。它们在低粘性96孔板中容易形成拟胚体，并上调分化标志物(图36)。
人稚细胞形成紧凑的圆顶形集落，其可根据形态鉴定和挑选。因此，EOS报告物不必要识别、挑选和扩充重置细胞(图37)。
另外，重置稚细胞也可基于其表面标志物(如Tra1-60、Tra1-81、E-钙粘蛋白、CD365或CD53)的表达来分离。
常规的人ES细胞和iPS细胞系是异质的。为了获得稳固的重置效率，可以需要调节条件，特别是HDAC抑制剂处理的浓度和持续时间。在无转基因重置培养基中的XAV939添加是任选的，但对于一些人ES细胞系可显著增加重置效率。
PKC抑制不是必需的，但可以添加到重置培养基。除了MEK抑制之外，还可应用FGF受体抑制(PD17)。基于E6的培养基通常允许快速且稳固的重置，但基于N2B27的培养基也可以起作用，尽管具有延迟的动力学。
此方案可应用于来自其它哺乳动物物种的多能细胞系或原代胚胎培养物。
实施例3
从胚胎直接建立基态状态培养物
可从灵长类动物、啮齿动物或其它哺乳动物胚胎直接衍生重置细胞。
对于从植入前阶段的衍生，在体外或子宫内发育的胚胎是完整培养的或通过显微切割或免疫手术分离内细胞团(ICM)和任选解离成单细胞后进行培养。初始培养在N2B27或等同的基础培养基中，具有t2iL或PDL加ROCK抑制剂(10μM)且有或没有抗坏血酸(250μM，Sigma)。可从开始或仅在传代后以2-4μM添加具有基态状态细胞的典型紧密聚簇形态的集落在原代长出物中可为不同的或者仅在传代后出现。如上所述，在基态状态维持培养基中挑选和扩充集落。可必须调节GSK3和PKC抑制的水平以达到不同物种的最佳值。
对于从晚期胚泡、植入周围的胚胎或植入后上胚层的衍生，最初在具有PDL-HDACi、XAV和任选地PKC抑制剂的重置培养基中培养解剖和/或解离的上胚层细胞。然后，通常在两或三天后将它们转移到基态状态维持培养基。如上所述，挑选集落并在基态状态培养基中扩充。优选在5％氧气的培养箱中进行衍生。
以下实施例证明了怎样适当的培养条件可用于允许将人植入前上胚层直接扩充成幼稚干细胞系。
a)材料和方法
胚胎操作
多余的冷冻人胚胎在HFEA许可证R0178下得到知情同意慷慨捐赠。使用胚胎融化试剂盒(FertiPro)将胚胎融化，并且在预平衡的胚胎培养基(Origio)的液滴中培养；对于1-8细胞阶段(第0-2天)为EmbryoAssist，或对于8细胞至胚泡(第3-6天)为BlastAssist，在胚胎测试矿物油(Sigma)下。每天监测它们，并且转移到新鲜培养基(如适合于发育阶段)。将扩充的胚泡(第6天)进行免疫手术(13,23)，以使用抗人血清(Sigma)分离内细胞团(ICM)。用Accutase(Sigma或Gibco)处理ICM达5-10分钟，并转移到一滴培养基，以使用精细拉出的巴斯德移液管进行机械分离。然后，将单独的ICM细胞分散到有丝分裂失活(照射)的鼠胚胎成纤维细胞(MEF)上。
幼稚干细胞培养
在补充有PD0325901(1μM，内部制备)、CHIR99021(1μM，内部制备)，(2.5μM，Sigma-Aldrich)、Rho相关激酶抑制剂(ROCKi，Y-27632)(10μM，Calbiochem)、人LIF(10ng/ml，内部制备)和抗坏血酸(250μM，Sigma)的改良N2B27培养基中增殖细胞。此培养基称为
改良的N2B27培养基(1L)包含490mL DMEM/F12(Life Technologies)、490mLNeurobasal(Life Technologies)、10mL B27(Life Technologies)、5mL N2(内部制备)、10μg/mL胰岛素(Sigma)、2mM L-谷氨酰胺(Life Technologies)和0.1mM 2-巯基乙醇(Sigma)。N2含有DMEM/F12(Life technology)中的100μg/ml Apo-转铁蛋白(eBioscience，ABC2553)、3μM亚硒酸钠(Sigma)、1.6mg/mL腐胺(Sigma)和2μg/mL孕酮(Sigma)。
在照射的MEF上培养细胞。如上文对ICM所述，在将集落转移到微滴后手动传代原代集落和新生细胞系。用Accutase(Life Technologies)解离手动传代或使用TrypLETMExpress(Life technology，12605)作为合并物传代建立的幼稚干细胞。在37℃的湿润培养箱中在5％氧气、7％二氧化碳中培养细胞。
转化为引发多能性
将HNES细胞在培养基中的MEF上接种24小时，然后转移到FGF/KSR培养基中7-10天，然后用TrypLETM Express传代。对于第一次传代添加Y27632(10μM)。此后，使用胶原酶/分散酶(Roche)将细胞常规地作为簇传代。FGF/KSR培养基包含20％KSR(Invitrogen)、1x非必需氨基酸(NEAA)(Invitrogen)、2mM L-谷氨酰胺(Invitrogen)、100μM 2-巯基乙醇(Sigma)、10ng/mL FGF2(内部制备)和DMEM/F-12基础培养基(Sigma-Aldrich)。也可在基质胶涂覆的组织培养板上在mTeSRTM1或E8培养基(StemCellTechnologies)中维持建立的HNES引发的培养物。
体外分化
用TrypLETM Express解离人幼稚干细胞或引发的衍生物，并在含有20％FBS或20％KSR的分化培养基中以4000-5000个细胞/孔的密度沉积在PrimeSurface 96V细胞板(Sumitomo Bakelite MS-9096V)中。
在聚集的前24小时过程中添加ROCK抑制剂(Y27632；10μM)。在第7天，将聚集体在FBS分化培养基中的明胶涂覆的组织培养塑料上铺板以进行附着和长出。
用于转录物组分析的样品制备
通过在明胶涂覆的皿上培养40分钟并收获用于TRIzol提取的未附着的细胞在消减饲养细胞后制备总RNA。
b)结果
在本实施例中，我们使用含有LIF和t2i加上泛-PKC抑制剂的无血清N2B27培养基培养PSC的人胚胎衍生。
为了保护珍贵的胚胎细胞的存活力，我们添加了抗坏血酸和ROCK抑制剂(Y-27632)，构成了在5％O2中在成纤维细胞饲养物上维持培养物。
我们使用免疫手术(Solter和Knowles,PNAS 1975；72(12):5099--‐102)以在受精后6天从胚泡中分离ICM。在Accutase辅助解离后，在中的饲养物上分布单细胞或双联体(doublet)。约一半的铺板ICM细胞在4-5天内形成紧密的集落(图38A-1)，类似于小鼠ES细胞原代集落形成。手动挑取集落，解离并合并。再铺板的细胞增殖，并且可通过每4-5天传代而扩充(图38J)。从不同胚胎(下表A)建立了四种细胞系，并且称作人幼稚上胚层干(HNES)细胞。
A.幼稚上胚层干细胞系的衍生
^到第6天腔形成的胚胎
原代集落在与培养箱湿度失败有关的三个情况中丧失
*原代集落出现但是在5次传代后不能扩充
从前三系制备中期染色体。两系表现出二倍体和异常核型两者，而一系显示46XY核型，其在进一步传代后稳定，通过G显带或阵列CGH检测不到异常(图38K和下文表B)。在下面进一步表征此系HNES-1。
B.幼稚上胚层干细胞系的染色体分析
*还在中14次传代和在KSR/FGF中进一步8次传代后通过高分辨率阵列CGH检查HNES1细胞。此分析确认了46,XY染色体互补物，而无可检测的异常。
在KLF2/NANOG表达后从常规PSC产生的HNES细胞和重置细胞之间的标志物比较显示NANOG的相似的升高的转录物水平和诊断性幼稚多能性标志物KLF4、TFCP2L1和DPPA3的表达(图38L)。免疫染色证实NANOG、KLF4和TFCP2L1蛋白与OCT4一起存在(图38M)。
我们将HNES细胞转移到含有KSR/FGF并且缺乏抑制剂的常规PSC培养基。一次传代后，HNES细胞的圆顶集落呈平坦的上皮形态，并且在两次传代后在常规的PSC外观中稳定化。OCT4和NANOG表达减少，并且幼稚标志物消失(图39A，39B)。
我们评估HNES细胞是否可经由拟胚体形成经历多谱系分化。我们在KSR/FGF中培养后直接从HNES细胞和HNES引发细胞两者形成聚集体。在这两种情况下，我们检测到早期谱系标志物PAX6、MIXL1和SOX17的上调(图39C)。拟胚体长出物表现出TuJ1阳性神经元、FOXA2/AFP双重阳性内胚层、和平滑肌肌动蛋白阳性细胞(图39D)。
引发的PSC依赖于具有非常低的线粒体呼吸能力的厌氧糖酵解(Zhou等,2012)。相比之下，重置PSC具有活性线粒体和相应降低的葡萄糖依赖性。我们评价了在糖酵解抑制剂2-脱氧葡萄糖存在下HNES细胞形成集落的能力。未分化的HNES细胞容易形成集落，而HNES引发的细胞不存活(未显示)。HNES细胞也用MitoProbeTM DiIC1强烈染色，反映了线粒体膜电位(未显示)。
通过细胞外通量分析测量氧消耗率证实，HNES细胞具有为引发细胞至少两倍高的呼吸能力(未显示)。
我们采用RNA-seq从三种独立HNES系中的每种的重复培养物获得全转录物组谱。将这些数据与上面报告的重置和常规人PSC数据集以及来自公共领域的更广泛的H9和H1数据组进行比较。HNES细胞特征在于与其它PSC不同并与重置状态一致的转录物组(图40A)。它们显示幼稚多能性因子的一致表达，表示幼稚身份。相比之下，常规PSC表现出更广泛的表达谱变化，例如NANOG、ZFP42(REX1)和TFCP2L1的散发激活。与常规PSC相比，HNES细胞也表达谱系标记物的限制性互补物。我们进行主成分分析，另外并入关于通过单细胞RNAseq产生的人ICM细胞的发表数据和相应的常规PSC单细胞数据(图40B)。PC1主要区分单细胞和大量RNA-seq样品，提示测序方案的主要影响。事实上，在其它研究中检测到的许多基因在Yan数据集中产生0得分，与单细胞RNAseq的已知检测限(Kharchenko等,NatMethods.2014；11(7):740-‐2)一致。三种HNES细胞的生物重复与重置H9细胞一起聚簇。PC2将HNES细胞置于与ICM细胞相对接近并与其它PSC完全分离。在HNES细胞和胚胎细胞之间的PC2上比对程度显得合理，考虑到分析的早期ICM细胞可能早于幼稚上胚层。
小鼠和人ICM细胞的特征在于全局DNA低甲基化(Guo等,2014；Smith等,2014)。此表观基因组特征与幼稚ES细胞(Ficz等,2013；Habibi等,2013；Leitch等,2013)和重置人PSC(参见上文讨论)共享。HNES细胞显示从头甲基转移酶DNMT3B的下调和TET1的可觉察的表达(图40C)。与HNES引发的细胞相比，5-甲基胞嘧啶(5mC)的免疫染色在HNES细胞核中更微弱。全基因组亚硫酸氢盐测序(BS-seq)确认HNES细胞中全基因组的低甲基化，类似于人ICM中观察到的30-40％的水平(Guo等,2014)并且与常规的PSC和HNES引发细胞中的>70％CpG甲基化形成对比(图40D，E)。
c)讨论
我们已经显示了在解离ICM以分离上胚层和原始内胚层后，干细胞集落在MAPK/Erk、GSK3和PKC的抑制剂存在下直接生长。可通过解聚成单细胞增殖所得的HNES细胞系，并且可在多次传代内保留染色体完整性。分子标志物、全局转录物组、代谢性质和DNA低甲基化特征使HNES细胞与重置PSC对齐(align)并且接近小鼠ES细胞和人ICM。
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Claims (47)

1.一种将人干细胞重置为更为幼稚的状态的方法，所述方法包括：
(a)提供要重程序化的人干细胞，
(b)通过如下诱导更为幼稚的状态：
(i)任选地，对所述细胞表达或导入一种或多种异源重程序化因子，
(ii)在重置培养基中培养所述细胞，其中所述重置培养基包含MEK抑制剂，和任选地STAT3活化剂，和任选地一种或多种另外的抑制剂，
(c)在幼稚培养基中维持所述细胞，其中所述幼稚培养基包含MEK抑制剂、PKC抑制剂和任选地GSK3抑制剂、和STAT3活化剂。
2.根据权利要求1的方法，其中步骤(b)(i)包括在所述细胞中表达重程序化因子，其中所述重程序化因子包含NANOG和KLF2。
3.根据权利要求2的方法，其中所述重程序化因子由NANOG和KLF2组成。
4.根据权利要求1至3中任一项的方法，其中所述重置培养基还包含GSK3抑制剂的存在。
5.根据权利要求1至3中任一项的方法，其中所述重置培养基还包含FGF抑制剂的存在。
6.一种将人多能干细胞重程序化为更为幼稚的状态的方法，所述方法包括在所述细胞中表达重程序化因子，其中重程序化因子包含NANOG和KLF2，并且在重置培养基中培养所述细胞，其中所述重置培养基包含MEK抑制剂、GSK3抑制剂和STAT3活化剂。
7.一种将人多能干细胞重程序化为更为幼稚的状态的方法，所述方法包括在所述细胞中表达重程序化因子，其中所述重程序化因子包含NANOG和KLF2，并且在重置培养基中培养所述细胞，其中所述重置培养基包含MEK抑制剂、FGF抑制剂和STAT3活化剂。
8.根据权利要求1至7中任一项的方法，其中所述重程序化因子的表达是瞬时的。
9.根据权利要求8的方法，其包括对所述细胞导入在所述细胞中表达所述重程序化因子的质粒制备物。
10.根据权利要求8或权利要求9的方法，其中在诱导型启动子的转录控制下表达所述重程序化因子。
11.根据权利要求8至10中任一项的方法，其中在重编程化为幼稚状态后不维持编码所述重程序化因子的异源核酸。
12.根据权利要求1的方法，其中所述重置培养基还包含HDAC抑制剂。
13.根据权利要求1或权利要求12的方法，其中所述重置培养基还包含端锚聚合酶(Tankyrase)抑制剂和任选地PKC抑制剂。
14.一种将人多能干细胞重程序化为更为幼稚的状态的方法，其在重置培养基中培养所述细胞，其中所述重置培养基包含MEK抑制剂、端锚聚合酶抑制剂、HDAC抑制剂和STAT3活化剂。
15.根据权利要求12至14中任一项的方法，其中所述方法不涉及对所述细胞表达或导入一种或多种异源重程序化因子。
16.权利要求6、7或14、或作为权利要求6、7或14的从属权利要求的权利要求8至13或权利要求15中任一项的方法，其还包括增殖幼稚状态的重程序化的人多能干细胞。
17.根据权利要求16的方法，其中在幼稚培养基中以幼稚状态增殖所述重程序化的人多能干细胞，其中所述幼稚培养基包含GSK3抑制剂、MEK抑制剂和STAT3活化剂和PKC抑制剂。
18.一种维持/保持幼稚状态的人细胞的方法，所述方法包括在幼稚培养基中培养所述细胞，其中所述幼稚培养基包含PKC抑制剂、MEK抑制剂。
19.根据权利要求18的方法，其中所述幼稚培养基还包含STAT3活化剂。
20.一种获得或增殖幼稚状态的重程序化人多能干细胞的扩增群体的方法，所述方法包括：
a)提供已经重程序化为幼稚状态的人多能干细胞，
b)在幼稚培养基中培养所述细胞，其中所述幼稚培养基包含PKC抑制剂、MEK抑制剂和任选地GSK3抑制剂和STAT3活化剂。
21.根据权利要求20的方法，其中已经根据权利要求16的方法将所述人多能干细胞重程序化为幼稚状态。
22.根据权利要求1至5、12至13或17至21中任一项的方法，其中所述幼稚培养基还包含ROCK抑制剂。
23.根据权利要求1至22中任一项的方法，其中若存在的话，所述GSK3抑制剂是CHIR99021。
24.根据权利要求1至23中任一项的方法，其中若存在的话，所述GSK3抑制剂的浓度足够低以允许维持基态形态，同时足够高以恢复生长速率。
25.根据权利要求1至24中任一项的方法，其中若存在的话，所述MEK抑制剂是PD0325901。
26.根据权利要求1至25中任一项的方法，其中若存在的话，所述PKC抑制剂是或Ro-31-8425。
27.根据权利要求1至26中任一项的方法，其中若存在的话，所述PKC抑制剂的浓度允许在缺乏饲养细胞的情况下的培养物生长。
28.根据权利要求1至27中任一项的方法，其中若存在的话，所述STAT3活化剂是LIF。
29.根据权利要求28的方法，其中所述LIF是人LIF。
30.根据权利要求1至29中任一项的方法，其中若存在的话，所述FGF抑制剂是PD173074。
31.根据权利要求1至30中任一项的方法，其中在诱导所述更为幼稚的状态前在补充有FGF的血清替代培养基中培养所述细胞。
32.根据权利要求1至31中任一项的方法，其中每日更换所述重置培养基或幼稚培养基和\或其中在5％氧气的存在下进行所述重置。
33.根据权利要求1至32中任一项的方法，其中每培养5至7天传代所述细胞。
34.根据权利要求1至33中任一项的方法，其中通过一种或多种以下表型或基因型确认幼稚状态的维持：
a)在培养物中持续且克隆性自我更新并保持多能性的能力，
b)与小鼠植入后上胚层干细胞(EpiSC)或常规的人多能干细胞相比，与在确定成分培养基中培养的小鼠胚胎干细胞更相似的全局转录物组，
c)与植入后上胚层相比，与植入前上胚层更类似的全局转录物组，
d)植入前上胚层特异性转录因子的mRNA和蛋白质的表达，任选下列1、2、3、4、5、6或全部：KLF2、KLF4、TFCP2L1、TBX3、REX1、GBX2和STELLA(DPPA3)，以及一般多能性因子，如OCT4、SOX2和SALL4的mRNA和蛋白质的表达，以及任选地NANOG的mRNA和蛋白质水平的升高；
e)依赖小鼠胚胎干细胞中定义的关键转录因子，特别是TFCP2L1和KLF4；
f)TFE3的核定位；
g)通常在常规人多能干细胞中表达的早期谱系标志物，如AFP、EOMES和/或BRACHURY的低水平表达或表达缺乏；
h)活性线粒体呼吸；
i)全基因组低甲基化；
j)较低的与基因相关的组蛋白修饰水平，如H3K27me3和H3K9me3的水平降低；
k)能够掺入宿主胚胎内细胞团和预植入上胚层中以形成胚胎嵌合体；
l)能够将植入后的上胚层和衍生组织定殖在用相同或密切相关的物种形成的嵌合体中；
m)在对Erk/MAP激酶信号传导的完全抑制的存在下自我更新；
n)在生长因子受体酪氨酸激酶信号传导抑制的存在下自我更新；
o)在TGFbeta/激活蛋白信号传导抑制的存在下自我更新；
p)在PKC抑制或敲低的存在下自我更新；
q)在部分抑制(GSK3)糖原合酶激酶-3活性的存在下自我更新；
r)在STAT3激动剂，如LIF的存在下自我更新；
s)在有或没有Rho相关激酶抑制(ROCKi)的情况下从解离单细胞的自我更新；
t)在缺乏血清或血清替代品的情况下自我更新；
u)在缺乏饲养细胞的情况下自我更新；
v)在缺乏转基因表达或其它遗传扰动的情况下自我更新；
w)在长期传代中保留二倍体核型而不重排，例如在超过40个群体倍增内；
x)在Erk/MAP激酶信号传导和激活蛋白的生长因子刺激的存在下分化成常规引发的多能表型；
y)能够在体外分化成原生殖细胞以及体细胞胚层；
z)能够通过从植入前上胚层转换而在体外建立连续培养；
aa)紧密包装的圆顶外观；
bb)DNMT3a和DNMT3b的表达降低。
35.根据权利要求34的方法，其中在所述重程序化细胞中诱导KLF2、KLF4、TFCP2L1、TBX3、REX1、GBX2和STELLA的表达。
36.根据前述权利要求中任一项的方法，其中用于所述方法的人细胞选自：
(i)诱导的多能干细胞；
(ii)来自胚胎细胞系的细胞；
(iii)在不破坏相应的胚胎的情况下通过活检获得的胚胎干细胞。
37.一种通过权利要求1至36中任一项的方法获得的幼稚状态的重程序化人多能干细胞。
38.一种具有本文中所述的一种或多种幼稚状态特征的幼稚状态的重程序化人多能干细胞。
39.根据权利要求1至36中任一项的方法，其用于产生产物，所述产物是如权利要求37和权利要求38中定义的人多能干细胞。
40.MEK抑制剂和PKC抑制剂以及任选地GSK3抑制剂和STAT3活化剂或包含它们的培养基用于维持基态状态的人多能干细胞的用途。
41.NANOG、KLF2、MEK抑制剂、FGF抑制剂和STAT3活化剂或包含它们的培养基用于将人多能干细胞向基态状态重置的用途。
42.NANOG、KLF2、MEK抑制剂、GSK3抑制剂和STAT3活化剂或包含它们的培养基用于将人多能干细胞向基态状态重置的用途。
43.如前述权利要求中任一项中限定的重置培养基，其中所述重置培养基包含MEK抑制剂和任选地STAT3活化剂，以及任选地一种或多种另外的抑制剂。
44.根据权利要求43的重置培养基，其中所述培养基是无血清的。
45.如前述权利要求中任一项中限定的稚细胞培养基，其中所述稚细胞培养基包含PKC抑制剂、MEK抑制剂、和任选地GSK3抑制剂和STAT3活化剂。
46.根据权利要求45的稚细胞培养基，其还包含ROCK抑制剂。
47.根据权利要求45或权利要求46的稚细胞培养基，其中所述培养基是无血清的。
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