CN106635810A - 一种微藻及微藻的培养方法 - Google Patents

一种微藻及微藻的培养方法 Download PDF

Info

Publication number
CN106635810A
CN106635810A CN201611113056.3A CN201611113056A CN106635810A CN 106635810 A CN106635810 A CN 106635810A CN 201611113056 A CN201611113056 A CN 201611113056A CN 106635810 A CN106635810 A CN 106635810A
Authority
CN
China
Prior art keywords
microalgae
culture
chitosan oligosaccharide
cells
zinc salt
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201611113056.3A
Other languages
English (en)
Other versions
CN106635810B (zh
Inventor
胥维昌
王加友
章表明
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shenyang Research Institute of Chemical Industry Co Ltd
Original Assignee
Shenyang Research Institute of Chemical Industry Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shenyang Research Institute of Chemical Industry Co Ltd filed Critical Shenyang Research Institute of Chemical Industry Co Ltd
Priority to CN201611113056.3A priority Critical patent/CN106635810B/zh
Publication of CN106635810A publication Critical patent/CN106635810A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN106635810B publication Critical patent/CN106635810B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/12Unicellular algae; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/38Chemical stimulation of growth or activity by addition of chemical compounds which are not essential growth factors; Stimulation of growth by removal of a chemical compound
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor

Abstract

本发明涉及生物领域,特别涉及一种微藻及微藻的培养方法,该微藻采用尼罗红染色法测定得微藻的单位细胞荧光强度为5.16×104~6.54×104a.u·cells‑1;提供的微藻的培养方法,包括将待培养微藻在培养基中初步培养后,再添加壳寡糖、可溶性锌盐及2‑羟基膦酰基乙酸培养得上述微藻,能提高生物量和快速积累中性脂,具有操作方便、实用性强、培养周期短、对水体无污染、降低产业化成本等优点。

Description

一种微藻及微藻的培养方法
技术领域
本发明涉及生物领域,特别涉及一种微藻及微藻的培养方法。
背景技术
在化石能源日益枯竭,全球气候变暖的背景下,开展节能减排,发展循环经济,开发可再生能源,是今后科技与社会发展的重要方向。国内外许多研究者早已将目光投向了开发可替代化石能源的环境友好可再生能源,生物质能源是重要的可再生能源。微藻由于具有细胞增殖快、培养周期短、生物质产量高等优点,被认为是一种极具潜力的生物能源原料。
为了提高微藻细胞中的油脂含量,通常采用两步法进行培养:第一步利用微藻增殖培养的最优化条件,获得微藻细胞的最大生物量;第二步采用营养限制、压力环境、高光强、低温培养等条件,促进微藻中性脂的积累。专利公布号CN103352006A的发明专利“一种促进自养微藻中性脂累积的培养方法”就公开了在获得细胞增殖培养至最大生物量的前提下,通过对藻液的降温以及光照条件的改变,实现了促进和提高中性脂累积的目的,单位细胞的中性脂累积量比对照最大提高40%,但是此专利操作复杂、诱导培养时间较长,增加了培养成本。专利公布号CN103484372A的发明专利“一种提高微藻生物质和油脂产量的培养方法”采用富营养和贫营养二阶段式培养的方法,实现了生物质和油脂产量的双增长,但是中间过程中采用离心浓缩的方法,增加了能耗。上述两段式培养方法进行微藻培养及油脂累积,具有培养周期较长、培养效率低、操作步骤繁琐、应用成本较高且微藻生长量低、中性脂含量不高等问题,无法进行商业应用。
发明内容
本发明旨在克服现有技术中微藻的培养及油脂累积周期长、效率低、操作繁琐、应用成本高且获得的微藻中性脂含量不高等问题,提供一种具有高油脂含量的微藻,以及简单易行、适合于大规模培养应用、高效积累中性脂的微藻的培养方法。
为实现上述目的,本发明采用以下技术方案:
本发明提供了一种微藻,该微藻采用尼罗红染色法测定得微藻的单位细胞荧光强度为5.16×104~6.54×104a.u·cells-1
其中,尼罗红染色法是指:采用酶标仪检测荧光强度,激发波长为480nm,发射波长为580nm。用海水将微藻样品稀释至细胞密度为1.0×106cells·mL-1左右,加入尼罗红染料使其终质量浓度为1.00μg·mL-1,加入DMSO(二甲基亚砜)使其终体积分数为2.0%,避光染色10min,此时测定的荧光强度为总荧光强度,总荧光强度减去微藻细胞自身荧光和海水自荧光即为微藻的尼罗红荧光强度。
中性脂含量即荧光强度,
一些实施例中,微藻为等鞭金藻、三角褐指藻或威氏海链藻中的一种或几种。
本发明同时还提供了一种微藻的培养方法,包括将待培养微藻在培养基中初步培养后,再添加壳寡糖、可溶性锌盐及2-羟基膦酰基乙酸培养得上述微藻。
一些实施例中,相对于培养基的体积,所述壳寡糖的质量为0.2-1mg·L-1;所述可溶性锌盐中锌的摩尔质量为0.05-0.1mmol·L-1;所述2-羟基膦酰基乙酸的摩尔质量为0.12-0.2mmol·L-1
一些实施例中,相对于培养基的体积,所述壳寡糖的质量为0.6-1mg·L-1;所述可溶性锌盐中锌的摩尔质量为0.08-0.1mmol·L-1;所述2-羟基膦酰基乙酸的摩尔质量为0.15-0.2mmol·L-1
一些实施例中,壳寡糖的聚合度为3-10。
一些实施例中,可溶性锌盐选自氯化锌、硫酸锌或硝酸锌中的一种或几种。
一些实施例中,所述将待培养微藻在培养基中初步培养为将微藻培养至稳定期。
一些实施例中,培养基为灭菌海水。
一些实施例中,再添加壳寡糖、可溶性锌盐及2-羟基膦酰基乙酸培养的时间为1-3天。
本发明的有益效果在于:本发明获得的微藻油脂含量高,微藻的单位细胞荧光强度可以达到5.16×104~6.54×104a.u·cells-1,较现有技术提高了30-55%。本发明能提高生物量和快速积累中性脂,推测可能因为本发明添加的壳寡糖可以延长微藻稳定期,维持微藻的生物活性,2-羟基膦酰基乙酸与Zn2+具有协同作用,能促进微藻中性脂的累积,显著的提高了微藻中性脂肪的含量。同时本发明加入的物质,不受外界环境条件的限制,具有操作方便、实用性强,可用于微藻室内及开放式培养,且培养周期短、对水体无污染等优势,可以用于微藻规模化培养,为生物柴油产业化提供更多原料,降低产业化成本。
附图说明
图1为实施例1湛江等鞭金藻培养过程生长曲线,其中1为对照组,2为处理组;
图2为实施例2湛江等鞭金藻培养过程生长曲线,其中1为对照组,2为处理组;
图3为实施例3湛江等鞭金藻培养过程生长曲线,其中1为对照组,2为处理组;
图4为实施例4湛江等鞭金藻培养过程生长曲线,其中1为对照组,2为处理组;
图5为对比例1湛江等鞭金藻培养过程生长曲线,其中1为对照组,2为处理组;
图6为对比例2湛江等鞭金藻培养过程生长曲线,其中1为对照组,2为处理组;
图7为对比例3湛江等鞭金藻培养过程生长曲线,其中1为对照组,2为处理组。
具体实施方式
下面详细描述本发明的实施例,下面描述的具体实施例是示例性的,旨在用于解释本发明,而不能理解为对本发明的限制。
本发明提供了一种微藻,该微藻采用尼罗红染色法测定得微藻的单位细胞荧光强度为5.16×104~6.54×104a.u·cells-1,油脂含量高,为微生物的产业应用奠定了基础。
其中,尼罗红染色法是指:采用酶标仪检测荧光强度,激发波长为480nm,发射波长为580nm。用海水将微藻样品稀释至细胞密度为1.0×106cells·mL-1左右,加入尼罗红染料使其终质量浓度为1.00μg·mL-1,加入DMSO使其终体积分数为2.0%,避光染色10min,此时测定的荧光强度为总荧光强度,总荧光强度减去微藻细胞自身荧光和海水自荧光即为微藻的尼罗红荧光强度。
中性脂含量即荧光强度,
一些实施例中,微藻为等鞭金藻、三角褐指藻或威氏海链藻等海洋微藻,本发明具体为等鞭金藻。
本发明同时还提供了一种微藻的培养方法,包括将待培养微藻在培养基中初步培养后,再添加壳寡糖、可溶性锌盐及2-羟基膦酰基乙酸培养得上述微藻,是一种促进微藻中性脂快速累积的方法。
一些实施例中,相对于培养基的体积,所述壳寡糖的质量为0.2-1mg·L-1;所述可溶性锌盐中锌的摩尔质量为0.05-0.1mmol·L-1;所述2-羟基膦酰基乙酸的摩尔质量为0.12-0.2mmol·L-1。进一步优选,相对于培养基的体积,所述壳寡糖的质量为0.6-1mg·L-1;所述可溶性锌盐中锌的摩尔质量为0.08-0.1mmol·L-1;所述2-羟基膦酰基乙酸的摩尔质量为0.15-0.2mmol·L-1,进一步促进微藻中性脂的快速累积。
一些实施例中,壳寡糖的聚合度为3-10,进一步保证微藻的稳定期。
其中,可溶性锌盐本发明没有限制,可以为本领域技术人员公知的各种含锌易溶解的无机盐类,例如,可溶性锌盐可以选自氯化锌、硫酸锌或硝酸锌中的一种或几种。
本发明优选,将待培养微藻在培养基中初步培养为将微藻培养至稳定期。一般,可通过每天取样测定培养基中微藻细胞密度,细胞密度达到7.5±0.5×107cells·mL-1左右即为达到稳定期,一般需培养5天。
优选,培养基为灭菌海水,一些实施例中具体可以通过将过滤后的天然海水110℃高温蒸汽灭菌20min,在整个培养的过程中加入f/2培养基,一些实施例中,具体的f/2培养基的组分可以为:每升f/2培养基中含有75g NaNO3,5g NaH2PO4·H2O,3.15g FeCl3·6H2O,4.36g Na2EDTA,0.0098g CuSO4·5H2O,0.0063g Na2MoO4·2H2O,0.022g ZnSO4·7H2O,0.01gCoCl2·6H2O,0.18g MnCl2·4H2O,0.001g vitamin(维生素)B12,0.2g vitamin B1,0.001gbiotin(生物素)。优选,每天1L培养基中加入1mL f/2培养基。
优选,添加壳寡糖、可溶性锌盐及2-羟基膦酰基乙酸的时期一般为微藻经过5-6天的培养,然后再添加本发明的组合物壳寡糖、可溶性锌盐及2-羟基膦酰基乙酸培养1-3天。
优选,在整个培养过程中,包括初步培养过程中,通入空气,一些实施例中具体的,以藻液即培养液的体积计,培养0-2天以60%通入空气,2天以后以80%通入空气,进一步优选通入空气中含体积比2%的CO2气体。优选整个培养过程中培养条件为:温度25±1℃,光照强度8 000±500lx,光照时间和黑暗时间比值为12:12。
一般培养后可通过絮凝和离心的方法收集微藻,微藻收集后采用喷雾干燥得到微藻粉,保存备用。
本发明的方法能提高生物量和快速积累中性脂,具有操作方便、实用性强、培养周期短、对水体无污染、降低产业化成本等优点。
以下是本发明提供的具体实施例,用以说明上述方案及其各种条件的选取。本发明实施例中所用试剂均采用市购分析纯。
实施例1
摇瓶培养的湛江等鞭金藻转接至600mL管式反应器培养,接种量500mL、接种密度1.0×107cells·mL-1,培养基为将过滤后的天然海水110℃高温蒸汽灭菌20min,培养过程中加入f/2培养基。培养条件为:温度(25±1)℃,光照强度(8 000±500)lx,光照时间(h)和黑暗时间(h)比值为12:12,微藻培养0-2天以藻液体积的60%通入空气,2天以后以藻液体积的80%通入空气,通入空气中含体积比2%的CO2气体,每天加入f/2培养基0.5mL。每天取样测定湛江等鞭金藻细胞密度,湛江等鞭金藻培养至第5天时,细胞密度达到7.5×107cells·mL-1左右,处理组加入0.2mg·L-1壳寡糖、0.05mmol·L-1 ZnCl2和0.12mmol·L- 12-羟基膦酰基乙酸,对照组不加入上述物质,培养1天后,通过絮凝和离心的方法收集微藻,微藻收集后采用喷雾干燥得到微藻粉,保存备用。采用尼罗红染色法测定湛江等鞭金藻的中性脂含量,对照组单位细胞荧光强度为3.98×10-4a.u·cells-1,处理组单位细胞荧光强度为5.16×10-4a.u·cells-1,结果表明加入0.2mg·L-1壳寡糖、0.05mmol·L-1ZnCl2和0.12mmol·L-12-羟基膦酰基乙酸,微藻单位细胞中性脂累积量与对照相比增加约为30%。
实施例2
湛江等鞭金藻转接至600mL管式反应器培养,接种量500mL、接种密度1.0×107cells·mL-1,培养基为将过滤后的天然海水110℃高温蒸汽灭菌20min,培养过程中加入f/2培养基。培养条件为:温度(25±1)℃,光照强度(8 000±500)lx,光照时间(h)和黑暗时间(h)比值为12:12,微藻培养0-2天以藻液体积的60%通入空气,2天以后以藻液体积的80%通入空气,通入空气中含体积比2%的CO2气体,每天加入f/2培养基0.5mL。每天取样测定湛江等鞭金藻细胞密度,湛江等鞭金藻培养至第5天时,细胞密度达到7.5×107cells·mL-1左右,处理组加入0.6mg·L-1壳寡糖、0.08mmol·L-1 ZnSO4和0.18mmol·L-12-羟基膦酰基乙酸,对照组不加入上述物质,培养2天后,通过絮凝和离心的方法收集微藻,微藻收集后采用喷雾干燥得到微藻粉,保存备用。采用尼罗红染色法测定湛江等鞭金藻的中性脂含量,处理组单位细胞荧光强度为5.90×10-4a.u·cells-1,对照组单位细胞荧光强度为4.15×10-4a.u·cells-1,结果表明加入0.6mg·L-1壳寡糖、0.08mmol·L-1ZnSO4和0.18mmol·L-12-羟基膦酰基乙酸,微藻单位细胞中性脂含量与对照相比增加42%。
实施例3
湛江等鞭金藻转接至600mL管式反应器培养,接种量500mL、接种密度1.0×107cells·mL-1,培养基为将过滤后的天然海水110℃高温蒸汽灭菌20min,培养过程中加入f/2培养基。培养条件为:温度(25±1)℃,光照强度(8 000±500)lx,光照时间(h)和黑暗时间(h)比值为12:12,微藻培养0-2天以藻液体积的60%通入空气,2天以后以藻液体积的80%通入空气,通入空气中含体积比2%的CO2气体,每天加入f/2培养基0.5mL。每天取样测定湛江等鞭金藻细胞密度,湛江等鞭金藻培养至第5天时,细胞密度达到7.5×107cells·mL-1左右,处理组加入1.0mg·L-1壳寡糖、0.1mmol·L-1 ZnSO4和0.2mmol·L-1 2-羟基膦酰基乙酸,对照组不加入上述物质,培养3天后,通过絮凝和离心的方法收集微藻,微藻收集后采用喷雾干燥得到微藻粉,保存备用。采用尼罗红染色法测定湛江等鞭金藻的中性脂含量,实验组单位细胞荧光强度为6.54×10-4a.u·cells-1,对照组单位细胞荧光强度为4.22×10-4a.u·cells-1,结果表明加入1.0mg·L-1壳寡糖、0.1mmol·L-1ZnSO4和0.2mmol·L-1 2-羟基膦酰基乙酸,微藻单位细胞中性脂含量与对照相比增加约为55%。
实施例4
湛江等鞭金藻转接至600mL管式反应器培养,接种量500mL、接种密度1.0×107cells·mL-1,培养基为将过滤后的天然海水110℃高温蒸汽灭菌20min,培养过程中加入f/2培养基。培养条件为:温度(25±1)℃,光照强度(8 000±500)lx,光照时间(h)和黑暗时间(h)比值为12:12,微藻培养0-2天以藻液体积的60%通入空气,2天以后以藻液体积的80%通入空气,通入空气中含体积比2%的CO2气体,每天加入f/2培养基0.5mL。每天取样测定湛江等鞭金藻细胞密度,湛江等鞭金藻培养至第5天时,细胞密度达到7.5×107cells·mL-1左右,处理组加入0.5mg·L-1壳寡糖、0.06mmol·L-1 ZnSO4和0.15mmol·L-1 2-羟基膦酰基乙酸,对照组不加入上述物质,培养3天后,通过絮凝和离心的方法收集微藻,微藻收集后采用喷雾干燥得到微藻粉,保存备用。采用尼罗红染色法测定湛江等鞭金藻的中性脂含量,处理组单位细胞荧光强度为5.68×10-4a.u·cells-1,对照组单位细胞荧光强度为4.18×10-4a.u·cells-1,结果表明加入0.5mg·L-1壳寡糖、0.06mmol·L-1ZnSO4和0.15mmol·L-12-羟基膦酰基乙酸,微藻单位细胞中性脂含量与对照相比增加约为36%。
对比例1
湛江等鞭金藻转接至600mL管式反应器培养,接种量500mL、接种密度1.0×107cells·mL-1,培养基为将过滤后的天然海水110℃高温蒸汽灭菌20min,培养过程中加入f/2培养基。培养条件为:温度(25±1)℃,光照强度(8000±500)lx,光照时间(h)和黑暗时间(h)比值为12:12,微藻培养0-2天以藻液体积的60%通入空气,2天以后以藻液体积的80%通入空气,通入空气中含体积比2%的CO2气体,每天加入f/2培养基0.5mL。每天取样测定湛江等鞭金藻细胞密度,湛江等鞭金藻培养至第5天时,细胞密度达到7.5×107cells·mL-1左右,处理组加入0.05mmol·L-1ZnCl2和0.2mmol·L-12-羟基膦酰基乙酸,对照组不加入上述物质,培养1天后,通过絮凝和离心的方法收集微藻,微藻收集后采用喷雾干燥得到微藻粉,保存备用。采用尼罗红染色法测定湛江等鞭金藻的中性脂含量,处理组单位细胞荧光强度为4.46×10-4a.u·cells-1,对照组单位细胞荧光强度为3.98×10-4a.u·cells-1,结果表明加入0.05mmol·L-1ZnCl2和0.2mmol·L-1 2-羟基膦酰基乙酸微藻单位细胞中性脂含量与对照相比增加12%。
对比例2
湛江等鞭金藻转接至600mL管式反应器培养,接种量500mL、接种密度1.0×107cells·mL-1,培养基为将过滤后的天然海水110℃高温蒸汽灭菌20min,培养过程中加入f/2培养基。。培养条件为:温度(25±1)℃,光照强度(8000±500)lx,光照时间(h)和黑暗时间(h)比值为12:12,微藻培养0-2天以藻液体积的60%通入空气,2天以后以藻液体积的80%通入空气,通入空气中含体积比2%的CO2气体,每天加入f/2培养基0.5mL。每天取样测定湛江等鞭金藻细胞密度,湛江等鞭金藻培养至第5天时,细胞密度达到7.5×107cells·mL-1左右,处理组加入0.6mg·L-1壳寡糖及0.08mmol·L-1ZnSO4,对照组不加入上述物质,培养2天后,通过絮凝和离心的方法收集微藻,微藻收集后采用喷雾干燥得到微藻粉,保存备用。采用尼罗红染色法测定湛江等鞭金藻的中性脂含量,处理组单位细胞荧光强度为4.52×10-4a.u·cells-1,对照组单位细胞荧光强度为4.15×10-4a.u·cells-1,结果表明加入0.6mg·L-1壳寡糖、0.08mmol·L-1ZnSO4微藻单位细胞中性脂含量与对照相比增加8.9%。
对比例3
湛江等鞭金藻转接至600mL管式反应器培养,接种量500mL、接种密度1.0×107cells·mL-1,培养基为将过滤后的天然海水110℃高温蒸汽灭菌20min,培养过程中加入f/2培养基。培养条件为:温度(25±1)℃,光照强度(8000±500)lx,光照时间(h)和黑暗时间(h)比值为12:12,微藻培养0-2天以藻液体积的60%通入空气,2天以后以藻液体积的80%通入空气,通入空气中含体积比2%的CO2气体,每天加入f/2培养基0.5mL。每天取样测定湛江等鞭金藻细胞密度,湛江等鞭金藻培养至第5天时,通过絮凝和离心的方法收集微藻,微藻收集后采用喷雾干燥得到微藻粉,保存备用。细胞密度达到7.5×107cells·mL-1左右,处理组加入1.0mg·L-1壳寡糖和0.2mmol·L-12-羟基膦酰基乙酸,对照组不加入上述物质,培养3天后,采用尼罗红染色法测定湛江等鞭金藻的中性脂含量,处理组单位细胞荧光强度为4.85×10-4a.u·cells-1,对照组单位细胞荧光强度为4.22×10-4a.u·cells-1,结果表明加入1.0mg·L-1壳寡糖和0.2mmol·L-1 2-羟基膦酰基乙酸微藻单位细胞中性脂含量与对照相比增加15%。
本发明获得的微藻油脂含量高,微藻的单位细胞荧光强度可以达到5.16×104~6.54×104a.u·cells-1,较现有技术提高了30-55%,本发明能提高生物量和快速积累中性脂,同时本发明加入的物质,不受外界环境条件的限制,具有操作方便、实用性强,可用于微藻室内及开放式培养,且培养周期短、对水体无污染等优势,可以用于微藻规模化培养,为生物柴油产业化提供更多原料,降低产业化成本。
在本说明书的描述中,参考术语“一个实施例”、“一些实施例”、“示例”、“具体示例”、或“一些示例”等的描述意指结合该实施例或示例描述的具体特征、结构、材料或者特点包含于本发明的至少一个实施例或示例中。在本说明书中,对上述术语的示意性表述不一定指的是相同的实施例或示例。而且,描述的具体特征、结构、材料或者特点可以在任何的一个或多个实施例或示例中以合适的方式结合。
尽管上面已经示出和描述了本发明的实施例,可以理解的是,上述实施例是示例性的,不能理解为对本发明的限制,本领域的普通技术人员在不脱离本发明的原理和宗旨的情况下在本发明的范围内可以对上述实施例进行变化、修改、替换和变型。

Claims (10)

1.一种微藻,其特征在于,所述微藻采用尼罗红染色法测定得微藻的单位细胞荧光强度为5.16×104~6.54×104a.u·cells-1
2.根据权利要求1所述的微藻,其特征在于,所述微藻为等鞭金藻、三角褐指藻或威氏海链藻中的一种或几种。
3.一种微藻的培养方法,其特征在于,所述培养方法包括:将待培养微藻在培养基中初步培养后,再添加壳寡糖、可溶性锌盐及2-羟基膦酰基乙酸培养得如权利要求1或2所述的微藻。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,相对于培养基体积,所述壳寡糖的质量为0.2-1mg·L-1;所述可溶性锌盐中锌的摩尔质量为0.05-0.1mmol·L-1;所述2-羟基膦酰基乙酸的摩尔质量为0.12-0.2mmol·L-1
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于,相对于培养基的体积,所述壳寡糖的质量为0.6-1mg·L-1;所述可溶性锌盐中锌的摩尔质量为0.08-0.1mmol·L-1;所述2-羟基膦酰基乙酸的摩尔质量为0.15-0.2mmol·L-1
6.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述壳寡糖的聚合度为3-10。
7.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述可溶性锌盐选自氯化锌、硫酸锌或硝酸锌中的一种或几种。
8.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述将待培养微藻在培养基中初步培养为将微藻培养至稳定期。
9.根据权利要求8所述的方法,其特征在于,所述培养基为灭菌海水。
10.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述再添加壳寡糖、可溶性锌盐及2-羟基膦酰基乙酸培养的时间为1-3天。
CN201611113056.3A 2016-12-06 2016-12-06 一种微藻及微藻的培养方法 Active CN106635810B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201611113056.3A CN106635810B (zh) 2016-12-06 2016-12-06 一种微藻及微藻的培养方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201611113056.3A CN106635810B (zh) 2016-12-06 2016-12-06 一种微藻及微藻的培养方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN106635810A true CN106635810A (zh) 2017-05-10
CN106635810B CN106635810B (zh) 2020-02-14

Family

ID=58819802

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201611113056.3A Active CN106635810B (zh) 2016-12-06 2016-12-06 一种微藻及微藻的培养方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN106635810B (zh)

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2008121757A1 (en) * 2007-03-30 2008-10-09 Centocor Inc High expression clones of mammalian cells with fluorescent protein a or g
CN103352006A (zh) * 2013-07-31 2013-10-16 宁波大学 一种促进自养微藻中性脂累积的培养方法
CN103484372A (zh) * 2013-10-01 2014-01-01 陈意民 一种提高微藻生物质和油脂产量的培养方法
CN103834567A (zh) * 2014-02-26 2014-06-04 新奥科技发展有限公司 一种微藻培养方法
CN104560719A (zh) * 2013-10-24 2015-04-29 南通农业职业技术学院 一种微藻富集方法
CN104630068A (zh) * 2015-02-13 2015-05-20 新奥科技发展有限公司 一种微藻培养方法及其培养基
CN104789608A (zh) * 2015-04-30 2015-07-22 清华大学深圳研究生院 一种促进微藻油脂积累的培养方法
CN105331646A (zh) * 2014-08-06 2016-02-17 中国科学院大连化学物理研究所 一种提高微藻产油量的培养方法
CN105505780A (zh) * 2015-12-08 2016-04-20 沈阳化工研究院有限公司 一种微藻收集方法及微藻

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2008121757A1 (en) * 2007-03-30 2008-10-09 Centocor Inc High expression clones of mammalian cells with fluorescent protein a or g
CN103352006A (zh) * 2013-07-31 2013-10-16 宁波大学 一种促进自养微藻中性脂累积的培养方法
CN103484372A (zh) * 2013-10-01 2014-01-01 陈意民 一种提高微藻生物质和油脂产量的培养方法
CN104560719A (zh) * 2013-10-24 2015-04-29 南通农业职业技术学院 一种微藻富集方法
CN103834567A (zh) * 2014-02-26 2014-06-04 新奥科技发展有限公司 一种微藻培养方法
CN105331646A (zh) * 2014-08-06 2016-02-17 中国科学院大连化学物理研究所 一种提高微藻产油量的培养方法
CN104630068A (zh) * 2015-02-13 2015-05-20 新奥科技发展有限公司 一种微藻培养方法及其培养基
CN104789608A (zh) * 2015-04-30 2015-07-22 清华大学深圳研究生院 一种促进微藻油脂积累的培养方法
CN105505780A (zh) * 2015-12-08 2016-04-20 沈阳化工研究院有限公司 一种微藻收集方法及微藻

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
王金娜 等: "产油微藻的筛选及中性脂动态积累过程的检测", 《生物物理学报》 *
章表明 等: "电絮凝法收集湛江等鞭金藻", 《生物加工过程》 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN106635810B (zh) 2020-02-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wang et al. The difference in effective light penetration may explain the superiority in photosynthetic efficiency of attached cultivation over the conventional open pond for microalgae
Chu et al. Phosphorus plays an important role in enhancing biodiesel productivity of Chlorella vulgaris under nitrogen deficiency
Aravantinou et al. Selection of microalgae for wastewater treatment and potential lipids production
Peng et al. Control of protozoa contamination and lipid accumulation in Neochloris oleoabundans culture: effects of pH and dissolved inorganic carbon
Guo et al. Enhancing Scenedesmus obliquus biofilm growth and CO2 fixation in a gas-permeable membrane photobioreactor integrated with additional rough surface
AU2016399463C1 (en) Omega-7 fatty acid composition, methods of cultivation of Tribonema for production of composition and application of composition
CN106929422B (zh) 一种小球藻和酵母共培养净化酵母废水的方法
CN106754383A (zh) 一种提高微生物生物量及油脂产量的方法
Ramaraj et al. Microalgae biomass as an alternative substrate in biogas production
Osundeko et al. Implications of sludge liquor addition for wastewater-based open pond cultivation of microalgae for biofuel generation and pollutant remediation
CN103352006B (zh) 一种促进自养微藻中性脂累积的培养方法
CN102443542A (zh) 一种自养产油微藻的高密度培养工艺
CN105648023B (zh) 一种微藻混合培养制备油脂的方法
CN104357501B (zh) 一种促进微藻藻体积累油脂的方法
CN102453684B (zh) 氮源用于提高金藻生物量与油脂含量的培养方法
CN104388315A (zh) 一种高效处理典型生活污水的栅藻及其培养方法和应用
CN109576314A (zh) 一种混合培养制备微藻油脂的方法
CN106701582A (zh) 一种微藻藻种长期保藏方法
Sreekumar et al. Lipid enhancement in microalgae by temporal phase separation: Use of indigenous sources of nutrients
CN108587920A (zh) 一种利用乙酸/乙酸钠兼养培养微藻的方法
CN104328053A (zh) 一种高产油栅藻及其培养方法和应用
CN106434353A (zh) 一种微藻的培养方法及其应用
CN102746991A (zh) 一种用产酸废水异养培养小球藻的方法
CN106635810A (zh) 一种微藻及微藻的培养方法
CN104232559B (zh) 养殖微藻的方法及生产油脂的方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant