CN106074557B - D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗肝癌药物中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗癌药物中的应用,属于药物新用途技术领域。其中D型鸟嘌呤丙氨酸的化学结构式,并且具体公开了该D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗肝癌药物中的应用。本发明制得的D型鸟嘌呤丙氨酸对肝癌细胞具有显著的抑制作用,可用于抗肝癌药物的开发,也可以考虑用于作为化疗辅助药物,从而为改善肝癌等恶性肿瘤的临床治疗提供一种新的有效的治疗方法,具有良好的开发应用前景。
Description
技术领域
本发明属于药物新用途技术领域,具体涉及D型鸟嘌呤丙氨酸的新用途,即D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗肝癌药物中的应用。
背景技术
恶性肿瘤一直是危害人类健康的严重问题之一,其原因是细胞内原癌基因和抑癌基因表达失控的结果,一般都会经历一段漫长的致病过程。细胞内癌基因表达失调,使细胞不受控制地生长和繁殖,并且能够随机体体液运输转移。细胞凋亡机制对保持自身平衡十分重要,肿瘤的生长速率很难控制,这与凋亡能力的减弱和增殖能力的提升密切相关。
肝细胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是全球性第五大常见肿瘤,具有预后恶劣和死亡率高等特点,严重威胁人类的生命与健康。尽管近年来随着影像诊断与手术技术的不断进步以及以索拉非尼为代表的肝癌靶向治疗药物的面世,为肝癌的早期诊断与治疗提供了可能与更多且更有效的治疗选择,使肝癌的治疗水平得到了一定的提高。然而,综观目前肝癌临床治疗现状,现今尚缺乏真正有效且副作用少的肝癌治疗药物,肝癌术后复发转移率仍高居不下,术后5年生存率仍徘徊在30%左右,严重制约了肝癌总体治疗水平的提高,无法使之得到根本性的改善。
目前对恶性肿瘤的治疗方法中,化疗是恶性肿瘤的主要治疗手段之一。随着化疗药的广泛使用以及随之而来的多药抗性现象的出现,肿瘤对化疗药物的敏感性越来越低,某些化疗药的抗肿瘤作用日益下降,导致患者的救治率进一步降低。有鉴于此,目前亟待开发特异性靶向的能够抑制肿瘤细胞增殖和促进肿瘤细胞凋亡的药物。目前临床上用于治疗肝癌的化疗药物毒副作用较大。因此,研制和开发新型高效低毒的抗肝癌药物已经成为治疗和攻克癌症的新希望。
发明内容
本发明的目的是提供D型鸟嘌呤丙氨酸的新用途,即D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗肝癌药物中的应用。
本发明的技术方案为,D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗肝癌药物中的应用,其中D型鸟嘌呤丙氨酸的化学结构式
进一步优选,所述的D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗肝癌药物中的应用。
进一步优选,所述的药物为化疗辅助药物。
进一步优选,所述的D型鸟嘌呤丙氨酸的具体合成过程为:
(1)导入氨基保护基的D-丝氨酸在偶氮二羧酸二乙酯和三苯基膦的作用下被亲核试剂取代,同时与羟基所连的碳原子构型发生瓦尔登翻转生成N-(叔-丁氧羰基)-D-丝氨酸-内酯;
(2)在有机碱催化剂的作用下,2-氨基-6-氯嘌呤与N-(叔-丁氧羰基)-D-丝氨酸-内酯化合反应生成鸟嘌呤的丙氨酸衍生物;
(3)将步骤(2)反应所得产物脱去氨基保护基,经过滤,洗涤,干燥得到D型鸟嘌呤丙氨酸。
进一步优选,步骤(1)中的氨基保护基为芐氧羰基(Cbz)、叔丁氧羰基(Boc)、芴甲氧基(Fmoc)、烯丙氧羰基(Alloc)、三甲基硅乙氧羰基(Teoc)、甲氧羰基或乙氧羰基。
进一步优选,步骤(2)中的有机碱催化剂为1,8-二氮杂二环(5,4,0)-7-烯(DBU)或四甲基胍(TMG)。
本发明用MTT方法检测D型鸟嘌呤丙氨酸对BRL-3A和RH35成活的影响,结果表明受D型鸟嘌呤丙氨酸处理的RH35的活性比对照下降65%,受处理的BRl-3A活性比对照下降30%,统计分析表明D型鸟嘌呤丙氨酸对RH35的活性有明显的抑制作用,而对BRL-3A活性的抑制作用不显著。
用不同浓度的D型鸟嘌呤丙氨酸(2-8mmol/L)分别处理BRL-3A和RH35细胞48h后,用酶联免疫检测仪在570nm波长下测定吸光度值(OD),并计算出细胞增殖抑制率。经测定,D型鸟嘌呤丙氨酸在浓度为1-8mmol/L之间对BRL-3A细胞生长具有显著的抑制作用,且这种抑制作用呈剂量依赖关系。
用SPSS软件分析D型鸟嘌呤丙氨酸的半致死量表明D型鸟嘌呤丙氨酸对RH35的半致死量为2.3mM,对BRL-3A的半致死量为15mM(如图1所示),结果表明D型鸟嘌呤丙氨酸对肝癌细胞有较高的毒性和选择性。
本发明制得的D型鸟嘌呤丙氨酸对肝癌细胞具有显著的抑制作用,可用于抗肝癌药物的开发,也可以考虑用于作为化疗辅助药物,从而为改善肝癌等恶性肿瘤的临床治疗提供一种新的有效的治疗方法,具有良好的开发应用前景。
附图说明
图1是本发明D型鸟嘌呤丙氨酸对细胞的毒性作用曲线;
图2是本发明D型鸟嘌呤丙氨酸对细胞周期的影响曲线,其中A为D型鸟嘌呤丙氨酸处理的BRL-3A细胞,B为对照BRL-3A细胞,C为D型鸟嘌呤丙氨酸处理的RH35细胞,D为对照RH35细胞;
图3是本发明D型鸟嘌呤丙氨酸对细胞调亡的影响曲线,其中A为D型鸟嘌呤丙氨酸处理的BRL-3A细胞,B为对照BRL-3A细胞,C为D型鸟嘌呤丙氨酸处理的RH35细胞,D为对照RH35细胞;
图4是本发明D型鸟嘌呤丙氨酸对CCND1、BAX和BCL2表达的影响曲线。
具体实施方式
以下通过实施例对本发明的上述内容做进一步详细说明,但不应该将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实施例,凡基于本发明上述内容实现的技术均属于本发明的范围。
实施例1
D型鸟嘌呤丙氨酸的合成
步骤1)合成N-(叔-丁氧羰基)-D-丝氨酸-内酯2:在三苯基膦(Ph3P)(6.3g,24.00mmol)中逐滴加入无水四氢呋喃(THF)(100mL),在-78℃氩气氛围下,搅拌超过10min,再逐滴加入偶氮二甲酸二乙酯(DEAD),搅拌10min。在N-(叔-丁氧羰基)-D-丝氨酸(5g,24.36mmol)中逐滴加入上述四氢呋喃混合溶液,搅拌超过20min。得到的溶液在-78℃条件下搅拌20min。然后常温条件下进一步搅拌2.5h。除去溶剂,用层析柱(洗脱液为体积比为3:1的乙烷和乙酸乙酯)纯化粗制品。最后在乙酸乙酯/正已烷中重结晶进一步纯化,得到白色固体化合物2(2.4g,产率53%)。
步骤2)合成N-Boc-β-(2-氨基-6-氯-9-嘌呤)-D-丙氨酸3:在二氮杂二环(DBU)(0.43g,2.85mmol)中加入2-氨基-6-氯嘌呤(化合物5)(10.55g,3.35mmol)的二甲基甲酰胺(DMF)(10mL)悬浮液。15min后加入化合物2(0.5g,2.6mmol)溶解在上述反应液中,室温搅拌3h。反应完成后在真空条件下除去溶剂,用硅胶层析柱进行纯化(洗脱液为体积比乙酸乙酯/甲醇/冰乙酸=9:1:0.1的混合溶液)获得白色固体产物3(0.58g,产率63%)。
步骤3)合成D型鸟嘌呤丙氨酸4:把化合物3(0.3g,0.6mmol)加入到TFA/H2O混合溶液(TFA与H2O的体积比为3:1,4mL)中搅拌48h。反应完成后,加入甲苯,再使溶液蒸发。通过溶剂法(盐酸摩尔浓度为1mol/L)进行反离子交换。将得到的沉淀物过滤,再用乙醚洗涤得到白色固体D型鸟嘌呤丙氨酸4(90mg,产率40%)。
D型鸟嘌呤丙氨酸的合成路线如下:
实施例2
细胞培养:配制含10%的胎牛血清、100mg/L的链霉素和1×105U/L青霉素的完全培养液于37℃、饱和湿度、含体积分数5%的CO2的培养箱中进行培养。
实施例3
MTT检测:采用MTT(四唑盐)比色法。将对数生长期的大鼠正常肝细胞BRL-3A和大鼠肝癌细胞RH35调整浓度至1×104个/mL,接种于96孔板,每孔100μL,于孵箱中培养24h;加入终浓度分别为0、1、2、3、4、6、8mmol/L的D型鸟嘌呤丙氨酸,每孔100μL,并设空白对照,每组设5个复孔;作用48h后,每孔加入MTT 20μL,继续培养4h,离心弃去孔内液体,每孔加入150μL DMSO,振荡10min。用酶联免疫检测仪在570nm处测定各孔的吸光度(A)值,并计算抑制率。抑制率(%)=(1-实验组A570值/对照组A570值)×100%。
实验结果表明受4mmol/L的D型鸟嘌呤丙氨酸处理的RH35的活性比对照下降65%,BRl-3A活性比对照组下降30%,统计分析表明D型鸟嘌呤丙氨酸对RH35活性的抑制作用明显,而对BRL-3活性的抑制作用差异不显著,其作用效果受试剂剂量的线性影响(结果见表1)。
表1DMTT法检测的D型鸟嘌呤丙氨酸作用
实施例4
流式细胞术检测细胞周期:用胰酶消化收集,经0、1、2、3、4、6、8mmol/L的D型鸟嘌呤丙氨酸作用48h的BRL-3A和RH35细胞。用10mM PBS洗涤细胞两次,弃去上清,向其中按体积比为1:3的比例加入PBS和无水乙醇,充分混匀,于4℃固定18h后离心收集细胞,用预冷的PBS洗涤细胞2次,向悬液中加入500μL PI染液,再加入RnaseA(使其终浓度为0.25mg/mL),于37℃避光孵育30min后进行流式细胞仪的上机检测。结果表明D型鸟嘌呤丙氨酸处理RH35后,G0/G1期细胞比对照下降39%,处理BRL-3A后,G0/G1期细胞比对照下降37%。统计分析表明D型鸟嘌呤丙氨酸对两种细胞周期有显著影响(p≤0.05)。分析D型鸟嘌呤丙氨酸影响两种细胞周期的具体时间表明D型鸟嘌呤丙氨酸主要抑制细胞G0/G1期进程(如图2所示)。
实施例5
Annexin V-FITC/7-AAD法检测细胞凋亡:取对数生长期细胞接种于6孔板,每孔2×105个细胞,孵育24h后,更换含4mM D型鸟嘌呤丙氨酸的完全培养液。培养48h,胰酶消化收集细胞,预冷PBS洗两遍,用Binding buffer重悬并调整细胞密度至(0.25×107)-(1.0×107)个细胞/毫升,取100μL细胞悬液加入5μL Annexin V-FITC混匀后加入5μL 7-AAD混匀,室温避光反应5-10min,样品补加Binding buffer至500μL,1h内用流式细胞仪检测细胞凋亡,数据用Flowjo软件分析。结果表明D型鸟嘌呤丙氨酸处理RH35后,细胞凋亡率比对照上升35%,处理BRL-3A后,细胞凋亡率比对照上升0.5%。统计分析表明D型鸟嘌呤丙氨酸化合物诱导肝癌细胞凋亡的作用显著(p≤0.05)(如图3所示)。
实施例6
实时定量PCR检测基因表达变化:BRL-3A和RH35细胞经0、1、2、3、4、6、8mmol/L的D型鸟嘌呤丙氨酸作用48h后提取总RNA,并反转录成cDNA。反应体系为25μL Hotstart Fluo-PCR mix、21μL ddH2O、2μL cDNA和上下游引物各1μL(用Primer 5.0进行引物设计)。结果表明D型鸟嘌呤丙氨酸处理RH35后,它们的CCND1、BAX和BCL2表达依次比对照上升138%、351%和939%,处理BRL-3A后,它们的CCND1、BAX和BCL2表达依次比对照上升19%、23%和28%(如图4所示)。通过PCR检测,结果表明同样用药物处理的情况下,大鼠正常肝细胞BRL-3A与细胞凋亡有关的CCND1、BAX和BCL2三种基因的表达与对照组无明显差别,而大鼠肝癌细胞PH35这三种基因的表达量明显增高,说明药物对癌细胞有选择性地诱导凋亡的作用。
以上实施例描述了本发明的基本原理、主要特征及优点,本行业的技术人员应该了解,本发明不受上述实施例的限制,上述实施例和说明书中描述的只是说明本发明的原理,在不脱离本发明原理的范围下,本发明还会有各种变化和改进,这些变化和改进均落入本发明保护的范围内。
Claims (4)
1.D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗肝癌药物中的应用,其中D型鸟嘌呤丙氨酸的化学结构式为
2.根据权利要求1所述的D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗肝癌药物中的应用,其特征在于:所述的药物为化疗辅助药物。
3.根据权利要求1所述的D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗肝癌药物中的应用,其特征在于所述的D型鸟嘌呤丙氨酸的具体合成过程为:
(1)导入氨基保护基的D-丝氨酸在偶氮二羧酸二乙酯和三苯基膦的作用下被亲核试剂取代,同时与羟基所连的碳原子构型发生瓦尔登翻转生成N-(叔-丁氧羰基)-D-丝氨酸-内酯;
(2)在有机碱催化剂的作用下,2-氨基-6-氯嘌呤与N-(叔-丁氧羰基)-D-丝氨酸-内酯化合反应生成鸟嘌呤的丙氨酸衍生物;
(3)将步骤(2)反应所得产物脱去氨基保护基,经过滤,洗涤,干燥得到D型鸟嘌呤丙氨酸。
4.根据权利要求3所述的D型鸟嘌呤丙氨酸在制备抗肝癌药物中的应用,其特征在于:步骤(2)中的有机碱催化剂为1,8-二氮杂二环(5,4,0)-7-烯或四甲基胍。
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