CN105950586B - 一种低温木糖苷酶hj14gh43及其耐盐突变体 - Google Patents

一种低温木糖苷酶hj14gh43及其耐盐突变体 Download PDF

Info

Publication number
CN105950586B
CN105950586B CN201610557658.1A CN201610557658A CN105950586B CN 105950586 B CN105950586 B CN 105950586B CN 201610557658 A CN201610557658 A CN 201610557658A CN 105950586 B CN105950586 B CN 105950586B
Authority
CN
China
Prior art keywords
hj14gh43
xylosidase
mutant
enzyme
salt
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201610557658.1A
Other languages
English (en)
Other versions
CN105950586A (zh
Inventor
周峻沛
黄遵锡
张蕊
刘钰
唐湘华
李俊俊
吴倩
慕跃林
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Yunnan Normal University
Original Assignee
Yunnan Normal University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Yunnan Normal University filed Critical Yunnan Normal University
Priority to CN201610557658.1A priority Critical patent/CN105950586B/zh
Publication of CN105950586A publication Critical patent/CN105950586A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105950586B publication Critical patent/CN105950586B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01037Xylan 1,4-beta-xylosidase (3.2.1.37)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开一种低温木糖苷酶HJ14GH43及其耐盐突变体,木糖苷酶氨基酸序列如SEQ ID No.1所示,编码木糖苷酶HJ14GH43的木糖苷酶基因hJ14GH43的核苷酸序列如SEQ ID No.2所示;耐盐突变体氨基酸序列如SEQ ID NO.3所示。本发明木糖苷酶HJ14GH43的最适pH为7.0,最适温度为25℃;本发明在木糖苷酶HJ14GH43的基础上进性定点突变,将其322位的缬氨酸突变为天冬氨酸,获得突变体V322D,突变体V322D在NaCl中的活性和稳定性都得到了提高。本发明的HJ14GH43及其耐盐突变体V322D可应用于食品行业及水产饲料中。

Description

一种低温木糖苷酶HJ14GH43及其耐盐突变体
技术领域
本发明公开一种低温木糖苷酶及其耐盐突变体,属于基因工程及蛋白质改造技术领域。
背景技术
木聚糖是半纤维素中最丰富的一种多糖,完全水解木聚糖需要多种酶的协同作用,包括内切木聚糖酶(endo-1,4-β-D-xylanase,EC3.2.1.8)和木糖苷酶(β-D-xylosidase,EC 3.2.1.37)等(Collins et al.FEMS Microbiol Rev,2005,29:3–23.)。内切木聚糖酶可随机地切割木聚糖的主链骨架,生成低聚木糖,而木糖苷酶可将低聚木糖水解为木糖(Collins et al.FEMS Microbiol Rev,2005,29:3–23.)。木聚糖酶在饲料、食品、酿酒、纺织及造纸等领域都具有应用价值(Collins et al.FEMS Microbiol Rev,2005,29:3–23.)。
耐盐酶在高浓度NaCl下仍然具有催化活性和稳定性,可应用于高盐食品和海产品加工及其它高盐环境生物技术领域,在高盐环境下加工食品还可以防止微生物的污染、节省灭菌等所消耗的能源(Margesin et al.Extremophiles,2001,5:73–83.);低温酶在低温环境中具有较高的酶活,可用于低温到中温的生境或加工过程,如水产生境常常为10–25℃,将中温或者高温加工的过程转为低温加工过程还可起到降低能耗的作用(Beg etal.Appl Microbiol Biotechnol,2001,56:326–338.)。近年来,低温内切木聚糖酶和耐盐内切木聚糖酶已有报导,但低温木糖苷酶和耐盐木糖苷酶都无报导。
发明内容
本发明的目的是提供一种低温木糖苷酶HJ14GH43及其耐盐突变体V322D。
为实现上述目的,本发明采用的技术方案是:一种具有低温活性的木糖苷酶HJ14GH43,其氨基酸序列如SEQ ID No.1所示。本发明低温木糖苷酶HJ14GH43可得自芽孢杆菌(Bacillus sp.)。
本发明还提供一种编码木糖苷酶HJ14GH43的木糖苷酶基因hJ14GH43,其核苷酸序列如SEQ ID No.2所示。
本发明通过基因组测序的方法克隆了木糖苷酶基因hJ14GH43。本发明还提供一种包含有木糖苷酶基因hJ14GH43的重组载体。优选为pEasy-E1-hJ14GH43。将本发明的木糖苷酶基因插入到表达载体中,使其核苷酸序列与表达调控序列相连接。作为本发明的一个最优选的实施方案,将本发明的木糖苷酶基因和表达载体pEasy-E1通过T-A方式相连接,得到重组大肠杆菌表达质粒pEasy-E1-hJ14GH43。
本发明还提供一种包含有木糖苷酶基因hJ14GH43的重组菌,所述重组菌为大肠杆菌、酵母菌、芽孢杆菌或乳酸杆菌中的一种。重组菌株BL21(DE3)/hJ14GH43。
本发明制备木糖苷酶HJ14GH43的方法按以下步骤进行:
1)用上述的重组载体转化宿主细胞,得重组菌株;
2)培养重组菌株,诱导重组木糖苷酶表达;
3)回收并纯化所表达的木糖苷酶HJ14GH43。
其中,优选所述宿主细胞为大肠杆菌细胞,优选将重组大肠杆菌表达质粒转化大肠杆菌细胞BL21(DE3),得到重组菌株BL21(DE3)/hJ14GH43。
本发明木糖苷酶HJ14GH43的最适pH为7.0;最适温度为25℃,在0℃、10℃和40℃分别具有14.5%、46.2%和12.8%的酶活;该酶在30%(w/v)的NaCl中仍具有62.0%的活性;但是该酶在5.0–30.0%(w/v)的NaCl中稳定性很差,经5.0–30.0%(w/v)的NaCl处理1h后,只有大约30%的活性。
本发明还提供一种具有低温活性的木糖苷酶HJ14GH43在水产饲料及其食品工业中的应用。
为了提高所述木糖苷酶HJ14GH43在NaCl中的稳定性,本发明通过蛋白质改造技术,将木糖苷酶HJ14GH43的第322位氨基酸由缬氨酸突变为天冬氨酸,获得了该木糖苷酶的突变体V322D。V322D的氨基酸序列如SEQ ID No.3所示,V322D的基因序列v322d如SEQ IDNo.4所示。
本发明提供了包含上述木糖苷酶突变体基因v322d的重组载体,优选为pEasy-E1-v322d。以表达质粒pEasy-E1-hJ14GH43为模板,通过PCR技术,将hJ14GH43第965位核苷酸T突变为A,得到pEasy-E1-hJ14GH43的突变重组质粒pEasy-E1-v322d。
本发明还提供了包含上述木糖苷酶突变体基因v322d的重组菌株,优选所述菌株为大肠杆菌、酵母菌、芽孢杆菌或乳酸杆菌,优选为重组菌株BL21(DE3)/v322d。
本发明制备木糖苷酶突变体V322D的方法按以下步骤进行:
1)用上述的突变重组质粒转化宿主细胞,得重组菌株;
2)培养重组菌株,诱导突变重组木糖苷酶表达;
3)回收并纯化所表达的木糖苷酶突变体V322D。
其中,优选所述宿主细胞为大肠杆菌细胞,优选将重组大肠杆菌表达质粒转化大肠杆菌细胞BL21(DE3),得到重组菌株BL21(DE3)/v322d。
本发明木糖苷酶突变体V322D的最适pH为7.0;最适温度为25℃,在0℃、10℃和40℃分别具有19.1%、48.8%和43.1%的酶活;与HJ14GH43相比,突变体V322D在NaCl中的活性和稳定性都得到了提高。在20.0–30.0%(w/v)的NaCl中,V322D比HJ14GH43的活性提高约15%;经5.0–30.0%(w/v)的NaCl处理1h后,V322D比HJ14GH43的活性最小提高49%,最大提高113%。
本发明还提供一种木糖苷酶突变体V322D在水产饲料及其食品工业中的应用。
本发明的HJ14GH43及其耐盐突变体V322D可应用于食品行业及水产饲料中。突变体V322D比HJ14GH43更适合应用于高盐食品和海产品加工及其它高盐环境生物技术领域。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动性的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1:在大肠杆菌中表达的重组木糖苷酶HJ14GH43及其突变体V322D的SDS-PAGE分析,其中,M:蛋白质Marker;W:纯化的重组HJ14GH43;V:纯化的突变体V322D;
图2:纯化的重组木糖苷酶HJ14GH43及其突变体V322D水解木二糖(X2)、木三糖(X3)、木四糖(X4)、木五糖(X5)及木六糖(X6)的产物分析,其中,X1:木糖;CK:底物和失活的酶(煮沸10min);S:反应组;
图3:重组木糖苷酶HJ14GH43及其突变体V322D的pH活性;
图4:重组木糖苷酶HJ14GH43及其突变体V322D的pH稳定性;
图5:重组木糖苷酶HJ14GH43及其突变体V322D的热活性;
图6:重组木糖苷酶HJ14GH43及其突变体V322D的热稳定性;
图7:重组木糖苷酶HJ14GH43及其突变体V322D在NaCl中的活性;
图8:重组木糖苷酶HJ14GH43及其突变体V322D在NaCl中稳定性。
具体实施方式
下面将结合本发明实施例中的附图,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有作出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
1、菌株及载体:芽孢杆菌(Bacillus sp.)分离于云南省楚雄彝族自治州黑井镇盐矿土土样,保藏于云南省微生物研究所菌种保藏中心,保藏号为YMF 3.00191;大肠杆菌Escherichia coli BL21(DE3)和表达载体pEasy-E1购自北京全式金生物技术有限公司。
2、酶类及其它生化试剂:DNA聚合酶、dNTP及Fast Mutagenesis System购自北京全式金生物技术有限公司,pNP(p-nitrophenol)、pNPX(p-nitrophenyl-β-d-xylopyranoside)、p-nitrophenyl-α-L-arabinofuranoside、桦木木聚糖、山毛榉木聚糖、羧甲基纤维素纳和β-葡聚糖购自Sigma公司,阿拉伯木聚糖、木二糖、木三糖、木四糖、木五糖及木六糖购自Megazyme公司,Genomic DNA Clean&Concentration试剂盒购自ZymoResearch公司,Tureseq DNA Sample Preparation Kit购自Illumima公司,其它都为国产试剂(均可从普通生化试剂公司购买得到)。
3、培养基:
LB培养基:Peptone 10g,Yeast extract 5g,NaCl 10g,加蒸馏水至1000ml,pH自然(约为7)。固体培养基在此基础上加2.0%(w/v)琼脂。
说明:以下实施例中未作具体说明的分子生物学实验方法,均参照《分子克隆实验指南》(第三版)J.萨姆布鲁克一书中所列的具体方法进行,或者按照试剂盒和产品说明书进行。
实施例1:木糖苷酶基因hJ14GH43的克隆
提取芽孢杆菌基因组DNA:将液体培养2d的菌液离心取菌体,加入1mL溶菌酶,37℃处理60min,再加入裂解液,裂解液组成为:50mM Tris,20mM EDTA,500mM NaCl,2%(w/v)SDS,pH8.0,70℃水浴裂解60min,每隔10min混匀一次,在4℃下10000rpm离心5min。取上清于酚/氯仿中抽提除去杂蛋白,再取上清加入等体积异丙醇,于室温静置5min后,4℃下10000rpm离心10min。弃上清,沉淀用70%的乙醇洗涤两次,真空干燥,加入适量TE溶解,置于-20℃备用。
用超声打断仪Biorupter将5μg的芽孢杆菌基因组打断为400–600bp的片段,用Genomic DNA Clean&Concentration试剂盒对打断的DNA片段进行纯化,纯化后用TureseqDNA Sample Preparation Kit进行DNA片段的末端补平、3'端加A碱基和加接头、及DNA片段的PCR扩增(操作按试剂盒说明书进行)。用MiSeq基因组测序仪(Illumima公司)对上述制备好的文库进行基因组测序。
基因组测序得到的数据经读码框预测和本地BLAST比对,得到木糖苷酶基因hJ14GH43,该基因序列如SEQ ID NO.2所示。
实施例2:重组木糖苷酶HJ14GH43的制备
以5'ATGAAGATTACCAATCCAGTGCT 3'和5'TTATTCGTCTGTTTCCTCATAGC 3'为引物对,芽孢杆菌基因组DNA为模板,进行PCR扩增。PCR反应参数为:94℃变性5min;然后94℃变性30sec,52℃退火30sec,72℃延伸1min 30sec,30个循环后72℃保温10min。PCR结果得到木糖苷酶基因hJ14GH43,并在该基因3’端引入突出的A碱基。将木糖苷酶基因hJ14GH43和表达载体pEasy-E1通过T-A方式相连接,获得含有hJ14GH43重组表达质粒pEasy-E1-hJ14GH43。将pEasy-E1-hJ14GH43转化大肠杆菌BL21(DE3),获得重组大肠杆菌菌株BL21(DE3)/hJ14GH43。
取含有重组质粒pEasy-E1-hJ14GH43的重组大肠杆菌菌株BL21(DE3)/hJ14GH43,以0.1%的接种量接种于LB(含100μg mL-1Amp)培养液中,37℃快速振荡16h。然后将此活化的菌液以1%接种量接种到新鲜的LB(含100μg mL-1Amp)培养液中,快速振荡培养约2–3h(OD600达到0.6–1.0)后,加入终浓度0.1mM的IPTG进行诱导,于20℃继续振荡培养约20h。12000rpm离心5min,收集菌体。用适量的pH7.0Tris–HCl缓冲液悬浮菌体后,于低温水浴下超声波破碎菌体。以上胞内浓缩的粗酶液经13,000rpm离心10min后,吸取上清并用Nickel-NTA Agarose和0–500mM的咪唑分别亲和和纯化目的蛋白。SDS-PAGE结果(图1)表明,重组木糖苷酶HJ14GH43在大肠杆菌中得到了表达,经纯化后,产物为单一条带。
实施例3:木糖苷酶HJ14GH43定点突变以及突变体V322D的制备方法
通过对木糖苷酶HJ14GH43的高级结构进行分析,发现氨基酸V322位于一段无规则卷曲中,将322位氨基酸由缬氨酸突变为天冬氨酸,有可能增加酶的亲水能力,从而使酶的耐盐性增强。
以表达质粒pEasy-E1-hJ14GH43为模板,利用北京全式金生物技术有限公司的Fast Mutagenesis System进行点突变,将hJ14GH43第965位核苷酸T突变为A,得到了pEasy-E1-hJ14GH43的突变重组质粒pEasy-E1-v322d。突变引物为5'AGATCGAAGAAAAGGATTTTGCACCAAC 3'和5'TCCTTTTCTTCGATCTTTGGCGCTTC 3'(下划线为突变点)。PCR反应参数为:94℃变性5min;然后94℃变性30sec,60℃退火30sec,72℃延伸3min30sec,30个循环后72℃保温10min。PCR产物经DMT酶消化后转化大肠杆菌BL21(DE3),获得重组大肠杆菌菌株BL21(DE3)/v322d。
取重组大肠杆菌菌株BL21(DE3)/v322d,以0.1%的接种量接种于LB(含100μg mL- 1Amp)培养液中,37℃快速振荡16h。然后将此活化的菌液以1%接种量接种到新鲜的LB(含100μg mL-1Amp)培养液中,快速振荡培养约2–3h(OD600达到0.6–1.0)后,加入终浓度0.1mM的IPTG进行诱导,于20℃继续振荡培养约20h。12000rpm离心5min,收集菌体。用适量的pH7.0Tris–HCl缓冲液悬浮菌体后,于低温水浴下超声波破碎菌体。以上胞内浓缩的粗酶液经13,000rpm离心10min后,吸取上清并用Nickel-NTA Agarose和0–500mM的咪唑分别亲和和纯化目的蛋白。SDS-PAGE结果(图1)表明,突变体V322D在大肠杆菌中得到了表达,经纯化后,产物为单一条带。
实施例4:纯化的木糖苷酶HJ14GH43以及突变体V322D的性质测定
1、纯化的重组木糖苷酶HJ14GH43以及突变体V322D的活性分析
纯化的重组木糖苷酶HJ14GH43以及突变体V322D的活性测定方法采用pNP法:将pNPX溶于缓冲液中,使其终浓度为2mM;反应体系含50μL适量酶液,450μL的2mM底物;底物在反应温度下预热5min后,加入酶液再反应适当时间,然后加2mL 1M Na2CO3终止反应,冷却至室温后在405nm波长下测定释放出的pNP;1个酶活单位(U)定义为每分钟分解底物产生1μmol pNP所需的酶量。对底物p-nitrophenyl-α-L-arabinofuranoside的测定也采用pNP法。结果表明:在pH7.0及25℃下,HJ14GH43以及突变体V322D对pNPX的比活分别为2.37±0.08Umg-1和2.66±0.08U mg-1,对底物p-nitrophenyl-α-L-arabinofuranoside的比活分别为0.030±0.001U mg-1和0.012±0.001U mg-1
对底物桦木木聚糖、山毛榉木聚糖、阿拉伯木聚糖、羧甲基纤维素纳、普鲁兰多糖和β-葡聚糖的活性测定方法采用3,5-二硝基水杨酸(DNS)法:将底物溶于缓冲液中,使其终浓度为0.5%(w/v);反应体系含100μL适量酶液,900μL底物;底物在反应温度下预热5min后,加入酶液后再反应适当时间,然后加1.5mL DNS终止反应,沸水煮5min,冷却至室温后在540nm波长下测定OD值;1个酶活单位(U)定义为在给定的条件下每分钟分解底物产生1μmol还原糖(以木糖计)所需的酶量。结果表明:在pH7.0及25℃下,HJ14GH43以及突变体V322D对底物桦木木聚糖、山毛榉木聚糖、阿拉伯木聚糖、羧甲基纤维素纳、普鲁兰多糖和β-葡聚糖皆无活性。
对底物木二糖、木三糖、木四糖、木五糖及木六糖的活性测定方法采用薄层层析法(TLC),反应体系含45μL 0.5%(w/v)的底物,5μL适当稀释酶液(约0.06U酶液),在pH7.0及20℃下,反应150min后终止反应并分析水解产物(使用青岛海洋化工有限公司的高效薄层层析硅胶板G型)。
薄层层析步骤如下所示:
(1)配制展开剂(冰醋酸20mL,双蒸水20mL,正丁醇40mL,混匀),取适量倒入展开槽,静置30min左右;
(2)将硅胶板放在110℃烘箱中活化30min,冷却后划线,点样(每次0.5μL,吹干,共点3次);
(3)将点样的一端硅胶板朝下放入展开槽中,点样点不要没入展开剂;
(4)待展开剂到距硅胶板上沿1.5cm时,取出硅胶板,吹干,再展开一次;
(5)第二次展开结束后,硅胶板直接浸入适量显色剂(1g二苯胺溶于50mL丙酮中,溶解后加入1mL苯胺及5mL 85%的磷酸,混匀,现用现配);
(6)几秒钟后,立即取出硅胶板并放置于90℃烘箱中10–15min,使斑点显色。
结果表明:HJ14GH43以及突变体V322D能水解木二糖、木三糖、木四糖、木五糖及木六糖,水解产物几乎都为木糖(图2)。
2、纯化的重组木糖苷酶HJ14GH43以及突变体V322D的pH活性和pH稳定性测定:
pH活性和pH稳定性测定采用pNP法。酶的最适pH测定:将木糖苷酶HJ14GH43以及突变体V322D在20℃下和pH5.0–10.0的缓冲液中进行酶促反应。酶的pH稳定性测定:将酶液置于pH5.0–10.0的缓冲液中,在20℃下处理1h,然后在pH7.0及20℃下进行酶促反应,以未处理的酶液作为对照。缓冲液为:McIlvaine buffer(pH5.0–8.0)和0.1M glycine–NaOH(pH9.0–10.0)。以pNPX为底物,反应10min,测定纯化的HJ14GH43以及突变体V322D的酶学性质。结果表明:HJ14GH43以及突变体V322D的最适都为7.0,但在pH6.5时,V322D的酶活比HJ14GH43高约20%,在pH7.5时,HJ14GH43的酶活比V322D高约12%(图3);HJ14GH43以及突变体V322D在pH7.0–8.0的缓冲液较稳定,经pH7.0–8.0缓冲液在20℃下处理1h,两个酶的酶活剩余达70%以上,但在pH6.0和pH8.0条件下,V322D比HJ14GH43更稳定,其酶活比HJ14GH43分别提高25%和18%(图4)。
3、纯化的重组木糖苷酶HJ14GH43以及突变体V322D的热活性及热稳定性测定:
热活性及热稳定性测定采用pNP法。酶的热活性测定:在pH7.0的缓冲液中,于0–40℃下进行酶促反应。酶的热稳定性测定:将同样酶量的酶液分别置于20℃、25℃和30℃,处理0–60min后,在pH7.0及20℃下进行酶促反应,以未处理的酶液作为对照。以pNPX为底物,反应10min,测定纯化的HJ14GH43以及突变体V322D的酶学性质。结果表明:HJ14GH43的最适温度为25℃,在0℃、10℃和40℃分别具有14.5%、46.2%和12.8%的酶活(图5);突变体V322D的最适温度也为25℃,在0℃、10℃和40℃分别具有19.1%、48.8%和43.1%的酶活(图5);HJ14GH43以及突变体V322D在20℃下稳定,在30℃时半衰期小于10min(图6)。
4、纯化的重组木糖苷酶HJ14GH43以及突变体V322D的动力学参数测定:
动力学参数测定采用pNP法。酶的动力学参数一级反应时间测定:在pH7.0及20℃下,以1mM pNPX为底物,依次在酶促反应的1–30min内终止反应并测定酶活性,计算出酶活性与反应时间的比值,若在一定时间内该比值保持稳定,则此时间为一级反应时间。用0.05–2.5mM pNPX为底物,在pH7.0、20℃和一级反应时间下,根据Lineweaver–Burk方法测定Km、Vmax和kcat。经测定,在20℃及pH7.0条件下,HJ14GH43对pNPX的Km、Vmax和kcat分别为1.43mM、3.30μmol min-1mg-1和3.50s-1,V322D对pNPX的Km、Vmax和kcat分别为1.99mM、4.30μmol min-1mg-1和4.55s-1
5、不同金属离子及化学试剂对纯化的重组木糖苷酶HJ14GH43以及突变体V322D活力的影响:
在酶促反应体系中加入1.0mM的金属离子及化学试剂,研究其对酶活性的影响。在20℃及pH7.0条件下,以pNPX为底物,通过pNP法测定酶活性。结果(表1)表明,1.0mM的SDS、HgCl2及AgNO3可完全抑制HJ14GH43以及突变体V322D;ZnSO4对HJ14GH43以及V322D的抑制较强;CuSO4对V322D的抑制较强,但是对HJ14GH43的抑制很弱;其余金属离子和化学试剂对HJ14GH43以及V322D的影响很小或几乎无影响。
表1.金属离子及化学试剂对纯化的重组木糖苷酶HJ14GH43以及突变体V322D活力的影响
6、纯化的重组木糖苷酶HJ14GH43以及突变体V322D在NaCl中的活性及稳定性:
酶在NaCl中的活性及稳定性测定采用pNP法。酶在NaCl中的活性测定:在酶促反应体系中加入5.0–30.0%(w/v)NaCl,于pH7.0及20℃下进行酶促反应。以pNPX为底物,反应10min,测定纯化的HJ14GH43以及突变体V322D的酶学性质。结果表明:在反应体系中加入5.0–30.0%(w/v)的NaCl,HJ14GH43以及V322D都仍然具有60%以上的酶活;但在20.0–30.0%(w/v)的NaCl中,V322D比HJ14GH43的活性提高约15%(图7)。
酶在NaCl中的稳定性测定:将纯化的酶液置于5.0–30.0%(w/v)NaCl水溶液中,在20℃下处理60min,然后在pH7.0及20℃下进行酶促反应,以未加NaCl但在20℃下保温60min的酶液作为对照。以pNPX为底物,反应10min,测定纯化的HJ14GH43以及突变体V322D的酶学性质。结果(图8)表明:HJ14GH43在5.0–30.0%(w/v)的NaCl中稳定性很差,该酶经5.0–30%(w/v)的NaCl处理60min后,只有大约30%的活性;而V322D在NaCl中稳定,甚至其酶活有所提高,该突变体经5.0–30.0%(w/v)的NaCl处理1h后,酶活最低为77.0%,最高为146.9%。与HJ14GH43相比,V322D在5.0–30%(w/v)的NaCl中的稳定性大幅提高,HJ14GH43和V322D经5.0–30%(w/v)的NaCl处理1h后,V322D比HJ14GH43的活性最小提高49%,最大提高113%。
本技术领域技术人员可以理解,除非另外定义,这里使用的所有术语(包括技术术语和科学术语)具有与本发明所属领域中的普通技术人员的一般理解相同的意义。还应该理解的是,诸如通用字典中定义的那些术语应该被理解为具有与现有技术的上下文中的意义一致的意义,并且除非像这里一样定义,不会用理想化或过于正式的含义来解释。
最后所应说明的是:以上实施例仅用以说明而非限制本发明的技术方案,尽管参照上述实施例对本发明进行了详细说明,本领域的普通技术人员应该理解:依然可以对本发明进行修改或者等同替换,而不脱离本发明的精神和范围的任何修改或局部替换,其均应涵盖在本发明的权利要求范围当中。

Claims (5)

1.一种耐盐的木糖苷酶突变体V322D,其特征在于,所述的木糖苷酶突变体V322D的氨基酸序列为SEQ ID No.1的木糖苷酶的第322位氨基酸由缬氨酸突变为天冬氨酸,其氨基酸序列如SEQ ID No.3所示。
2.一种编码权利要求1所述的木糖苷酶突变体V322D的基因v322d,其特征在于,其核苷酸序列如SEQ ID No.4所示。
3.一种含有权利要求2所述木糖苷酶突变体基因v322d的重组载体。
4.一种含有权利要求2所述木糖苷酶突变体基因v322d的重组菌,其特征在于,所述重组菌为大肠杆菌、酵母菌、芽孢杆菌或乳酸杆菌中的一种。
5.根据权利要求1所述木糖苷酶突变体V322D在水产饲料及其食品工业中的应用。
CN201610557658.1A 2016-07-15 2016-07-15 一种低温木糖苷酶hj14gh43及其耐盐突变体 Active CN105950586B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610557658.1A CN105950586B (zh) 2016-07-15 2016-07-15 一种低温木糖苷酶hj14gh43及其耐盐突变体

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610557658.1A CN105950586B (zh) 2016-07-15 2016-07-15 一种低温木糖苷酶hj14gh43及其耐盐突变体

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105950586A CN105950586A (zh) 2016-09-21
CN105950586B true CN105950586B (zh) 2019-08-20

Family

ID=56900740

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610557658.1A Active CN105950586B (zh) 2016-07-15 2016-07-15 一种低温木糖苷酶hj14gh43及其耐盐突变体

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105950586B (zh)

Families Citing this family (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109706134A (zh) * 2017-10-25 2019-05-03 东莞泛亚太生物科技有限公司 具提升活性的木糖苷酶
CN108823189A (zh) * 2018-06-20 2018-11-16 天津科技大学 一种新型木糖苷酶及其基因、工程菌、制备方法和应用
CN109593745B (zh) * 2019-01-22 2022-06-24 云南师范大学 一种能将三七皂苷R1转化为人参皂苷Rg1的木糖苷酶突变体
CN109628432B (zh) * 2019-01-22 2022-08-12 云南师范大学 一种能将三七皂苷R1和R2分别转化为人参皂苷Rg1和Rh1的热适应性改良木糖苷酶
CN110904082B (zh) * 2019-12-11 2021-06-04 云南师范大学 盐耐受的木糖苷酶突变体t326dh328d及制备和用途
CN110904075B (zh) * 2019-12-11 2021-03-23 云南师范大学 盐耐受的木糖苷酶突变体k321d及其制备方法和用途
CN112342205B (zh) * 2019-12-11 2022-03-22 云南师范大学 盐耐受的木糖苷酶突变体t329e及其制备方法和用途
CN110904078B (zh) * 2019-12-11 2020-09-04 云南师范大学 一种耐硫酸钠和硫酸铵的木糖苷酶突变体v322r及其应用
CN110862977B (zh) * 2019-12-11 2021-06-04 云南师范大学 一种耐氯化钠和氯化钾的木糖苷酶突变体h328d及其应用
CN110904077B (zh) * 2019-12-11 2021-10-15 云南师范大学 低温改良的木糖苷酶突变体MutLK10及制备和用途
CN110862976B (zh) * 2019-12-11 2021-04-27 云南师范大学 一种盐耐受性改良的木糖苷酶突变体k321dh328d及其应用
CN110904076B (zh) * 2019-12-11 2020-10-16 云南师范大学 一种耐氯化钾的木糖苷酶突变体k317d及其应用
CN111004789B (zh) * 2019-12-11 2021-10-15 云南师范大学 一种耐硫酸铵的木糖苷酶突变体v322dh328dt329e
CN110846298B (zh) * 2019-12-11 2021-10-15 云南师范大学 耐硫酸钠的木糖苷酶突变体t326d及其制备和用途
CN116410960B (zh) * 2023-03-10 2024-02-23 云南师范大学 嗜盐适冷及pH适应性改良的β-木糖苷酶突变体D41G及其应用
CN116426506B (zh) * 2023-03-10 2024-01-30 云南师范大学 低温活性提高的β-木糖苷酶突变体D259G及其应用

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102492636A (zh) * 2011-12-15 2012-06-13 山东大学 酿酒酵母菌株及筛选表达有活性的木糖转运蛋白的酿酒酵母菌株的方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102492636A (zh) * 2011-12-15 2012-06-13 山东大学 酿酒酵母菌株及筛选表达有活性的木糖转运蛋白的酿酒酵母菌株的方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
beta-xylosidase [Bacillus safensis];WP_034621365.1;《NCBI DATABASE》;20141223

Also Published As

Publication number Publication date
CN105950586A (zh) 2016-09-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN105950586B (zh) 一种低温木糖苷酶hj14gh43及其耐盐突变体
CN105950592B (zh) 耐盐耐乙醇耐胰蛋白酶的木糖苷酶jb13gh39及其制备方法
Shi et al. Paenibacillus sp. strain E18 bifunctional xylanase-glucanase with a single catalytic domain
Hettiarachchi et al. Characterization of an acetyl xylan esterase from the marine bacterium Ochrovirga pacifica and its synergism with xylanase on beechwood xylan
Liu et al. The 184th residue of β-glucosidase Bgl1B plays an important role in glucose tolerance
CN103981161A (zh) 耐盐耐乙醇耐蛋白酶及耐表面活性剂的外切菊粉酶及其基因、载体、菌株
Canakci et al. Cloning, purification, and characterization of a thermostable α-L-arabinofuranosidase from Anoxybacillus kestanbolensis AC26Sari
Wefers et al. Enzymatic mechanism for arabinan degradation and transport in the thermophilic bacterium Caldanaerobius polysaccharolyticus
CN104726434A (zh) 一种木聚糖酶XynRBM26及其编码基因
CN105543197B (zh) 高木糖耐受性双功能半纤维素降解酶、其编码基因及其制备方法
US9012186B2 (en) Hemicellulose-degrading enzymes
Wang et al. Identification and characterization of a thermostable GH11 xylanase from Paenibacillus campinasensis NTU-11 and the distinct roles of its carbohydrate-binding domain and linker sequence
Ali et al. Cloning of cellulase gene using metagenomic approach of soils collected from Wadi El Natrun, an extremophilic desert valley in Egypt
CN102220304B (zh) 一种低温木聚糖酶XynAHJ2及其基因
CN103602647A (zh) 一种β-木糖苷酶突变体及其用途
Jacomini et al. Cloning, expression and characterization of C. crescentus xynA2 gene and application of Xylanase II in the deconstruction of plant biomass
Sajjad et al. Enhanced expression and activity yields of Clostridium thermocellum xylanases without non-catalytic domains
Justo et al. Analysis of the xynB5 gene encoding a multifunctional GH3-BglX β-glucosidase-β-xylosidase-α-arabinosidase member in Caulobacter crescentus
Thomas et al. Identification and characterization of a highly alkaline and thermotolerant novel xylanase from Streptomyces sp.
Safitri et al. Cloning, purification, and characterization of recombinant endo-β-1, 4-D-xylanase of Bacillus sp. From soil termite abdomen
Yuan et al. Characterization of a recombinant multifunctional glycoside hydrolase family 3 β-xylosidase/α-l-arabinofuranosidase/β-glucosidase from Cellulosimicrobium cellulans sp. 21
SURYANI et al. Sequencing and expression of the gene encoding the Clostridium stercorarium β-xylosidase Xyl43B in Escherichia coli
Cao et al. De novo synthesis, constitutive expression of Aspergillus sulphureus β-xylanase gene in Pichia pastoris and partial enzymic characterization
CN104726430B (zh) 耐盐耐蛋白酶的α‑半乳糖苷酶AgaAHJ8及其基因
CN103667208B (zh) 一种低温内切β-2,6-果聚糖酶LevAGN25及其编码基因

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant