CN105907892A - 检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan探针和引物及其应用 - Google Patents
检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan探针和引物及其应用 Download PDFInfo
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Abstract
本发明涉及一种检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan探针和引物及其应用。检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan探针,探针的5’端标记FAM,3’端标记BHQ1,核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan引物,该引物为一对,上游引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示,下游引物核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。本发明针对传毒介体烟粉虱,选取ToCV保守序列设计TaqMan PCR引物及探针,建立快速检测单头烟粉虱体内携带ToCV病毒的TaqMan实时荧光定量PCR的方法,该扩增方法灵敏度高,特异性强,2小时内便可出结果,快速且检测结果可靠。
Description
技术领域
本发明涉及一种检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan探针和引物及其应用,属于生物技术技术领域。
背景技术
1998年,番茄褪绿病毒(Tomato chlorosis virus,ToCV)首次在美国佛罗里达州的番茄上发现,目前在全球热带、亚热带、温带地区均有发生,广泛分布于欧洲、美洲、中东、非洲、以及亚洲等众多国家和地区。ToCV的寄主范围十分广泛,可以侵染来自15个属的30多种植物,给农业生产造成严重经济损失。近年来,在我国台湾、北京、山东、南京和天津等地相继发现ToCV为害辣椒、番茄作物,部分地区病株率达到20%-100%,作物减产10%-40%,ToCV在中国地区迅猛扩散的态势不容忽视。
ToCV是一种长线形病毒科(Closteroviridae),毛形病毒属(Crinivirus)的RNA病毒。ToCV侵染植株后,导致感病植株的叶片由下部向上部逐步发病,发病初期,叶脉保持绿色,脉间发黄,叶片变厚;发病后期,整个叶片由边缘向内开始坏死,最后整个植株死亡。目前尚未育出效果突出的抗ToCV品种,ToCV病害的防治较困难,且病毒传播媒介本身的防控也存在很大难度,这使得病害的及时监测变得尤为重要。
ToCV无法通过种子、汁液等方法进行传毒,仅通过介体烟粉虱(Bemisia tabaci)、温室白粉虱(Trialeurodes vaporariorum)、纹翅粉虱(Trialeurodes abutilonea)等进行传播,在国内主要靠烟粉虱以持久性方式进行传毒。目前,我国烟粉虱生物型有Q型、B型、FJ-1型、ZHJ-1型、ZHJ-2型和ZHJ-3型,其中Q型和B型烟粉虱(分别简称Q烟粉虱和B烟粉虱)是两种重要的入侵性烟粉虱。近年,Q烟粉虱逐渐取代B烟粉虱,在全国范围内大面积爆发,加快了ToCV的扩散蔓延,且带毒烟粉虱的虫口密度是导致ToCV流行的主要原因。
以往对ToCV的研究多集中在感病的植物组织,很少研究传毒介体烟粉虱。等人们在植株中观察或检测到ToCV时,ToCV往往已在田间流行起来,这时防控已晚。若在作物发病前,能有一种方法精准检测传毒介体烟粉虱的带毒情况,从而准确预测作物上的病害发生情况,为及时防控ToCV争取最佳时间,是控制ToCV发生流行的最好途径。现有的检测技术中,常用方法是血清学检测法和RT-PCR法,但暂无症状的ToCV植株或单头带毒烟粉虱,ToCV的含量很低,用血清学的方法常常会出现漏检和误检的情况;普通RT-PCR的检测方法,虽然检测灵敏度比血清学的方法高,但容易造成样品的交叉污染,对感病样品的带毒量也不能定量。而TaqMan探针实时荧光定量PCR方法比上述两种方法的灵敏性都要高,且可以准确定量样品中的病毒含量,目前还没有报道单头烟粉虱体内检测ToCV的TaqMan探针实时荧光定量法。
发明内容
本发明针对现有技术的不足,提供一种检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan探针和引物及利用实时荧光定量PCR检测烟粉虱携带番茄褪绿病毒的方法。
术语说明:
FAM:是6-羧基荧光素,一种常用的荧光基团,用于标记核苷酸和核酸,发射光呈绿色。
BHQ1:是Biosearch Technologies公司的黑洞淬灭基团之一,对于双标探针、分子信标和FRET探针非常有效,对绿色至黑色发射光谱中的所有染料都有极好的光谱重叠效应。
本发明的技术方案如下:
检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan探针,探针的5’端标记FAM,3’端标记BHQ1,核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。该TaqMan探针命名为ToCV-probe6724:
ToCV-probe6724:5’(FAM)-TAACATTCGGCACTTCC-(BHQ1)3’;
检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan引物,该引物为一对,上游引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示,下游引物核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。上述引物核苷酸序列如下:
ToCV-F6680:5’-TTTCTCAAAGGATCAAGCTGTGTT-3’;SEQ ID NO.2
ToCV-R6799:5’-TGCGCTCCGGTATCAGTCTT-3’;SEQ ID NO.3
利用上述TaqMan探针和引物实时荧光定量PCR快速检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的方法,包括如下步骤:
(1)提取单头待检测烟粉虱的RNA,经反转录,制得反转录产物;
(2)以步骤(1)制得的反转录产物为模板,利用上述TaqMan探针和引物,进行TaqMan实时荧光定量PCR分析,当有S型扩增曲线和Ct值出现时,则表示待检测烟粉虱中含有ToCV,否则,待检测烟粉虱中不含有ToCV。
根据本发明优选的,所述步骤(1)提取单头待检测烟粉虱的RNA,步骤如下:
1)将单头待检测烟粉虱置于含有80~150μL Trizol试剂的容器中,–80℃保存;检测时,置于冰上溶化,然后研磨后,加入250~400μL Trizol试剂,震荡混匀;
2)加入80~150μL氯仿,震荡混匀,4℃离心机13000rpm/min离心15min,取上清;
3)上清液中加入200~300μL异丙醇,震荡混匀,4℃离心机13000rpm/min离心15min,弃上清;
4)加入1mL由RNase free ddH2O配制的质量百分比浓度为75%的乙醇溶液,清洗RNA,4℃离心机13000rpm/min离心5min,弃上清,风干沉淀,制得RNA;
5)加入RNase free ddH2O,溶解RNA,即得。
所述步骤(1)中的反转录可采用市售反转录试剂盒PrimeScriptTM RT reagentKit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)(Takara:RR047a)进行反转录,具体操作步骤如下:
①基因组DNA的去除:在冰上配制反应液,使用10.0μL的反应体系,如下:
5×gDNA Eraser Buffer 2.0μL,gDNA Eraser 1.0μL,All Total RNA 7.0μL,RNase Free ddH20补至10.0μL;
反应条件:42℃2min;
②反转录:冰上配制反应液,20.0μL的反应体系,如下:
Reaction solution from Step 1 10.0μL,5×PrimeScript Buffer2 4.0μL,PrimeScript RT Enzyme MixⅠ1.0μL,RT Primer Mix 1.0μL,RNase Free ddH20 4.0μL;
反应条件:37℃15min,85℃5s,-20℃保存;
根据本发明优选的,所述步骤(2)中,TaqMan实时荧光定量PCR的扩增体系如下,总体系20μL:
模板2.0μL;2×Premix ExTaq(Probe qPCR)10.0μL;10μM/μL ToCV-F6680 0.4μL;10μM/μL ToCV-F6799 0.4μL;10μM/μL ToCV-probe6724 0.8μL;ddH2O 6.4μL;
所述TaqMan PCR扩增程序如下:
95℃30s;95℃5s,57℃30s,40个循环。
根据本发明优选的,所述步骤(2)中,还包括根据Ct值与标准曲线进行对应,计算待检测烟粉虱中ToCV的具体含量;所述标准曲线按如下步骤建立:
(i)以感染ToCV植株的cDNA为模板,PCR扩增ToCV的基因片段;
所述PCR扩增的引物ToCV-F和ToCV-R,其核苷酸序列如SEQ ID NO.4和SEQ IDNO.5所示:
ToCV-F:5’-CTGAAGTTCCTTTGGTGCAA-3’;SEQ ID NO.4
ToCV-R:5’-CCGCAGTGTAATCGAGAAAA-3’;SEQ ID NO.5
所述PCR扩增的反应体系如下所示,体系总体积20μL:
模板2.0μL;2.5mM/μL dNTP 2μL;Ex-Taq 0.2μL;10×Ex-Taq Buffer 2.0μL;10μM/μL ToCV-F 0.3μL;10mM/μL ToCV-R 0.3μL;ddH2O 13.2μL;
所述PCR扩增的程序如下:
95℃预变性4min;94℃变性40s,55℃退火40s,72℃延伸50s,35个循环;72℃延伸10min;4℃反应10min;
(ii)将步骤(i)制得的基因片段连接到pMD18-T Vector中,然后转化至大肠杆菌感受态细胞JM109中,筛选并提取阳性克隆的质粒且测序正确后,制得外参阳性质粒;
根据以下公式计算含有ToCV片段质粒拷贝数:
质粒拷贝数/μL=(C×10-9)×阿氏常数/质粒分子量
其中C表示质粒浓度,单位ng/μL;阿氏常数为6.02×1023;质粒分子量=重组质粒碱基数×660dalton/bp;
(iii)测定步骤(ii)制得的外参阳性质粒的浓度,按10倍梯度稀释至109、108、107、106、105、104、103、102、101质粒拷贝数/μL,分别进行TaqMan实时荧光定量PCR扩增,得到动力学扩增曲线,然后制作PCR扩增循环阈值(Ct值)和初始病毒量对数相关的标准曲线。
根据本发明进一步优选的,所述步骤(iii)中,TaqMan实时荧光定量PCR的扩增体系如下,总体系20μL:
模板2.0μL;2×Premix ExTaq(Probe qPCR)10.0μL;10μM/μL ToCV-F6680 0.4μL;10μM/μL ToCV-F6799 0.4μL;10μM/μL ToCV-probe6724 0.8μL;ddH2O 6.4μL;
所述TaqMan PCR扩增程序如下:
95℃30s;95℃5s,57℃30s,40个循环。
上述实验步骤如无特别说明均可参见《分子克隆实验指南》第三版(北京:科学出版社,2002)。
有益效果
1、本发明针对传毒介体烟粉虱,选取ToCV保守序列设计TaqMan PCR引物及探针,建立快速检测烟粉虱体内携带ToCV病毒的TaqMan实时荧光定量PCR的方法,该扩增方法灵敏度高,特异性强,2小时内便可出结果,快速且检测结果可靠;
2、本发明可实现对单头烟粉虱携带ToCV的检测,精确度高;
3、利用本发明可对田间烟粉虱的ToCV带毒情况进行大规模调查,精确计算烟粉虱带毒率,可有效减少样品交叉污染,快速高效、灵敏特异,为番茄褪绿病毒的快速诊断、早期预测预报及科学防控提供技术支撑。
附图说明
图1 ToCV基因片段PCR扩增图
图中M:2000bp Ladder;1:ToCV基因片段;
图2以101~109copies的ToCV-pMD18-T质粒为模板建立的扩增曲线;
图中A~I:质粒稀释倍数依次为102~108倍;
图3以101~109copies的ToCV-pMD18-T质粒为模板建立的标准曲线和线性关系;
图4实验室ToCV番茄植株上单头烟粉虱ToCV TaqMan PCR扩增曲线;
图5田间单头烟粉虱ToCV TaqMan PCR扩增曲线。
具体实施方式
下面结合实例及附图对本发明的技术内容做进一步的说明,但本发明所保护范围不限于此。
实施例中所述的RNA提取试剂Trizol采购于Invitrogen公司,cDNA的合成试剂RT reagent Kit和Premix Ex Taq(Probe qPCR)采购于TaKaRa公司,其它试剂均为普通市售试剂。
实施例1
ToCV检测的标准曲线的建立,步骤如下:
(i)以感染ToCV植株的cDNA为模板,PCR扩增ToCV的基因片段;
所述PCR扩增的引物是根据GenBank公布的番茄ToCV基因序列(Accessionnumber:KC709510.1),从中选取ToCV外壳蛋白高度保守、特异区域设计获得的,引物序列如下所示:
ToCV-F:5’-CTGAAGTTCCTTTGGTGCAA-3’;SEQ ID NO.4
ToCV-R:5’-CCGCAGTGTAATCGAGAAAA-3’;SEQ ID NO.5
所述PCR扩增的反应体系如下所示,体系总体积20μL:
模板2.0μL;2.5mM/μL dNTP 2.0μL;Ex-Taq 0.2μL;10×Ex-Taq Buffer 2.0μL;10μM/μL ToCV-F 0.3μL;10mM/μL ToCV-R 0.3μL;ddH2O 13.2μL;
所述PCR扩增的程序如下:
95℃预变性4min;94℃变性40s,55℃退火40s,72℃延伸50s,35个循环;72℃延伸10min;4℃反应10min;
PCR产物用1.5wt%琼脂糖凝胶电泳检测,结果成像胶片在681bp处有一条条带出现(如图1),对此条带产物进行测序,序列如SEQ ID NO.6所示。
(ii)将步骤(i)制得的基因片段通过T-A克隆连接到pMD18-T Vector中,然后转化至大肠杆菌感受态细胞JM109中,筛选并提取阳性克隆的质粒且测序正确后,制得外参阳性质粒;
根据以下公式计算含有ToCV片段质粒拷贝数:
质粒拷贝数/μL=(C×10-9)×阿氏常数/质粒分子量
其中C表示质粒浓度,单位ng/μL;阿氏常数为6.02×1023;质粒分子量=重组质粒碱基数×660dalton/bp;
经计算,步骤(ii)制得的外参阳性质粒的质粒拷贝数为8.3×1010copies/μL
(iii)测定步骤(ii)制得的外参阳性质粒的浓度,按10倍梯度稀释至109、108、107、106、105、104、103、102、101质粒拷贝数/μL,分别进行TaqMan PCR扩增;
所述TaqMan探针,结构如下:
ToCV-probe6724:5’(FAM)-TAACATTCGGCACTTCC-(BHQ1)3’;
所述TaqMan PCR引物核苷酸序列如下:
ToCV-F6680:5’-TTTCTCAAAGGATCAAGCTGTGTT-3’;SEQ ID NO.2
ToCV-R6799:5’-TGCGCTCCGGTATCAGTCTT-3’。SEQ ID NO.3
所述TaqMan实时荧光定量PCR的扩增体系如下,总体系20μL:
模板2.0μL;2×Premix ExTaq(Probe qPCR)10.0μL;10μM/μL ToCV-F6680 0.4μL;10μM/μL ToCV-F6799 0.4μL;10μM/μL ToCV-probe6724 0.8μL;ddH2O 6.4μL;
所述TaqMan PCR扩增程序如下:
95℃30s;95℃5s,57℃30s,40个循环。
TaqMan PCR扩增后得到的动力学扩增曲线,如图2所示,然后制作PCR扩增循环阈值(Ct值)和初始病毒量对数相关的标准曲线,如图3所示。
实施例2
利用实时荧光定量PCR快速检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的方法,包括如下步骤:
(1)提取单头待检测烟粉虱的RNA,经反转录,制得反转录产物;
所述提取单头待检测烟粉虱的RNA,步骤如下:
1)采集ToCV番茄植株饲养烟粉虱50头,分别将单头待检测烟粉虱置于含有100μLTrizol试剂的容器中,–80℃保存;检测时,置于冰上溶化,然后研磨后,加入300μL Trizol试剂,震荡混匀;
2)加入100μL氯仿,震荡混匀,4℃离心机13000rpm/min离心15min,取上清,将上清液转移至一新的1.5mL RNase free离心管中;
3)上清液中加入250μL异丙醇,震荡混匀,4℃离心机13000rpm/min离心15min,弃上清;
4)加入1mL由RNase free ddH2O配制的质量百分比浓度为75%的乙醇溶液,清洗RNA,4℃离心机13000rpm/min离心5min,弃上清,风干沉淀,制得RNA;
5)加入RNase free ddH2O,溶解RNA,即得;
经NanoPhotometer N50检测单头烟粉虱RNA的浓度在142.3ng/μL~313.88ng/μL之间,–80℃保存备用;
所述反转录采用反转录试剂盒PrimeScriptTM RT reagent Kit with gDNAEraser(Perfect Real Time)(Takara:RR047a)将制得的RNA进行反转录合成cDNA,制得反转录产物,具体操作步骤如下:
①基因组DNA的去除:在冰上配制反应液,使用10μL的反应体系,如下:
5×gDNA Eraser Buffer 2.0μL,gDNA Eraser 1.0μL,All Total RNA 7.0μL,RNase Free ddH20补至10.0μL。
反应条件:42℃2min。
②反转录:冰上配制反应液,20μL的反应体系,如下:
Reaction solution from Step 1 10.0μL,5×PrimeScript Buffer2 4.0μL,PrimeScript RT Enzyme MixⅠ1.0μL,RT Primer Mix 1.0μL,RNase Free ddH20 4.0μL。
反应条件:37℃15min,85℃5s,-20℃保存。
(2)以步骤(1)制得的反转录产物为模板,利用TaqMan探针和引物,进行TaqMan实时荧光定量PCR分析:
所述TaqMan探针,结构如下:
ToCV-probe6724:5’(FAM)-TAACATTCGGCACTTCC-(BHQ1)3’;
所述TaqMan PCR引物核苷酸序列如下:
ToCV-F6680:5’-TTTCTCAAAGGATCAAGCTGTGTT-3’;
ToCV-R6799:5’-TGCGCTCCGGTATCAGTCTT-3’。
所述TaqMan实时荧光定量PCR的扩增体系如下,总体系20μL:
模板2.0μL;2×Premix ExTaq(Probe qPCR)10.0μL;10μM/μL ToCV-F6680 0.4μL;10μM/μL ToCV-F6799 0.4μL;10μM/μL ToCV-probe6724 0.8μL;ddH2O 6.4μL;
所述TaqMan PCR扩增程序如下:
95℃30s;95℃5s,57℃30s,40个循环。
对TaqMan实时荧光定量PCR数据进行分析,计算烟粉虱体内ToCV的含量(依据图3标准曲线计算病毒含量)与带毒率(带毒率=阳性数/样品总数×100%),检测结果如表1所示;
表1
注:表中“+”:ToCV检测为阳性;“—”:ToCV检测为隐性。
结果显示,50头烟粉虱样品均能扩增出S型曲线(如图4所示),ToCV的Ct值在22.47~30.44之间,相对应的病毒含量1399~498519copies/μL(如表1所示),经计算烟粉虱对ToCV的带毒率为100%,该烟粉虱可用于健康番茄的传毒试验。
实施例3
取采集于青岛市城阳区上马镇番茄温室大棚中的烟粉虱样品,按照实施例2所述的方法进行检测,检测结果如表2所示:
表2
注:表中“+”:ToCV检测为阳性;“—”:ToCV检测为隐性。
结果显示:50头烟粉虱样品中有15头能扩增出S型曲线(图5),ToCV的Ct值在22.02~30.16之间,相对应的病毒含量1720~694648copies/μL(如表2所示),经计算烟粉虱对ToCV的带毒率为30%,预测该地将有ToCV发生流行趋势,建议农药防治烟粉虱,预防ToCV的流行和爆发。
Claims (8)
1.检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan探针,探针的5’端标记FAM,3’端标记BHQ1,核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。
2.检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的TaqMan引物,该引物为一对,上游引物核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示,下游引物核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。
3.利用权利要求1所述的TaqMan探针和权利要求2所述的引物进行实时荧光定量PCR快速检测单头烟粉虱携带番茄褪绿病毒的方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)提取单头待检测烟粉虱的RNA,经反转录,制得反转录产物;
(2)以步骤(1)制得的反转录产物为模板,利用TaqMan探针和引物,进行TaqMan实时荧光定量PCR分析,当有S型扩增曲线和Ct值出现时,则表示待检测烟粉虱中含有ToCV,否则,待检测烟粉虱中不含有ToCV。
4.如权利要求3所述的方法,其特征在于,所述步骤(1)提取单头待检测烟粉虱的RNA,步骤如下:
1)将单头待检测烟粉虱置于含有80~150μL Trizol试剂的容器中,–80℃保存;检测时,置于冰上溶化,然后研磨后,加入250~400μL Trizol试剂,震荡混匀;
2)加入80~150μL氯仿,震荡混匀,4℃离心机13000rpm/min离心15min,取上清;
3)上清液中加入200~300μL异丙醇,震荡混匀,4℃离心机13000rpm/min离心15min,弃上清;
4)加入1mL由RNase free ddH2O配制的质量百分比浓度为75%的乙醇溶液,清洗RNA,4℃离心机13000rpm/min离心5min,弃上清,风干沉淀,制得RNA;
5)加入RNase free ddH2O,溶解RNA,即得。
5.如权利要求3所述的方法,其特征在于,所述步骤(2)中,TaqMan实时荧光定量PCR的扩增体系如下,总体系20μL:
模板2.0μL;2×Premix ExTaq 10.0μL;10μM/μL ToCV-F6680 0.4μL;10μM/μL ToCV-F67990.4μL;10μM/μL ToCV-probe6724 0.8μL;ddH2O 6.4μL;
所述TaqMan PCR扩增程序如下:
95℃30s;95℃5s,57℃30s,40个循环。
6.如权利要求3所述的方法,其特征在于,所述步骤(2)中,还包括根据Ct值与标准曲线进行对应,计算待检测烟粉虱中ToCV的具体含量。
7.如权利要求6所述的方法,其特征在于,所述标准曲线按如下步骤建立:
(i)以感染ToCV植株的cDNA为模板,PCR扩增ToCV的基因片段;
所述PCR扩增的引物ToCV-F和ToCV-R,其核苷酸序列如SEQ ID NO.4和SEQ ID NO.5所示;
所述PCR扩增的反应体系如下所示,体系总体积20μL:
模板2.0μL;2.5mM/μL dNTP 2μL;Ex-Taq 0.2μL;10×Ex-Taq Buffer 2.0μL;10μM/μLToCV-F 0.3μL;10mM/μL ToCV-R 0.3μL;ddH2O 13.2μL;
所述PCR扩增的程序如下:
95℃预变性4min;94℃变性40s,55℃退火40s,72℃延伸50s,35个循环;72℃延伸10min;4℃反应10min;
(ii)将步骤(i)制得的基因片段连接到pMD18-T Vector中,然后转化至大肠杆菌感受态细胞JM109中,筛选并提取阳性克隆的质粒且测序正确后,制得外参阳性质粒;
根据以下公式计算含有ToCV片段质粒拷贝数:
质粒拷贝数/μL=(C×10-9)×阿氏常数/质粒分子量
其中C表示质粒浓度,单位ng/μL;阿氏常数为6.02×1023;质粒分子量=重组质粒碱基数×660dalton/bp;
(iii)测定步骤(ii)制得的外参阳性质粒的浓度,按10倍梯度稀释至109、108、107、106、105、104、103、102、101质粒拷贝数/μL,分别进行TaqMan实时荧光定量PCR扩增,得到动力学扩增曲线,然后制作PCR扩增循环阈值(Ct值)和初始病毒量对数相关的标准曲线。
8.如权利要求7所述的方法,其特征在于,所述步骤(iii)中,TaqMan实时荧光定量PCR的扩增体系如下,总体系20μL:
模板2.0μL;2×Premix ExTaq 10.0μL;10μM/μL ToCV-F6680 0.4μL;10μM/μL ToCV-F67990.4μL;10μM/μL ToCV-probe6724 0.8μL;ddH2O 6.4μL;
所述TaqMan PCR扩增程序如下:
95℃30s;95℃5s,57℃30s,40个循环。
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