CN105695553A - 一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法 - Google Patents

一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法 Download PDF

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Abstract

一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法,利用来源于Thermotoga petrophila的β-葡萄糖苷酶和Thermotoga thermarum DSM 5069的阿拉伯呋喃糖苷酶,降解人参皂苷Rb1、Rb2和Rc生产20(S)-Rg3。本发明可以提高资源利用率和降低人参皂苷原料的提取成本,本发明中所述的β-葡萄糖苷酶和阿拉伯呋喃糖苷酶能在1h内几乎将人参皂苷Rb1、Rb2和Rc完全转化为20(S)-Rg3。

Description

一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法
技术领域
本发明属于生物医药领域,涉及稀有人参皂苷20(S)-Rg3的制备方法,尤其涉及利用重组表达的来源于ThermotogathermarumDSM5069的阿拉伯呋喃糖苷酶和Thermotogapetrophila的β-葡萄糖苷酶转化人参皂苷Rb1、Rb2、Rc生成20(S)-Rg3。
背景技术
人参Panaxginseng是亚洲传统的名贵中药材,具有生物活性广泛,药理作用独特等特点,但其化学成分复杂。随着分析技术的革新,人参主要的化学成分得到了进一步的明确。研究发现,人参皂苷是人参主要的生物活性物质,到目前为止,已经分离鉴定180余种人参皂苷单体,其中5种主要皂苷(人参皂苷Rb1、Rb2、Rc、Re和Rg1)占总皂苷的80%以上,而人参皂苷(Rh1、Rh2、CompoundK、Rg2、F1和Rg3)含量很低,称为稀有皂苷(AppliedMicrobiologyandBiotechnology,2012,94:673-682),但其药理活性优于上述高含量的人参皂苷。
稀有人参皂苷20(S)-Rg3具有抑制肿瘤细胞增殖、粘附侵袭和转移,促进肿瘤细胞的凋亡,提高机体免疫机能等生理作用。但稀有皂苷20(S)-Rg3在植物中含量很低,直接提取工艺复杂,成本太高。而人参皂苷Rb1、Rb2和Rc是人参总皂苷中含量最高的几种人参皂苷。它们与稀有人参皂苷20(S)-Rg3具有相似的母核结构,唯一的差别是在20位上的糖基侧链(图1)。如果能专一性的切除Rb1、Rb2和Rc在20位上的糖基侧链,就可以得到稀有人参皂苷20(S)-Rg3。
将人参皂苷Rb1、Rb2、Rc转化为20(S)-Rg3的方法有化学法和生物法。但化学转化法因其反应剧烈、选择性差、无法得到20(S)-Rg3纯品等缺点而不被采用。生物转化具有反应条件温和,特异性好等特点,而受到青睐。如Cheng等发现新细菌Microbacteriumsp.GS514能转化人参皂苷Rb1生成稀有人参皂苷20(S)-Rg3,但存在转化周期较长,转化率低下等缺点(Phytochemistry,2008,69:218-224)。本课题组在前期的研究中也发现了一种β-葡萄糖苷酶能转化人参皂苷Rb1生成稀有人参皂苷20(S)-Rg3(中国专利201410510836.6)。但目前还没有文献报道能同时转化人参皂苷Rb1、Rb2和Rc生成20(S)-Rg3。同时转化人参皂苷Rb1、Rb2和Rc,能提高资源利用率和降低人参皂苷原料的提取成本,但各种酶对底物的专一性不同,降解的糖苷键类型也各不相同。因此,寻找能高效、特异性降解人参皂苷Rb1、Rb2和Rc生产人参皂苷20(S)-Rg3的糖苷水解酶成为了研究关键,同时选择的酶必须有相似的最适反应pH和温度,能进行协同降解。
发明内容
解决的技术问题:本发明提供了一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法,该方法所使用的重组酶分别来源于Thermotogapetrophila的β-葡萄糖苷酶和ThermotogathermarumDSM5069的阿拉伯呋喃糖苷酶。
技术方案:一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法,利用来源于Thermotogapetrophila的β-葡萄糖苷酶和ThermotogathermarumDSM5069的阿拉伯呋喃糖苷酶,降解人参皂苷Rb1、Rb2和Rc生产20(S)-Rg3。
上述β-葡萄糖苷酶的核苷酸序列如SEQIDNO:1所示,氨基酸序列如SEQIDNO:2所示。
上述阿拉伯呋喃糖苷酶的核苷酸序列如SEQIDNO:3所示,氨基酸序列如SEQIDNO:4所示。
上述β-葡萄糖苷酶是通过重组表达制备的,步骤为:
(1)以提取的Thermotogapetrophila基因组DNA为模板,用具有SEQIDNO:5所示的核苷酸序列为上游引物和具有SEQIDNO:6所示的核苷酸序列为下游引物,PCR扩增得到β-葡萄糖苷酶的DNA分子;
(2)将β-葡萄糖苷酶的DNA分子和pET-20b分别用NdeI和XhoI进行双酶切,连接并转化得到含有β-葡萄糖苷酶的DNA分子的重组质粒;
(3)将上述获得的重组质粒转化表达宿主E.coliBL21(DE3),IPTG诱导β-葡萄糖苷酶表达,收集菌体,破碎细胞,70℃热处理30分钟,获得纯化的β-葡萄糖苷酶。
上述阿拉伯呋喃糖苷酶是通过重组表达制备的,步骤为:
(1)以提取的ThermotogathermarumDSM5069的基因组DNA为模板,用具有SEQIDNO:7所示的核苷酸序列为上游引物和具有SEQIDNO:8所示的核苷酸序列为下游引物,PCR扩增得到阿拉伯呋喃糖苷酶的DNA分子;
(2)将阿拉伯呋喃糖苷酶的DNA分子和pET-28a分别用NcoI和XhoI进行双酶切,连接并转化得到含有阿拉伯呋喃糖苷的DNA分子的重组质粒;
(3)将上述获得的重组质粒转化表达宿主E.coliBL21(DE3),IPTG诱导阿拉伯呋喃糖苷表达,收集菌体,破碎细胞,70℃热处理30分钟,离心获阿拉伯呋喃糖苷。
酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法,降解条件为:Rb1、Rb2、Rc各1g/L,β-葡萄糖苷酶0.15U,阿拉伯呋喃糖苷酶0.6U,pH5.0,85℃条件下,降解1h,最终可以将人参皂苷Rb1、Rb2、Rc转化为人参皂苷20(S)-Rg3,摩尔得率为97.3%。
有益效果:
1.本发明可以同时对人参皂苷Rb1、Rb2和Rc转化生成20(S)-Rg3,可以提高资源利用率和降低人参皂苷原料的提取成本。
2.本发明中的酶对Rb1、Rb2和Rc转化能力强,本发明中所述的β-葡萄糖苷酶和阿拉伯呋喃糖苷酶能在1h内几乎将人参皂苷Rb1、Rb2和Rc完全转化为20(S)-Rg3。
3.本发明中所述的β-葡萄糖苷酶和阿拉伯呋喃糖苷酶专一性强,能特异性降解20位侧链上的糖基,几乎无反应副产物。
4.本发明中所述的β-葡萄糖苷酶和阿拉伯呋喃糖苷酶能协同降解,具有相似的最适反应pH和反应温度。
附图说明
图1是本发明中Rb1、Rb2、Rc和20(S)-Rg3的结构示意图;
图2是本发明实施例提供的温度对糖苷酶活性的影响;
图3是本发明实施例提供的pH对糖苷酶活性的影响;
图4是本发明实施例提供的β-葡萄糖苷酶和阿拉伯呋喃糖苷酶对人参皂苷Rb1、Rb2、Rc的转化图。
具体实施方式
下面将结合本发明实施例,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅为本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
为了进一步理解本发明,下面结合实施例对本发明进行详细阐述,其中,如无特殊说明,实施例中涉及的各种反应试剂均可以通过商业渠道购买得到;如无特殊说明,实施例中涉及的具体操作参见《分子克隆实验指南第三版》。
实施例1:重组质粒pET-20b-bgl的构建
1.1Thermotogapetrophila的培养
Thermotogapetrophila购于DSMZ菌种保藏中心(www.dsmz.de)编号为DSM13995。其培养基配方为:10g/L可溶性淀粉,3g/L酵母粉,5g/L胰蛋白胨,5g/L肉浸液,10g/L2-吗啉乙磺酸,10mg/L七水合硫酸铁,1mg/L刃天青,调pH为7.2,煮沸充氮气,除去氧气后,培养基在无氧条件下装入厌氧瓶灭菌。用注射器按照0.5wt.%接种量接种,85℃静止培养24h,收集细胞。
1.2基因组DNA的提取
(1)静置培养Thermotogapetrophila24h,取30mL菌液4,000g离心10min收集细胞。
(2)用9.5mLTE缓冲液重悬菌体,加入0.5mL10wt.%十二烷基硫酸钠(SDS)和50μL蛋白酶K(20mg/mL),混合均匀,37℃保温1h。
(3)加入1.8mL5mol/LNaCl,1.5mL十六烷基三乙基溴化铵(CTAB)/NaCl,混匀,65℃温育20min。
(4)加入等体积氯仿/异戊醇(体积比24:1),混匀,6,000g离心10min。
(5)为防止剪切力造成基因组DNA断裂,用粗口吸管将上清转入另一离心管中,加入等体积酚/氯仿/异戊醇混匀(体积比25:24:1),6,000g离心10min。
(6)另一离心管中,加入0.6倍体积异丙醇,轻轻晃动至白色丝状DNA沉淀清晰可见。
(7)用吸管将DNA缠绕其上,在70vt.%酒精中清洗。
(8)用无菌牙签将DNA从吸管上刮下,转入1.5mL离心管中。
(9)室温下风干,加500μLTE缓冲液溶解。
(10)取50μL用核酸蛋白检测仪检测DNA浓度。
1.3重组质粒pET-20b-bgl的构建
按照已知的Thermotogapetrophila极耐热β-葡萄糖苷酶基因(YP_001244492.1)设计引物(SEQIDNO:5)下划线表示NdeI酶切位点;(SEQIDNO:6)下划线表示XhoI酶切位点,并去除终止密码子;以提取的Thermotogapetrophila的基因组DNA为模板,用合成的引物进行PCR扩增,扩增的条件是95℃,3min;30次循环(94℃,30s;58℃,30s;72℃,2min10s);72℃,10min;反应停止,4℃保温。通过凝胶回收试剂盒对PCR扩增产物进行纯化。得到Thermotogapetrophila极耐热β-葡萄糖苷酶基因。
得到Thermotogapetrophila极耐热β-葡萄糖苷酶基因和pET-20b分别用NdeI和XhoI进行双酶切,并分别割胶回收,浓缩后16℃连接过夜,将连接产物转化大肠杆菌Top10F’感受态细胞,转化产物涂布到LB(添加氨苄青霉素至终浓度100mg/L)固体培养基上37℃过夜培养,接种几个单菌落到LB(添加氨苄青霉素至终浓度100mg/L)液体培养基中培养8-10小时后,收集菌体提取质粒,酶切验证去除空载质粒,将重组质粒进行核酸序列测定,得到正确的重组表达载体pET20b-bgl。
2.重组极耐热β-葡萄糖苷酶的表达及纯化
将重组质粒pET-20b-bgl转化大肠杆菌BL21(DE3)宿主菌(Novagen),在含有Amp(100μg/mL)的LB平板(LB培养基:胰蛋白胨10g/L,酵母提取物5g/L,NaCl5g/L,琼脂15g/L)上经过37℃培养过夜,挑转化子到200mL的LB培养基中(100μg/mLAmp)37℃,200rpm振荡培养至OD600为0.6时,加入终浓度为0.5mM异丙基β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)诱导剂,30℃诱导培养8h,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13,000rpm离心15min,收集菌体,去上清加入无菌水,超声波破碎细胞,随后70℃热处理30min,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13,000rpm离心15min,上清即为重组极耐热β-葡萄糖苷酶的纯酶。
3.重组质粒pET-28a-Arf的构建
3.1ThermotogathermarumDSM5069的培养
ThermotogathermarumDSM5069购于DSMZ菌种保藏中心(www.dsmz.de)。编号为:DSM5069。其培养基配方为:5g/L可溶性淀粉,1g/L酵母粉,1.5g/LKH2PO4,4.2g/LNa2HPO4·12H2O,3.4g/LNaCl,1g/LMgSO4x7H2O,0.76g/LEDTA,1mL/L微量元素,0.5g/LNa2S·9H2O,0.5g/LCysteineHCl,1mg/L刃天青,调pH为7.0,煮沸冲氮气,除去氧气后,培养基在无氧条件下装入厌氧瓶灭菌。微量元素(1000×)配方:FeCl32.0g/L;H3BO30.05g/L;ZnCl20.05g/L;CuCl2·2H2O0.03g/L;MnCl2·4H2O0.05g/L;(NH4)2MoO40.05g/L;AlK(SO4)2·12H2O0.05g/L。)用注射器按照0.5wt.%接种量接种,82℃静止培养24h,收集细胞。
3.2基因组DNA的提取
(1)静置培养ThermotogathermarumDSM506924h,取30mL菌液4,000g离心10min收集细胞。
(2)用9.5mLTE缓冲液重悬菌体,加入0.5mL10wt.%十二烷基硫酸钠(SDS)和50μL蛋白酶K(20mg/mL),混合均匀,37℃保温1h。
(3)加入1.8mL5mol/LNaCl,1.5mL十六烷基三乙基溴化铵(CTAB)/NaCl,混匀,65℃温育20min。
(4)加入等体积氯仿/异戊醇,混匀,6,000g离心10min。
(5)为防止剪切力造成基因组DNA断裂,用粗口吸管将上清转入另一离心管中,加入等体积酚/氯仿/异戊醇混匀,6,000g离心10min。
(6)另一离心管中,加入0.6倍体积异丙醇,轻轻晃动至白色丝状DNA沉淀清晰可见。
(7)用吸管将DNA缠绕其上,在70vt.%酒精中清洗。
(8)用无菌牙签将DNA从吸管上刮下,转入1.5mL离心管中。
(9)室温下风干,加500μLTE缓冲液溶解。
(10)取50μL用核酸蛋白检测仪检测DNA浓度。
3.3重组质粒pET-20b-Arf的构建
按照已知的ThermotogathermarumDSM5069极耐热阿拉伯呋喃糖苷酶基因(WP013932416.1)设计引物:(SEQIDNO:7)下划线表示NcoI酶切位点;(SEQIDNO:8)下划线表示XhoI酶切位点,并去除终止密码子;以提取的ThermotogathermarumDSM5069的基因组DNA为模板,用合成的引物进行PCR扩增,扩增的条件是94℃,3min;30次循环(94℃,30s;58℃,30s;72℃,1min28s);72℃,10min;反应停止,4℃保温。通过凝胶回收试剂盒对PCR扩增产物进行纯化。得到ThermotogathermarumDSM5069极耐热阿拉伯呋喃糖苷酶基因。
得到ThermotogathermarumDSM5069极耐热阿拉伯呋喃糖苷酶基因和pET-28a分别用NcoI和XhoI进行双酶切,并分别割胶回收,浓缩后16℃连接过夜,将连接产物转化大肠杆菌Top10F’感受态细胞,筛选阳性克隆,进行序列分析;挑选序列正确的克隆提取质粒,获得含有极耐热糖苷酶基因的重组质粒pET-28a-Arf。
4.重组极耐热阿拉伯呋喃糖苷酶的表达及纯化
将重组质粒pET-28a-Arf转化大肠杆菌BL21(DE3)宿主菌(Novagen),在含有Kan(50μg/mL)的LB平板(LB培养基:胰蛋白胨10g/L,酵母提取物5g/L,NaCl5g/L,琼脂15g/L)上经过37℃培养过夜,挑转化子到200mL的LB培养基中(50μg/mLKan)37℃,200rpm振荡培养至OD600为0.6时,加入终浓度为0.01mM异丙基β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)诱导剂,30℃诱导培养8h,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13,000rpm离心15min,收集菌体,去上清加入无菌水,超声波破碎细胞,随后70℃热处理30min,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13,000rpm离心15min,上清即为重组极耐热阿拉伯呋喃糖苷酶的纯酶。
5.重组酶协同转化人参皂苷Rb1、Rb2、Rc生成20(S)-Rg3的条件
5.1酶活测定
反应体系200μL,10μL20mmol/LpNPG中加入100μL100mmol/L柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液(pH5.0)和85μL水,先在90℃孵育2min,再加入5μL酶液(稀释到合适的倍数,使OD405的值在0.2~1.0之间)反应10min。反应结束后立刻加入600μL1M的Na2CO3,用分光光度计在405nm下测定其吸光值。酶活力单位(U)定义为:在测定条件下,每分钟产生1μmolPNP所用的酶量为1个酶活力单位。
反应体系200μL,10μL20mmol/LpNPArf中加入100μL100mmol/L柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液(pH5.0)和85μL水,先在95℃孵育2min,再加入5μL酶液(稀释到合适的倍数,使OD405的值在0.2~1.0之间)反应10min。反应结束后立刻加入600μL1M的Na2CO3,用分光光度计在405nm下测定其吸光值。酶活力单位(U)定义为:在测定条件下,每分钟产生1μmolPNP所用的酶量为1个酶活力单位。
5.2最适反应温度的测定
在70-90℃范围内,每隔5℃,分别测定酶活。缓冲为50mmol/L柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液,pH5.0,发现两种极耐热糖苷酶的最适反应温度为85℃(图2)。
5.3最适反应pH的测定
在不同的pH(3.5-7.0,50mmol/L柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液)条件下,85℃分别测定酶活,发现两种极耐热糖苷酶的最适反应pH为5.0(图3)。
6.协同转化人参皂苷Rb1、Rb2、Rc生成人参皂苷20(S)-Rg3
人参皂苷Rb1、Rb2、Rc的浓度均为1g/L,转化条件为85℃,pH5.0,50mmol/L柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液,不同的时间点(0,5,10,20,30,40,50,60min)分别取样,通过HPLC进行检测。结果发现β-葡萄糖苷酶(0.15U)和阿拉伯呋喃糖苷酶(0.6U)协同作用在60min内可以将人参皂苷Rb1、Rb2、Rc转化为稀有人参皂苷20(S)-Rg3,摩尔得率为97.3%(图4)。
SEQUENCELISTING
<110>南京林业大学
<120>一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法
<130>
<160>8
<170>PatentInversion3.3
<210>1
<211>2166
<212>DNA
<213>Thermotogapetrophila
<400>1
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<210>2
<211>722
<212>PRT
<213>Thermotogapetrophila
<400>2
MetMetGlyLysIleAspGluIleLeuSerGlnLeuThrIleGluGlu
151015
LysValLysLeuValValGlyValGlyLeuProGlyLeuPheGlyAsn
202530
ProHisSerArgValAlaGlyAlaAlaGlyGluThrHisProValPro
354045
ArgLeuGlyIleProSerPheValLeuAlaAspGlyProAlaGlyLeu
505560
ArgIleAsnProThrArgGluAsnAspGluAsnThrTyrTyrThrThr
65707580
AlaPheProValGluIleMetLeuAlaSerThrTrpAsnLysAspLeu
859095
LeuGluGluValGlyLysAlaMetGlyGluGluValArgGluTyrGly
100105110
ValAspValLeuLeuAlaProAlaMetAsnIleHisArgAsnProLeu
115120125
CysGlyArgAsnPheGluTyrTyrSerGluAspProValLeuSerGly
130135140
GluMetAlaSerAlaPheValLysGlyValGlnSerGlnGlyValGly
145150155160
AlaCysIleLysHisPheValAlaAsnAsnGlnGluThrAsnArgMet
165170175
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180185190
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195200205
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210215220
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225230235240
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245250255
GlyAsnAspMetIleMetProGlyLysAlaTyrGlnValAsnThrGlu
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ArgArgAspGluIleGluGluIleMetGluAlaLeuLysGluGlyArg
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290295300
LeuValAsnAlaProSerPheLysGlyTyrArgTyrSerAsnLysPro
305310315320
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ValAspGlyIleLeuLeuValTrpGlnAlaGlyGlnGluMetGlyArg
515520525
IleValAlaAspValLeuValGlyArgValAsnProSerGlyLysLeu
530535540
ProThrThrPheProLysAspTyrSerAspValProSerTrpThrPhe
545550555560
ProGlyGluProLysAspAsnProGlnArgValValTyrGluGluAsp
565570575
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TyrGluPheGlyTyrGlyLeuSerTyrThrLysPheGluTyrLysAsp
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AspIleArgLeuArgAspIlePheLeuValGluGlyGluLysArgPhe
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LysPro
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tatatctgtgttaaccttggaactggtaccttggacgaggcacttcattggttggaatac420
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gaaaactactacgaaacggtgtccacagtttatttgctagaacaaaggcttataggtctt780
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gatgggaaaaagttgtatctggcagttgtaaactacaacaaagattcagaaatacgttgt1260
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gatatcaaagcaagaaatactttggaaaaaccgaatgttgtagatattgttgaaaagaca1380
acaatagttgatgaggaatttgaatttaccttcgaaccacactcttgcactgtgatagaa1440
gtagaaagatca1452
<210>4
<211>484
<212>PRT
<213>ThermotogathermarumDSM5069
<400>4
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GlyIleGlyProLysAspGlnArgProValArgPheAspLeuAlaTrp
859095
GlnGlnGluGluThrAsnArgPheGlyThrAspGluPheIleGluTyr
100105110
CysArgGluIleLysAlaGluProTyrIleCysValAsnLeuGlyThr
115120125
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130135140
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165170175
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275280285
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290295300
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305310315320
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GluLysAsnGlyIleIleLeuThrProValTyrLysAlaPheGluLeu
340345350
IleValAsnHisSerGlyGluLysLeuValGluThrIleValGluThr
355360365
GluThrTyrAspIleGluGlyLysMetPheTyrPheLysThrProPhe
370375380
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450455460
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ValGluArgSer
<210>5
<211>35
<212>DNA
<213>人工序列
<400>5
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<211>34
<212>DNA
<213>人工序列
<400>6
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<211>30
<212>DNA
<213>人工序列
<400>7
atgccatggcttacgaaatcagtgtgaatc30
<210>8
<211>30
<212>DNA
<213>人工序列
<400>8
ccgctcgagtgatctttctacttctatcac30

Claims (6)

1.一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法,其特征在于利用来源于Thermotogapetrophila的β-葡萄糖苷酶和ThermotogathermarumDSM5069的阿拉伯呋喃糖苷酶,降解人参皂苷Rb1、Rb2和Rc生产20(S)-Rg3。
2.根据权利要求1所述一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法,其特征在于所述β-葡萄糖苷酶的核苷酸序列如SEQIDNO:1所示,氨基酸序列如SEQIDNO:2所示。
3.根据权利要求1所述一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法,其特征在于所述阿拉伯呋喃糖苷酶的核苷酸序列如SEQIDNO:3所示,氨基酸序列如SEQIDNO:4所示。
4.根据权利要求1所述一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法,其特征在于所述β-葡萄糖苷酶是通过重组表达制备的,步骤为:
(1)以提取的Thermotogapetrophila基因组DNA为模板,用具有SEQIDNO:5所示的核苷酸序列为上游引物和具有SEQIDNO:6所示的核苷酸序列为下游引物,PCR扩增得到β-葡萄糖苷酶的DNA分子;
(2)将β-葡萄糖苷酶的DNA分子和pET-20b分别用NdeI和XhoI进行双酶切,连接并转化得到含有β-葡萄糖苷酶的DNA分子的重组质粒;
(3)将上述获得的重组质粒转化表达宿主E.coliBL21(DE3),IPTG诱导β-葡萄糖苷酶表达,收集菌体,破碎细胞,70℃热处理30分钟,获得纯化的β-葡萄糖苷酶。
5.根据权利要求1所述一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法,其特征在于所述阿拉伯呋喃糖苷酶是通过重组表达制备的,步骤为:
(1)以提取的ThermotogathermarumDSM5069的基因组DNA为模板,用具有SEQIDNO:7所示的核苷酸序列为上游引物和具有SEQIDNO:8所示的核苷酸序列为下游引物,PCR扩增得到阿拉伯呋喃糖苷酶的DNA分子;
(2)将阿拉伯呋喃糖苷酶的DNA分子和pET-28a分别用NcoI和XhoI进行双酶切,连接并转化得到含有阿拉伯呋喃糖苷的DNA分子的重组质粒;
(3)将上述获得的重组质粒转化表达宿主E.coliBL21(DE3),IPTG诱导阿拉伯呋喃糖苷表达,收集菌体,破碎细胞,70℃热处理30分钟,离心获阿拉伯呋喃糖苷。
6.根据权利要求1所述一种酶法制备稀有人参皂苷20(S)-Rg3的方法,其特征在于降解条件为:Rb1、Rb2、Rc各1g/L,β-葡萄糖苷酶0.15U,阿拉伯呋喃糖苷酶0.6U,pH5.0,85℃条件下,降解1h,最终可以将人参皂苷Rb1、Rb2、Rc转化为人参皂苷20(S)-Rg3,摩尔得率为97.3%。
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