CN105695551B - 一种制备去氢表雄酮的生物方法 - Google Patents

一种制备去氢表雄酮的生物方法 Download PDF

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Abstract

本发明属于生物制药和生物化工技术领域,具体涉及一种去氢表雄酮的生物制备方法。其包括使用具有序列1的酮还原酶将式(Ⅱ)的双键移位中间体A的3‑位酮羰基选择性不对称地还原。

Description

一种制备去氢表雄酮的生物方法
技术领域
本发明属于生物制药和生物化工技术领域,具体涉及一种去氢表雄酮的生 物制备方法。
背景技术
许多甾体化合物具有重要的生物活性及多种生理功能,去氢表雄酮(DHEA) 就是这样一个甾体类药物。值得关注的是:此化合物的应用非常广泛,作为性 激素前体,具有抗衰老及蛋白同化作用。主要功能有:1.辅助治疗疾病,目前 已经应用于治疗系统性红斑狼疮,抗过敏/哮喘等;2.改善性功能,提高性欲; 3.调节免疫系统功能,提高肌体免疫力;4.增强体能,改善情绪和睡眠,提高记忆 力;5.延缓衰老,保持青春活力。正由于它如此广泛的用途,其在临床上应用是 当前研究的一大热点。生产去氢表雄酮的方法主要有:天然产物提取,化学法 合成等。由于天然产物提取存在效率低下,成本高等缺点。目前工业化生产的 主要是化学法:但是此类方法一般都存在步骤比较长,反应条件比较苛刻,对 环境不友好等缺点。比如:
中国专利申请号201110085711.X,公开号102212099A的专利文献报道路 线如下:
此方法以醋酸妊娠双烯醇酮为原料经过肟化反应,贝克曼重排反应,水解反应 等三步化学反应最终以70%左右的总收率得到目标产物去氢表雄酮。该工艺路 线需要使用大量的易制毒试剂醋酐和丙酮,并且会产生大量的废水,对环境非 常不友好。另外,此路线的总收率只有70%,原子经济性较差。
中国专利申请号201210038094.2,公开号102603841 A的专利文献报道路 线如下:
此方法以甾体雄烯二酮为原料经过酯化反应,缩酮反应(保护羰基),还原反 应,水解反应(脱保护)等四步化学反应最终以80%左右的总收率得到目标产 物去氢表雄酮。该方法第一步酯化反应对温度以及溶剂的量比较敏感,不易控 制。另外此方法,需要对底物进行保护,脱保护两步反应,非常不经济。
中国专利申请号201480029546.8,公开号105339382A的专利文献报道了使 用具有特定序列的酮还原酶选择性地将还原为此方 法相对于化学合成方法具有更高的选择性和环境友好性,但是作为酶促反应而 言,其底物浓度不高(60g/L左右),反应时间过长(4-24小时),所需辅酶 种类较多,因此,该方法在工业生产方面成本较高。
发明内容
本发明针对现有技术的不足,提供了一种简单易行的合成去氢表雄酮的生 物方法。该方法操作简单,条件温和,对环境友好,并且大幅度降低了生产的 成本,适合大规模的工业化生产。
一方面,本申请提供制备式(Ⅰ)的去氢表雄酮(DHEA)的方法,
其包括使用序列1所示核苷酸序列编码的酮还原酶将式(Ⅱ)的3-位酮羰 基选择性不对称地还原,
该反应进一步包括添加NAD+作为辅酶,
该反应进一步包括添加葡萄糖脱氢酶作为辅酶来循环使用NAD+
另一方面,本申请提供制备式(Ⅱ)的方法,
其包括以下步骤:使用叔丁醇钾和叔丁醇将式(Ⅲ)的甾体雄烯二酮异构 化
本发明的反应式如下:
用于上述立体选择性还原的酮还原酶包括但不限于具有与序列1相对应的 氨基酸序列的酶。具有序列的酶与序列相对应或与序列1至少约80%、81%、 82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、 94%、95%、96%、97%、98%或99%相同。
本发明的优点:
1.以廉价易得的起始物甾体雄烯二酮出发通过在碱性条件下双键移位,得到 中间体。再利用酮还原酶对中间体的3-位酮羰基选择性不对称还原,最终能以 85%的总收率得到目标产物。
2.此反应路线不会产生原料的浪费,未反应的原料和中间体都能回收利用。
3.此反应路线生物转化步骤能在底物浓度50-800克/升浓度下进行,优选 120-600克/升,并且反应在2小时之内都能完成,有利于实现产业化。
4.含酮还原酶ADH046和葡萄糖脱氢酶GDH103的重组大肠杆菌透性细胞 可以直接用于制备去氢表雄酮,简化了生物酶粉的制备,同时利用重组细胞内 生NAD+再生体系免去了外源添加价格昂贵的辅酶NAD+,大大降低了生产成本。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明做进一步详细的说明,但本发明并不限于以 下实施例。
实施例1:构建质粒pET30a-ADH046及生产菌株 pET30a-ADH046/BL21(DE3)。
根据序列1,基因合成ADH046基因片段,基因两端引入酶切位点NdeI和 HindIII,连入pUC57载体(苏州泓迅生物技术有限公司)获得质粒 pUC57-ADH046。将基因进行NdeI/HindIII双酶切,回收后的片段与NdeI/HindIII 双酶切的质粒pET30a一起通过T4DNA连接酶进行连接,并转化大肠杆菌DH5a 完成重组质粒pET30a-ADH046的构建。将重组质粒pET30a-ADH046转入大肠 杆菌BL21(DE3)中获得重组菌株pET30a-ADH046/BL21(DE3)。
实施例2:制备ADH046冻干粉
将pET30a-ADH046/BL21(DE3)单菌落接种到4ml液体LB培养基,37℃振 荡培养过夜,取过夜培养基以1%接种量转接于50ml液体LB培养基,37℃振 荡培养至OD600值达到0.4-0.6,加入终浓度1mM IPTG于25℃振荡培养过夜。 结束后离心收集细胞(4,000rpm,10min),用5ml 10mmol/L磷酸缓冲液(pH7.0) 重悬细胞,于冰浴中超声波破碎细胞,将破碎液离心(8,000rpm,30min),收 集上清液冷冻干燥,获得ADH046的冻干粉。
实施例3:构建质粒pET30a-GDH103及生产菌株 pET30a-GDH103/BL21(DE3)。
以枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)基因组为模板,设计引物GDH103_NdeI_F:AACATATGTATCCGGATTTAAA和GDH103_HindIII_R: TTAAGCTTTTAACCGCGTCCTGCCTGGA,通过PCR从基因组上扩增葡萄糖 脱氢酶基因GDH103,NdeI/HindIII双酶切,回收后的片段与NdeI/HindIII双酶 切的质粒pET30a一起通过T4DNA连接酶进行连接,并转化大肠杆菌DH5a完 成重组质粒pET30a-GDH103的构建。将重组质粒pET30a-GDH103转入大肠杆 菌BL21(DE3)中获得重组菌株pET30a-GDH103/BL21(DE3)。
实施例4:制备GDH103冻干粉
将pET30a-GDH103/BL21(DE3)单菌落接种到4ml液体LB培养基,37℃振 荡培养过夜,取过夜培养基以1%接种量转接于50ml液体LB培养基,37℃振 荡培养至OD600值达到0.4-0.6,加入终浓度1mM IPTG于25℃振荡培养过夜。 结束后离心收集细胞(4,000rpm,10min),用5ml 10mmol/L磷酸缓冲液(pH7.0) 重悬细胞,于冰浴中超声波破碎细胞,将破碎液离心(8,000rpm,30min),收 集上清液冷冻干燥,获得GDH103的冻干粉。
实施例5:构建质粒pET30a-ADH046-GDH103及生产菌株 pET30a-ADH046-GDH103/BL21(DE3)。
以pET30a-GDH103为模板,设计引物GDH103_HimdIII_F:CCCAAGCTTAAGGAGATATACTTATGTATCCGGATTTAAAAGG和GDH103_XhoI_R:CCGCTCGAGTTAACCGCGTCCTGCCTGGAATG,PCR获得GDH103基因, HIndIII/XhoI双酶切,回收后的片段与HIndIII/XhoI双酶切的质粒 pET30a-ADH046一起通过T4DNA连接酶进行连接,并转化大肠杆菌DH5a完 成重组质粒pET30a-ADH046-GDH103的构建。将重组质粒 pET30a-ADH046-GDH103转入大肠杆菌BL21(DE3)中获得重组菌株 pET30a-ADH046-GDH103/BL21(DE3)。
实施例6:制备ADH046、GDH103混合冻干粉
将pET30a-ADH046-GDH103/BL21(DE3)单菌落接种到4ml液体LB培养 基,37℃振荡培养过夜,取过夜培养基以1%接种量转接于50ml液体LB培养 基,37℃振荡培养至OD600值达到0.4-0.6,加入终浓度1mM IPTG于25℃振 荡培养过夜。结束后离心收集细胞(4,000rpm,10min),用5ml 10mmol/L 磷酸缓冲液(pH7.0)重悬细胞,于冰浴中超声波破碎细胞,将破碎液离心(8,000 rpm,30min),收集上清液冷冻干燥,获得ADH046、GDH103混合冻干粉。
实施例7:制备含ADH046和GDH103的重组大肠杆菌透性细胞
将pET30a-ADH046-GDH103/BL21(DE3)单菌落接种到4ml液体LB培养 基,37℃振荡培养过夜,取过夜培养基以1%接种量转接于50ml液体LB培养 基,37℃振荡培养至OD600值达到0.4-0.6,加入终浓度1mM IPTG于25℃振 荡培养过夜。结束后离心收集细胞(4,000rpm,10min),用10ml 100mmol/L 磷酸缓冲液(pH7.0)重悬细胞,添加1%(50uL)的甲苯用于增加大肠杆菌的 膜透性,重悬细胞可以直接用于生物转化。
实施例8:制备双键移位中间体A
取叔丁醇225毫升于500毫升三颈瓶中,在氮气保护下加入叔丁醇钾29克, 搅拌10-15分钟,使其溶解。氮气保护下将原料甾体雄烯二酮30克加入至三颈 瓶中,反应1.5小时。在氮气氛围下将20克冰醋酸溶于600毫升水中,在20-25℃ 下将三颈瓶中的反应液加入其中,搅拌30分钟,析出固体,抽滤,用水洗涤滤 饼,干燥称重。产品重量:27.3克,收率91%,HPLC纯度97%。母液通过乙 酸乙酯萃取回收约2克原料与产品的混合物,回收率占投料量的7%。
实施例9:制备去氢表雄酮
在50毫升的三颈瓶中加10.5毫升去离子水,分别称取ADH046酶粉72毫 克,辅酶GDH103 36毫克以及NAD+3毫克溶解在上述去离子水中。在搅拌的 同时向反应瓶中依次加入pH=6.5的PBS(0.4mol/L)缓冲溶液7.5毫升,葡萄 糖6.8克,双键移位中间体A 3.6克,最后加入2-甲基四氢呋喃12毫升。控制 反应温度在35℃,继续搅拌,用1mol/L NaOH溶液滴定,使反应的pH保持在 6.4-6.6之间,取样检测。1-2小时后,HPLC检测转化率>99%,加入等体积乙酸 乙酯搅拌30分钟,过滤,滤液分液取有机相,水相用等体积乙酸乙酯萃取2次, 合并有机相并用无水硫酸钠干燥,脱溶得到粗产品。粗品用丙酮-水的混合溶剂 重结晶得到纯品约3.25克,收率90%,HPLC纯度>98%。母液浓缩蒸干回收0.27 克,回收率占投料量的7.5%。
实施例10:制备去氢表雄酮
在50毫升的三颈瓶中加10.5毫升去离子水,分别称取ADH046酶粉200 毫克,辅酶GDH103 100毫克以及NAD+8毫克溶解在上述去离子水中。在搅 拌的同时向反应瓶中依次加入pH=6.5的PBS(0.4mol/L)缓冲溶液7.5毫升,葡 萄糖18克,双键移位中间体A 10.8克,最后加入2-甲基四氢呋喃12毫升。控 制反应温度在35℃,继续搅拌,用1mol/L NaOH溶液滴定,使反应的pH保持 在6.4-6.6之间,取样检测。1-2小时后,HPLC检测转化率>99%,加入等体积 乙酸乙酯搅拌30分钟,过滤,滤液分液取有机相,水相用等体积乙酸乙酯萃取 2次,合并有机相并用无水硫酸钠干燥,脱溶得到粗产品。粗品用丙酮-水的混 合溶剂重结晶得到纯品约9.65克,收率89%,HPLC纯度>98%。母液浓缩蒸干 回收0.6克,回收率占投料量的5.5%。
实施例11:制备去氢表雄酮
在50毫升的三颈瓶中加10.5毫升去离子水,分别称取ADH046酶粉500 毫克,辅酶GDH103 250毫克以及NAD+20毫克溶解在上述去离子水中。在 搅拌的同时向反应瓶中依次加入pH=6.5的PBS(0.4mol/L)缓冲溶液7.5毫升, 葡萄糖45克,双键移位中间体A 25.2克,最后加入2-甲基四氢呋喃12毫升。 控制反应温度在35℃,继续搅拌,用1mol/L NaOH溶液滴定,使反应的pH保 持在6.4-6.6之间,取样检测。1-2小时后,HPLC检测转化率>99%,加入等体 积乙酸乙酯搅拌30分钟,过滤,滤液分液取有机相,水相用等体积乙酸乙酯萃 取2次,合并有机相并用无水硫酸钠干燥,脱溶得到粗产品。粗品用丙酮-水的 混合溶剂重结晶得到纯品约22.67克,收率90%,HPLC纯度>98%。母液浓缩 蒸干回收1.9克,回收率占投料量的7.5%。
实施例12:ADH046、GDH103混合冻干粉制备去氢表雄酮
在50毫升的三颈瓶中加10.5毫升去离子水,分别称取ADH046、GDH103 混合冻干粉72毫克和辅酶NAD+3毫克溶解在上述去离子水中。在搅拌的同时 向反应瓶中依次加入pH=6.5的PBS(0.4mol/L)缓冲溶液7.5毫升,葡萄糖6.8 克,双键移位中间体A 3.6克,最后加入2-甲基四氢呋喃12毫升。控制反应温 度在35℃,继续搅拌,用1mol/L NaOH溶液滴定,使反应的pH保持在6.4-6.6 之间,取样检测。1-2小时后,HPLC检测转化率>99%,加入等体积乙酸乙酯搅 拌30分钟,过滤,滤液分液取有机相,水相用等体积乙酸乙酯萃取2次,合并 有机相并用无水硫酸钠干燥,脱溶得到粗产品。粗品用丙酮-水的混合溶剂重结 晶得到纯品约3.17克,收率88%,HPLC纯度>98%。母液浓缩蒸干回收0.8克, 回收率占投料量的7.4%。
实施例13:ADH046、GDH103混合冻干粉制备去氢表雄酮
在50毫升的三颈瓶中加10.5毫升去离子水,分别称取ADH046、GDH103 混合冻干粉500毫克和辅酶NAD+20毫克溶解在上述去离子水中。在搅拌的同 时向反应瓶中依次加入pH=6.5的PBS(0.4mol/L)缓冲溶液7.5毫升,葡萄糖 45克,双键移位中间体A 25.2克,最后加入2-甲基四氢呋喃12毫升。控制反 应温度在35℃,继续搅拌,用1mol/L NaOH溶液滴定,使反应的pH保持在6.4-6.6 之间,取样检测。1-2小时后,HPLC检测转化率>99%,加入等体积乙酸乙酯搅 拌30分钟,过滤,滤液分液取有机相,水相用等体积乙酸乙酯萃取2次,合并 有机相并用无水硫酸钠干燥,脱溶得到粗产品。粗品用丙酮-水的混合溶剂重结 晶得到纯品约22.7克,收率90%,HPLC纯度>98%。母液浓缩蒸干回收1.8克, 回收率占投料量的7.1%。
实施例14:ADH046和GDH103的重组大肠杆菌透性细胞直接用于制备去 氢表雄酮
取上述实施例7中的静态细胞重悬液30mL,在搅拌的同时向细胞液加入葡 萄糖6.8克,双键移位中间体A 3.6克。控制反应温度在35℃,继续搅拌,用1mol/L NaOH溶液滴定,使反应的pH保持在6.4-6.6之间,取样检测。1-2小时后,HPLC 检测转化率>99%,加入等体积乙酸乙酯搅拌30分钟,过滤,滤液分液-取有机 相,水相用等体积乙酸乙酯萃取2次,合并有机相并用无水硫酸钠干燥,脱溶 得到粗产品。粗品用丙酮-水的混合溶剂重结晶得到纯品约3.35克,收率93%, HPLC纯度>98%。母液浓缩蒸干回收0.18克,回收率占投料量的5%。

Claims (8)

1.制备式(Ⅰ)的去氢表雄酮的方法,
其包括使用序列1所示核苷酸序列编码的的酮还原酶将式(Ⅱ)的3-位酮羰基选择性不对称地还原,
2.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,加入NAD+作为辅酶。
3.如权利要求2所述的制备方法,其特征在于,加入葡萄糖脱氢酶作为辅酶来循环使用NAD+
4.如权利要求3所述的制备方法,其特征在于,所述葡萄糖脱氢酶来源于枯草芽孢杆菌。
5.如权利要求1-4任一项所述的制备方法,其特征在于,所述酶是以酶粉的形式加入。
6.如权利要求1、3-4任一项所述的制备方法,其特征在于,所述酶是以培养菌株的透性细胞形式加入,所述透性细胞是指具有增加的膜透性的细胞。
7.如权利要求6所述的制备方法,其特征在于,所述培养菌株是重组大肠杆菌。
8.如权利要求1-4、7任一项所述的制备方法,其特征在于,酶促还原反应的底物浓度为50-800克/升。
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