CN105671058B - 编码甘薯erf转录因子的基因及应用 - Google Patents

编码甘薯erf转录因子的基因及应用 Download PDF

Info

Publication number
CN105671058B
CN105671058B CN201610174158.XA CN201610174158A CN105671058B CN 105671058 B CN105671058 B CN 105671058B CN 201610174158 A CN201610174158 A CN 201610174158A CN 105671058 B CN105671058 B CN 105671058B
Authority
CN
China
Prior art keywords
gene
plant
sweet potato
arabidopsis
seq
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
CN201610174158.XA
Other languages
English (en)
Other versions
CN105671058A (zh
Inventor
边小峰
马佩勇
贾赵东
谢芝
谢一芝
郭小丁
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Jiangsu Academy of Agricultural Sciences
Original Assignee
Jiangsu Academy of Agricultural Sciences
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jiangsu Academy of Agricultural Sciences filed Critical Jiangsu Academy of Agricultural Sciences
Priority to CN201610174158.XA priority Critical patent/CN105671058B/zh
Publication of CN105671058A publication Critical patent/CN105671058A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN105671058B publication Critical patent/CN105671058B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/415—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from plants
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8241—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
    • C12N15/8261—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8241—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
    • C12N15/8261—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
    • C12N15/8271—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for stress resistance, e.g. heavy metal resistance
    • C12N15/8273—Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for stress resistance, e.g. heavy metal resistance for drought, cold, salt resistance

Abstract

本发明公开了编码甘薯ERF转录因子的基因，是SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列。该基因编码的蛋白质是SEQ ID No.2所示的氨基酸序列。本发明从甘薯中分离出编码ERF转录因子的完整cDNA，连接到植物表达载体上，利用农杆菌侵染法转化植物，获得转基因植株，转基因植株在根系发育变强，生物量变大，并且提高了转基因植物的耐旱性，此基因还可以应用于植物遗传改良。

Description

编码甘薯ERF转录因子的基因及应用
技术领域
本发明属于基因工程领域，具体涉及一种编码甘薯ERF转录因子的基因，该基因编码的蛋白质以及含有该基因的重组载体及基因的应用。
背景技术
在植物中许多基因都受逆境胁迫诱导表达，根据作用方式的不同，主要分为两大类：调节基因和功能基因。调节基因主要是在信号转导和基因表达中起调节作用的转录因子；功能基因主要编码一些调节渗透势、清除自由基和活性氧的酶等。一般认为，植物对干旱和高盐等逆境的抗性受多基因控制，因此，利用基因工程技术导入单个功能基因虽然能增加植物的某种单一抗性，但并不能从整体上综合提高植物的抗逆性。转录因子作为功能基因表达的调节开关，可以对不同的基因进行精确的调节，在植物逆境信号传递过程中发挥着关键的作用，所以通过增强某个转录因子的作用，可促使多个与抗逆有关的功能基因表达,这是使植物抗逆性状获得综合改良的一条非常有效的途径。
植物AP2/ERF是一个庞大的转录因子基因家族，含有由60～70个氨基酸组成的AP2/ERF结构域而得名，存在于所有的植物中。AP2/ERF转录因子参与多种生物学过程，包括植物生长、花发育、果实发育、种子发育、损伤、病菌防御、高盐、干旱等环境胁迫响应等。AP2/ERF类转录因子参与水杨酸、茉莉酸、乙烯、脱落酸等多种信号转导途径，而且是逆境信号交叉途径中的连接因子。根据含AP2/ERF结构域的数目，AP2/ERF转录因子含5个亚组，包括AP2(APETALA 2)、RAV(related to ABI3/VP1)、DREB(dehydration-responsive elementbinding protein)、ERF和其他。AP2家族含2个AP2/EREBP(ethylene-responsive elementbinding protein)结构域，ERF和DREB家族仅含1个AP2/EREBP结构域，而RAV家族除一个AP2/EREBP结构域外还含1个B3结构域。ERF家族是AP2/ERF转录因子大家族的一个主要亚家族，在调节植物生物和非生物逆境反应中发挥重要作用。在拟南芥和水稻基因组中分别含有122和139个ERF转录因子家族成员，根据基因序列系统树和蛋白保守结构域等特征，拟南芥和水稻ERF基因分别组成12和15个不同的组。
甘薯不仅是重要的粮食作物，而且还是重要的经济作物和能源作物。甘薯广泛种植在世界上的100多个国家，我国是世界上的最大生产国，甘薯生产约占世界甘薯的80％。与其他粮食作物相比，甘薯相对较为耐旱，但品种间差异较大，世界上相当比例的甘薯种植在干旱的环境下，而世界干旱、半干旱地区已占陆地面积的三分之一以上，干旱对植物的影响在诸多自然逆境因素中居首位。我国现有边际性土地资源(非耕地)约20亿亩，主要是干旱、盐碱滩涂地。在我国农业用水紧缺、耕地面积紧张的形势下，在这些地区开发种植耐旱甘薯，既能合理的利用土地资源，又能部分缓解粮食和能源紧缺问题。通过定向改良甘薯的抗逆境能力，提高甘薯在边际性土地区的生长适应性，对确保我国的粮食安全具有重要的战略意义。因此在甘薯中克隆新的ERF类转录因子基因，研究其基本的生物学特性和功能，可为整个植物抗逆基因调控网络及胁迫应答反应机理提供理论基础，并为改良作物抗逆性提供一定的物质基础。
发明内容
本发明的目的之一在于提供一种编码甘薯ERF转录因子的基因，该基因命名为IbRAP2.4。
本发明的第二个目的是提供一种该基因编码的蛋白质。
本发明的第三个目的是提供一种含有该基因的表达载体。
本发明的第四个目的是提供一种含有该表达载体的宿主细胞。
本发明的最后一个目的在于提供该基因的用途。
本发明的技术方案概述如下：
一种编码甘薯ERF转录因子的IbRAP2.4基因，它是SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列。所述的核苷酸序列由885个碱基组成。
所述IbRAP2.4基因具有调控植物根系发育，增强生物量以及抗旱性的功能。
上述基因编码的蛋白质，它是SEQ ID No.2所示的氨基酸序列。所述的序列由294个氨基酸残基组成。
一种含有上述基因的表达载体pCAMBIA1305-IbRAP2.4，它含有SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列。
一种含有上述表达载体农杆菌宿主细胞EHA105:pCAMBIA1305-2×35s-IbRAP2.4的构建。
上述基因在转化植物获得转基因植株中的应用，尤其是在制备转基因拟南芥中的应用。本发明的优点：
本发明从甘薯中分离出编码ERF转录因子基因的完整cDNA，连接到植物表达载体上，利用农杆菌侵染法转化植物，获得转基因植株，对转基因植株进行了抗逆性分析，结果表明IbRAP2.4基因能够增强植物的根系发育和生物量，并且响应逆境信号，正向调控植物的耐旱能力。此基因可以应用于植物遗传改良。
附图说明
图1.IbRAP2.4氨基酸序列的系统进化树分析结果
图2.IbRAP2.4在甘薯不同组织中的表达
图3.干旱胁迫诱导表达后IbRAP2.4的表达
图4.pCAMBIA1305-2×35s-IbRAP2.4载体示意图
图5.过表达IbRAP2.4基因对拟南芥植株叶片大写、生物量的影响
图6.过表达IbRAP2.4基因对拟南芥根发育的影响
图7.未转化的野生型拟南芥株系和转IbRAP2.4基因株系的根系比较
图8.未转化的野生型拟南芥株系和转IbRAP2.4基因株系的抗旱性比较
具体实施方式
下面结合具体实施例来进一步描述本发明，本发明的优点和特点将会随着描述而更为清楚。但下述实施例中所涉及的具体实验方法如无特殊说明，均为常规方法或按照制造厂商说明书建议的条件实施。
实施例1
甘薯中ERF转录因子IbRAP2.4基因序列获得，具体如下：
利用OMEGA RNA试剂盒，从100mg的新鲜的甘薯叶片中提取总RNA，利用反转录试剂盒(Bioteke)合成cDNA。
具体反应体系如下：
在PCR仪上按以下条件进行反转录反应：1、50℃，45min；2、70℃，10min；之后冰上冷却。
将提取的总RNA送华大基因(Beijing Genomic Institute,BGI)，通过高通量测序获得甘薯转录组数据库，并通过De novo拼接获得甘薯Unigene数据库，其中Unigene23081与NR数据库比对后发现该基因可能参与逆境响应。将Unigene23081通过OFR FINDER(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/gorf/)在线软件预测基因完成的ORF，并利用Primer Premier 5设计扩增完整ORF引物：
IbRAP2.4(F):5'ATGACCCGCCCGAACCT 3'
IbRAP2.4(R):5'CTTTGATCCCTTTCTGCAAATC 3'
利用TAKARA公司Primerstar GXL DNA聚合酶进行扩增，具体步骤如下：
反应条件如下：94℃，4min；98℃，10Sec；55℃，15Sec；68℃，l.5min；72℃，10min；30个循环。使用OMEGA DNA纯化试剂盒将PCR产物纯化，纯化后的PCR产物与pEASY-Blunt载体连接(本过程使用TransGEN的pEASY-Blunt Vector Cloning Kit试剂盒)，反应体系如下:IbRAP2.4基因的cDNA片段4ul，pEASY-Blunt载体1μL。反应条件:20-30℃，30min。连接产物转化E-Coli.DH5α感受态，涂布在含有40ul 25mg/ml的X-Gal、16ul 50mg/ml的IPTG、100mg/mL Amp的LB琼脂平板培养基上培养，形成单菌落。挑选白色菌落，使用菌落PCR法确认pEASY-Blunt载体中插入片段的长度大小，与预期一致。送南京金斯瑞生物科技公司测序获得基因序列SEQ ID NO.1。
实施例2
IbRAP2.4蛋白序列同源分析，具体如下：
测序获得cDNA全长907bp，ORF为684bp，编码227个氨基酸SEQ ID NO.2，将翻译获得蛋白序列与NCBI蛋白数据进行比对(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)，获得了与IbRAP2.4蛋白序列相似的植物种属同源基因。在多重比较分析的基础上，建立了各同源植物种属基因的系统进化树，详见图1。包括烟草(Nicotiana tomentosiformis)，土豆(Solanum tuberosum)，蕃茄(Solanum lycopersicum)，水稻(Oryza sativa)，葡萄(Vitisvinifera)，大豆(Glycine max)咖啡(Coffea arabica)，拟南芥(Arabidopsis thaliana)。利用MEGA 5.1软件进行系统进化树的构建，得到IbRAP2.4亲缘关系与拟南芥和葡萄亲缘关系较近。
实施例3
IbRAP2.4在甘薯中的不同组织中经过干旱胁迫后的表达(如图2、图3所示)，具体如下：
剪取三个月时期的宁紫1号的不同组织样品，叶片(L)、茎(S)、柴根(FR)、粗色素根(PR)和储藏根(SR)，用于分析IbRAP2.4的组成性表达。剪取宁紫1号25cm的苗，并保留3张完全展开叶，放入1/2Hogland营养液中25℃培养15天，用20％PEG8000处理3h、6h、12h、24h、48h，取3个重复，液氮速冻后存于-80℃冰箱中。提取RNA并反转成cDNA，方法如实施例1所述。采用是TOYOBO公司的荧光定量试剂盒。反应在定量PCR仪(Applied Biosystemsstepone plus)上进行，按照相对定量的方法检测基因的表达量，反应程序按照TOYOBO提供的操作手册进行，甘薯Tubulin基因作为反应中的内参,Tubulin引物序列：
F,CAACTACCAGCCACCAACTGT,R，CAAGATCCTCACGAGCTTCAC；IbRAP2.4定量引物：
F，CGTCACCGTCGCCTTCTTTGT，R，GCGTGGAGCCCATCATTTGTT；
结果发现该基因在粗色素根中表达最高(图2)，并且干旱胁迫后该基因的表达受抑制(图3)。
实施例4
双元植物表达载体pCAMBIA1305-2×35s-IbRAP2.4的构建，具体如下：
pCAMBIA1305-2×35s-IbRAP2.4载体示意图如图4所示，首先以pEASY-Blunt-IbRAP2.4质粒为模板，采用引物
IbRAP2.4-PstI(F):5'aaCTGCAG ATGGCTGCCACTATTGAT3'
IbRAP2.4-BamHI(R):5'ccGGATCCTTATGACCCGCCCGAACCTG 3'
在IbRAP2.4前后分别引入酶切位点PstI和BamHI，其反应体系和条件如实施例1中所述。然后PCR产物和pCAMBIA1305空载体质粒分别用BamHI和PstI双酶切，将二者的酶切产物连接，连接体系如下：
连接产物转化E-Coli.DH5α，涂布于含100mg/ml浓度卡纳霉素抗性的LB平板上。37℃培养，12h后挑取单菌落进行菌落PCR验证，将菌落PCR验证阳性的菌，摇菌提取质粒，酶切鉴定得到目的条带，最后送华大基因测序公司测序，结果表明载体pCAMBIA1305-2×35s-IbRAP2.4构建正确。
实施例5
用于植物转基因的农杆菌菌种EHA105:pCAMBIA1305-2×35s-IbRAP2.4的构建，具体如下：
本发明使用的农杆菌菌株为EHA105。采用的是液氮冻融法将构建好的表达载体转入农杆菌。具体过程为：1)冰浴融化EHA105感受态细胞，加入至少100ng回收纯化的表达载体质粒，轻轻混匀，冰浴20～30min；2)液氮速冻5min，37℃热击5min，迅速置于冰上1～2min；3)加入800μL无抗生素的LB培养基，28℃，200rpm复苏3.5h；4)4000rpm离心3min，吸掉培养基；5)混匀剩余菌液，涂抹于添加100mg/ml卡纳霉素和100mg/ml利福平的固体LB培基上；6)28℃倒置培养30～48h；7)PCR检测阳性克隆，4℃保存备用。
实施例6
IbRAP2.4转化Col野生型拟南芥，具体如下：
将实施例5中阳性克隆接种到50mlYEP(含100μg/ml Rif、100μg/ml Kan)液体培养基中，28℃180rpm继续培养至OD600＝0.8。4000rpm离心10min，弃培养基，收集菌体。用拟南芥渗入缓冲液将菌体稀释OD600＝0.6，制备成拟南芥侵染液。当拟南芥抽苔4-5cm时即可准备侵染，侵染的前3d去除其顶生花序，以利用腋生花序的生长。待长出腋生花序后，其下部的花开始授粉时即可进行转化。转化前大量浇水，并将已授粉的花蕾及荚果摘除。共配制50ml拟南芥侵染液(5％蔗糖，0.05％SilwetL-77)，倒入培养皿，将拟南芥的花序浸入其中30s，注意莲座叶不要沾染到菌液。取出植株，横放在托盘中，暗处理24h。之后直立放置方盘正常光照培养。待果荚成熟时收获T0代种子。
将T0代种子播种前在4℃冰箱春化3d，0.5％NaClO表面消毒后，播种于1/2MS固体培养基上(大量元素、微量元素减半，含20mg/L潮霉素)培养。7～14d后挑选转化体，具有潮霉素抗性的转化植株体能在含有潮霉素培养基上生长，根明显伸长，而非转化体渐渐黄化死亡。待植株长出4-5片叶子时，提取叶片DNA进行PCR鉴定，引物及PCR程序同实施例1中的IbRAP2.4基因中间片断的克隆。1％琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物。过PCR扩增能够得到目的片断的为拟南芥阳性转化体，将其继续培养待果荚成熟收获T1代种子。将PCR鉴定为阳性的植株所收获的T1代种子继续播种，同样经过潮霉素抗性筛选，统计其性状分离比。经卡方检验符合孟德尔遗传定律中3:1分离比。将部分抗性苗移植入土壤中，收获T2代纯合的转基因种子。
(1)对转IbRAP2.4基因拟南芥的表型进行鉴定
取IbRAP2.4过表达拟南芥株系(OV-1,OV-2)和未转化的野生型(WT)植株点播于1/2MS培养基上培养一周，将苗移植到含有蛭石和营养土2:1(v/v)混合均匀后装至大小一致的塑料培养钵中，一个月后观察表型。结果表明，在拟南芥中过表达IbRAP2.4可以调控植株的叶片大小、生物量(图5)以及根的发育(图6)。
(2)对转IbRAP2.4基因拟南芥的根系发育进行鉴定
取IbRAP2.4过表达拟南芥株系(OV-1,OV-2)和未转化的野生型(WT)植株点播于1/2MS培养基上生长，分别于2周，3周时观察表型(图7)。转基因系的根系数量明显多于野生型。因此IbRAP2.4可以正向调控植株的根系发育。
(3)对转IbRAP2.4基因拟南芥抗旱性进行鉴定
取IbRAP2.4过表达拟南芥株系(OV-1,OV-2)和未转化的野生型(WT)植株点播于1/2MS培养基上培养一周，将苗移植到含有蛭石和营养土2:1(v/v)混合均匀后装至大小一致的塑料培养钵中并称重保持各钵内培养土重量一致，钵面水平并面积大小一致。4周后停止浇水进行干旱胁迫，一周以后观察表型，随后复水一天观察表型(图8)。从图中可以看出，在拟南芥中过表达IbRAP2.4可以正向调控拟南芥对干旱的响应。

Claims (6)

1.一种编码甘薯ERF转录因子的基因，其特征在于，所述基因是SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列。
2.权利要求1所述基因编码的蛋白质，其特征在于，所述蛋白质是SEQ ID No.2所示的氨基酸序列。
3.一种含有权利要求1所述基因的表达载体pCAMBIA1305-2×35s-IbRAP2.4。
4.一种含有权利要求3所述表达载体的农杆菌宿主细胞EHA105:pCAMBIA1305-2×35s-IbRAP2.4。
5.权利要求3所述的表达载体在转化植物获得转基因植株中的应用。
6.根据权利要求5所述的应用，其特征在于，所述的植物为拟南芥。
CN201610174158.XA 2016-03-24 2016-03-24 编码甘薯erf转录因子的基因及应用 Expired - Fee Related CN105671058B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610174158.XA CN105671058B (zh) 2016-03-24 2016-03-24 编码甘薯erf转录因子的基因及应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201610174158.XA CN105671058B (zh) 2016-03-24 2016-03-24 编码甘薯erf转录因子的基因及应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN105671058A CN105671058A (zh) 2016-06-15
CN105671058B true CN105671058B (zh) 2018-09-21

Family

ID=56215378

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201610174158.XA Expired - Fee Related CN105671058B (zh) 2016-03-24 2016-03-24 编码甘薯erf转录因子的基因及应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN105671058B (zh)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106222182B (zh) * 2016-08-11 2018-11-02 江苏省农业科学院 编码甘薯ERF转录因子的IbERF5基因及应用
CN112080508B (zh) * 2020-09-16 2021-09-14 山东省农业科学院作物研究所 甘薯根系发育基因IbLRR1及其应用
CN114395566B (zh) * 2022-03-28 2022-05-24 江苏省农业科学院 甘薯ERF转录因子IbERF4在促进植物绿原酸类物质合成中的用途

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104293802A (zh) * 2013-09-23 2015-01-21 中国农业科学院生物技术研究所 百脉根erf类转录因子、其编码基因及表达载体和应用
CN104862320A (zh) * 2015-04-28 2015-08-26 江苏省农业科学院 一种编码甘薯ERF转录因子的IbERF4基因及应用
CN105175522A (zh) * 2015-10-26 2015-12-23 深圳市铁汉生态环境股份有限公司 百脉根ap2/erf转录因子及其编码基因和应用
CN105254726A (zh) * 2015-10-26 2016-01-20 中国农业科学院生物技术研究所 与植物抗逆相关的erf类转录因子及其编码基因和应用

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE112010003738T5 (de) * 2009-10-22 2013-08-14 Basf Plant Science Company Gmbh Pflanzen mit gesteigerten Ertragsmerkmalen und Verfahren zu deren Herstellung

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104293802A (zh) * 2013-09-23 2015-01-21 中国农业科学院生物技术研究所 百脉根erf类转录因子、其编码基因及表达载体和应用
CN104862320A (zh) * 2015-04-28 2015-08-26 江苏省农业科学院 一种编码甘薯ERF转录因子的IbERF4基因及应用
CN105175522A (zh) * 2015-10-26 2015-12-23 深圳市铁汉生态环境股份有限公司 百脉根ap2/erf转录因子及其编码基因和应用
CN105254726A (zh) * 2015-10-26 2016-01-20 中国农业科学院生物技术研究所 与植物抗逆相关的erf类转录因子及其编码基因和应用

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
甘薯抗逆相关基因IbERF3的克隆与表达分析;边小峰等;《华北农学报》;20150115;第29卷(第6期);第16-20页 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN105671058A (zh) 2016-06-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN109456982B (zh) 水稻OsMYB6基因及其编码蛋白在抗旱和抗盐中的应用
CN101743314A (zh) 具有增加的胁迫耐受性和产量的转基因植物
CN106868021B (zh) 控制水稻种子大小基因OsNAC1及其应用
CN109337915A (zh) 芝麻抗旱与耐盐基因SiMYB75及其编码的蛋白与应用
CN104862320B (zh) 一种编码甘薯ERF转录因子的IbERF4基因及应用
CN106244607B (zh) 棉花细胞色素p450 cyp94c1基因在抗黄萎病中的应用
CN107746846A (zh) 编码甘薯bZIP转录因子的IbABF4基因及应用
CN106222182B (zh) 编码甘薯ERF转录因子的IbERF5基因及应用
CN110643618A (zh) 小桐子MYB类转录因子JcMYB16基因及其在提高植物抗旱性中的应用
CN102732526B (zh) OsSRO1c基因在控制水稻抗旱性中的应用
CN104829700A (zh) 一种玉米CCCH型锌指蛋白及其编码基因ZmC3H54与应用
CN108570099A (zh) OsGLP2-1蛋白及其编码基因在调控种子休眠中的应用
CN105671058B (zh) 编码甘薯erf转录因子的基因及应用
CN105294847A (zh) 植物耐逆性相关蛋白及其编码基因与应用
CN113621625B (zh) 芝麻SiERF103基因在增强植物抗性中的应用
CN101885764B (zh) 植物耐逆性相关蛋白MtMYB在培育耐逆植物中的应用
Li et al. Analysis of physiological characteristics of abscisic acid sensitivity and salt resistance in Arabidopsis ANAC mutants (ANAC019, ANAC072 and ANAC055)
CN103602688B (zh) 菊芋Na+/H+逆向转运蛋白基因HtNHX1和HtNHX2及其应用
CN109097367B (zh) 一种橡胶树HbWRKY82基因及其应用
CN102277360A (zh) 一种对樱della蛋白及其编码基因与应用
CN108841837A (zh) 拟南芥剪接因子SR45a剪接体的编码基因在负调控植物盐胁迫应答中的应用
CN107904238A (zh) 厚藤高盐、干旱诱导型启动子IpLEA‑PRO及其应用
CN108948162B (zh) 一种花生逆境胁迫基因AhDOG1L及其应用
CN102643856A (zh) 拟南芥At-ACA8基因在增强植物抗逆性和调控植物生长发育中的应用
CN106892973A (zh) 植物抗逆性相关蛋白GhMYB4及编码基因与应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20180921

CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee