CN105558350A - 一种含有中草药复合粗多糖的饲料及其制备方法 - Google Patents

Abstract

本发明涉及动物饲料，具体说是一种含有中草药复合粗多糖的饲料及其制备方法，制备方法是按质量比例将多糖、寡糖类干提取物，黄酮、甙类、苷类干提取物和粗多糖膏剂混合均匀，然后分盘置于工业微波炉内，在≤50℃的温度、低于-0.09个大气压的条件下进行干燥，待其水分低于5%时取出，再粉碎，并检验合格后进行包装。制备方法将挥发油蒸发，并采用醇沉净化、微波真空低温干燥工艺，使得制备的产品中不含挥发油、蛋白、淀粉等无效甚至有毒副作用的成分，功能性多糖的浓度较高，实际应用时用量减少，从而降低成本。

Description

一种含有中草药复合粗多糖的饲料及其制备方法

技术领域

本发明涉及动物饲料及其加工方法，具体说是一种含有中草药复合粗多糖的饲料及其制备方法。

背景技术

我国的中医和中兽医技术源远流长、博大精深。随着科技的发展，她也随着现代生物化学技术、工业加工技术、医药技术的进步而不断与时共进，广泛造福着人类和大自然。药膳、食疗逐步成为了人们现代人实现健康幸福的生活方式之一。同时，动物源性食品和制品的安全、高效、可持续发展、丰富多彩日益成为人类紧迫的课题。

现代畜牧业是以集约化、工业化、自动化为标志的。它在快速丰富人类餐桌的同时，也进入了为了使动物高效率生产而形成的：集约化工业化高密度饲养→栏舍内外环境恶化→动物应激→动物抗病能力下降→饲养动物罹患疾病导致生产效率下降和死亡→大量添加化学与发酵类药物饲料添加剂→添加剂残留和外排→污染大气、水体、土壤→环境更加恶化的恶性循环。这不但是畜牧业生产的一个巨大威胁，同时也是人类食品安全和居住环境的一个巨大威胁。

中草药来自天然，既含有丰富的营养物质，又具有安神镇静、健胃促消化、理气活血、养精补益、驱虫保健和防病治病等药理作用；中草药免疫活性物质能增强机体免疫机能，提高动物抗应激、抗疾病能力，改善动物生产性能，且具有无残留，不易产生耐药性等优点，是近年来国际动物营养学研究的一大热点。中草药可解决长期困扰畜牧业发展的抗生素和添加剂残留问题，提高生产效率，减少畜牧业对环境的污染，发展绿色畜牧业，满足人类的食品安全需求。

全球无数的科学工作者都在寻求跳出此循环的秘径。中国的中医药正是我们探索的“宝匣”之一。中草药具有如下作用：1、抗病害。如大黄、黄连、黄柏、大青叶等能够抑菌；板蓝根、野菊、马齿苋等有抗病毒的能力；青蒿、苦楝皮、马鞭草、白头翁、等能杀虫。2、增强机体免疫力。动物具有相对完善的免疫功能，部分中草药中内含成分可以对其起调节、增强作用，抵抗应激，增强机体抗病能力。如牛膝、人参、党参、玄参、甘草、当归、杜仲等。3、维护肠道健康，提高饲料转化效率。中草药中的多糖是动物肠道有益菌的重要能量来源，而有害菌不能利用。通过向动物提供中草药多糖，扶持动物肠道有益菌生长繁殖同时抑制有害菌生长繁殖，使动物肠道的微生态平衡向有益菌倾斜，增强肠道消化、吸收功能。4、中草药本身含有一定的营养物质，如粗蛋白、粗脂肪、维生素等。5、某些中草药还有诱食、消食健胃的作用。

中草药还具有如下特点：1、资源广、成本低。我国地域辽阔，中草药资源丰富，易种易收，且使用简便。我国目前有大量中药制药企业生产过程中残留的中草药粗多糖没有被充分开发利用而是外排，能把它纯化利用起来既达到畜牧业的生产目的又减轻了制药企业的环保压力。2、动物体内无药物残留、无公害。3、中草药是天然物质，保持了各种成分的自然性和生物活性，其成分易被吸收利用，不能被吸收的也能顺利排出体外，在体外被细菌等快速分解，不会污染环境，而一般的化学药物成分会积累在动物体内或长期残留于环境中。4、毒副作用小或无，动物体不产生抗药性。它有“和平介入、系统治疗”的特点。有毒的中草药经过适当的炮制加工后，毒性会降低或消失；通过组方配伍，利用中药之间的相互作用，提高了其防病治病的功效，减弱或减免了毒副作用。至今医学研究从未发现中草药有抗药性的问题。中草药粗多糖正是利用目标中草药经优化成合理组方经现代工艺浸提、纯化、干燥而成的具有调理饲养动物内源免疫能力、主动灭杀或钝化侵入饲养动物体内的病原性微生物及有毒有害物质、提高动物采食欲望等目标功能的诸中草药之精华。

目前，现有技术方案有以下几种：

1、依据“医书”要求，将多种目标中草药按处方要求采集、混合，按传统中草药“煎煮”办法，多次煎煮成混合物水剂，直接在动物饲料中和匀供饲养动物采食或混入动物饮水系统供饲养动物饮用。

2、在方案1的基础上(组方不一定相同)将煎煮好的混合物水剂浓缩成“药物浸膏”或者将“药物浸膏”直接加热干燥、粉碎成粉末，制成成品，用来混入饲料或饮水饲喂饲养动物。

3、依据“医书”要求，将多种目标中草药按处方要求采集、混合，采用机械粉碎成粉末，制成成品，用来混入饲料或饮水饲喂饲养动物。

4、将单一中草药用现代生物化学方法提取单一有效成分，并浓缩成相应制剂。

上述方案1、2、3均没有对中草药的相应组分进行浓缩，导致制剂中目标成分浓度低、组分复杂、有效成分利用率低下。把它利用在畜牧业生产上，要达到药用目的必须大量添加，必然导致：第一，添加量大，压缩了动物日粮其他营养物质组分浓度(压缩其余营养素如蛋白、能量等的比例空间)，影响日粮的性能发挥，对动物生产造成影响；第二，其他组分的副作用不明，如对适口性的影响、对母畜繁殖性能的影响等等，对使用的范围造成局限；第三，在畜牧生产中这三种方案都无法适应自动化的生产系统(水剂、膏剂不能均匀地混入饲料中安全长期饲喂生产线上动物，它可能造成饲料霉变、管道堵塞等等系列问题)，只能人工添加饲喂；第四，添加量大造成用药成本升高；方案2如果采用直接加热的方法还容易破坏浸膏中的有益活性物质，降低其饲喂效果；方案4的主要缺点是加工成本过高，只适应制作治疗药物对症治疗。以上4种方案均没有对原料药材中含有的对人类疾病具有治疗价值的因子进行提取，造成资源浪费。

发明内容

针对上述技术问题，本发明提供一种成本较低、无毒副作用的含有中草药复合粗多糖的饲料。

本发明解决上述技术问题所采用的技术方案为：一种含有中草药复合粗多糖的饲料，其由以下质量组分组成：复合多糖8.0％～10.0％、寡糖33.0％～35.0％、黄酮7.0％～9.0％、绿原酸1.0％～2.0％、甙类物质0.5％～1.0％、苷类物质0.2％～0.5％、小肽和游离氨基酸38％～45％、矿物质3％～5％。由于复合多糖中所含的不同种类的活性多糖有协同增效作用，对免疫系统、消化系统各方面的增强和调节作用均大大优于单一活性多糖，主要包括免疫多糖、诱食多糖。寡糖是肠道有益微生物的主要能量来源，有害菌却不能利用它，它可以促进肠道有益微生物健壮繁殖和生长、抑制有害菌的繁殖与生长，为动物肠道建立良性的微生态平衡，减少动物罹患疾病的机会以及提高动物对饲料的消化利用率。黄酮历史上曾经被称谓维生素P，是一种强抗氧化剂，它能有效清除体内的氧自由基，可以有效阻止细胞的退化、衰老及癌细胞的产生，同时可以改善血液循环、降低胆固醇含量，还可以促进伤口愈合等等。绿原酸具有广泛的生物活性，现代科学对绿原酸生物活性的研究已深入到食品、保健、医药和日用化工等多个领域。绿原酸是一种重要的生物活性物质，具有抗菌、抗病毒、增高白血球、保肝利胆、抗肿瘤、降血压、降血脂、清除自由基和兴奋中枢神经系统等作用。苷类物质如糖苷是一种低热值、高甜度的天然甜味剂，它具有良好的诱食效果，也可以在动物体内转化为糖类供能。甙类物质如人参皂甙具强壮、大补元气作用，并对某些病理状态的机体起双向调节作用或称适应原样作用。不少皂甙还有降胆固醇、抗炎、抑菌、免疫调节、兴奋或抑制中枢神经、抑制胃液分泌，灭杀软体动物等作用。有些甾体皂甙也有抗肿瘤、抗真菌、抑菌及降胆固醇作用，大量用作合成甾体激素的原料。小肽和游离氨基酸是蛋白质水解后的主要成分，也是动物对蛋白质吸收、代谢的主要形式，它是动物生长发育需要的基本营养素，其中部分小肽还具有注入诱食、杀菌等特定功能。矿物质也是动物生长发育需求的基本营养素，它参与了绝大部分动物生理生化反应和营养代谢的过程。

作为优选，本发明产品的饲料含水量小于5％。由于功能性多糖在低水分条件下，遇高温极易变性，含水量小于5％会提高它的的使用效果。

本发明还提供一种含有中草药复合粗多糖的饲料的制备方法，其是按质量比将1份多糖、寡糖类提取物膏剂，1份黄酮、甙类、苷类提取物膏剂和1份中草药粗多糖膏剂混合均匀，然后分盘置于工业微波炉内，在≤50℃的温度、低于-0.09个大气压的条件下进行干燥，待其水分低于5％时取出，再粉碎，并检验合格后进行包装。

作为优选，所述多糖、寡糖类提取物和黄酮、甙类、苷类提取物从牛膝、杜仲叶、玄参、党参、白术、黄柏、马齿苋共7味中草药中提取，所述中草药粗多糖膏剂从中成药制药企业废弃的中草药粗多糖中获取；该粗多糖可从中成药制药企业采用甘草：金银花：板蓝根＝1:1:1煎煮定向提取主成分后醇降的废弃中草药中提取。

作为优选，所述黄酮、甙类、苷类提取物按以下方法步骤获得：

(1)将上述7味中草药去杂后铡段，烘干，混合均匀后粉碎，再将粉碎后的混合物置于蒸馏锅内，通入蒸汽蒸馏，收集蒸馏出来的挥发油，并将蒸馏锅内的固形物转移至醇提釜内；挥发油留作其他医药、化妆品提纯用途，不在此说明。

(2)向醇提釜内注入95wt％的乙醇，反复浸提，再进行固液分离；分离后的固形物转入水提釜；分离后的液体进行乙醇蒸馏回收后获得膏状黄酮、甙类、苷类醇提物。

作为优选，上述7味中草药由牛膝4份、杜仲叶3份、玄参0.5份、党参0.5份、白术0.5份、黄柏0.5份、马齿苋1份组成，该7味中草药混合均匀后粉碎成10目颗粒，再将混合物置于所述蒸馏锅内，然后在100～130℃的蒸汽下蒸馏3～4h。

作为优选，步骤(2)中，注入95wt％的乙醇后反复浸提5次，再采用0.1mm的滤网进行固液分离。

作为优选，所述多糖、寡糖类提取物膏剂按以下方法获得：所述固形物转入水提釜后，向水提釜内注入纯水，再通入蒸汽蒸煮，然后进行固液分离；分离后的固形物做为药渣经生物发酵处理后作有机肥料处理，向分离后的滤液注入高温蒸汽进行水分蒸发浓缩，待其形成浓汤样后冷却，再加入85wt％的乙醇进行沉淀净化，获得多糖、寡糖类沉淀物，然后将该多糖、寡糖类沉淀物进行除乙醇浓缩，获得多糖、寡糖类提取物膏剂。

作为优选，向水提釜内注入纯水后，通入100～130℃的蒸汽蒸煮3～4h，再采用0.1mm滤网进行固液分离。

作为优选，加入85wt％的乙醇进行沉淀净化后，收集上清液，再向上清液内注入蒸汽回收乙醇后再次获得黄酮、甙类、苷类醇提物，将该再次获得的黄酮、甙类、苷类醇提物与步骤(2)获得的膏状黄酮、甙类、苷类醇提物混合，然后在真空下通入蒸汽进行浓缩，获得黄酮、甙类、苷类提取物膏剂。

与现有技术相比，本发明具有以下优点：

1、本制备方法将挥发油蒸发，并采用醇沉净化、微波真空低温干燥工艺，使得制备的产品中不含挥发油、蛋白、淀粉等无效甚至有毒副作用的成分，功能性多糖的浓度较高，实际应用时用量减少，从而降低成本；

2、本制备方法先在蒸汽干蒸馏阶段将中草药中的促生长因子、抗病因子、降胆固醇因子按GMP的要求进行提取，做为人类用药预留，充分利用其价值；

3、对合作中成药制药企业的原来废弃的中草药粗多糖进行利用，降低产品成本；

4、采用本发明制备的饲料经饲养试验，每100元投入可带来800元左右的收益，而现有技术方案的每100元投入一般只能带来200元左右的收益。

附图说明

图1是本发明方法的流程图。

图2为肉样采集位置。

具体实施方式

下面结合图1、图2和实施例详细介绍本发明：

实施例1：中草药复合粗多糖(六康素)对生长肥育猪免疫调控作用及其机理。

1材料与方法

1.1材料

1.1.1试验动物及分组

选用28日龄、体重相近、健康的杜洛克×长白×大约克三元杂交断奶仔猪160头，根据体重相近、公母各半的原则将其分为对照组、试验Ⅰ组(加抗生素组)、Ⅱ组(加中草药复合粗多糖饲料0.05％组，该中草药复合粗多糖饲料即本申请发明的中草药复合粗多糖饲料，其质量含量为：复合多糖8.0％～10.0％、寡糖33.0％～35.0％、黄酮7.0％～9.0％、绿原酸1.0％～2.0％、甙类物质0.5％～1.0％、苷类物质0.2％～0.5％、小肽和游离氨基酸38％～45％和矿物质3％～5％)、Ⅲ组(加中草药复合粗多糖饲料0.10％组，质量含量同上)和Ⅳ组(加中草药复合粗多糖饲料0.15％组，质量含量同上)。每组设4个重复，每个重复8头仔猪。

1.1.2试验饲粮及试验设计

参照NRC(1998)猪的营养需要以及我国断奶仔猪的饲养标准，配制成基础全价日粮，饲粮配方及主要营养指标见表1。

表1试验基础日粮组成及其营养水平

注：*为每千克饲粮提供微量元素的保证值分别为：Fe80mg；Zn80mg，Cu5mg；Mn3mg；Se0.25mg；I0.14mg；用碳酸钙作为微量元素稀释剂。

**为每千克饲粮提供各种维生素的保证值分别为：VA2250IU，VD220IU；VE16IU；VK30.5mg；VB12mg；VB24.5mg；VB67mg；VB120.03mg；烟酸30mg；泛酸25mg；叶酸0.30mg生物素0.20mg；

***营养成分中粗蛋白、钙、总磷为实测值，其他指标为计算值。

试验设计见表2，对照组为基础日粮组，试验Ⅰ组在基础日粮上添加金霉素和杆菌肽锌预混剂(添加量为全价配合饲料中含金霉素：50ppm、杆菌肽锌：4ppm)0.05％，试验Ⅱ组在基础日粮上添加0.05％的本发明的中草药复合多糖饲料，试验Ⅲ组在基础日粮上添加0.10％的本发明的中草药复合多糖饲料，试验Ⅳ组在基础日粮上添加0.15％的中草药复合多糖，饲料充分混合均匀。

表2试验设计

1.1.3中草药粗多糖

为长沙博声生物科技有限公司正常生产的中草药粗多糖产品，批号：20101008。

1.2饲养管理

饲养试验在正虹凤凰山种猪场肥育舍内进行，采取自由采食、饮水，免疫消毒程序按猪场常规方法进行，试验由专人负责和管理。日喂3次(7：30、12：00、19：30)，采用干拌料，以食槽无剩余料为原则。每天清扫圈舍2次，以保持圈内清洁。整个圈舍采取自然通风，所有圈舍进行不定期消毒。预饲期7d，预饲期间对实验猪进行驱虫、防疫，中间两次换料采取逐步替代法，整个试验正饲期为126d。

2测定指标与方法

2.1生长性能指标与腹泻率的测定

在试验开始时、20千克左右、35千克左右、试验结束时分别于清晨空腹各栏逐头称重，记录各期体重，以栏为单位记录采食量及腹泻头数。并计算平均日增重(ADG)、平均日采食量(ADFI)、料肉比、腹泻率。根据日增重和日采食量计算饲料转化率，并根据目前市场行情计算经济效益。

生长性能指标的数据处理：

平均日增重(ADG)＝总增重/试验总天数

饲料转化率(FCR)＝饲料总消耗量/总增重(以组为单位进行计算)

腹泻率(％)＝[试验期内某组每日猪腹泻总头数/(试验期内某组猪总头数×饲养天数)]×100

2.2血清生化指标测定

分别于正试期第35天(体重大约20千克)时随机选择每重复2头猪空腹保定，前腔静脉采血约15ml，分两管装，一管约10ml，用于测定免疫指标和内分泌激素，另一管约5ml，加入肝素抗凝，摇匀，用于测定血液淋巴细胞转化率。取10ml管血样于培养皿中37℃水浴静置30min，吸取所析出的血清于离心管中，经3000r/min离心15min得血清样品。将各血清样品分装于EPendorf(离心)管并浸入液氮中，快速冷冻处理后置于-20℃冰箱中保存备用。将低温保存的血清样品在室温下解冻，测定血液生化指标。

血清生化指标采用全自动生化分析仪。测定指标及其测定方法分别为：免疫球蛋白IgG，IgM，IgA，补体C3，C4，免疫透射比浊法测定；尿素氮，脲酶法；血糖，氧化酶法；碱性磷酸酶ALK，酶速率法；血清中白细胞介素IL-1β、IL-2、IL-6、生长激素(GH)、三碘甲腺原氨酸(FT3)和四碘甲腺原氨酸(FT4)、肿瘤坏死因子(INF)、类胰岛生长因子(IGF-1)的含量测定，采用放射免疫法，在γ免疫计数器上进行放射性计数(型号:GC-1200)。

2.3外周血淋巴细胞转化率

2.3.1主要仪器：318MC型酶联免疫检测仪、倒置显微镜、CO2培养箱、细胞计数器等。

2.3.2步骤：采用2.2中用肝素抗凝真空采血管中5ml血液，将新鲜抗凝血液于37℃水浴锅中静置1-2小时，待红细胞沉淀后，吸取中间白细胞层并捎带些红细胞，移入另一无菌离心管中，离心10min(1000转/min),去上清，加入1ml红细胞裂解液，混匀静置5min，离心5min(1000转/min)，离心后去上清，加入1mlRPMI-1640培养液，离心5min(1000转/min)，去上清，加RPMI-1640完全培养液1ml，用台盼蓝染色计数活细胞数(应在95％以上)，用RPMI-1640完全培养液稀释细胞至2×106个/ml。置于96孔细胞培养板上，第一孔加入200μlRPMI-1640完全培养基，其余每孔加入100μl细胞液，前五孔加100μlPHA刺激液，后五孔加入100μlRPMI-1640完全培养基，加样，混匀，置于CO2(5％)，37℃饱和湿度下培养48小时做淋巴细胞原代培养，培养结束前4小时，每孔轻轻弃去上清液100μl，然后加入5mg/mlMTT刺激液20μl/孔，混匀后再培养4小时后，每孔再加入100μl二甲基亚砜，使紫色结晶完全溶解，混匀，静置10min,用酶联免疫检测仪检测OD570nm值，以SI(刺激指数)高低反映淋巴细胞转化率。

SI＝PHA刺激孔OD570nm平均值/细胞对照孔OD570nm平均值

2.3.3试验试剂配制

2.3.3.1RPMI1640完全培养液的配制

将一瓶RPMI1640(GIBCO/BRL产品)干粉缓慢加入1000ml蒸馏水中，震荡溶解。用5.6％NaHCO3调节PH值至6.0-6.2后过滤灭菌，分装，4℃保存，保存时加入青霉素、链霉素各100U/ml，临用前加入新生小牛血清使血清浓度为5％，用灭菌的5.6％NaHCO3调PH至7.2。

2.3.3.2Hank’s液配制

将80gNaCl，0.98gMgSO4，4gKCl，1.2gNa2HPO4.12H2O，0.6gKH2PO4，10g葡萄糖和1.4gCaCl2按顺序溶于1000ml蒸馏水中，并加入4ml氯仿，4℃保存，作为Hank’s母液。取100ml母液用900ml蒸馏水稀释，加入1％酚红，高压灭菌20imn后用灭菌的5％NaHCO3调PH值至7.0-7.2备用。

2.3.3.3PHA(植物血凝集素)的配制

每瓶加2ml无菌水溶解后，4℃保存。

2.3.3.四甲基偶氮唑盐(MTT)(MethylthiazolyldiPhengl-tetrazoliumbromide)Fluka公司产品。将其溶于0.01mol/LPBS(PH7.2)中，使浓度为5mg/ml，过滤除菌，4℃避光保存。

2.4肠道微生物数量的测定

于试验正试期第35天时各重复组随机选择实验猪一头(同性别)共计20头猪，进行全身消毒，无菌操作进行解剖，迅速剪切结肠、盲肠和直肠各一段，用灭菌线扎住切口，用酒精棉球消毒结扎头后，放入已灭菌的塑料袋中，运回试验室备用。采集结肠、盲肠食糜和直肠粪便内容物约2g，装于1.5mL灭菌离心管，然后用稀释液逐级稀释至10-7后滴种、培养，测定大肠杆菌、乳酸杆菌及双歧杆菌的数量；微生物经分别培养后计数，以50～150个菌落的平板的稀释度作为计数用。细菌数量采用平板菌落计数法进行统计，最后用1g肠道内容物中细菌个数的对数(lgCFU)/g表示。微生物培养的计数方法采用平板划线计数法，每克样本所含细菌数＝菌落数均值×稀释倍数/样品重量。

(注：1、平衡盐溶液(PBS)缓冲液配制：NaCl8克/升，KCl0.2克/升，Na2HPO4.1H2O1.56克/升，KH2PO40.2克/升。

2、稀释液的配制:Na2HPO46g，KH2PO44.5g，L-半胱氨酸0.5g，琼脂0.5g，吐温-801mL，加蒸馏水1000mL溶解，121℃(15磅)灭菌20min。)

2.5肠黏膜形态学指标的测定

分别取十二指肠、空肠及回肠中间1.5cm长度的肠道置于10％甲醛保存溶液中，采用HE染色，按蜡染方法制作成切片，用于测定肠段的绒毛高度(villusheight，VH)和隐窝深度(cryPtdePth，CD)。将固定好的组织经脱水-蜡-透明-包埋-修块-切片-展开与粘片-染色处理后，用显微镜观察测定，即在每个部位的组织切片上，选3个典型视野(绒毛完整，走向平直)，应用MoticImagesAdvanced3.0在40倍下观察，用目镜测微尺测量每个视野最长绒毛高度和隐窝深度(张宏福等，2002)，并计算两者比值。

2.6统计与分析

本试验采用SAS软件包中的ANOVA过程对上述指标进行方差分析，用Duncan式检验法进行各组间的多重比较，数据均以平均数±标准差表示。

3结果与分析

3.1中草药复合多糖对生长猪生产性能的影响结果

3.1.1平均日采食量

由表3-6可知，在本试验的8-20kg阶段内，0.05％中草药组采食量显著高于抗生素组和0.15％中草药组(P<0.05)，0.10％中草药组和基础日粮组之间以及与其他试验组之间没有显著差异(P>0.05)。

在本试验的20-35kg阶段内，0.05％中草药组采食量显著高于0.10％和0.15％中草药组(P<0.05)，而与抗生素组和对照组没有显著差异(P>0.05)。0.10％和0.15％中草药组之间以及与抗生素组、对照组之间没有显著性差异(P>0.05)。

在本试验的35-100kg阶段和整个试验全期内，各试验组之间采食量差异不显著(P>0.05)。

3.1.2平均日增重

由表3-6可知，在本试验的8-20kg阶段内，平均日增重在各组间差异极显著(P<0.01)，从高到低依次为：0.10％中草药组>0.15％中草药组>0.05％中草药组>抗生素组>基础日粮组。

在本试验的20-35kg阶段内，0.05％中草药组极显著高于对照组和0.15％组(P<0.01)，显著高于抗生素组和0.10％中草药组(P<0.05)；抗生素组和0.10％组间差异不显著(P>0.05)，但极显著高于对照组(P<0.01)，显著高于0.15％中草药组(P<0.05)。

在本试验的35-100kg阶段内，试验组和对照组之间以及中草药组之间都没有显著性差异(P>0.05)，0.10％中草药组显著高于抗生素组(P<0.05)。

全期来看，0.15％和0.05％中草药组、抗生素组平均日增重显著高于基础日粮组(P<0.05)。而0.10％中草药组极显著高于CR组(P<0.01)，0.10％中草药组显著高于0.15％和0.05％中草药组、抗生素组(P<0.05)。但抗生素组和0.05％中草药组、0.15％中草药组之间差异不显著(P>0.05)。

3.1.3料肉比

由表3-6可知，在本试验的8-20kg阶段内，抗生素组与中草药组料肉比差异不显著(P>0.05)，与对照组差异显著(P<0.05)；0.15％和0.10％中草药组料肉比显著低于0.05％中草药组(P<0.05)，极显著低于对照组(P<0.01)。料肉比从低到高依次为：0.10％中草药组→0.15％中草药组→抗生素组→0.05％中草药组→CR。

在本试验的20-35kg阶段内，料肉比从低到高依次为：0.10％中草药组→0.15％中草药组→抗生素组＝0.05％中草药组→CR。0.10％中草药组显著低于对照组(P<0.05)，与0.05％、0.15％中草药组和抗生素组差异不显著(P>0.05)。0.05％、0.15％中草药组和抗生素组之间以及与对照组之间差异不显著(P>0.05)。

在本试验的35-100kg阶段内，料肉比从低到高依次为：0.10％中草药组→0.15％中草药组→抗生素组→0.05％中草药组→CR，各组差异不显著(P>0.05)。

从全期来看，0.10％和0.15％中草药组以及抗生素组料肉比显著低于CR组(P<0.05)，0.05％中草药组与对照组没有显著差异(P>0.05)。0.01％中草药组和0.15％中草药组之间以及与抗生素组之间差异不显著(P>0.05)。

表3中草药复合多糖对生长猪生产性能的影响(8-20千克阶段)

注：同行肩标不同大写字母表示差异极显著(P<0.01)，不同小写字母表示差异显著(P<0.05)。以下表3-表10同。

表4中草药复合多糖对生长猪生产性能的影响(20-35千克阶段)

表5中草药复合多糖对生长猪生产性能的影响(35-100千克阶段)

表6中草药复合多糖对生长猪生产性能的影响(8-100千克阶段)

3.2中草药复合多糖对生长猪腹泻率的影响结果

表7生长猪在各阶段的腹泻率统计表

由表7可知，试验猪腹泻主要集中发生在35千克以前，试验的不同阶段均以基础组的腹泻率最高。在试验的8-20kg阶段内，中草药组的腹泻率明显低于抗生素组与对照组(P<0.05)，中草药组以0.05％组最低，但与0.15％和0.10％中草药组相比差异不显著(P>0.05)。

在本试验的20-35kg阶段内，中草药组的腹泻率显著低于对照组(P<0.05)，中草药组以0.05％组最低，极显著低于对照组(P<0.01)，显著低于其他三个试验组；0.15％和0.10％中草药组之间以及与抗生素组相比差异不显著(P>0.05)。

在本试验的35-100kg阶段内，0.10％和0.15％中草药组的腹泻率显著低于对照组(P<0.05)，0.05％中草药组、抗生素组和对照组之间的腹泻率差异不显著(P>0.05)。

3.3中草药复合多糖对生长猪哮喘病发生率的影响结果

表8生长猪在各阶段的哮喘病发生率统计表％

由表8可知，试验猪哮喘病的发生主要集中在35千克左右，试验的不同阶段均以基础组的哮喘病发生率最高。试验记录结果显示：生长猪从保育舍转栏至肥育舍后，猪的哮喘病发生率增加。50千克体重以后，猪的哮喘病发生率逐渐减少。

3.4中草药复合多糖对生长猪血液生化指标的影响结果

表9复合多糖对断奶仔猪(20kg)血液生化指标的影响

由表9可知，添加抗生素和复合多糖可以使血清免疫球蛋白含量增加，并随复合多糖添加量的增加而增加，试验Ⅰ组、Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ组IgA，IgG，IgM含量都高于基础组，其中0.15％复合多糖组血清IgA，IgG，IgM含量极显著高于基础组(P<0.01)，显著高于抗生素组(P<0.05)，添加抗生素和复合多糖可提高断奶仔猪血清补体C3，C4含量，其中试验Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ组补体C3，C4含量显著高于基础组(P<0.05)，试验Ⅳ组C3，C4含量显著高于抗生素组(P<0.05)；表中抗生素组和复合多糖组均能有效提高血清中生长激素(GH)、三碘甲腺原氨酸(FT3)、四碘甲腺原氨酸(FT4)的含量，与基础组相比，试验Ⅰ组、Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ组生长激素含量分别提高36.58％(P<0.05)，41.46％(P<0.05)，63.41％(P<0.05)和53.65％(P<0.01)，血清中FT3含量分别提高12.24％(P>0.05)，32.65％(P>0.05)，44.89％(P<0.01)，65.31％(P<0.05)，FT4含量分别提高3.11％(P<0.05)，4.38％(P<0.05)，7.36％(P<0.01)和11.11％(P<0.01)。抗生素组和复合多糖各组均能有效提高血清中IGF-1和白介素1β，白介素-2和白介素-6的含量，其中，试验Ⅲ和Ⅳ组IGF-1和白介素1β，白介素-2和白介素-6的含量极显著高于对照组和试验Ⅰ组。

3.5中草药复合多糖对生长猪外周血淋巴细胞转化率的影响

以SI(刺激指数)高低反映淋巴细胞转化率。SI＝PHA刺激孔OD570nm平均值/细胞对照孔OD570nm平均值。

表10中草药复合多糖对生长猪外周血淋巴细胞转化率的影响结果

由表10可知，在8-20kg阶段，对照组和0.05％、0.10％中草药组的外周血淋巴细胞转化率之间没有显著差异(P>0.05)，但都极显著低于中草药0.15％组的外周血淋巴细胞转化率(P<0.01)；抗生素组的外周血淋巴细胞转化率显著高于对照组和0.05％、0.10％中草药组的(P<0.05)，但显著低于0.15％中草药组(P<0.05)。

在20-35kg阶段，抗生素组与0.10％中草药组的外周血淋巴细胞转化率之间没有显著差异(P>0.05)，但都极显著高于对照组(P<0.01)，显著低于中草药0.15％组的外周血淋巴细胞转化率(P<0.05)，显著高于0.05％中草药组(P<0.05)。0.05％中草药组

比对照组的外周血淋巴细胞转化率显著增加(P<0.05)。

3.6中草药复合多糖对生长猪肠道微生物的影响结果

微生物培养的计数方法采用平板划线计数法，每克样本所含细菌数＝菌落数均值×稀释倍数/样品重量。

表11中草药复合多糖对生长猪盲肠中微生物的影响结果

注：同列数据肩注相同字母表示差异不显著(P>0.05),相邻字母表示差异显著(0.01<P<0.05)，相间字母表示差异极显著(P<0.01),表11-表17相同。

表11结果显示：中草药组与抗生素组对仔猪盲肠中大肠杆菌的影响差异不显著(P>0.05)，但与对照组差异显著或极显著(P<0.05或P<0.01)，中草药组之间差异不显著(P>0.05)；中草药组与抗生素组对仔猪盲肠中双歧杆菌的影响差异显著或极显著(P<0.05或P<0.01)，中草药组与对照组差异显著(P<0.05)，中草药组之间差异极显著(P<0.01)；中草药组中只有0.05％中草药组与抗生素组对乳酸杆菌的影响差异显著(P<0.05)，抗生素组、中草药组与对照组均差异显著(P<0.05)，中草药组之间差异不显著(P>0.05)。

表12中草药复合多糖对生长猪结肠微生物的影响结果

在对仔猪结肠微生物的影响结果中(见表12)，0.05％中草药组与对照组差异并不显著(P>0.05)，但其他中草药组与对照组均差异显著(P<0.05)，中草药添加剂对仔猪结肠中大肠杆菌表现出明显的抑制作用，中草药组中只有0.05％中草药组与抗生素组差异显著(P<0.05)；中草药对仔猪结肠中的双歧杆菌表现出明显的增殖作用，中草药组与对照组差异显著或极显著(P<0.05或P<0.01)，中草药组与抗生素组差异显著或极其显著(P<0.05或P<0.01)；结果还显示中草药对仔猪结肠中的乳酸杆菌表现出明显的增殖作用，0.05％中草药组与对照组差异不显著(P>0.05)，其他中草药组与对照组均差异显著(P<0.05)，中草药组中只有0.05％中草药组与抗生素组差异显著(P<0.05)。

表13中草药复合多糖对生长猪直肠肠微生物的影响结果

在对仔猪直肠微生物的影响方面(见表13)，中草药对仔猪直肠中大肠杆菌表现出明显的抑制作用，0.15％中草药组与对照组差异显著(P<0.05)，其他中草药组与对照组均差异不显著(P>0.05)，中草药组与抗生素组差异不显著(P>0.05)；同时中草药对仔猪直肠中的双歧杆菌和乳酸杆菌表现出明显的增殖作用，与对照组相比，中草药组显著或极显著提高双歧杆菌的数量(P<0.05或P<0.01)；与对照组相比，中草药0.10％组和0.15％组显著提高了直肠中的乳酸杆菌(P<0.05)，但0.05％中草药组与对照组差异不显著(P>0.05)。

3.7中草药复合多糖对生长猪肠黏膜形态学指标的影响

正常的绒毛结构能有效地增加肠的吸收面积。在肠长度和直径相同的情况下，绒毛越长，密度越大，则吸收面积也越大。肠隐窝是肠细胞分裂最活跃的地方，肠绒毛顶部脱落的上皮细胞即由隐窝细胞向上移位而代替。断奶应激和饲料抗原引发的过敏反应可引起不同程度的绒毛变短、隐窝加深和绒毛高度与隐窝深度的比值下降。以下表14-16是中草药复合多糖对生长猪肠段肠黏膜形态学指标的影响结果。表6结果显示：上皮细胞厚度项中草药组与对照组均差异不显著(P>0.05)，与抗生素组差异也不显著(P>0.05)，这表明中草药对仔猪十二指肠段上皮细胞厚度无明显影响；肠绒毛高度项中中草药组与对照组和抗生素组均差异极显著(P<0.01)，对仔猪十二指肠段肠绒毛高度的增加有明显作用，且效果明显优于抗生素组；隐窝深度项中中草药组与对照组差异显著(P<0.05)，与抗生素组差异显著(P<0.05)。这表明中草药添加剂对仔猪十二指肠段隐窝深度的降低有明显作用，且效果明显优与抗生素组。

表14中草药复合多糖对生长猪十二指肠段肠黏膜形态学指标的影响结果

表15结果显示：回肠段上皮细胞厚度项中抗生素组与对照组差异不显著(P>0.05)，0.05％中草药组与对照组差异不显著(P>0.05)，而其余两个中草药组与对照组差异显著(P<0.05)，与抗生素组差异也显著(P<0.05)，这表明中草药添加剂对仔猪回肠段上皮细胞厚度有明显影响；肠绒毛高度项中中草药组与对照组差异显著或极显著(P<0.05或P<0.01)，中草药组间差异显著(P<0.05)，0.10％中草药组和0.15％中草药组与抗生素组差异显著(P<0.05)，表现出比抗生素更优的效果；隐窝深度项中中草药组与对照组均差异不显著(P>0.05)，与抗生素组差异也不显著(P>0.05)，这表明中草药添加剂对仔猪回肠段隐窝深度无明显影响。

表15中草药复合多糖对生长猪回肠段肠黏膜形态学指标的影响结果

表16结果显示：空肠段上皮细胞厚度项抗生素组与对照组差异不显著(P>0.05)，中草药组与对照组差异显著或极显著(P<0.05或P<0.01)，这表明中草药对仔猪空肠段上皮细胞厚度有明显影响；肠绒毛高度项中中草药组与对照组差异极显著(P<0.01),也极显著高于抗生素组(P<0.01)，中草药表现出比抗生素更优的效果；隐窝深度项中0.05％中草药组、抗生素组与对照组之间差异不显著(P>0.05)，中草药0.10％和0.15％两组与对照组差异显著(P<0.05)，抗生素组和中草药组相比、以及三个中草药组之间对仔猪空肠段隐窝深度没有显著差异(P>0.05)。

表16中草药复合多糖对生长猪空肠段肠黏膜形态学指标的影响结果

3.8中草药复合多糖对生长猪免疫器官指数的影响

胸腺与脾脏为体内主要的免疫器官，胸腺为初级淋巴器官，脾脏为次级淋巴器官，与体液免疫和细胞免疫均有密切关系。免疫器官指数＝免疫器官重量(g)/活体重(kg)。

表17中草药复合多糖对生长猪免疫器官指数的影响结果

由表17可知,经过各组间的F检验,中草药组与对照组比较，其脾脏指数极显著增加(P<0.01)，显著高于抗生素组(P<0.05)；而抗生素组的脾脏指数显著高于对照组(P<0.05)；三个不同水平的中草药组之间的脾脏指数没有显著差异(P>0.05)。

0.10％和0.15％中草药组的胸腺指数没有差异(P>0.05)，但极显著高于对照组和抗生素组(P<0.01)，显著高于0.05％中草药组(P<0.05)。抗生素组的胸腺指数与对照组没有差异(P>0.05)。

各组的肝脏指数没有差异(P>0.05)。

综上所述，中草药复合多糖能明显抑制仔猪盲肠、结肠、直肠中大肠杆菌的繁殖，显著促进肠道内的双歧杆菌和乳酸杆菌增殖(P＜0.05或P＜0.01)，并且效果优于抗生素；中草药添加剂显著增加仔猪十二指肠、空肠、回肠的上皮细胞厚度和绒毛高度，并显著降低肠道的隐窝深度(P＜0.05或P＜0.01)，有效增强消化吸收能力，进而提高仔猪生产性能。与对照组相比，中草药复合多糖(Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ组)的平均日增重分别较对照组提高11.80％，19.90％和14.74％(P<0.05)，料肉比分别降低了8.28％，17.75％和14.20％(P<0.05)；试验结果说明在断奶仔猪日粮中添加中草药复合多糖能提高断奶仔猪的生产性能和机体免疫性能，复合多糖可以显著提高血清免疫球蛋白、补体C3、C4、生长激素(GH)、三碘甲腺原氨酸(FT3)、四碘甲腺原氨酸(FT4)的含量，与基础组相比，试验多糖组Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ组生长激素含量分别提高41.46％(P<0.05)，63.41％(P<0.05)和53.65％(P<0.01)，血清中FT3含量分别提高32.65％(P>0.05)，44.89％(P<0.01)，65.31％(P<0.05)，FT4含量分别提高4.38％(P<0.05)，7.36％(P<0.01)和11.11％(P<0.01)。复合多糖各组均能有效提高血清中IGF-1和白介素1β，白介素-2和白介素-6的含量，其中，试验Ⅲ和Ⅳ组IGF-1和白介素1β，白介素-2和白介素-6的含量极显著高于对照组和抗生素组。另外复合多糖能显著提高生长猪的淋巴细胞转化率。因此复合多糖在提高猪的免疫性能的同时，促进猪的抗病能力，减少猪只的腹泻率和哮喘病的发生率。

实施例2：中草药复合粗多糖对猪肉品质的影响

1材料与方法

本试验接着试验一的动物饲养实验，在猪的体重达到50千克时，改喂第三阶段(即50-100千克)的饲粮，饲养管理同试验一。当猪体重达到90千克左右，每处理组选择体重相近的4头猪(即每个重复栏中选择一头猪)，进行屠宰性能与胴体品质测定。

2指标测定与方法

2.1屠宰性能指标的测定

屠宰性能指标按《全国肉质协作组修正方案》(1987)进行，测定各处理试验猪只的屠宰率、背瞟厚、眼肌面积、胴体长、瘦肉率。

屠宰率＝胴体重/空体重×100％

胴体重＝屠宰后去头、蹄、尾及内脏，保留板油和肾脏的躯体重

背瞟厚(第六第七胸椎接合处的背部，量其皮下脂肪层厚度，不包括皮在内。活猪用超声波测膘仪，测于距背中线4-6厘米的肩部最厚处、胸腰椎接合处、腰荐椎联合处三点平均背膘厚)

眼肌面积(厘米2)＝眼肌高度(厘米)×眼肌宽度(厘米)×0.7

胴体长＝在胴体倒挂时从耻骨联合前缘至第一肋骨与胸骨联合点前缘间的长度

瘦肉率＝瘦肉重量/(骨骼重量+皮重量+脂肪重量+瘦肉重量)×100％

2.2胴体品质的测定

同时采集最后胸椎和第一腰椎间单侧背最长肌，用保鲜袋包裹，放入4℃冰箱储存，用于测定背最长肌的鲜肉PH值、肌肉颜色、肌肉系水力、滴水损失、肌肉大理石纹、熟肉率、肌肉嫩度、香味、肌内脂肪含量、肌肉中氨基酸含量以及肌肉中胆固醇、不饱和脂肪酸含量。肉质指标按第二次全国猪肉品质研究经验交

流会修正方案《猪肉质评定方法》(1987)测定。图2为肉样采集位置

(1)肌肉颜色：用宰杀后2h的新鲜肉样与5分制之标准肉色比色板比照评分。根据王林云(1995)所有个体的原始评分也均校正为标准分：

y’MC＝10-|yMC–3.5|

其中，y’MC为校正后的肉色评分，yMC为校正前的肉色评分。校正分越接近10分越好。

(2)肌肉PH值：于宰杀后1h及24h之肉样上刺孔1cm用PHB-1型便携式PH计测定。测定值可精确到0.01。在此，根据陆桂平等(2002)、王林云(1995)，所有个体的原始评分也均校正为标准分：

y’PH1＝10-|yPH1–6.25|

y’PH24＝10-|yPH24–5.7|

在此，y’PH为校正后的PH，yPH为校正前的PH。校正分越接近10分越好。

(3)滴水损失：由宰杀后2h之肉样取部分，将其修成5×3×2.5cm大小的肉片并称重(W1)。然后将其放置在充气的塑料袋中用细忒铁丝钩住一端，保持垂直向下而不接触塑料袋，扎紧袋口，悬于冰箱的冷藏层。贮存24h，小心用滤纸去除表层的汁液后称重(W2)。按下式计算滴水损失(y)：y＝[(W1-W2)/W1]×100％

(4)肌肉大理石纹：取背最长肌横断面，置于4℃的冰箱中存放24h后，对照大理石纹评分标准图，按5级分制评定。

(5)熟肉率：宰后2h内取新鲜肉样100g，称蒸前重。然后置于铝锅蒸屉上用沸水蒸30min。蒸后取出吊挂于室内阴凉处冷却15-20min后称蒸后重，并按下式计算熟肉率。

熟肉率(％)＝(蒸后重÷蒸前重)×100％

(6)肌内脂肪：取新鲜肉样200g，用绞肉机将肉样打碎后采用食品-饲料分析仪(Food﹠FeedAnalyzerINFRATEC1255型，丹麦FOSS公司出品)分析肉中的脂肪含量(％)。

(7)肌内各氨基酸含量采用氨基酸全自动分析仪进行分析。

(8)肌肉蛋白质含量采用凯氏定氮法测定。

2.3肌肉SOD、GSH-PX活性和MDA含量的测定

肌肉匀浆的制备:除去肌肉表面的结缔组织，用4℃预冷的生理盐水洗净血液。用滤纸吸干后，迅速称重。然后加人4℃预冷的生理盐水，在组织研磨器中制成10％的匀浆备用。

测定丙二醛(MDA)用硫代巴比妥酸(TBA)荧光法；测定超氧化物歧化酶(SOD)用黄嘌呤氧化酶ONBT还原法；测定硒谷胱甘肽过氧化物酶(GSHOPx)用DTNB法；试剂盒均购于南京建成生物工程研究所，并严格按照说明操作。

3统计分析

本试验数据采用SAS6.8统计软件进行单因素方差分析，试验结果用平均数±标准误差表示，采用Duncan多重比较进行显著性分析。

4、结果与分析

4.1药用植物复合多糖对猪屠宰性能的影响

由表1统计分析结果表明，日粮中添加药用植物复合多糖对屠宰性能有一定的影响。由表20可知，试验III屠宰率比基础日粮组提高了2.52％(P＜0.05)，试验III屠宰率与基础组相比也有提高，但未达到显著水平(P＞0.05)。日粮中添加抗生素和复合多糖可以使背膘厚增加，抗生素组和各多糖组背膘厚都显著高于基础组(P＜0.05)，其中试验IV组背膘厚极显著高于基础组(P＜0.01)。添加抗生素和复合多糖可以提高眼肌面积和瘦肉率，其中试验IV组眼肌面积显著大于基础组(P＜0.05)，瘦肉率各组间差异不大，以试验III组瘦肉率最好，极显著高于基础组(P＜0.01)。

表18药用植物复合多糖对猪的屠宰性能影响

注：同行肩标不同大写字母表示差异极显著(P<0.01)，不同小写字母表示差异显著(P<0.05)，有相同字母者，表示差异不显著(P>0.05)，下表同。

4.2药用植物复合多糖对猪肉品质的影响

药用植物复合多糖对猪肉品质的影响见表2。统计分析结果表明，日粮中添加药用植物复合多糖对猪肉品质有一定的影响。由表2可见，试验Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ组的PH值与基础日粮组比差异不显著(P＞0.05)。试验Ⅱ、Ⅲ组肉色评分与基础日粮相比差异极显著(P＜0.01)。日粮中添加复合多糖可以改善大理石纹评分且显著高于基础日粮组(P＜0.05)。多糖组的熟肉率明显高于基础日粮组，其中试验Ⅳ极显著(P＜0.01)，而且是随着多糖添加量的增加熟肉率值也增加。在日粮中添加多糖可以使失水率贮存损失率降低，有效改善脂肪含量，但差异不显著(P＞0.05)。

表19药用植物复合多糖对猪肉品质的影响

注：pH*为屠宰后45min内测定背最长肌的pH值；pH**屠宰后24h内测定背最长肌的pH值；肉色评分*为屠宰后1-2h内评定背最长肌的值；肉色评分**为屠宰后24h内评定背最长肌的值。

4.3中草药复合多糖对猪肌肉氨基酸的影响结果

表20中草药复合多糖对猪肌肉氨基酸的影响结果

统计分析结果表明，中草药复合多糖有提高肌肉氨基酸含量的趋势，其中试验Ⅳ组肌肉各种氨基酸含量均高于对照组和其他试验组，缬氨酸含量显著高于对照组和试验Ⅰ组(P<0.05)，各组肌肉总氨基酸和必需氨基酸之间无显著性差异，其中试验Ⅳ组肌肉鲜味氨基酸含量显著高于试验Ⅱ组(P<0.05)，与其他试验组间无显著差异(P>0.05)。

4.4对肌肉SOD、GSH-PX活性和MDA含量的影响

表21中草药复合多糖对猪肌肉中SOD，SXH-PX，MDA的影响

统计分析结果表明，复合多糖各组有提高肌肉中SOD活性的趋势，但试验各组间没有显著差异(P>0.05)；试验Ⅳ组肌肉中GSH-PX活性显著高于对照组和试验Ⅰ组(P<0.05)，复合多糖各组间无显著差异(P>0.05)；添加复合多糖有降低肌肉中MDA含量的趋势，其中试验Ⅳ组肌肉中MDA含量显著低于对照组和试验Ⅰ组(P<0.05)，复合多糖各组间无显著差异(P>0.05)。

上述实施方式仅供说明本发明之用，而并非是对本发明的限制，有关技术领域的普通技术人员，在不脱离本发明精神和范围的情况下，还可以作出各种变化和变型，因此所有等同的技术方案也应属于本发明的范畴。

Claims (10)

1.一种含有中草药复合粗多糖的饲料，其由以下质量组分组成：复合多糖8.0%~10.0%、寡糖33.0%~35.0%、黄酮7.0%~9.0%、绿原酸1.0%~2.0%、甙类物质0.5%~1.0%、苷类物质0.2%~0.5%、小肽和游离氨基酸38%~45%和矿物质3%~5%。

2.根据权利要求1所述含有中草药复合粗多糖的饲料，其含水量小于5%。

3.一种权利要求1或2所述含有中草药复合粗多糖的饲料的制备方法，其特征在于：按质量比将1份多糖、寡糖类提取物膏剂，1份黄酮、甙类、苷类提取物膏剂和1份中草药粗多糖膏剂混合均匀，然后分盘置于工业微波炉内，在≤50℃的温度、低于-0.09个大气压的条件下进行干燥，待其水分低于5%时取出，再粉碎，并检验合格后进行包装。

4.根据权利要求3所述制备方法，其特征在于：所述多糖、寡糖类提取物和黄酮、甙类、苷类提取物从牛膝、杜仲叶、玄参、党参、白术、黄柏、马齿苋共7味中草药中提取，所述中草药粗多糖膏剂从中成药制药企业废弃的中草药粗多糖中获取。

5.根据权利要求4所述制备方法，所述黄酮、甙类、苷类提取物按以下方法步骤获得：

（1）将上述7味中草药去杂后铡段，烘干，混合均匀后粉碎，再将粉碎后的混合物置于蒸馏锅内，通入蒸汽蒸馏，收集蒸馏出来的挥发油，并将蒸馏锅内的固形物转移至醇提釜内；

（2）向醇提釜内注入95wt%的乙醇，反复浸提，再进行固液分离；分离后的固形物转入水提釜；分离后的液体进行乙醇蒸馏回收后获得膏状黄酮、甙类、苷类醇提物。

6.根据权利要求5所述制备方法，其特征在于：上述7味中草药由牛膝4份、杜仲叶3份、玄参0.5份、党参0.5份、白术0.5份、黄柏0.5份、马齿苋1份组成，该7味中草药混合均匀后粉碎成10目颗粒，再将混合物置于所述蒸馏锅内，然后在100~130℃的蒸汽下蒸馏3~4h。

7.根据权利要求6所述制备方法，其特征在于：步骤（2）中，注入95wt%的乙醇后反复浸提5次，再采用0.1mm的滤网进行固液分离。

8.根据权利要求5所述制备方法，所述多糖、寡糖类提取物膏剂按以下方法获得：所述固形物转入水提釜后，向水提釜内注入纯水，再通入蒸汽蒸煮，然后进行固液分离；向分离后的滤液注入高温蒸汽进行水分蒸发浓缩，待其形成浓汤样后冷却，再加入85wt%的乙醇进行沉淀净化，获得多糖、寡糖类沉淀物，然后将该多糖、寡糖类沉淀物进行除乙醇浓缩，获得多糖、寡糖类提取物膏剂。

9.根据权利要求8所述制备方法，其特征在于：向水提釜内注入纯水后，通入100~130℃的蒸汽蒸煮3~4h，再采用0.1mm滤网进行固液分离。

10.根据权利要求8所述制备方法，其特征在于：加入85wt%的乙醇进行沉淀净化后，收集上清液，再向上清液内注入蒸汽回收乙醇后再次获得黄酮、甙类、苷类醇提物，将该再次获得的黄酮、甙类、苷类醇提物与步骤（2）获得的膏状黄酮、甙类、苷类醇提物混合，然后在真空下通入蒸汽进行浓缩，获得黄酮、甙类、苷类提取物膏剂。