CN105543416A - 猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒双重微滴数字pcr绝对定量检测试剂盒 - Google Patents

猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒双重微滴数字pcr绝对定量检测试剂盒 Download PDF

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Abstract

本发明提供了一种用于检测猪流行性腹泻病毒(PEDV)和猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)的特异性引物和探针组合，包括2对特异性引物和2条与引物对配合使用的特异探针；同时提供一种用于检测猪流行性腹泻病毒(PEDV)和猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)的检测试剂盒或检测试剂。具有快速、敏感、特异等优点，可为猪传染性胃肠炎病毒和猪流行性腹泻病毒双重微滴数字PCR绝对定量检测、流行病学调查及疫苗使用等奠定基础。

Description

猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒双重微滴数字PCR绝对定量检测试剂盒
技术领域
本发明涉及试剂盒检测技术领域，具体的说涉及一种猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒数字PCR绝对定量检测方法和检测试剂盒。
背景技术
猪流行性腹泻(porcineepidemicdiarrhea,PED)是世界范围内发生的猪病之一，以腹泻、呕吐、脱水和对哺乳仔猪高致死率为主要特征。PEDV与猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)同属于尼多病毒目、冠状病毒科、冠状病毒属，两种病毒的致病机理以及引起的临床症状极其相似，给养猪业带来严重危害。这两种病的主要传染源是病猪，通过病猪排泄出的粪便散播病毒，进而污染饲料、饮水和周围环境，健康猪只通过口接触到含有病猪的粪便或其污染物即可发生自然感染。而且各年龄的猪均易感染，母猪的发病率为15％～90％，而仔猪和育成猪的发病率通常为100％。病毒传入猪群的途径主要是通过运输病猪的车辆或者被病毒污染的饲料，以及被病毒污染的鞋、裤、衣物或其它携带病毒的污染物。这两种病多发生于寒冷季节，主要是在每年的11月至下年4月间发病，尤其在农历春节前后更是该病的发病高峰期。一般情况下气温超过20℃不会流行本病，但近年来也有在夏季发生的病例。
中国农业科学院哈尔滨兽医研究所于2005年～2007年间，对国内部分省、市猪场腹泻病例进行了RT-PCR检测，结果表明，猪流行性腹泻病(PED)病例占46％、猪传染性胃肠炎(TGE)病例占15％、猪轮状病毒(PoRV)病例占8％，而PED、TGE和PoRV相互间混合感染的病例占31％。各项研究都表明如何防治死亡率高的猪流行性腹泻和猪传染性胃肠炎，是摆在我们面前的新课题。
目前,对这两种传染病的诊断方法主要有病毒中和试验,免疫荧光法,免疫电镜法,ELISA法和RT-PCR法。随着分子生物学的不断发展,ELISA法和RT-PCR法以其敏感性高、特异性强越来越受到人们的重视。传统的检测方法，如病毒中和试验(VNT)、免疫荧光法、免疫电镜法、酶联免疫吸附试验等，存在需要时间长、依赖于经验丰富的检测人员、试验操作复杂、涉及活病毒操作、对检测环境要求较高，以及敏感性较低和重复性较差等诸多不足。RT-PCR等核酸检测方法，虽然较之传统方法具有特异性更强、灵敏度更高、自动化程度更高和结果重复性更好等优势，但是仅能实现猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)和猪流行性腹泻病毒(PEDV)的定性和半定量检测，无法对TGEV和PEDV核酸进行精确的绝对定量检测，从而检测结果无法反映样品中病毒感染的真实情况。同时RT-PCR方法在灵敏度和特异性上仍存在一定的局限性，对于病毒核酸提取过程中的某些化学物质较为敏感，进而抑制PCR反应，出现“假阴性”结果。
数字化PCR(DigitalPCR，dPCR)的概念早在1999年就由BertVogelstein采用并发表相关文献，其初衷是为了能够从临床样品(如尿液、淋巴液、血浆、粪便等)大量的正常体细胞中检测出微量的突变细胞，但由于当时能用于稀释样品的耗材只是384孔板，因此还不能非常好地体现数字PCR的核心理念——“无限稀释”(terminaldilution)。Bio-Rad公司的QX200系统核心的微滴化技术能够将一份样品分成20,000个纳升级的微滴，本质上将传统定量PCR的一个test变成20,000个test，大大提高了核酸序列检测的灵敏度和精准度，是对“无限稀释”这一概念的完美演绎，其方法原理可称为微滴式数字化PCR(DropletDigitalPCR，ddPCR)。QX200ddPCR系统包括两台仪器：微滴发生器和微滴分析仪，及其相关的耗材。微滴发生器将每个样品分成20,000个均匀的纳升级微滴，其中每个微滴或不含待检核酸靶分子，或者含有一个至数个待检核酸靶分子。每个微滴都作为一个独立的PCR反应器。随后微滴转移至96孔PCR板上，开展终点PCR扩增。采用微滴分析仪(dropletreader)逐个对每个微滴进行检测，有荧光信号的微滴判读为1，没有荧光信号的微滴判读为0，最终根据泊松分布原理以及阳性微滴的比例，分析软件可计算给出待检靶分子的浓度或拷贝数。与传统的定量PCR相比，数字PCR的精确度和灵敏度更佳。利用微滴式数字PCR技术，研究人员可以检测稀有突变，精确测定拷贝数变异，并对基因表达进行绝对定量。癌症相关突变因浓度较低，往往逃过检测。凭借QX200系统的高灵敏度，研究人员如今可检测浓度低至1/1,000,000的靶分子。
发明内容
本发明的目的在于提供一种具有高灵敏度、高特异性、高准确度和精确度，可实现精确定量的数字PCR检测方法和数字PCR检测试剂盒，能够同时检测出猪流行性腹泻病毒(PEDV)和猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)的双重微滴数字PCR绝对定量检测方法。用于猪流行性腹泻病毒和传染性胃肠炎病毒的快速定量精确检测。
本发明的第一个技术目的是提供用于检测猪流行性腹泻病毒(PEDV)和猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)的特异性引物和探针组合，包括以下2对特异性引物和2条与引物对配合使用的特异探针，其核苷酸序列分别为：
PEDV-F1：CACCATCAGCACCTCTTTC；
PEDV-R1：CCAGTGCTCATGATCAAAA；
PEDV-P1：FAM-CGACAACACCGTTACCATTATCTAGGA-BHQ1；
TGEV-F1：CAGGGTAGTGAGTATGATTAC；
TGEV-R1：CAACCTTTGCTCTCGTAA；
TGEV-P1：HEX-ACACAGACCTCCGATACACAGC-BHQ1。
本发明提供了上述的特异性引物和探针组合在制备猪流行性腹泻病毒(PEDV)和猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)检测试剂盒或检测试剂中的应用。
本发明提供了一种含有上述特异性引物和探针组合的试剂盒。所述试剂盒优选为双重微滴数字PCR绝对定量检测试剂盒。
本发明的另一技术目的在于提供一种具有高灵敏度、高特异性、高准确度和精确度的、操作简单的检测猪流行性腹泻病毒(PEDV)和猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)的双重微滴数字PCR绝对定量检测试剂盒，其中包含2对特异性引物和2条与引物对配合使用的特异探针，其核苷酸序列分别为：
PEDV-F1：CACCATCAGCACCTCTTTC；
PEDV-R1：CCAGTGCTCATGATCAAAA；
PEDV-P1：FAM-CGACAACACCGTTACCATTATCTAGGA-BHQ1；
TGEV-F1：CAGGGTAGTGAGTATGATTAC；
TGEV-R1：CAACCTTTGCTCTCGTAA；
TGEV-P1：HEX-ACACAGACCTCCGATACACAGC-BHQ1。
还包含病毒总RNA萃取试剂和一步法微滴数字PCR检测试剂；所述一步法微滴数字PCR检测试剂包括无RNA酶的蒸馏水，一步法ddPCR探针法预混液，探针法ddPCR微滴发生油，质控液，阴性对照和阳性对照。
所述病毒总RNA萃取试剂含有TRIzoL、氯仿或异戊醇、异丙醇。所述一步法ddPCR探针法预混液其900μL的配方为：
500μL的2XOne-stepRT-ddPCRSupermix，PEDV上、下游引物分别为90μL，TGEV上、下游引物分别为90μL，PEDV和TGEV的特异探针分别为20μL，引物和探针的浓度均为10μM。
所述阳性对照为猪流行性腹泻病毒(PEDV)和猪传染性胃肠炎病毒(TGEV)RNA混合液，阴性对照为无RNA酶蒸馏水。
本发明的试剂盒其工作原理是采用双重微滴式数字化PCR(ddPCR)，所述试剂盒的工作程序为：
(1)配制ddPCR反应液；ddPCR反应液20μL配方为：一步法ddPCR探针法预混液18μL，待测样品RNA模板为2μL；
(2)制备微滴，然后将微滴转入PCR板，于PCR仪中进行扩增；
(3)将完成PCR扩增的PCR板放入微滴分析仪中，检测微滴，分析数据，显示检测结果。
在本发明的一个实施例中，制备微滴的方法是采用Bio-Rad公司的QX200系统中的微滴发生器，按照说明书操作进行微滴制备即可。
其中，步骤(2)中PCR的扩增程序为50℃反转录10min；95℃预变性10min；94℃变性30sec，54～56℃退火60sec，共40个循环；98℃10min结束反应，每步都设置2.5℃/sec的降温速度。
本发明提供的试剂盒在猪疫病检测和预防中的应用也属于本发明的保护范围。
本发明试剂盒检测结果的判定方法为：(1)阳性对照：20±2个拷贝；(2)阴性对照：<1个拷贝；待测样本结果判定：(1)阳性：标本检测结果≥1个拷贝。(2)阴性：标本检测结果<1拷贝。
本发明摸索了引物和探针的浓度，找到了最适微滴式数字PCR的引物和探针的工作浓度。摸索了PCR反应过程中最适的升降温速度，以提高数字PCR的扩增效率，使本发明方法能够与BIO-RAD公司的QX200系统相结合。
本发明试剂盒具有快速高效、操作简便、高特异性、高灵敏度、可直接定量，无需标准曲线、操作简便，可以在疫情预爆发前便于在早期内确定疫病，做好预防，从源头控制疫情。具体表现在：
(1)高特异性：本发明根据PEDV基因和TGEV基因序列设计了特异性引物和特异探针，其特异性极高，且非常稳定，保证了反应的顺利进行，进一步确保猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒检出的特异性；同时可以联合检测两种病毒；
(2)高灵敏度：检测浓度低至1/1,000,000的靶分子；能够直接定量待测样本中的拷贝数；
(3)低模板：由于检测的灵敏度很高，可以检测出低丰度的目的基因，所以可以降低模板用量，稀释模板浓度，对于一些珍贵，稀少的样本可以有更多的研究。
(4)可直接定量，无需标准曲线：与传统的检测方法相比，该试剂盒可直接定量，无需标准曲线，操作简便、准确无误，更加适合现场检测，有效预防猪疫病的大规模爆发。
具体实施方式
以下实施例进一步说明本发明的内容，但不应理解为对本发明的限制。在不背离本发明精神和实质的情况下，对本发明方法、步骤或条件所作的修改或替换，均属于本发明的范围。
若未特别指明，实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段。
实施例1检测猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒的特异性引物和探针的设计
1、本发明引物、探针设计：PEDV，GenBank登录号为AF353511，TGEV，GenBank登录号为DQ811789，进行适用于ddPCR的特异性引物和的设计。
本实施例给出了筛选最佳引物的过程，选择用软件设计出的其中几对备选引物进行筛选，备选引物如下，见表1。
表1
2、引物的筛选
(1)PEDV的引物随机配为四对：F1R1、F1R2、F2R1、F2R2；TGEV的引物随机配为四对：F1R1、F1R2、F2R1、F2R2。
(2)然后两种病毒分别用染料法做荧光定量PCR，PCR体系配方：2Xone-stepSYBRGreenSupermix10μL，上游引物，下游引物分别为1μL，RNaseFreedH2O3μL，阳性模板5μL。PCR的扩增程序为50℃反转录10min；95℃预变性10min；94℃变性30sec，60℃退火60sec，共40个循环；65℃—95℃每5秒升高0.5℃溶解曲线，结束反应。
(3)结果分析，PEDV的引物选择没有非特异性扩增的引物对F1R1，TGEV的引物选择没有非特异性扩增的引物对F1R1。
3、探针的筛选
(1)引物探针的组合为：1、PEDV-F1R1P1+TGEV-F1R1P1；2、PEDV-F1R1P1+TGEV-F1R1P2；3、PEDV-F1R1P2+TGEV-F1R1P1；4、PEDV-F1R1P2+TGEV-F1R1P2。
(2)然后在ddPCR平台上，ddPCR体系配方：2XOne-stepRT-ddPCRSupermix10μL，上游引物，下游引物分别为1μL，探针分别0.5μL，RNAseFreedH2O3μL，阳性模板2μL，总体积20μL(引物和探针的浓度均为10μM)。然后生成微滴。
(3)上PCR仪扩增，PCR的扩增程序为50℃反转录10min；95℃预变性10min；94℃变性30sec，55℃(仪器自动分布8个温度梯度)退火60sec，共40个循环；98℃10min结束反应。上微滴数字PCR检测仪检测。
(4)分析结果：根据实验结果选择PEDV-F1R1P1+TGEV-F1R1P1引物探针组合。
实施例2在ddPCR平台上检测猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒的PCR方法退火温度的优化。
1、选择引物探针的组合为：PEDV-F1R1P1+TGEV-F1R1P1。
2、然后在ddPCR平台上，ddPCR体系配方：2XOne-stepRT-ddPCRSupermix10μL，上游引物，下游引物分别为1μL，探针分别0.5μL，RNAseFreedH2O3μL，阳性模板2μL，总体积20μL(引物和探针的浓度均为10μM)。做8个复孔，然后生成微滴。
3、上PCR仪扩增，PCR的扩增程序为50℃反转录10min；95℃预变性10min；94℃变性30sec，50～60℃(仪器自动分布8个温度梯度)退火60sec，共40个循环；98℃10min结束反应。上微滴数字PCR检测仪检测。
4、分析结果：根据实验结果选择54～56℃的退火温度。
实施例3引物、探针浓度的优化实验
设计引物探针浓度均为10μM,组合为PEDV-F1R1P1+TGEV-F1R1P1,体系配置方法见表2。
表2
然后在ddPCR平台上生成微滴，转移到96孔板内，封铝膜。
上PCR仪扩增，PCR的扩增程序为50℃反转录10min；95℃预变性10min；94℃变性30sec，55℃退火60sec，共40个循环；98℃10min结束反应。上微滴数字PCR检测仪检测。
分析结果：根据实验结果选择PEDV-F2R2P2+TGEV-F2R2P2引物探针配方，选择引物分别为1.8μL，探针分别为0.4μL。
实施例4PCR扩增升降温速度的优化实验
1、然后在ddPCR平台上，引物探针组合PEDV-F1R1P1+TGEV-F1R1P1(浓度为10μM),用ddPCR体系配方：2XOne-stepRT-ddPCRSupermix10μL，上游引物，下游引物分别为1.8μL，探针分别0.4μL，阳性模板2μL，总体积20μL。每台仪器做4个复孔。然后生成微滴，转移到PCR小管内。
2、在两台同样的PCR仪平台上扩增，PCR的扩增程序为50℃反转录10min；95℃预变性10min；94℃变性30sec，55℃退火60sec，共40个循环；98℃10min结束反应，一台设置升降温速度设置为5℃/sec，另一台上设置升降温速度设置为2.5℃/sec，扩增结束后，把PCR小管内的扩增产物转移到同一块96孔板内，封铝膜，上微滴数字PCR检测仪检测。
3、分析结果：根据实验结果分析发现，升降温速度慢的最后检测的微滴数比升降温速度快的多，扩增效率高，升降温速度慢的阴性微滴和阳性微粒之间的距离分的很开，很容易区分，升降温速度快的阴性微滴和阳性微粒之间的距离分的不开，不容易区分，故选择2.5℃/sec升降温速度。
实施例5检测猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒的双重ddPCR方法的建立
1、双重微滴数字PCR绝对定量检测试剂盒的组装
将试剂盒分为A和B两部分组装。A部分为病毒总RNA提取试剂，B部分为一步法微滴数字PCR检测试剂，方便保存和运输。用合适的外包装盒包装以下试剂，贴标签(标示名称、批号、生产日期、有效期等)。
A部分：(1)溶液A(TRIzoL)一瓶，25mL；(2)溶液B(氯仿/异戊醇)一瓶，6mL；(3)溶液C(异丙醇)一瓶，18mL；
B部分：溶液D(RNAseFreedH2O)1支，1mL；溶液E(一步法ddPCR探针法预混液)一支，900μL；溶液F(探针法ddPCR微滴发生油)一支，7ml；溶液G为ddPCR探针法质控液，3.5ml；溶液H(阳性对照)一支，40μL；溶液I(阴性对照)一支，40μL；使用猪流行性腹泻病毒(PEDV)和传染性胃肠炎病毒(TGEV)RNA混合液为阳性模板，使用Tris-EDTA缓冲液(0.01MpH8.0)稀释后冷冻保存。将检验合格的阳性对照制剂按400μL定量分装。使用RNAseFreedH2O为阴性对照。
上述一步法ddPCR探针法预混液其900μL的配方为：500μL的2XOne-stepRT-ddPCRSupermix，PEDV上、下游引物分别为90μL，TGEV上、下游引物分别为90μL，PEDV和TGEV的特异探针分别为20μL，引物和探针的浓度均为10μM。
使用时，在18μL的ddPCR探针法预混液中加入2μL的RNA模板，得到20μL的ddPCR反应液，用于制备微滴。
2、总RNA提取
取100μL组织样品研磨上清液置1.5mLeppendorf管中，加500μL溶液A，混匀，室温剧烈震荡15s，室温静置5min。加120μL溶液B，小心盖上帽盖，室温剧烈震荡15s，室温放置5min。12,000rpm，4℃，离心15min，可见分为三层，上层水相含RNA。转移水相至一新eppendorf管，加入等量溶液C(约500μL)，混匀，室温放置15min。12,000rpm，4℃，离心10min，离心后在eppendorf管边和底部可见有胶样RNA沉淀。洗RNA：弃上清，加1000μL75％乙醇(使用前用溶液D加无水乙醇配置而成，-20℃预冷)漂洗沉淀，12000rpm，4℃，离心5min，弃上清。室温充分干燥RNA沉淀。加15μLRNAseFreedH2O，即可用于PCR扩增。可以-20℃保存备用。
3、双重ddPCR方法的建立
(1)制备ddPCR反应液，总体积20μL。向扩增管中加入下列反应物：
单反应体系配方 一步法ddPCR探针法预混液 18μL
模板 RNA 2μL
空白对照：以RNAseFreedH2O代替模板，同样条件下扩增。
(2)将20μL反应液加入到微滴发生卡中间一排的8个孔内，不足8个样品时用20μL1×溶液G补足，建议使用8通道20μL排枪和20μL枪头(不能用200ul枪头)，加样时枪头接近孔一侧底部，与侧壁呈大约15°角，缓慢打出液体，打出一部分后慢慢提升枪头位置再打出余下液体，不要将枪按至超过第一档位置以免引入气泡。
(3)在微滴发生卡最底下一排8个孔中各加入70μL微滴生成油，同样不能有空着的孔。
(4)盖上胶垫，注意两边的小孔都要钩牢。
(5)将以上卡托轻轻地平稳放置于微滴生成仪中，开始生成微滴，注意仪器上指示灯状态，一般2分钟之内完成。
(6)微滴生成于微滴发生卡最上面一排孔内，建议使用8通道排枪和200μL枪头小心缓慢吸取，调整吸取体积为40μL，将卡托放平，枪头以与孔壁呈30～45°角放入，轻触孔底，约5秒吸取40ul，再同样缓慢地打入96孔板相应位置孔内(约5秒)，枪头贴近孔壁接近孔底，注意封上盖以防油挥发，每次弃去已使用过的微滴发生卡和胶垫。
(7)封好膜之后应该在30分钟内进行PCR反应，或者放于4℃冰箱4小时之内进行PCR，可在任意一台96孔PCR仪上完成，注意升降温速度≤2.5℃/s。推荐反应条件：
(8)将之前完成PCR的96孔板放入plateholder中组装好，注意板斜角方位，组装好之后轻轻地平稳放入微滴读取仪中。
(9)打开QuantaSoft软件，建议每次实验之前做一次系统清洗，若一周以上未使用建议先做一次填充油路再做系统清洗。之后对96孔板中样品信息进行设置，主要是提供实验名称、实验类型以及探针信息等，完成后即可运行仪器，结束后结果会被自动分析，人工核实后保存结果。
4、结果分析和判定
本发明试剂盒检测结果的判定方法为：(1)阳性对照：20±2个拷贝；(2)阴性对照：<1个拷贝；待测样本结果判定：(1)阳性：标本检测结果≥1个拷贝。(2)阴性：标本检测结果<1拷贝。
实施例6本发明试剂盒的特异性评价
按实施例5建立的方法，同时检测猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒、猪细小病毒，猪圆环病毒，猪蓝耳病病毒，猪瘟病毒六种病毒，以验证本发明试剂盒的特异性。
用以上6种病毒为模板，用猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒双重微滴数字PCR绝对定量检测试剂盒上数字PCR检测系统检测。结果：猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒为阳性，猪细小病毒，猪圆环病毒，猪蓝耳病病毒，猪瘟病毒六种病毒都为阴性。
以上所述仅是本发明的优选实施方式，应当指出，对于本技术领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明技术原理的前提下，还可以做出若干改进和润饰，这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。

Claims (10)

1.一种用于检测猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒的特异性引物和探针组合，其特征在于，包括以下2对特异性引物和2条与引物对配合使用的特异探针，其核苷酸序列分别为：
PEDV-F1：CACCATCAGCACCTCTTTC；
PEDV-R1：CCAGTGCTCATGATCAAAA；
PEDV-P1：FAM-CGACAACACCGTTACCATTATCTAGGA-BHQ1；
TGEV-F1：CAGGGTAGTGAGTATGATTAC；
TGEV-R1：CAACCTTTGCTCTCGTAA；
TGEV-P1：HEX-ACACAGACCTCCGATACACAGC-BHQ1。
2.权利要求1所述的特异性引物和探针组合在制备猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒双重微滴数字PCR绝对定量检测试剂盒中试剂的应用。
3.一种含有权利要求1所述特异性引物和探针组合的试剂盒。
4.如权利要求3所述的试剂盒，其为双重微滴数字PCR绝对定量检测试剂盒。
5.如权利要求4所述的试剂盒，其特征在于，还包含病毒总RNA萃取试剂和一步法微滴数字PCR检测试剂；所述一步法微滴数字PCR检测试剂包括无RNA酶的蒸馏水，一步法ddPCR探针法预混液，探针法ddPCR微滴发生油，质控液，阴性对照和阳性对照。
6.如权利要求5所述的试剂盒，其特征在于，所述阳性对照为猪流行性腹泻病毒和猪传染性胃肠炎病毒RNA混合液，阴性对照为无RNA酶蒸馏水。
7.如权利要求5所述的试剂盒，其特征在于，所述一步法ddPCR探针法预混液其900μL的配方为：500μL的2XOne-stepRT-ddPCRSupermix，PEDV上、下游引物分别为90μL，TGEV上、下游引物分别为90μL，PEDV和TGEV的特异探针分别为20μL，引物和探针的浓度均为10μM。
8.如权利要求4-7任一所述的试剂盒，其特征在于，所述试剂盒的工作程序为：
(1)配制ddPCR反应液；ddPCR反应液20μL配方为：一步法ddPCR探针法预混液18μL，待测样品RNA模板为2μL；
(2)制备微滴，然后将微滴转入PCR板，于PCR仪中进行扩增；
(3)将完成PCR扩增的PCR板放入微滴分析仪中，检测微滴，分析数据，显示检测结果。
9.如权利要求8所述的试剂盒，其特征在于，步骤(2)中PCR的扩增程序为50℃反转录10min；95℃预变性10min；94℃变性30sec，54～56℃退火60sec，共40个循环；98℃10min结束反应，每步都设置2.5℃/sec的降温速度。
10.权利要求3-9任一所述的试剂盒在猪疫病检测和预防中的应用。
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