CN105505984A - 水稻呼吸爆发氧化酶基因OsRboh(LOC_Os01g25820)的载体及其应用 - Google Patents

水稻呼吸爆发氧化酶基因OsRboh(LOC_Os01g25820)的载体及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一个水稻呼吸爆发氧化酶OsRboh(LOC_Os01g25820)及其在叶色改变及育性降低中的应用,属于生物技术领域。该载体为含有双35S启动子和水稻OsRboh(LOC_Os01g25820)基因植物表达载体。在水稻中过量表达OsRboh(LOC_Os01g25820),获得的转基因植株的叶色变黄、过氧化氢含量升高、育性明显降低。以上结果表明OsRboh(LOC_Os01g25820)在水稻的发育过程中发挥重要作用,为研究植物的发育提供了新的基因资源,还可以作为一种潜在的工具来改良植物的形态,应用在分子育种和遗传改良上。

Description

水稻呼吸爆发氧化酶基因OsRboh(LOC_Os01g25820)的载体及其应用
技术领域
本发明涉及一种水稻呼吸爆发氧化酶基因OsRboh(LOC_Os01g25820)的载体及应用,属于基因工程技术领域。
背景技术
活性氧(reactiveoxygenspecies,ROS)是生物体一类有氧代谢的副产物,除作为有毒分子伤害细胞外,还作为一类重要的信号分子参与生物体的生长和发育。
研究发现,ROS的来源包括质膜NADPH氧化酶、过氧化物酶及胺氧化酶,其中由NADPH氧化酶介导产生的ROS最受关注。NADPH氧化酶以定位于细胞质边缘的NADPH为电子供体,催化O2生成超氧阴离子(O2 ·),随后超氧阴离子歧化生成H2O2,H2O2再经芬顿反应生成·OH。植物NADPH氧化酶又称呼吸爆发氧化酶(Respiratoryburstoxidasehomologue,Rboh),所有植物Rboh蛋白都包含约300个氨基酸大小的N端区,该区存在一对保守的Ca2+结合EF手性结构域。植物中的呼吸爆发氧化酶(Respiratoryburstoxidasehomologue,Rboh)主要由呼吸爆发氧化酶基因(RespiratoryBurstOxidaseHomologue,Rboh)所控制。
植物Rboh基因的功能主要集中于两个方面:参与胁迫反应和调控生长发育。当病原菌侵染拟南芥细胞时,AtRbohD和AtRbohF基因表达产生大量的ROS来增强组织的抗病性。拟南芥atRbohD/atRbohF双突变体中,Ca2+通道的ABA活化与气孔关闭不能正常进行,通过外源施加H2O2可以部分修复这些缺失的功能。拟南芥AtRbohC基因的突变导致根和根毛生长受抑制,其突变体rdh2内ROS的水平较野生型有大幅度的降低,用NADPH氧化酶的抑制剂二亚苯基碘(DPI)处理可抑制其活性,产生与突变体相同的情况,而ROS处理突变体根部则可部分恢复表型。番茄反义Rboh植侧枝增加,花序和花数量为野生型的2-3倍,大多数花表现不育。菜豆PvRbohB干扰植株中侧根的密度降低,根瘤的形成受影响,从而影响植株的固氮能力。
水稻(OryzasativaL.)是最主要的粮食作物之一,也是一种重要的模式生物,对相关基因进行功能研究具有重要作用。随着水稻功能基因组研究的不断深入,许多重要农艺性状相关基因相继被分离。RespiratoryBurstOxidaseHomolog(Rboh)基因直接参与ROS的形成,但在水稻中的功能并不清楚,值得进一步的研究。我们的研究发现OsRboh(LOC_Os01g25820)的过量表达的水稻植株中叶片变黄,育性降低,利用这一特性可以应用在水稻分子育种和遗传改良上。
发明内容
本发明的目的在于提供一种水稻OsRboh(LOC_Os01g25820)基因载体及在叶色和育性改变中的应用,该载体含有水稻OsRboh(LOC_Os01g25820)基因的上游连有双35S启动子。
本发明的上述植物表达载体为PHB-OsRboh(LOC_Os01g25820),由下述方法构建而成:
(1)根据NCBI上公布的OsRboh(LOC_Os01g25820)全长cDNA(AK065117)序列,设计两端引物:
OsRboh-OE-F:AGATCTATGGCTGACCTGGAAGCAGGCATGG(BamHI)
OsRboh-OE-R:CACGTGTTAGAAGTTCTCCTTGTGGAAATCA(XbaI)
以日本水稻基因组研究中心(RGRC)购得的质粒AK065117为模板进行PCR扩增,获得OsRboh(LOC_Os01g25820)全长。
(2)回收OsRboh(LOC_Os01g25820)的cDNA全长,将其连接到pMD18载体上,采用碱裂解法提取质粒DNA,通过PCR检测和酶切检测获得重组质粒pMD18-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE。
(3)使用BamHI和XbaI酶切pMD18-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE,回收OsRboh(LOC_Os01g25820)片段,同时用BamHI和XbaI酶切PHB,回收后连接,转化感受态细胞,获得植物表达载体PHB-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE。
本发明的另一目的是公开水稻OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE在叶色和育性改造中的基因工程应用。在水稻中过量表达OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE的转基因植株的叶色变黄、过氧化氢含量升高、育性明显降低。该载体可作为一种潜在的工具应用在水稻分子育种和遗传改良上。
附图说明
(1)图1为pMD18T-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE的BamHI和XbaI酶切图。
(2)图2为PHB-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE的BamHI和XbaI酶切图。
(3)图3为转基因水稻植株的PCR鉴定图。
(4)图4为转基因水稻植株呈现黄化苗表型;其中A为野生型,B为转基因水稻。
(5)图5为转基因水稻植株呈现育性降低表型;其中A为野生型,B为转基因水稻。
(6)图6为转基因水稻植株叶片中过氧化氢的染色,其中A为野生型,B为转基因水稻。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施例对本发明作进一步说明,这些实施例仅用于举例说明本发明,而不对本发明的范围构成任何限制。
实施例中所涉及的试剂主要分为分子生物学实验试剂、各种限制性内切酶、TaqDNA聚合酶、反转录酶、RNA酶抑制剂、dNTP等为日本宝生物工程有限公司(大连)产品,质粒提取试剂盒购自生工生物工程(上海)股份有限公司,其余试剂均为国产分析纯;仪器均为分子生物学以及基因工程实验室常用仪器。所有引物序列均在生工生物工程(上海)股份有限公司合成。本发明实施例中所用方法如无特别说明均为常规方法。
实施例1:水稻PHB-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE载体的构建
(1)OsRboh(LOC_Os01g25820)基因的扩增
根据NCBI上公布的OsRboh(LOC_Os01g25820)全长cDNA(AK065117)序列,设计两端引物:
OsRboh-OE-F:AGATCTATGGCTGACCTGGAAGCAGGCATGG(BamHI)
OsRboh-OE-R:CACGTGTTAGAAGTTCTCCTTGTGGAAATCA(XbaI)
以日本水稻基因组研究中心(RGRC)购得的质粒AK065117为模板,高保真酶KOD-Plus进行PCR扩增获得OsRboh(LOC_Os01g25820)全长。PCR反应条件为:94℃5min;94℃30s;56℃30s;68℃3.0min,35个循环;68℃5min。PCR产物用1.2%琼脂糖进行电泳检测,扩增片段大小约2718bp,与预期大小一致(图1)。
(2)OsRboh(LOC_Os01g25820)片段的胶回收
对PCR产物进行1.5%琼脂糖凝胶电泳后,切下目的片段,使用胶回收试剂盒,按照试剂盒说明书对目的片段进行回收。
(3)OsRboh(LOC_Os01g25820)片段加尾
取1.5ml灭菌的eppendorf管,依次加入回收的PCR产物14μl、10×TaqDNA聚合酶缓冲液2μl、10mMdNTP2μl、TaqDNA聚合酶2μl;72℃处理45min;先加0.18mL无菌水,再加20μl3M醋酸钠,混匀,最后加入2倍体积的无水乙醇,-20℃沉淀60min,12,000rpm,4℃离心10min。弃上清,75%乙醇洗涤沉淀2次。DNA晾干后加入20μL无菌水溶解沉淀,溶解的DNA置于-20℃保存备用。
(4)OsRboh(LOC_Os01g25820)片段的T/A克隆和测序
将回收片段连接到pMD18载体上,其具体步骤为:向1.5ml离心管中分别加入:OsRboh(LOC_Os01g25820)片段的cDNA5μl、pMD18载体0.5μl、10×T4DNA连接酶缓冲液1μl,T4DNA连接酶1μl,加无菌水至10μl,用封口膜封好;置于16℃连接4-6h。将100μl感受态肠杆菌E.coliDH5α加入连接体系中混匀;混合液冰浴30min,42℃热刺激90s后,冰浴5min;加入800μlLB液体培养基,37℃、200rpm摇床培养45min使菌体复苏;培养结束后,常温3,000rpm离心2min收集菌体;在超净台上吸去上清,剩余约0.1ml时,使用移液枪混匀,接入带有Amp抗性的LB固体平板上,用无菌三角棒涂布均匀;37℃过夜培养;挑取菌落接种到带有Amp抗性的LB液体培养基中培养12h,收集菌体,采用质粒抽提试剂盒提取质粒。通过酶切检测获得的重组质粒pMD18-OsRboh(LOC_Os01g25820),具体方法为:向0.5ml的离心管中分别加入:质粒DNA(50ng/μl)2μl、BamHI0.5μl、XbaI0.5μl、10×buffer(K)2μl,使用无菌水补足20μl;37℃反应4h;然后将酶切正确的重组质粒pMD18-CsMADS1进行测序验证插入基因的正确性。
(5)表达载体PHB-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE的构建
使用BamHI和XbaI对质粒pMD18-OsRboh(LOC_Os01g25820)和PHB载体进行双酶切,分别获得5’端带有BamHI和3’端带有XbaI的OsRboh(LOC_Os01g25820)片段和PHB载体,电泳后分别进行胶回收,16℃连接4-6h;将100μl感受态肠杆菌E.coliDH5α加入6μl连接体系中混匀;混合液冰浴30min,42℃热刺激90s后,冰浴5min;加入800μlLB液体培养基,37℃、200rpm摇床培养45min使菌体复苏;培养结束后,常温3,000rpm离心1min收集菌体;在超净台上吸去上清,剩余约0.1ml时,使用移液枪混匀,接入带有Kan抗性的LB固体平板上,用无菌三角棒涂布均匀;37℃过夜培养;挑取菌落接种于LB液体+Kan的培养基,37℃、180rpm培养12h后,提取质粒。通过酶切检测获得的重组质粒PHB-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE,具体方法为:向0.5ml的离心管中分别加入:质粒DNA(50ng/μl)2μl、BamHI0.5μl、XbaI0.5μl、10×buffer(K)2μl,使用无菌水补足20μl;37℃反应4h;经1.5%琼脂糖凝胶电泳检测发现,重组质粒PHB-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE可酶切出预期大小的片段(图2)。将酶切正确的重组质粒送至生工生物工程(上海)股份有限公司测序进行序列验证(其核苷酸序列如SEQIDNO1所示),最后获得表达载体PHB-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE。
实施例2:PHB-OsRboh(LOC_Os01g25820)-OE转农杆菌EHA105
(1)农杆菌感受态细胞制备
挑取农杆菌EHA105单菌落接种于5mlYEB培养基中,28℃摇培过夜,按1:100的比例接种于50mlYEB培养基中扩培,28℃继续培养约6-7h至OD600=0.4-0.6。将菌液置于冰上30min;5000rpm,4℃离心5min,弃上清,将菌体悬于10ml0.15MNaCl中;5000rpm,4℃离心5min,弃上清,菌体用1ml20mMCaCl2,4℃)轻轻悬浮,每管200μl分装,或加入终浓度为20%的无菌甘油,-70℃保存。
(2)农杆菌的转化及鉴定
将10μl质粒DNA加入200μl农杆菌感受态中,混匀,冰浴30min,液氮冷冻3-5min,37℃水浴5min,加入1mlYEB培养基,28℃摇培3-4h。10000rpm,室温离心30s,弃上清,加入200μlYEB培养基重悬菌体,涂于YEB培养基上,28℃培养2天;碱裂解法提取农杆菌质粒DNA,质粒再重新转化大肠杆菌(DH5α),过夜培养后,挑取单菌落液体培养,提取质粒DN并进行PCR鉴定。
实施例3:含PHB-OsRboh(LOC_Os01g25820)的农杆菌EHA105转化水稻
(1)材料的预处理
首先将干种子去壳,去壳种子在70%乙醇中浸泡1分钟,然后在50%漂白剂
(含2%HClO)中灭菌20分钟,再用无菌水洗4次,将整个种子转移至MD2培养基
平板上,26℃暗培养4天。当黄色愈伤组织在胚轴出现时(通常需要四天,在这
期间,根通常有2-5cm长),切除根部和胚乳,将胚轴转移至一个新鲜的NBD2
培养基平板,钝形面向上,26℃暗培养7-10天。
(2)挑取EHA105农杆菌单菌落,在100ml含相应抗性的YEB培养基中震荡培
养约16小时(200rpm,28℃),至OD600为0.6-0.8左右。
(3)3000rmp离心10分钟,在AAM-AS液体培养基液体培养基中重悬沉淀至浓
度OD600为0.6-0.8。
(4)将300个带有黄色愈伤的胚浸泡在细菌悬液中20分钟,间或震荡。
(5)从悬液中收集胚,在两张无菌滤纸间吸干。
(6)在NBD2-AS培养基平板表面放上无菌滤纸,把胚放在滤纸表面,26℃暗培
养2天。
(7)把胚的根部去掉,把胚放入新NBD2培养基平板上(含潮霉素和头孢霉素),
切割面向下,26℃暗培养12天。
(8)再转入新鲜的NBD2培养基平板上(含潮霉素和头孢霉素),26℃暗培养12-15
天,在这个时间可以看见新的愈伤长出。
(9)把抗性愈伤(将抗性愈伤从胚上切下)放在Pre-MS预分化培养基平板上,
26℃暗培养8天。
(10)把愈伤放在生芽培养基MS-H分化培养基平板上,26℃(12小时光照,12
小时黑暗)培养,当绿芽出现(大约15天),立即将它们转入新鲜的MS-H培
养平板上不要加潮霉素(如果只看见绿点,立即将它们转入新鲜的MS-H培养基
平板上加入终浓度为25mg/L的潮霉素,防止愈伤形成),新的无根苗在10天内
形成。
(11)将无根苗移入MSNH再生培养基上,诱导根的形成。
(12)当根形成后,将培养瓶打开7天后,把苗移入温室。
实施例4:转基因植株的鉴定和分析
(1)水稻DNA的提取
将适量的经筛选的水稻叶片放入1.5ml的离心管中,加入400μl的CTAB抽提缓冲液,用蓝色小棒研磨成浆状,加入等体积酚:氯仿:异戊醇(25:24:1),猛烈摇匀,12000rpm,离心10min。取上清至新的离心管中,加入2倍体积的无水乙醇和0.1倍体积的3M醋酸钠(PH5.2),剧烈混匀使DNA成团,放入-20℃沉淀2hr以上。随后12000rpm,离心10min。弃上清,沉淀用70%乙醇洗涤一次后室温晾干,加适量的TE或超纯水溶解。
(2)转基因水稻植株的鉴定
以抽提的DNA为模板、使用引物OsRboh-F:AACTTCAGCATGCGAAGAAGG和载体上的引物rbcs-R:ATTAACTTCGGTCATTAGAGGC进行PCR扩增OsRboh片段,PCR的25μl体系为:PCR缓冲液(10*)2.5μl、Taq0.5μl、cDNA模板2μl、10mMdNTP0.5μl、10μMOsRboh-F引物1μl、10μMOsRboh-R引物1μl、使用无菌水补足25μl。反应条件为:94℃5min,35个循环,94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸60s,72℃反应10min。可以发现大部分转化苗都为阳性植株,能扩增出目的条带,见图3。
(3)转基因水稻植株表型分析
通过尼康D7100数码相机进行拍照,进行表型观察,可以发现在苗期会出现白化苗,见图4,成熟期育性降低,见图5。
转基因水稻植株的DAB染色
过氧化氢的染色采用DAB染色试剂盒(北京赛驰生物科技有限公司)。按照DAB试剂盒说明书的方法,用去离子水将B显色液(B显色液与去离子水按照1:25体积比配制)稀释为B工作液,然后将B工作液与A显色液以25:1的体积比配制成DAB染色液,配好后立即使用。将野生型和转基因植株的叶片置于配好的15mlDAB染色溶液中,放置在光照培养箱中反应8h(27℃,35%湿度,3000LX光照强度),将叶片取出并在盛有20ml75%乙醇的试管中煮沸脱色,通过尼康D7100数码相机进行拍照。可以发现,转基因植株中的过氧化氢含量明显要高于野生型中。
SEQIDNO:1
〈210〉:1
〈211〉:2718
〈212〉:DNA
〈213〉:水稻(OryzasativaL.)
〈400〉:1
ATGGCTGACCTGGAAGCAGGCATGGTTGCTGCTGCCACAGACCAGGGCAATTCAACAAGG60
TCACAAGATGACGCAGCCACACTGATCCCGAACAGTGGCAATCTGGGCTCGAGCAACAGG120
AGCACCAAGACGGCCAGGTTCAAGGACGACGACGAGCTGGTCGAGATCACCCTCGACGTG180
CAGCGCGATTCGGTGGCAATCCAAGAAGTGAGAGGGGTGGATGAGGGTGGCTCCGGGCAC240
GGTACCGGGTTCGACGGCCTGCCACTGGTGTCACCCTCGTCGAAGAGCGGAAAGCTGACG300
TCAAAGCTCAGGCAGGTGACCAATGGGCTCAAGATGAAGAGCTCCAGCAGGAAGGCGCCA360
TCCCCGCAGGCGCAGCAGTCTGCGAAGAGGGTGAGGAAGAGGCTGGACAGGACCAAGAGC420
AGCGCCGCCGTGGCGCTCAAAGGATTGCAGTTTGTGACTGCAAAGGTTGGCAATGACGGC480
TGGGCCGCGGTGGAGAAGCGGTTCAATCAGCTGCAGGTGGATGGTGTGCTGCTCCGTTCA540
AGATTTGGGAAATGCATTGGAATGGATGGGTCCGACGAGTTTGCGGTGCAAATGTTCGAT600
TCTCTGGCGAGGAAGAGAGGGATAGTGAAGCAGGTGCTCACTAAGGACGAGCTCAAAGAT660
TTCTATGAGCAATTGACTGATCAGGGGTTTGACAATCGTCTTCGGACATTCTTTGACATG720
GTTGACAAGAACGCTGATGGAAGGCTCACAGCAGAAGAGGTTAAGGAGATTATTGCCCTT780
AGTGCATCAGCAAACAAACTTTCCAAGATCAAGGAGCGAGCTGATGAGTACACAGCACTC840
ATTATGGAAGAGCTTGACCCTACAAACTTGGGATACATCGAGATGGAGGACTTGGAAGCA900
CTATTGCTTCAGTCACCATCTGAAGCTGCTGCAAGATCAACAACGACGCACAGCTCCAAA960
CTTAGCAAAGCTCTTAGCATGAAGCTTGCGTCTAACAAAGAAATGAGCCCAGTTCGTCAT1020
TACTGGCAGCAGTTCATGTACTTCCTTGAAGAGAATTGGAAGCGCAGTTGGGTTATGACT1080
CTGTGGATCTCAATCTGCATTGCCCTTTTCATTTGGAAGTTCATTCAGTACCGTAATCGA1140
GCCGTATTCGGCATCATGGGTTATTGTGTGACCACTGCAAAGGGTGCTGCAGAGACCCTC1200
AAATTCAACATGGCTTTGGTCCTACTTCCTGTCTGCAGAAATACAATCACATGGATTCGG1260
TCAAAGACACAGGTTGGAGCTGTTGTACCCTTCAACGACAATATAAACTTTCATAAGGTC1320
ATAGCCGCAGGTGTTGCAGTTGGTGTTGCTTTGCATGCAGGTGCTCATCTGACATGTGAT1380
TTTCCCCGGCTGCTCCATGCGAGTGATGCACAATATGAACTAATGAAGCCCTTCTTTGGG1440
GAGAAGAGGCCACCAAATTACTGGTGGTTTGTAAAGGGAACTGAAGGCTGGACAGGTGTG1500
GTCATGGTGGTGCTCATGGCAATAGCATTTACATTAGCCCAACCATGGTTCCGACGTAAC1560
AAGCTCAAGGACTCCAATCCCCTCAAAAAAATGACTGGCTTCAATGCCTTCTGGTTTACC1620
CACCACCTGTTTGTCATTGTGTACACTTTGCTCTTTGTCCATGGAACGTGCTTGTATCTA1680
AGCAGGAAATGGTACAAGAAGACGACATGGATGTACCTCGCTGTTCCTGTTGTCCTGTAT1740
GTAAGTGAGCGTATTCTTCGGTTGTTTAGGAGCCATGATGCAGTTGGGATTCAGAAGGTT1800
GCAGTGTATCCCGGGAATGTATTGGCTCTTTATATGTCGAAGCCACCTGGTTTCAGATAC1860
CGTAGTGGGCAGTACATCTTCATAAAATGCACTGCTGTGTCTCCATATGAATGGCATCCA1920
TTTTCCATAACATCAGCACCTGGAGATGATTATCTTAGTGTTCATATTCGCACAAGGGGT1980
GATTGGACTTCACGGCTTAGAACTGTTTTCTCTGAGGCATGCCGACCCCCCACTGAGGGA2040
GAAAGTGGACTACTTAGAGCTGACCTTTCCAAGGGAATAACGGACGAAAAAGCAAGATTC2100
CCAAAACTTTTGGTCGATGGACCGTATGGTGCACCGGCACAAGATTACCGTGAATACGAT2160
GTGCTACTTCTCATCGGGCTGGGCATCGGAGCCACCCCTTTGATTAGCATTGTGAAGGAC2220
GTGCTTAACCACATTCAAGGTGAGGGATCAGTTGGAACCACGGAGCCGGAGAGCAGCAGC2280
AAGGCGAAGAAGAAACCTTTCATGACGAAGAGAGCCTACTTCTACTGGGTGACGAGAGAG2340
GAGGGCTCGTTTGAGTGGTTCAGAGGCGTCATGAACGAGGTGTCTGAGAAGGACAAGGAT2400
GGAGTCATTGAGCTCCATAACCACTGCTCAAGCGTGTACCAGGAAGGCGATGCTCGTTCT2460
GCTCTCATTGTCATGCTCCAAGAACTTCAGCATGCGAAGAAGGGCGTCGATATCTTGTCG2520
GGAACTAGTGTGAAGACCCATTTCGCACGACCTAATTGGCGAAGCGTCTTCAAGAAGGTT2580
GCGGTCAGCCATGAGAACCAGCGCGTCGGTGTGTTCTACTGTGGTGAGCCTGTGCTGGTT2640
CCCCAACTAAGGCAGTTGTCAGCAGATTTCACCCACAAGACAAACACAAGATTTGATTTC2700
CACAAGGAGAACTTCTAA2718

Claims (2)

1.水稻呼吸爆发氧化酶基因OsRboh(LOC_Os01g25820)的载体,其特征在于:该载体含有水稻OsRboh(LOC_Os01g25820)基因的编码区全长、双35启动子,所述OsRboh(LOC_Os01g25820)基因的GenBank登录号为AK065117。
2.权利要求1所述水稻呼吸爆发氧化酶基因OsRboh(LOC_Os01g25820)的载体的应用,其特征在于:所述水稻呼吸爆发氧化酶基因OsRboh(LOC_Os01g25820)的载体用于改变水稻叶色及育性。
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