一种可同时检测果汁饮料中四种污染菌的基因快速筛查方法
技术领域
本发明属于果汁饮料中污染菌检测方法,特别是一种基于多重PCR技术以及毛细管电泳分离技术,涉及一种可同时检测果汁饮料中四种污染菌的基因快速筛查方法,用于几种常见果汁饮料中污染菌的基因快速筛选方法。
背景技术
果汁是人们生活中喜爱的液体饮料之一,是以水果为原料经过物理方法如压榨、离心、萃取等得到的汁液产品。果汁饮料,尤其是纯果汁里富含身体必需的维生素和微量元素。随着消费者的健康意识增强,果汁饮料的消费量日益增加。
果汁饮料生产加工过程中可能会污染一些病原微生物,在运输和储存中,暴露于非冷藏环境会加剧污染菌的增殖,从而造成异味物质和引起果汁饮料浑浊,从而引起果汁饮料变质,危害消费者的健康。如何能够快速、有效的检测果汁饮料中是否存在污染菌成为本领域亟待解决的问题。
对于果汁饮料中微生物的检测方式主要分为两类,第一类是基于培养基的传统培养法,国内外大多数果汁饮料厂采用此类方法,但检测时间长,且只能定量不能定性到种属,因此无法及时指导生产技术人员对果汁饮料生产过程进行监控;第二类是基于PCR技术的分子生物学检测方法,PCR技术从核酸、基因水平极大地提高了检测效率及灵敏度,能够定性到种、属或一类目标菌,检测快速且定性能力强,因此无论对于成品果汁饮料质量的监控,或者生产过程问题的溯源排查,PCR技术的应用都具有广阔的前景和深远的意义,但一次反应只能检测一类微生物。
大量实验已证实,几种果汁饮料污染菌桔青霉Penicillium citrinum、酿酒酵母Saccharomyces cereviseae、酵母菌Dekera naardenensis、黑曲霉Aspergillus niger,可经受果汁巴氏杀菌过程而存活,从而对高温消毒处理后的果汁仍能造成危害。这几种污染菌的鉴别是一项较复杂的工作,这些微生物需要较长的培养孵育时间,检测过程复杂,因而有必要进行更快速的检测方法。但目前检测方法多为培养基的传统培养法,或者使用单重PCR对每个有害菌进行逐一检测,检测成本高、耗时费力,且不能一次反应得出检测结果,不利于大量样品的快速检测。
发明内容
本发明的目的是针对现有技术的缺陷,克服果汁饮料中几种污染菌检测技术操作繁琐,费时耗力等不足,提供一种由4对引物组成的引物体系,通过采用高通量的多重PCR技术与高分辨率的毛细管电泳分离技术相结合的方式,从而实现对果汁饮料中是否存在污染菌污染的检测。
本发明的技术方案是:
本发明针对4种污染菌对样品进行分析,若能检测出其中任一种污染菌,则说明样品中含有具有果汁饮料污染能力的污染菌。
一种果汁饮料污染菌的快速筛查方法,采用4重PCR同时扩增4种污染菌的基因,再通过毛细管电泳分离所述4重PCR扩增产物,所述4重PCR反应中应用引物SEQ ID NO.1-8。
本发明方法具体如下:
步骤(1)、果汁饮料污染菌的培养及DNA模板提取:
将检测样品在无氧环境中26℃静置过夜富集培养;通过真空泵过滤收集细胞沉淀于滤膜上;将滤膜转移至反应试管,加入50mM EDTA 480ul再加入10mg/ml溶菌酶120ul,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液,之后采用试剂盒提取果汁饮料污染菌的DNA模板;
步骤(2)、多重PCR扩增:
将多重PCR扩增反应体系振荡混匀后,进行多重PCR扩增,得到扩增产物;
所述的多重PCR扩增反应体系为20ul由100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCRBuffer4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,余量的双蒸水组成;其中正向混合引物中SEQ ID NO.1引物、SEQ ID NO.3引物、SEQ ID NO.5、SEQID NO.7引物的浓度比为1:1:1:1,反向混合引物中SEQ ID NO.2引物、SEQ ID NO.4引物、SEQ ID NO.6、SEQ ID NO.8引物的浓度比为1:1:1:1;
所述的多重PCR扩增反应的条件是95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;
表1本发明用于污染菌的基因检测的4重引物体系各引物序列
步骤(3)、毛细管电泳分离条件:
分离体系:1ul所述步骤(2)中所得的扩增产物与体积含量为95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;
分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min;
步骤(4)、检测鉴定:
步骤(2)中所得的扩增产物经过毛细管电泳分离时,通过多重基因表达遗传分析系统自动检索、收集样品中荧光信号判断是否在基因片段长度为160bp、192bp、201bp、247bp相应位置处出现特征峰;若在160bp相应位置处出现特征峰,则判断为该检测样品中含有桔青霉Penicillium citrinum;若在192bp相应位置处出现特征峰,则判断为该检测样品中含有酿酒酵母Saccharomyces cereviseae;若在201bp相应位置处出现特征峰,则判断为该检测样品中含有酵母菌Dekera naardenensis;若在247bp相应位置处出现特征峰,则判断为该检测样品中含有黑曲霉Aspergillus niger。
表2果汁饮料污染菌基因特征峰位置
与现有技术相比本发明具有如下特点:
其一,本发明可在同一PCR管中进行,操作简单,能快速确定果汁饮料中是否存在污染菌,且检测结果准确;
其二,通过分析基因确定桔青霉Penicillium citrinum、酿酒酵母Saccharomycescereviseae、酵母菌Dekera naardenensis、黑曲霉Aspergillus niger在果汁饮料中的微量存在,及时发现果汁饮料中有害菌,实现有效的监测及预防作用;
其三,本发明相对于目前其他以PCR技术为基础的分子生物学检测手段,能够在一次反应中集成检测4种果汁饮料污染菌,节约了检测成本,节省了检测时间,检测时间由原7~14天缩短到8h。
附图说明
图1为本发明具体实施例1的多重PCR-毛细管电泳谱图;
图2为本发明具体实施例2的多重PCR-毛细管电泳谱图。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明做进一步的分析。
实施例1:
(1)果汁饮料污染菌的培养及DNA模板提取:
挑取平板培养基上长出的桔青霉Penicillium citrinum、酿酒酵母Saccharomyces cereviseae、酵母菌Dekera naardenensis、黑曲霉Aspergillus niger单菌落加入10mL成品苹果汁中,混匀,制成菌悬液;取1mL该菌悬液加入1.5ml离心管中,13,000×g离心2min,收集细胞沉淀,移去上清液;加入480ul的50mMEDTA彻底重悬细胞;加入120ul的10mg/ml溶酶菌,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液。之后按照Qiagen公司的Genomic DNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取果汁饮料污染菌的DNA模板,并使用紫外分光光度计在260nm波长条件下测定提取的DNA质量,将DNA溶液稀释至250ng/ul,-20℃保存备用。
(2)四重PCR扩增
所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1-8,20ulPCR反应体系:100nM正向8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCRBuffer4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;(3)毛细管电泳分离条件
分离体系:1ul所述步骤(2)中所得的扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min;
使用贝克曼库尔使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,结果图1所示,在基因片段长度为160bp、192bp、201bp、247bp相应位置处均出现特征峰,故四种污染菌基因被检出,认为检测过程果汁对检测结果没有影响,使用本发明能够捕捉到样品中桔青霉Penicillium citrinum、酿酒酵母Saccharomyces cereviseae、酵母菌Dekera naardenensis、黑曲霉Aspergillus niger基因的特征峰。
实施例2:
取某果汁饮料厂生产车间500mL的果汁10瓶,使用孔径为0.45μm的滤膜分2次进行过滤,每次使用1片滤膜过滤250mL;对一片滤膜使用黑曲霉Aspergillus niger检测培养基察氏培养基在26℃,经7天厌氧培养后检测得到18个菌落,并以此作为实验对照;对另一片滤膜,使用1mL无菌水进行震荡洗涤,收集洗涤液加入1.5ml离心管中,13,000×g离心2min,收集细胞沉淀,移去上清液;加入480ul50mMEDTA彻底重悬细胞;加入120ul的10mg/ml溶酶菌,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液。之后按照Qiagen公司GenomicDNAPurification Kit试剂盒的使用说明提取果汁饮料污染菌的DNA模板。
多重PCR反应体系使用Thermo-DNA Polymerase DNA试剂盒,使用3重PCR反应体系,所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1-8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCR缓冲液4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;
毛细管电泳分离条件:采用分离体系:1ul上述多重PCR扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min,使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,得到多重PCR-毛细管电泳谱图。结果如图2所示,在247bp相应位置处出现特征峰,则判断检测出黑曲霉Aspergillus niger,说明样品中含有具有果汁饮料污染能力的黑曲霉,且与对照培养实验结果相吻合。
实施例3:
乳酸菌(Lactobacillus)是果汁饮料中另一种常见污染菌。本实例可以证明本发明对桔青霉Penicillium citrinum、酿酒酵母Saccharomyces cereviseae、酵母菌Dekeranaardenensis、黑曲霉Aspergillus niger的检测特异性,即本发明的检测方法在仅乳酸菌(Lactobacillus)存在情况下,未显示特征峰,即说明乳酸菌(Lactobacillus)存在不会对检测产生干扰。
本实例再采用常见污染菌短乳杆菌Lactobacillus brevis、干酪乳杆菌Lactobacillus casei、乳酸杆菌Lactobacillus coryniformi、植物乳杆菌Lactobacillusplantarum作为干扰菌。操作步骤如实施例1或2所述。
(1)污染菌的培养及DNA模板提取:
分别挑取平板培养基上长出的短乳杆菌Lactobacillus brevis、干酪乳杆菌Lactobacillus casei、乳酸杆菌Lactobacillus coryniformi、植物乳杆菌Lactobacillusplantarum单菌落加入10mL成品果汁中,混匀,制成菌悬液;取1mL该菌悬液加入1.5ml离心管中,13,000×g离心2min,收集细胞沉淀,移去上清液;加入480ul的50mMEDTA彻底重悬细胞;加入120ul的10mg/ml溶酶菌,37℃孵育60min,13,000×g离心2min,移去上清液。之后按照Qiagen公司的Genomic DNA Purification Kit试剂盒的使用说明提取污染菌的DNA模板,并使用紫外分光光度计在260nm波长条件下测定提取的DNA质量,将DNA溶液稀释至250ng/ul,-20℃保存备用。
所用引物体系为表1所述的SEQ ID NO.1-8,20ulPCR反应体系:100nM正向混合引物2ul,100nM反向混合引物2ul,25mM的MgCl24ul,5×PCRBuffer4ul,5U/ul的Taq聚合酶0.7ul,DNA模板1ul,补足双蒸水使总体积为20ul;95℃预变性10min;以94℃30s;58℃30s;70℃1min为1个循环,共进行35个循环;4℃保温;
(3)毛细管电泳分离条件
分离体系:1ul所述步骤(2)中所得的扩增产物与95%去离子甲酰胺38.5ul,400bpDNA Marker0.5ul混合均匀;分离条件:在50℃、6.0KV电压下,分离35min;
使用贝克曼库尔特的GenomeLabGeXP Genetic Analysis System分析系统自动对分离结果进行分析,结果显示,没有特征峰出现,即平板培养基上长出的短乳杆菌Lactobacillus brevis、干酪乳杆菌Lactobacillus casei、乳酸杆菌Lactobacilluscoryniformi、植物乳杆菌Lactobacillus plantarum的存在对检测结果均没有影响,不会出现假阳性结果。
上述实施例并非是对于本发明的限制,本发明并非仅限于上述实施例,只要符合本发明要求,均属于本发明的保护范围。
EQUENCE LISTING
<110> 杭州电子科技大学
<120> 一种可同时检测果汁饮料中四种污染菌的基因快速筛查方法
<130> 1
<160> 8
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 41
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 1
tcgatgacac tcagacatcc cacccgtgtt gcccgaacct a 41
<210> 2
<211> 40
<212> DNA
<213> 人工合成
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<210> 3
<211> 38
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 3
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<210> 4
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<212> DNA
<213> 人工合成
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<210> 5
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<210> 6
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<213> 人工合成
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<210> 7
<211> 41
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 7
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<210> 8
<211> 40
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 8
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