CN105246357A - 提高组合训练后肌肉蛋白质合成的方法 - Google Patents

Abstract

本公开提供提高强体力活动后肌肉蛋白质合成的方法。在总的实施方案中，提供提高强体力活动后肌肉蛋白质合成的方法，所述方法包括组合训练后立即对个体施用包含约15g至约35g蛋白质的组合物。也提供提高由组合训练导致的肌肉适应的程序。所述程序包括提供包含约15g至约35g蛋白质的组合物；以及提供消耗指南，所述消耗指南包括组合训练后立即消耗的所述组合物的量的推荐。

Description

提高组合训练后肌肉蛋白质合成的方法

发明领域

本公开通常涉及健康和健身。更具体地，本公开涉及提高组合训练后肌肉蛋白质合成的方法。

发明背景

体育运动改变了“开始”蛋白质合成中所涉及的蛋白质(即，信号分子)的活性，其确定合成哪种肌肉蛋白质以及何时发生该合成。与分子应答类似，单回合的运动后蛋白质合成中的变化主要特定于运动任务，例如抗阻运动增加提高强度中所涉及的蛋白质(即，肌原纤维)的合成，有氧运动增加能量供应所涉及的蛋白质(即，线粒体)。对于重复的体育运动，信号转导分子活性和肌肉蛋白质合成中的这些变化在数周和数月的时期内累加(即，经过训练)为生理性适应，使得运动员在具体的运动任务/事件中表现更好。

特别是关于何种营养以及其如何支持和优化这些训练适应只有有限的信息。而且，许多运动任务在抗阻部分后具有有氧部分，并且因此相对地不了解在分子信号转导通路中以及不同肌肉蛋白质的合成中发生何种精确变化。

对于这两种协同运动的组合，运动和营养(特别是蛋白质摄取)是肌肉蛋白质合成的有效刺激物。已表明肌肉蛋白质合成的刺激是特定于并且取决于特定的运动刺激的蛋白质组分。例如，抗阻运动通常刺激线粒体蛋白质组分合成的增加，包括肌原纤维蛋白质组分，而有氧运动优选增加线粒体蛋白质组分。然而，当训练特定的体育表现时，体育运动员进行抗阻运动和耐力运动两者是常见的。这种运动组合通常被称为组合训练并且具有功效，因为在不考虑目标体育表现的耐力或阻力重点时每种模式的特异性适应是有益的。因此，需要确定蛋白质摄取对来自组合训练的适应的潜在影响。

发明概述

在本公开中，提供提高肌肉蛋白质合成的方法。在一个实施方案中，提供提高强体力活动后肌肉蛋白质合成的方法。所述方法包括组合训练后立即对个体施用包含约15g至约35g蛋白质的组合物。

在另一个实施方案中，提供提高线粒体蛋白质合成的方法。所述方法包括组合训练后立即对个体施用包含约15g至约35g蛋白质的组合物。

在另一个实施方案中，提供提高肌原纤维蛋白质合成的方法。所述方法包括组合训练后立即对个体施用包含约15g至约35g蛋白质的组合物。

而在另一个实施方案中，提供提高由组合训练导致的肌肉适应的程序。所述程序旨在对运动员提供营养和关于训练的指南以改善肌肉蛋白质合成。所述程序包括提供包含约15g至约35g蛋白质的组合物；以及提供消耗指南，所述消耗指南包括组合训练后立即消耗的组合物的量的推荐。

在一个实施方案中，组合物包括约20g至约30g蛋白质，或约25g蛋白质。

在一个实施方案中，组合物包括选自以下的必需氨基酸：苯丙氨酸、缬氨酸、苏氨酸、色氨酸、异亮氨酸、甲硫氨酸、亮氨酸、赖氨酸、组氨酸或其组合。

在一个实施方案中，组合物富含组合物的至多约10重量％，或组合物的至多约5重量％的量的L-[环-13C6]苯丙氨酸。

在一个实施方案中，提高的蛋白质合成是线粒体蛋白质合成。

在一个实施方案中，提高的蛋白质合成是肌原纤维蛋白质合成。

组合物可为选自以下的形式：固体、凝胶、液体、现用现混粉末或其组合。在一个实施方案中，组合物为液体。

在一个实施方案中，组合物的份餐量为约500mL。

在一个实施方案中，组合训练后约0至约30分钟、或组合训练后约2至约15分钟、或组合训练后约5至约10分钟、或组合训练后约5分钟内施用组合物。

在一个实施方案中，蛋白质选自基于乳品的蛋白质、基于植物的蛋白质、基于动物的蛋白质、人工蛋白质或其组合。基于乳品的蛋白质可选自酪蛋白、酪蛋白酸盐、酪蛋白水解物、乳清、乳清水解产物、乳清浓缩物、乳清分离物、乳蛋白浓缩物、乳蛋白分离物或其组合。基于植物的蛋白质可选自大豆蛋白，豌豆蛋白，卡诺拉(canola)蛋白，小麦蛋白和分级小麦蛋白，玉米蛋白，玉米醇溶蛋白，水稻蛋白，燕麦蛋白，土豆蛋白，花生蛋白，嫩豌豆粉，青刀豆粉，螺旋藻，来源于蔬菜、大豆、荞麦、小扁豆、豆类的蛋白质，单细胞蛋白质或其组合。

在一个实施方案中，蛋白质为乳清蛋白。

在一个实施方案中，组合物还包含选自以下的益生元：阿拉伯树胶、α葡聚糖、阿拉伯半乳聚糖、β葡聚糖、右旋糖酐、果寡糖、岩藻糖基乳糖、半乳寡糖、半乳甘露聚糖、龙胆寡糖、葡寡糖、瓜尔豆胶、菊粉、异麦芽寡糖、乳糖新四糖(lactoneotetraose)、低聚乳果糖、乳果糖、果聚糖、麦芽糊精、乳中寡糖、部分水解的瓜尔豆胶、果胶低聚糖、抗性淀粉、回生淀粉、唾液低聚糖、唾液酸乳糖、大豆低聚糖、糖醇类、木寡糖、它们的水解产物或其组合。

在一个实施方案中，组合物还包括选自以下的益生菌：益生菌，包括气球菌属(Aerococcus)、曲霉属(Aspergillus)、拟杆菌属(Bacteroides)、双歧杆菌属(Bifidobacterium)、念珠菌属(Candida)、梭菌属(Clostridium)、德巴利酵母属(Debaromyces)、肠球菌属(Enterococcus)、梭杆菌属(Fusobacterium)、乳杆菌属(Lactobacillus)、乳球菌属(Lactococcus)、明串珠菌属(Leuconostoc)、蜜蜂球菌属(Melissococcus)、微球菌属(Micrococcus)、毛霉菌属(Mucor)、酒球菌属(Oenococcus)、片球菌属(Pediococcus)、青霉菌属(Penicillium)、消化链球菌属(Peptostrepococcus)、毕赤酵母属(Pichia)、丙酸杆菌属(Propionibacterium)、Pseudocatenulatum、根霉菌属(Rhizopus)、酵母属(Saccharomyces)、葡萄球菌属(Staphylococcus)、链球菌属(Streptococcus)、球拟酵母属(Torulopsis)、魏斯氏菌属(Weissella)或其组合。

在一个实施方案中，组合物还包含选自以下的植物营养素：黄酮类、酚类化合物同类物、多酚类化合物、萜类、生物碱类、含硫化合物或其组合。

在一个实施方案中，植物营养素选自类胡萝卜素、植物甾醇、槲皮素、姜黄素、柠檬苦素或其组合。

在一个实施方案中，组合物还包含选自以下的核苷酸：脱氧核糖核酸的亚单位、核糖核酸的亚单位、DNA和RNA的聚合形式或其组合。在一个实施方案中，核苷酸为外源核苷酸。

在一个实施方案中，组合物还包括选自以下的抗氧化剂：虾青素、类胡萝卜素、辅酶Q10(“CoQ10”)、类黄酮类、谷胱甘肽、枸杞(枸杞(wolfberry))、橘皮苷、乳枸杞(lactowolfberry)、木酚素、叶黄素、番茄红素、多酚类、硒、维生素A、维生素C、维生素E、玉米黄素或其组合，

在一个实施方案中，组合物还包含维生素，其中维生素选自维生素A，维生素B1(硫胺素)，维生素B2(核黄素)，维生素B3(烟酸或烟酰胺)，维生素B5(泛酸)，维生素B6(吡哆醇、吡哆醛或吡哆胺，或者盐酸吡哆醇)，维生素B7(生物素)，维生素B9(叶酸)和维生素B12(多种钴胺素；维生素添加剂中通常为氰钴胺素)，维生素C，维生素D，维生素E，维生素K、K1和K2(即，MK-4、MK-7)，叶酸，生物素或其组合。

在一个实施方案中，组合物还包含矿物质，其中矿物质选自硼、钙、铬、铜、碘、铁、镁、锰、钼、镍、磷、钾、硒、硅、锡、钒、锌或其组合。

而在另一个实施方案中，营养试剂盒包括多份具有约15g至约35g蛋白质的组合物以及推荐运动员在组合训练后立即消耗组合物的指南。

在一个实施方案中，多份组合物和指南在同一个包装内。

在一个实施方案中，组合物包括约20g至约30g蛋白质，或约25g蛋白质。

在一个实施方案中，组合物包括选自以下的必需氨基酸：苯丙氨酸、缬氨酸、苏氨酸、色氨酸、异亮氨酸、甲硫氨酸、亮氨酸、赖氨酸、组氨酸或其组合。

在一个实施方案中，组合物富含组合物的至多约10重量％，或组合物的至多约5重量％的量的L-[环-13C6]苯丙氨酸。

在一个实施方案中，提高的蛋白质合成为线粒体蛋白质合成。

在一个实施方案中，提高的蛋白质合成为肌原纤维蛋白质合成。

组合物可为选自以下的形式：固体、凝胶、液体、现用现混粉末或其组合。在一个实施方案中，组合物为液体的。

在一个实施方案中，组合物的份餐量为约500mL。

在一个实施方案中，组合训练后约0至约30分钟、或组合训练后约2至约15分钟、或组合训练后约5至约10分钟、或组合训练后约5分钟内施用组合物。

在一个实施方案中，蛋白质选自基于乳品的蛋白质、基于植物的蛋白质、基于动物的蛋白质、人工蛋白质或其组合。基于乳品的蛋白质可选自酪蛋白、酪蛋白酸盐、酪蛋白水解物、乳清、乳清水解物、乳清浓缩物、乳清分离物、乳蛋白浓缩物、乳蛋白分离物或其组合。基于植物的蛋白质可选自大豆蛋白，豌豆蛋白，卡诺拉(canola)蛋白，小麦蛋白和分级小麦蛋白，玉米蛋白，玉米醇溶蛋白，水稻蛋白，燕麦蛋白质，土豆蛋白质，花生蛋白质，嫩豌豆粉，青刀豆粉，螺旋藻，来源于蔬菜、大豆、荞麦、小扁豆、豆类的蛋白质，单细胞蛋白质或其组合。

在一个实施方案中，蛋白质为乳清蛋白。

在一个实施方案中，多份组合物还包含选自以下的益生元：阿拉伯树胶、α葡聚糖、阿拉伯半乳聚糖、β葡聚糖、右旋糖酐、果寡糖、岩藻糖基乳糖、半乳寡糖、半乳甘露聚糖、龙胆寡糖、葡寡糖、瓜尔豆胶、菊粉、异麦芽寡糖、乳糖新四糖、低聚乳果糖、乳果糖、果聚糖、麦芽糊精、乳中寡糖、部分水解的瓜尔豆胶、果胶低聚糖、抗性淀粉、回生淀粉、唾液低聚糖、唾液酸乳糖、大豆低聚糖、糖醇类、木寡糖、它们的水解产物或其组合。

在一个实施方案中，多种组合物还包含选自以下的益生菌：益生菌，包括气球菌属、曲霉属、拟杆菌属、双歧杆菌属、念珠菌属、梭菌属、德巴利酵母属、肠球菌属、梭杆菌属、乳杆菌属、乳球菌属、明串珠菌属、蜜蜂球菌属、微球菌属、毛霉菌属、酒球菌属、片球菌属、青霉菌属、消化链球菌属、毕赤酵母属、丙酸杆菌属、Pseudocatenulatum、根霉菌属、酵母属、葡萄球菌属、链球菌属、球拟酵母属、魏斯氏菌属或其组合。

在一个实施方案中，多份组合物还包含选自以下的植物营养素：黄酮类、酚类化合物同类物、多酚类化合物、萜类、生物碱类、含硫化合物或其组合。

在一个实施方案中，植物营养素选自类胡萝卜素、植物甾醇、槲皮素、姜黄素、柠檬苦素或其组合。

在一个实施方案中，多种组合物还包含选自以下的核苷酸：脱氧核糖核酸的亚单位、核糖核酸的亚单位、DNA和RNA的聚合形式或其组合，在一个实施方案中，核苷酸为外源核苷酸。

在一个实施方案中，多份组合物还包含选自以下的抗氧化剂：虾青素、类胡萝卜素、辅酶Q10(“CoQ10”)、黄酮类、谷胱甘肽、枸杞(枸杞(wolfberry))、橘皮苷、乳枸杞、木酚素、叶黄素、番茄红素、多酚类、硒、维生素A、维生素C、维生素E、玉米黄素或其组合。

在一个实施方案中，多份组合物还包含维生素，其中维生素选自维生素A，维生素B1(硫胺素)，维生素B2(核黄素)，维生素B3(烟酸或烟酰胺)，维生素B5(泛酸)，维生素B6(吡哆醇、吡哆醛或吡哆胺、或者盐酸吡哆醇)，维生素B7(生物素)，维生素B9(叶酸)和维生素B12(多种钴胺素；维生素添加剂中通常为氰钴胺素)，维生素C，维生素D，维生素E，维生素K、K1和K2(即，K-4、MK-7)，叶酸，生物素或其组合。

在一个实施方案中，多份组合物还包含矿物质，其中矿物质选自硼、钙、铬、铜、碘、铁、镁、锰、钼、镍、磷、钾、硒、硅、锡、钒、锌或其组合。

本公开的优点是提供提高组合训练后肌肉蛋白质合成的改善方法。

而本公开的另一优点是提供用于提高由组合训练导致的肌肉适应的程序。

而本公开的另一优点是提供包括设计为提高组合训练后肌肉蛋白质的合成的多份组合物的试剂盒。

本公开的另一优点是提供组合训练后通过施用蛋白质提高线粒体蛋白质合成的方法。

本公开的另一优点是提供组合训练后通过施用蛋白质提高肌原纤维蛋白质合成的方法。

本文描述了其他的特征和优点，并且这些特征和优点在下面的详细描述和附图中是显而易见的。

附图简述

图1是本公开的实施例的示意图。整夜禁食后个体到实验室报到，在采样起始休息的血液之后，开始持续输注L-[环-13C6]苯丙氨酸。开始示踪剂输注后180分钟，获取本底的肌肉活体组织检查(股外侧肌)，然后个体完成由15分钟间隔的抗阻运动(8组5个80％1-RM的腿部伸展)和耐力运动(30分钟70％VO₂峰值的骑自行车)组成的组合运动期。运动后，个体立即消耗500mL一剂蛋白质(25g乳清)或安慰剂。运动后1小时和4小时取另外的肌肉活体组织检查。

图2示例了在休息时，和当抗阻运动(8组5个80％1-RM的腿部伸展)和耐力运动(30分钟70％VO2峰值的骑自行车)的组合运动期后且运动后立即摄取500mL安慰剂或蛋白质饮料后240分钟的恢复期间，试验参加者的(A)血浆胰岛素浓度、(B)总血浆氨基酸浓度以及(C)血浆支链氨基酸浓度的曲线图。值为平均值±标准偏差。显著性差异(P<0,05)对(a)休息。

图3示例了在休息时，和当抗阻运动(8组5个80％1-RM的腿部伸展)和耐力运动(30分钟70％VO2峰值的骑自行车)的组合运动期后且运动后立即摄取500mL安慰剂或蛋白质饮料后4小时的运动后恢复期间，试验参加者的骨骼肌中(A)AktSer473磷酸化、(B)哺乳动物雷帕霉素靶蛋白质(mTOR)Ser2448磷酸化、(C)p70S6KThr389磷酸化和(D)真核延伸因子2(eEF2)Thr56磷酸化的曲线图。数值相对于α-微管蛋白质表示并且以任意单位出现(平均值±标准偏差，n＝8)。与(a)休息、(b)1小时、和(*)相同时间点的处理(安慰剂对蛋白质)之间比较的显著性差异(P<0.05)。

图4示例了在休息时，和当抗阻运动(8组5个80％1-RM的腿部伸展)和耐力运动(30分钟70％VO₂峰值的骑自行车)的组合运动期后且运动后立即摄取500mL安慰剂或蛋白质饮料后4小时的运动后恢复期间，试验参加者的骨骼肌中(A)5’单磷酸腺苷激活的蛋白质激酶(AMPK)Thr72磷酸化和(B)糖原合成酶(GS)Ser641磷酸化的曲线图。数值相对于α-微管蛋白质表示并且以任意单位出现(平均值±标准偏差，n＝8)。与(a)休息、(b)1小时、和(*)相同时间点处的处理(安慰剂对蛋白质)之间比较的显著性差异(P<0.05)。

图5示例了在休息时，和当抗阻运动(8组5个80％1-RM的腿部伸展)和耐力运动(30分钟70％VO₂峰值的骑自行车)的组合运动期后且运动后立即摄取500mL安慰剂或蛋白质饮料后4小时的恢复期间，试验参加者的(A)肌肉环状指蛋白1(“MuRF1”)信使核糖核酸(“mRNA”)丰度、(B)肌萎缩素(atrogin)mRNA丰度和(C)肌生长抑素mRNA丰度。数值相对于3-磷酸甘油醛脱氢酶(“GAPDH”)表示并且以任意单位出现(平均值±标准偏差，n＝8)。与(a)休息、(b)1小时、和(*)相同时间点处的处理(安慰剂对蛋白质)之间比较的显著性差异(P<0.05)。

图6示例了在休息时，和当抗阻运动(8组5个80％1-RM的腿部伸展)和耐力运动(30分钟70％VO₂峰值的骑自行车)的组合运动期后且运动后立即摄取500mL安慰剂或蛋白质饮料后运动后4小时的恢复期间，试验参加者的(A)过氧化物酶体增殖物活化受体γ共激活因子-1α(“PGC-1α”)mRNA丰度、(B)己糖激酶mRNA丰度和(C)血管内皮生长因子mRNA丰度的曲线图。相对于3-磷酸甘油醛脱氢酶(“GAPDH”)表示值并且以任意单位出现(平均值±标准偏差，n＝8)。与(a)休息、(b)1小时、和(*)相同时间点处的处理(安慰剂对蛋白质)之间比较的显著性差异(P<0.05)。

图7示例了当抗阻运动(8组5个80％1-RM的腿部伸展)和耐力运动(30分钟70％VO₂峰值的骑自行车)的组合运动期后且运动后立即摄取500mL安慰剂或蛋白质(25g乳清蛋白)饮料后1-4小时的恢复期间，试验参加者的(A)肌原纤维(n＝8)和(B)线粒体(n＝6)蛋白质组分合成的速率。数值被表示为％/小时并且以组平均值的各个数据出现。与(a)休息和(*)安慰剂与蛋白质比较的显著性差异(P<0.05)。

发明详述

本公开和所附权利要求书中使用的单数形式“一个(a)”、“一种(an)”和“所述(the)”包括复数形式，除非文中另有明确指示。因此，例如，提及的“氨基酸”包括两种或更多种氨基酸”的混合物，等等。

本文所使用的“约”被理解为指数值范围中的数字。而且，本文所有的数值范围应被理解为包括范围内所有的整数、整体或分数。

本文所使用的术语“氨基酸”被理解为包括一种或多种氨基酸。例如，氨基酸可为丙氨酸、精氨酸、天冬酰胺、天冬氨酸盐、瓜氨酸、半胱氨酸、谷氨酸、谷氨酰胺、甘氨酸、组氨酸、羟脯氨酸、羟丝氨酸、羟酪氨酸、羟赖氨酸、异亮氨酸、亮氨酸、赖氨酸、甲硫氨酸、苯丙氨酸、脯氨酸、丝氨酸、牛磺酸、苏氨酸、色氨酸、酪氨酸、缬氨酸或其组合。

本文所使用的“动物”包括但不限于哺乳动物，其包括但不限于，啮齿动物，水栖哺乳动物，诸如狗和猫的家养动物，诸如羊、猪、牛和马的农场动物，以及人。当使用术语“动物”或“哺乳动物”或者它们的复数形式时，考虑到它也适用于能够由文中上下文显示或意图被显示的作用的任何动物。

本文所使用的术语“抗氧化剂”被理解为包括多种物质中的任一种或多种，诸如β-胡萝卜素(维生素A前体)、维生素C、维生素E和硒，其能抑制由活性氧(“ROS”)以及其他自由基和非自由基促进的氧化作用或反应。此外，抗氧化剂为能够减缓或防止其他分子氧化的分子。抗氧化剂的非限制性实例包括类胡萝卜素、辅酶Q10(“CoQ10”)、黄酮类、谷胱甘肽、枸杞(枸杞(wolfberry))、橘皮苷、乳枸杞、木酚素、叶黄素、番茄红素、多酚类、硒、维生素A、维生素B₁、维生素B₆、维生素B₁₂、维生素C、维生素D、维生素E、玉米黄素或其组合。

本文所使用的“碳水化合物”意指包括：

单糖，其包括但不限于丙糖(如丙酮糖(二羟基丙酮)、丙醛糖(甘油醛))；四糖，其包括丁酮糖(如：赤藓酮糖)和丁醛糖(如赤藓糖、苏糖)；戊糖，其包括戊酮糖(如核酮糖、木酮糖)，戊醛糖(如核糖、阿拉伯糖、木糖、来苏糖)，脱氧糖(如脱氧核糖)；己糖，其包括己酮糖(如阿洛酮糖、果糖、山梨糖、塔格糖)，己醛糖(如阿洛糖、阿卓糖、葡萄糖、甘露糖、古洛糖、艾杜糖、半乳糖、塔罗糖)，脱氧糖(如岩藻糖、墨角藻糖、鼠李糖)；庚糖(如景天庚酮糖)；辛糖；壬糖(如神经氨酸)；

二糖，其包括但不限于蔗糖；乳糖；麦芽糖；海藻糖；松二糖；纤维二糖；曲二糖(kojiboise)；黑曲霉糖；异麦芽糖和帕拉金糖；

三糖，其包括但不限于松三糖和麦芽三糖；

低聚糖，其包括但不限于，玉米糖浆和麦芽糊精；以及

多糖，其包括但不限于，葡聚糖(如糊精、右旋糖酐、β-葡聚糖)，糖原，甘露聚糖，半乳聚糖和淀粉(如来自玉米、小麦、木薯粉、大米和土豆的淀粉，其包括直链淀粉和支链淀粉。淀粉可为天然的或改性的或胶状的)；

或上述碳水化合物的组合。

碳水化合物也应被理解为包括甜味剂来源，如蜂蜜、枫糖浆、葡萄糖(右旋糖)、玉米糖浆、玉米糖浆固体、高果糖玉米糖浆、结晶果糖、浓缩果汁和结晶果汁。

本文所使用的“组合训练”指组合的抗阻运动和耐力运动。

本文所使用的“有效量”为预防缺陷、治疗个体的疾病或医学病况，或更普遍地说，减少症状、控制疾病进展或对个体提供营养、生理或医学有益性的量。治疗可与患者相关或医生相关。

本文所使用的诸如α亚麻酸(“ALA”)、二十二碳六烯酸(“DHA”)和二十碳五烯酸(“EPA”)的ω-3脂肪酸的来源的非限制性实例包括鱼油，磷虾，家禽，蛋，或其他植物或坚果来源(如亚麻仁、核桃、杏仁、藻类、转基因植物等等)。

本文所使用的“食品级微生物”指被用于供食品使用且通常被认为是安全的微生物。

本文所使用的“之后立即”指活动后约0至约30分钟、或约2至约15分钟、或约5至10分钟，行为(例如，消耗蛋白质饮料)发生。在一个实施方案中，活动后约5分钟内进行所述行为。

虽然术语“个体”和“患者”在本文中经常用于指人，但本发明并不限制于此。因此，术语“个体”和“患者”指具有或处于疾病病况风险中能得益于治疗的任何动物、哺乳动物或人。

本文所使用的“哺乳动物”包括但不限于啮齿类，水栖哺乳动物，诸如狗和猫的家养动物，诸如羊、猪、牛和马的农场动物以及人。当使用术语“哺乳动物”时，考虑到它也适用于能够通过哺乳动物显示或意图被显示的作用的其他动物。

术语“微生物”意指包括细菌、酵母和/或真菌，含有微生物的细胞生长培养基或培养微生物的细胞生长培养基。

本文所使用的术语“矿物质”被理解为包括硼、钙、铬、铜、碘、铁、镁、锰、钼、镍、磷、钾、硒、硅、锡、钒、锌或其组合。

本文所使用的“无复制型”微生物指通过经典的平板培养法没能检测到活细胞和/或菌落形成单位。微生物学教科书(JamesMonroeJay等.2005.ModernFoodMicrobiology,第7版.SpringerScience,NewYork,NY,790页)中总结了这种经典的平板培养法。通常，不存在活细胞可以显示如下：接种不同浓度的细菌制剂(“无复制型样品”)并在合适的条件下(有氧和/或厌氧环境下至少24小时)培养后琼脂平板上无可视的菌落或液体生长培养基中无增加的浊度。例如，可通过热处理，特别是低温/长时间的热处理使诸如长双歧杆菌、乳酸双歧杆菌和短双歧杆菌的双歧杆菌，或诸如副干酪乳杆菌(Lactobacillusparacasei)或鼠李糖乳杆菌(Lactobacillusrhamnosus)的乳酸杆菌无复制。

本文所使用的“核苷酸”被理解为脱氧核糖核酸(“DNA”)或核糖核酸(“RNA”)的亚单位。它是由含氮碱基、磷酸分子和糖分子(DNA中的脱氧核糖以及RNA中的核糖)组成的有机化合物。将各个核苷酸的单体(单个单元)连在一起形成聚合体或长链。通过膳食补充特别提供外源核苷酸。外源核苷酸可为单体形式，例如，5'-腺苷单磷酸(“5'-AMP”)、5'-鸟苷单磷酸(“5'-GMP”)、5'-胞嘧啶单磷酸(“5'-CMP”)、5'-尿嘧啶单磷酸(“5-UMP”)、5'-肌苷单磷酸(“5'-IMP”)、5'-胸腺嘧啶单磷酸(“5'-TMP”)或其组合。外源核苷酸也可为聚合型例如，完整的RNA。存在多种聚合型的来源，例如，酵母RNA。

本文所使用的“营养组合物”或“营养产物”被理解为包括任意数量的可选的其他组分，其包括常规的食品添加剂，例如一种或多种酸化剂、另外的增稠剂、用于pH调节的缓冲液或试剂、螯合剂、着色剂、乳化剂、赋形剂、调味剂、矿物质、渗透剂、药学上可接受的载体、防腐剂、稳定剂、糖、甜味剂、调质剂和/或维生素。可加入任何合适量的可选组分。

本文所使用的“植物化学物质”或“植物营养素”为存在于许多食品中的非营养化合物，植物化学物质为具有超过基本营养的健康有益性的功能性食品，以及其为来自植物来源的促进健康的化合物。“植物化学物质”和“植物营养素”指由植物所产生的给予使用者一种或多种健康有益性的任何化学制品。植物化学物质和植物营养素的非限制性实例包括以下这些物质：

i)酚类化合物，其包括单酚(如，芹菜脑，鼠尾草酚，香芹酚，莳萝油脑，迷迭香酚)；黄酮类(多酚类)，所述黄酮类包括黄酮醇类(如，槲皮素、fingerol、山柰酚、杨梅酮、芸香苷、异鼠李素)，黄烷酮类(如，例如，fesperidin、柚皮素、水飞蓟素、圣草酚)，黄酮(如，芹黄素、柑桔黄酮、毛地黄黄酮)，黄烷-3-醇(如，儿茶素、(+)-儿茶素、(+)-没食子儿茶素、(-)-表儿茶素、(-)-表没食子儿茶素、(-)-表没食子儿茶素没食子酸酯(EGCG)、(-)-表儿茶素-3-没食子酸、茶黄素、茶黄素-3-没食子酸、茶黄素-3'-没食子酸、茶黄素-3,3'-双没食子酸、茶红素)，花青素(黄酮醇)和花色素(如花葵素、甲基花青素、花青素、飞燕草色素、二甲花葵素、牵牛花色素)，异黄酮(植物雌激素)(如，黄豆苷元(芒柄花黄素)、染料木黄酮(鹰嘴豆素A)、黄豆黄素)，二氢黄酮醇，查尔酮，香豆素类(植物雌激素)以及香豆雌酚；酚酸(如：鞣花酸、没食子酸、单宁酸、香草醛、姜黄素)；羟基肉桂酸(如咖啡酸、绿原酸、肉桂酸、阿魏酸、香豆素)；木酚素(植物雌激素、水飞蓟素、开环异落叶松脂素、松酯醇和落叶松树酯醇)；酪醇酯(如，酪醇、羟基酪醇、刺激醛、橄榄苦苷)；芪类(如，白藜芦醇、紫檀芪、白皮杉醇)和安石榴甙；

ii)萜类(类异戊二烯)，其包括类胡萝卜素(四萜)，所述类胡萝卜素包括胡萝卜素类(如，α-胡萝卜素、β-胡萝卜素、γ-胡萝卜素、δ-胡萝卜素、番茄红素、链孢红素、六氢番茄红素、茄红素)和叶黄素类(如，角黄素、隐黄素、玉米黄素(aeaxanthin)、虾青素、叶黄素、玉红黄素)；单萜类(如，柠檬烯、紫苏醇)；皂苷；包括以下的脂类：植物甾醇类(如，菜油甾醇、β谷甾醇、γ谷甾醇、豆甾醇)，生育酚(维生素E)以及ω-3，-6和-9脂肪酸(如，γ-亚麻酸)；三萜(如，齐墩果酸，乌索酸，桦木酸，模绕酮酸)；

iii)甜菜红色素，其包括β-花青苷(如：甜菜苷、异甜菜苷、前甜菜苷、新甜菜苷)和甜菜黄素(非糖苷类型)(如梨果仙人掌黄素和仙人掌黄素)；

iv)有机硫化物，其包括，例如，二硫代硫酮类(异硫氰酸酯)(如，萝卜硫素(sulphoraphane))和蒜葱素(thiosulphonates)(葱属植物化合物)(如，烯丙基甲基三硫和二烯丙基硫醚)，吲哚类，芥子油苷，其包括，例如吲哚-3-甲醇、萝卜硫素(sulforaphane)、3,3'-二吲哚甲烷、黑芥子苷、蒜素、蒜氨酸、异硫氰酸烯丙酯、胡椒碱、顺-硫代丙醛-S-氧化物；

v)蛋白质抑制剂，其包括，例如蛋白酶抑制剂；

vi)其他有机酸，其包括草酸，植酸(六磷酸肌醇酯)；酒石酸和漆树酸；或

vii)上述物质的组合。

本文所使用的“益生元”为选择性地促进肠道中有益菌的生长或抑制病原菌的生长或黏膜吸附的食品物质。它们在胃中和/或肠道上部是不失活的或在消化它们的个体的胃肠道中是不吸附的，但是它们通过肠道菌群和/或通过益生菌发酵。例如，GlennR.GibsonandMarcelB.Roberfroid.1995.DietaryModulationoftheHumanColonicMicrobiota:IntroducingtheConceptofPrebiotics.J.Nutr.125:1401-1412中定义了益生元。益生元的非限制性实例包括阿拉伯树胶、α-葡聚糖、阿拉伯半乳聚糖、β-葡聚糖、右旋糖酐、果寡糖、岩藻糖基乳糖、半乳寡糖、半乳甘露聚糖、龙胆寡糖、葡寡糖、瓜尔豆胶、菊粉、异麦芽寡糖、乳糖新四糖、低聚乳果糖、乳果糖、果聚糖、麦芽糊精、乳中寡糖、部分水解的瓜尔豆胶、果胶低聚糖、抗性淀粉、回生淀粉、唾液低聚糖、唾液酸乳糖、大豆低聚糖、糖醇类、木寡糖或它们的水解产物或其组合。

本文所使用的益生微生物(下文称“益生菌”)为食品级的微生物(活着的，包括半活的或减弱的，和/或非复制的)、代谢物、微生物细胞制剂或微生物细胞成分，当施用足够量时，其能给予宿主健康有益性，更具体地，其通过改善宿主的肠道微生物平衡有益地影响宿主，其导致对宿主健康或良好状态的作用(SalminenS等.1999.Probiotics:howshouldtheybedefined？TrendsFoodSol.Technol.10:107-10)。通常，据信这些微生物抑制或影响肠道病原菌的生长和/或代谢。益生菌也可激活宿主的免疫功能。由于这个原因，存在许多不同的方法将益生菌包含在食物产品中。益生菌的非限制性实例包括气球菌属、曲霉属、芽孢杆菌属、拟杆菌属、双歧杆菌属、念珠菌属、梭菌属、德巴利酵母属、肠球菌属、梭杆菌属、乳杆菌属、乳球菌属、明串珠菌属、蜜蜂球菌属、微球菌属、毛霉菌属、酒球菌属、片球菌属、青霉菌属、消化链球菌属、毕赤酵母属、丙酸杆菌属、Pseudocatenulatum、根霉菌属、酵母属、葡萄球菌属、链球菌属、球拟酵母属、魏斯氏菌属或其组合。

本文所使用的术语“蛋白质”、“肽”、“寡肽”或“多肽”，被理解为指包括以下的任何组合物：单个氨基酸(单体)、通过肽键连接在一起的两个或更多个氨基酸(二肽、三肽或多肽)、胶原、前体、同系物、类似物、模拟物、盐、前药、代谢物、或其片段或其组合。为了清楚起见，可交换使用任何上述术语，除非另有明确规定。应了解多肽(或肽或蛋白质或寡肽)通常含有通常被称为20种天然存在的氨基酸的20种氨基酸之外的氨基酸，并且包括末端氨基酸在内的许多氨基酸可在指定的多肽中被修饰，通过诸如糖基化和其他翻译后修饰的自然过程或通过本领域已知的化学修饰技术。存在于本发明的多肽的已知修饰包括但不限于乙酰化，酰化，ADP-核糖基化作用，酰胺化，黄酮或血红素部分的共价连接，多核苷酸或多核苷酸衍生物的共价连接，脂质或脂质衍生物的共价连接，磷脂酰肌醇的共价连接，交联，环化作用，二硫键的形成，脱甲基化；共价交联的形成，胱氨酸的形成，焦谷氨酸盐的形成，甲酰化作用，γ-羧化作用，糖化，糖基化作用，糖化磷脂酰肌醇(“GPI”)膜锚定点形成，羟基化，碘化，甲基化，豆蔻酰化，氧化，蛋白质酶解过程，磷酸化，异戊烯化，外消旋化，硒化(selenoylation)，硫酸化，转运-RNA介导的将氨基酸加入多肽中，如精氨酰化(arginyiafion)和泛素化。术语“蛋白质”也包括“人工蛋白质”，其指由肽交替重复组成的线性或非线性多肽。

蛋白质的非限制性实例包括基于乳品的蛋白质，基于植物的蛋白质，基于动物的蛋白质和人工蛋白质。基于乳品的蛋白质包括，例如酪蛋白，酪蛋白酸盐(例如包括酪酸钠、酪酸钙、酪酸钾所有形式)，酪蛋白水解物，乳清(例如，包括浓缩的，分离的，去矿物质的所有形式)，乳清水解物，乳蛋白浓缩物和乳蛋白分离物。基于植物的蛋白质包括，例如大豆蛋白(例如，包括浓缩的，分离的所有形式)，豌豆蛋白(例如，包括浓缩的和分离的所有形式)，卡诺拉蛋白(例如，包括浓缩的和分离的所有形式)，其他植物蛋白，其为商业上的小麦蛋白和分级小麦蛋白，玉米和包括玉米蛋白的部分，大米，燕麦，土豆，花生，嫩豌豆粉，青刀豆粉，和来源于菜豆、小扁豆和豆类的任何蛋白质。基于动物的蛋白质可选自牛肉，家禽，鱼，羔羊，海鲜或其组合。

本文所使用的“合益素”为补充物，其包含一起作用以改善肠道菌群的益生元和益生菌。

本文所使用的术语“治疗(treatment)”、“治疗(treat)”和“减轻(toalleviate)”包括预防或防治治疗(阻止和/或减缓目标病理病况或病症的发展)和有疗效的、治疗性的或改善病情的治疗，其包括治愈、减缓、减轻被诊断的病理病况或病症的症状和/或中止其发展的治疗措施；和治疗处于感染疾病或疑似已感染疾病的风险中的患者，以及生病的或已诊断患有疾病或医学病况的患者。该术语不一定意味着治疗个体直到完全康复。术语“治疗(treatment)”和“治疗(treat)也指维持和/或促进个体的健康，所述个体不患有疾病但对不健康病况的发展敏感，如氮失衡或肌肉损失。术语“治疗(treatment)”、“治疗(treat)”和“减轻(toalleviate)”也意图包括一种或多种初级的预防或治疗措施的增强或提高。术语“治疗(treatment)”、“治疗(treat)”和“减轻(toalleviate)”还意图包括疾病或病况的膳食控制或者预防或阻止疾病或病况的膳食控制。

本文所使用的术语“维生素”被理解为包括对于机体的正常生长和活动以小剂量必须，并且获自天然地植物和动物食品或合成制备的任何脂溶性或水溶性的有机物质(非限制性实例包括维生素A，维生素B1(硫胺素)，维生素B2(核黄素)，维生素B3(烟酸或烟酰胺)，维生素B5(泛酸)，维生素B6(吡哆醇、吡哆醛或吡哆胺、或者盐酸吡哆醇)，维生素B7(生物素)，维生素B9(叶酸)和维生素B12(多种钴胺素；维生素添加剂中通常为氰钴胺素)，维生素C，维生素D，维生素E，维生素K，叶酸和生物素)、前维生素、衍生物、类似物。

在一个实施方案中，维生素或矿物质来源可包括至少两种来源或形式的具体营养物。这代表了在混合膳食中发现的维生素和矿物质来源的混合物。同样，如果个体具有吸收特定形式的困难，混合物也可以是保护性的，混合物可通过使用不同的运载体增加摄入(例如，锌，硒)，或可提供具体的健康有益性。作为实例，存在几种形式的维生素E，最常消耗和研究的是生育酚(α、β、γ、δ)以及较少见的是三烯生育酚类(α、β、γ、δ)，其在生物活性方面均是可变的。存在结构的差异以至于三烯生育酚类能围绕细胞膜更自由地移动；一些研究报道了与胆固醇水平、免疫系统健康以及降低癌症发展风险有关的多种健康有益性。生育酚和三烯生育酚类的混合物涵盖了生物活性的范围。

本公开涉及提高组合训练后肌肉蛋白质合成的方法。具体地，本公开提供组合训练后通过施用蛋白质或必需氨基酸来提高线粒体蛋白质合成的方法。更具体地，本公开提供组合训练后通过施用蛋白质或必需氨基酸来提高肌原纤维蛋白质合成的方法。

体育运动改变了“开始”蛋白质合成(即，信号分子)中涉及的蛋白质的活性，其帮助指导哪种肌肉蛋白质被合成以及其何时合成。类似于分子应答，单回合的运动后蛋白质合成中的变化主要特定于运动任务，如对于抗阻运动，增加强度(即，肌原纤维)中所涉及的蛋白质合成，以及对于有氧运动，增加能量供应(即，线粒体)中所涉及的蛋白质(CoffeyVG,andHawleyJA.2007.TheMolecularBasesofTrainingAdaptation.SportsMedicine.37:737-763)。

对于体育运动加时，信号转导分子活性和肌肉蛋白质合成中的这些变化在数周至数月时期内(即，进行训练)累加为生理性适应，其使得运动员在特定的运动任务/事件中表现更好。

关于何种营养以及其如何支持和优化这些训练适应存在非常少的信息。事实上，之前提到的2007咖啡会议(Coffeereference)没有讨论营养在支持或提高对训练的适应中发挥的作用。而且，一些运动任务可具有抗阻部分，随后为有氧部分(例如，团体运动中常见的急停和急起(stop-and-go))，并且因此完全未知发生在分子信号转导以及不同肌肉蛋白质合成中的变化。

存在三种主要不同类型的运动训练方案，其包括：1)抗阻运动2)无氧或重复的短跑型运动以及3)耐力运动。这些运动训练方案的每一种以不同的训练应答为特点。

1)抗阻运动为当个体进行爆发性体重运动，存在长周期的休息，并且主要由磷酸肌酸和糖分解能量系统驱使。该系统能很快地产生能量，但很快地疲劳。主要的适应包括通过重复的举重训练增加肌肉横截面积而引起肌肉重量的增加(肥大)(HakkinenK.1989.Neuromuscularandhormonaladaptationsduringstrengthandpowertraining.J.SportsMed.Phys.Fitness.29:9-26；和HakkinenK.等1987.Relationshipsbetweentrainingvolume,physicalperformancecapacity,andserumhormoneconcentrationsduringprolongedtrainingineliteweightlifters.Int.J.SportsMed.8Suppl1:61-65)。

2)重复的短跑型训练本质上是无氧的，涉及具有有限恢复期的高强度运动，以及涉及肌糖原大量分解的几乎纯粹的碳水化合物代谢(糖酵解能量产生)。在无氧能量产生的这些情况期间，如高强度速度训练或涉及重复短跑的运动，由增加IIa型纤维的激发来完成增加肌肉的负荷。最终，在非常高的工作负荷下，IIb型糖酵解肌原纤维被激活以通过无氧能量供应维持高需求的能量供应。然而，在这些情况期间，无氧能量产生的高速率超过此时线粒体内有氧氧化的速率，并且这导致这些训练类型中发现极限水平的乳酸盐产生(SprietLL,HowlettRA,andHeigenhauserGJ.2000.Anenzymaticapproachtolactateproductioninhumanskeletalmuscleduringexercise.Med.Sci.SportsExerc.32:756-763).最近的研究关注针对重复的短跑训练的适应并且发现IIa型纤维随着线粒体以及一些肥大的增加而增加，以及增加乳酸盐转运蛋白质2(GibalaMJ,etal.2006.Short-termsprintintervalversustraditionalendurancetraining:similarinitialadaptationsinhumanskeletalmuscleandexerciseperformance.J.Physiol.575:901-911)。

3)耐力训练以个体进行长时期(例如>15分钟)的低强度训练为特点。代表耐力训练的能量系统包括有氧系统，当存在足够的氧时，其主要利用脂肪和碳水化合物的有氧代谢以产生线粒体内所需的能量。主要的适应包括增加肌糖原储存和通过增加脂肪氧化在次级大工作负荷下节省糖原，提高乳酸盐动力学和形态学改变，其包括每个肌肉区域较大的I型纤维，以及增加毛细管和线粒体的密度(HolloszyJO,andCoyleEF.1984.Adaptationsofskeletalmuscletoenduranceexerciseandtheirmetabolicconsequences.J.Appl.Physiol.56:831-838；和HolloszyJO,RennieMJ,HicksonRC,ConleeRK,andHagbergJM.1977.Physiologicalconsequencesofthebiochemicaladaptationstoenduranceexercise.Ann.N.Y.Acad.Sci.301:440-450)。

运动和营养(特别是蛋白质摄入)是肌肉蛋白质合成(“MPS”)的有效刺激物，这两种协同地组合。已表明MPS的刺激物为特定于且依赖于特定的运动刺激的蛋白质部分(CoffeyVG,andHawleyJA.2007.TheMolecularBasesofTrainingAdaptation.SportsMedicine.37:737-763)。例如，抗阻运动(如举重)通常刺激线粒体或肌原纤维(即，强度生成)蛋白质部分的合成增加，而有氧运动(如低强度，长持续时间的骑自行车、跑步等等)优选提高线粒体(即，能量产生)蛋白质部分；这种不同的应答为训练特异性适应提供基础。然而，当针对具体的运动表现训练时，运动员进行抗阻和耐力运动两者是常见的。运动的这种组合通常被称为组合训练并且具有功效，因为在不考虑目标运动表现的耐力或抗阻重点时，来自每种模式的特异性适应是有益的(WangL.MascherH,PsilanderN,BlomstrandE,andSahlinK.2011.Resistanceexerciseenhancesthemolecularsignalingofmitochondrialbiogenesisinducedbyenduranceexerciseinhumanskeletalmuscle.J.ofAppl.Phys.111:1335-1344；和WilsonJ,MannP,RheaM,WilsonS,LoennekeJ.andAndersonJ.2012.Concurrenttraining:ameta-analysisexamininginterferenceofaerobicandresistanceexercises.J.StrengthCond.Res.Aug:2293-2307)。此外，组合训练形成团体运动队员的体育训练的主要部分，所述队员需要强度和耐力的组合以满足类似足球和篮球的间歇的“急停和急起”运动的需求。蛋白质摄入对来自组合训练的适应的潜在影响目前还没被研究过，然而该信息对为了从训练中最有效地恢复且适应于训练而有规律地训练并且参与该训练类型竞争的个体提供营养方案和建议是重要的。

骨骼肌中收缩-诱导的适应主要由运动模式、运动量和运动密度确定(CoffeyVG.andHawleyJA.2007.TheMolecularBasesofTrainingAdaptation.SportsMedicine.37:737-763)。重复回合的耐力运动在骨骼肌中产生多种适应，其包括但不限于，增加毛细管密度(SaltinB和GollnickP.1983.Skeletalmuscleadaptability.Significanceformetabolismandperformance.Bethesda,MD)和线粒体密度(HolloszyJO.1967.Biochemicaladaptationsinmuscle.Effectsofexerciseonmitochondrialoxygenuptakeandrespiratoryenzymeactivityinskeletalmuscle.JBiol.Chem.242:2278-2282)，而长期抗阻训练通常促进增加肌原纤维蛋白质粘连的表型和II型纤维的横截面积(D’AntonaG,LanfranconiF,PellegrinoMA,BroccaL,AdamiR,RossiR,MoroG,MiottiD,CanepariM和BottinelliR.2006.Skeletalmusclehypertrophyandstructureandfunctionofskeletalmusclefibresinmalebodybuilders.TheJournalofPhysiology.570:611-627；PhillipsSM,TiptonKD,FerrandoAA和WolfeRR.1999.Resistancetrainingreducestheacuteexercise-inducedincreaseinmuscleproteinturnover.AmericanJournalofPhysiology-EndocrinologyAndMetabolism.276:E118-E124)。运动-营养交互作用对决定骨骼肌的适应也至关重要，并且可具有调节训练应答特异性的能力(HawleyJA,BurkeLM,PhillipsSM和SprietLL.2011.Nutritionalmodulationoftraining-inducedskeletalmuscleadaptations.JournalofAppliedPhysiology110:834-845)。的确，利用碳水化合物的可用性和/或肌糖原的储存改变耐力运动的适应性应答(J,HermansenL,HultmanE和SaltinB.1967.Diet,muscleglycogenandphysicalperformance.ActaPhysiol.Scand.Oct-Nov:140-150；IvyJL,KatzAL,CutlerCL,ShermanWM,andCoyleEF.1988.Muscleglycogensynthesisafterexercise:effectoftimeofcarbohydrateingestion.JournalofAppliedPhysiology.64:1480-1485)，然而蛋白质/氨基酸(亮氨酸)的补充与抗阻运动协同作用以增加肌肉蛋白质的合成(PhillipsSM,HartmanJW和WilkinsonSB.2005.DietaryProteintoSupportAnabolismwithResistanceExerciseinYoungMen.JournaloftheAmericanCollegeofNutrition.24:134S-139S；RennieM,EdwardsR,HallidayD,MatthewsD,WolmanS和MillwardD.1982.Muscleproteinsynthesismeasuredbystableisotopetechniquesinman:theeffectsoffeedingandfasting.Clin.Sci.(Loud)Dec:519-523)。然而，有限数量的研究调查了针对耐力和抗阻运动(即，组合运动)以及特别是与蛋白质摄入/补充的相互作用的组合作用的急性适应性应答。

考虑到单模式的耐力和抗阻训练产生不同表型的能力(D’AntonaG,LanfranconiF,PellegrinoMA,BroccaL,AdamiR,RossiR.MoroG,MiottiD,CanepariM,andBottinelliR.2006.Skeletalmusclehypertrophyandstructureandfunctionofskeletalmusclefibresinmalebodybuilders.TheJ.ofPhys.570:611-627,2006；和WilkinsonSB,PhillipsSM,AthertonPJ,PatelR,YarasheskiKE,TarnopolskyMA,andRennieMJ.2008.Differentialeffectsofresistanceandenduranceexerciseinthefedstateonsignallingmoleculephosphorylationandproteinsynthesisinhumanmuscle.TheJ.ofPhys.586:3701-3717)以及运动顺序和回合之间的恢复的潜在混杂因素，调节组合训练范例内训练适应的特异性的细胞机制无疑是复杂的。Wilson和他的同事报道了耐力运动在组合训练范例内以一定量和频率依赖方式抑制肥大/强度(WilsonJ,MarinP,RheaM.WilsonS,LoennekeJ,andAndersonJ.2012.Concurrenttraining:ameta-analysisexamininginterferenceofaerobicandresistanceexercises.J.StrengthCond.Res.Aug:2293-2307)。申请人之前也证明了多种细胞信号转导分子应答与快速状态的组合运动回合后线粒体/代谢以及肌原性适应的翻译起始和mRNA表达有关(CoffeyVG,JemioloB,EdgeJ.GarnhamAP,TrappeSW,andHawleyJA.2009.Effectofconsecutiverepeatedsprintandresistanceexerciseboutsonacuteadaptiveresponsesinhumanskeletalmuscle.Am.JofPhys.-Regulatory,IntegrativeandComparativePhysiology.297:R1441-R1451；CoffeyVG,PilegaardH,GarnhamAP,O’BrienBJ,andHawleyJA.2009.Consecutiveboutsofdiversecontractileactivityalteracuteresponsesinhumanskeletalmuscle.J.ofAppl.Phys.106:1187-1197)。有趣的是，最近已表明当与久坐的中年男子中单独的每种模式比较时，组合的抗阻和耐力运动后肌原纤维和线粒体合成的可比较的增长率(DongesCE,BurdNA,DuffieldR,SmithGC,WestDWD,ShortMJ,MackenzieR,PlankLD,ShepherdPR,PhillipsSM.andEdgeJA.2012.Concurrentresistanceandaerobicexercisestimulatesbothmyofibrillarandmitochondrialproteinsynthesisinsedentarymiddle-agedmen.J.ofAppl.Phys.112:1992-2001)。因此，虽然由急性回合的组合训练所产生的分子特性尚未被明确地确定，但是存在连续的抗阻和耐力运动可具有促进肌原纤维和线粒体蛋白质合成的能力的可能性。

十分邻近抗阻运动的高质量蛋白质的消耗增强翻译起始信号并且最大地刺激肌肉蛋白质合成的速率(KoopmanR,PenningsB,ZorencAHG,andvanLoonLJC.2007.ProteinIngestionFurtherAugmentsS6K1PhosphorylationinSkeletalMuscleFollowingResistanceTypeExerciseinMales.TheJournalofNutrition.137:1880-1886；和MooreDR,RobinsonMJ,FryJL,TangJE,GloverEl,WilkinsonSB,PriorT.TarnopolskyMA.andPhillipsSM.2009.Ingestedproteindoseresponseofmuscleandalbuminproteinsynthesisafterresistanceexerciseinyoungmen.TheAmericanJournalofClinicalNutrition.89:161-168)。同样地，耐力运动后蛋白质的供应能提高线粒体-相关基因的转录模式(RowlandsDS,ThomsonJS,TimmonsBW,RaymondF,FuerholzA,MansourianR,ZwahlenM-C,MétaironS,GloverE,StellingwerffT,KussmannM,andTarnopolskyMA.2011.Transcriptomeandtranslationalsignalingfollowingenduranceexerciseintrainedskeletalmuscle:impactofdietaryprotein.PhysiologicalGenomics.43:1004-1020)。至今，没有研究确定组合运动后蛋白质摄入对骨骼肌中急性肌原纤维和线粒体蛋白质合成速率的影响。的确，除了纯粹的耐力/有氧运动和纯粹的抗阻运动之外，不存在证据表明当组合运动(即，抗阻运动然后耐力运动的组合)后消耗蛋白质时，蛋白质摄取对提高抗阻或耐力运动后的肌肉蛋白质合成的确定的有益影响的发生。因此，本公开检验了蛋白质摄取对连续的抗阻运动和耐力运动(例如，骑自行车)的回合后与选择的细胞/分子应答相关的肌原纤维和线粒体蛋白质合成速率的急性影响。

具体地，本公开的优点是提供与单独的耐力和抗阻运动十分邻近(30分钟内)消耗高质量的乳清蛋白相同的有益结果。本公开提供了独特的结果，其高度适用于在给定的训练项目中习惯进行组合运动类型(抗阻和耐力运动)的运动营养消耗者。此外，也提供证据支持本方法降低连续地进行这些不同运动类型的副作用。即，之前的证据表明当连续地进行抗阻和耐力运动时特定的肌肉蛋白质合成减少。例如，抗阻运动(例如，举重)后立即进行耐力运动(例如，骑自行车、跑步)降低了对最初的抗阻训练的强度特异性适应。本公开表明通过降低与肌肉分解相关的细胞信号转导而减弱这种具体的应答。

在第一方面中，本公开提供提高强体力活动后肌肉蛋白质合成的方法，其包括组合训练后立即对人施用包含约15g至约35g蛋白质的组合物。

意外地发现组合运动后加入蛋白质或必需氨基酸具有提高线粒体蛋白质合成的能力。

意外地发现组合运动后加入蛋白质或必需氨基酸具有提高肌原纤维蛋白质合成的能力。肌原纤维蛋白质为负责肌肉肥大(生长)的具体蛋白质。

体育运动为机体提供刺激，其触发分子信号级联，导致针对运动刺激的蛋白质的基因表达和合成中的变化。由长期训练导致的身体适应据信为这些蛋白质在多次回合的急性运动后积累的直接结果。

本方法证明组合运动后并且随后消耗蛋白质或必需氨基酸后对合成代谢信号转导和肌肉蛋白质合成的明显有益效果。推荐在十分邻近紧张训练期的时期内摄取蛋白质和碳水化合物。已记录抗阻和耐力训练后，而不是组合训练时营养物的补充的优点。

也已发现营养能在数周或数月的时期内对单个训练项目的适应仅改善较少百分数，这对训练适应以及表现具有主要影响。

在另一个实施方案中，提供提高由组合训练导致的肌肉适应的程序。所述程序包括为运动员提供营养和关于训练的指南以改善肌肉蛋白质合成。程序还包括提供包含约15g至约35g蛋白质的组合物；以及提供消耗指南，所述消耗指南包括基于运动员的训练方案推荐组合训练后立即消耗的组合物的量，并且提供关于训练方案的指南。

在又一方面中，本公开涉及营养试剂盒，其包括多份包含约15g至约35g蛋白质的组合物以及推荐运动员在组合训练后立即消耗的组合物的指南。本公开也涉及包含蛋白质或必需氨基酸和碳水化合物的组合物在改善肌肉蛋白质合成中的用途，其中所述用途与组合训练有关。

而且，如上所述，组合训练包括涉及具有肌糖原大量分解的几乎纯粹的碳水化合物代谢的无氧部分。在一个实施方案中，营养推荐为这种类型的运动训练后的最初数小时内每kg体重消耗至少1至1.5g碳水化合物(总共50至75g碳水化合物)。

本公开也提供个体可加强从运动中恢复并且适应于运动以允许运动员“在他们的训练中表现更好”的方式目标运动员正在为了强度和耐力，和/或团体运动训练。

在本公开中，申请人检验了蛋白质摄取对与选择的细胞/分子应答有关的肌原纤维和线粒体蛋白质合成速率的急性作用，在连续的抗阻和耐力运动(例如，骑自行车)回合后通过肌肉活体组织检查取样直接测定。已证明这种组合运动训练的顺序负面地影响肌肉蛋白质合成，因此，申请人假定当强度/肌肉肥大的抗阻运动后立即进行耐力运动时，蛋白质摄取将提高组合训练后早期恢复期期间的合成代谢和新陈代谢信号转导以及随后蛋白质的合成，其阻止这些负面作用。

为了研究上述蛋白质摄取的作用，申请人进行随机的交叉、双盲研究，其在下面提出的实施例中更详细地描述。通常，经过整夜禁食后个体(n＝8)到两个分开场合的实验室报到，并且运动后立即消耗500ml安慰剂(水和人造甜味剂)或蛋白质饮料(25g乳清蛋白)。运动由耐力运动(30分钟70％VO₂峰值的骑自行车)后的抗阻运动(8×5个腿部伸展，80％1-RM)组成，环-[13C6]苯基丙氨酸的初期持续输注与肌肉活体组织检查的结合被用来测量运动后恢复的4小时内肌原纤维(强度生成)和线粒体(能量产生)蛋白质部分中肌肉蛋白质的合成。通过蛋白质印迹分析测定mRNA翻译(即，“开始”蛋白质合成)中涉及的细胞内信号转导蛋白质的磷酸化的变化，作为它们活性水平的替代物。

申请人意外地发现与安慰剂条件相比，蛋白质摄取导致运动后恢复期期间高67％的肌原纤维蛋白质合成速率。该数据与重要的调节mTOR生长通路内的候选信号转导蛋白质(例如，AktSer473、mTORSer2448)的较高磷酸化(和推测活性)一致，其表示肌肉蛋白质合成之前的mRNA翻译的增长率。在两次试验中运动后肌原纤维蛋白质合成的速率增加超过休息时(75-145％)，但是PRO的运动后肌原纤维蛋白质合成的速率更高，这说明蛋白质摄取对运动诱导应答的其他有益性。此外，蛋白质补充使运动诱导的肌肉蛋白质水解作用/分解代谢减弱，通过与肌肉蛋白质分解相关的信号转导蛋白质(例如，MuRF1、肌萎缩素-1)的磷酸化来测定。

申请人也发现对于运动或蛋白质补充，线粒体蛋白质合成与基线没有变化，其表明进行运动不足以诱导该肌肉蛋白质组成的合成，或抗阻和耐力运动的组合可改善线粒体蛋白质合成。

该数据表明组合运动训练期后立即消耗蛋白质源的影响。之前，确定了十分邻近的抗阻和耐力运动的组合使适应减弱，通过肌肉蛋白质合成的增加来评估。本公开的新发现为抗阻和耐力运动后的蛋白质补充允许肌肉质量的合成代谢适应并且提升/保护肌肉质量提供支持，通过降低与肌肉肥大的耐力运动有关的潜在干扰(inference)作用。

当与单独的运动模式相比时，对组合的抗阻和耐力运动的适应可能是‘妥协的’(HicksonR.1980.Interferenceofstrengthdevelopmentbysimultaneouslytrainingforstrengthandendurance.Eur.J.Appl.Physiol.Occup.Physiol.45:255-263；和WilsonJ,MarinP,RheaM,WilsonS,LoennekeJ,andAndersonJ.2007.Concurrenttraining:ameta-analysisexamininginterferenceofaerobicandresistanceexercises.J.StrengthCond.Res.Aug:2293-2307)。来自本公开的研究结果表明：在适度训练的个体中，抗阻和耐力运动的组合效果导致肌原纤维蛋白质合成升高，而线粒体蛋白质合成的速率不升高。申请人也首次发现：连续的抗阻运动和骑自行车后，蛋白质摄取促进早期恢复期期间的胰岛素/胰岛素样生长因子(“IGF”)通路信号转导和肌原纤维蛋白质合成，但是不提高该期间的线粒体蛋白质合成的速率。此外，本公开的研究提供新的信息证明运动后蛋白质摄取使组合训练项目后肌肉分解代谢的标记基因的mRNA表达减弱。

进行多种运动的运动员组合地进行抗阻和耐力训练以提高骨骼肌中合成代谢/生长和新陈代谢/氧化适应两方面。同样地，组合训练呈现出不同收缩活动的特有的整合。本研究的最初新发现是在适度训练的男性中，单回合的组合训练促进利于肌肉合成代谢的适应性应答，并且运动后蛋白质的补充优选地提高肌原纤维蛋白质合成的速率，而不提高线粒体蛋白质合成的速率。Donges和其同事最近已证明在未受训练的中年个体中，组合训练回合能够上调翻译信号转导，以及肌原纤维蛋白质合成和线粒体蛋白质合成，达到与单独进行抗阻和耐力运动回合的相同程度(DongesCE,BurdNA,DuffieldR,SmithGC,WestDWD,ShortMJ,MackenzieR,PlankLD,ShepherdPR,PhillipsSM,andEdgeJA.2012.Concurrentresistanceandaerobicexercisestimulatesbothmyofibrillarandmitochondrialproteinsynthesisinsedentarymiddle-agedmen.JournalofAppliedPhysiology.112:1992-2001)。本研究的结果为安慰剂摄取对骨骼肌中的肌原纤维部分的运动调节作用提供支持，但是未能升高我们的个体中线粒体蛋白质合成的速率，将在下面的实施例中说明。

已确定运动后蛋白质的摄取对抗阻运动后的肌原纤维蛋白质合成的速率的提高(BurdNA,TangJE,MooreDR,andPhillipsSM.2009.Exercisetrainingandproteinmetabolism:influencesofcontraction,proteinintake,andsex-baseddifferences.JournalofAppliedPhysiology106:1692-1701；和MooreDR,RobinsonMJ,FryJL,TangJE,GloverEl,WilkinsonSB,PriorT,TarnopolskyMA,andPhillipsSM.2009.Ingestedproteindoseresponseofmuscleandalbuminproteinsynthesisafterresistanceexerciseinyoungmen.TheAmericanJournalofClinicalNutrition89:161-168)。然而，这是首次研究报道在组合的抗阻运动和骑自行车后，与安慰剂相比，蛋白质的补充对急性运动后恢复期期间的肌原纤维合成的速率的提高。因此，所述发现表明：尽管随后回合的耐力运动，抗阻运动产生足够的适应信号以维持刺激肌原纤维蛋白质合成的能力。在长期的组合训练程序中，预期经过重复回合的抗阻运动后这样的急性应答最终导致肌肉肥大。

之前已表明在对高强度的重复短跑方案后蛋白质-碳水化合物的共同摄取的应答中肌原纤维蛋白质合成速率存在类似的选择性增加(CoffeyV,MooreD,BurdN,RerecichT,StellingwerffT,GarnhamA,PhillipsS,andHawleyJ.2011.Nutrientprovisionincreasessignalingandproteinsynthesisinhumanskeletalmuscleafterrepeatedsprints.EuropeanJournalofAppliedPhysiology.111:1473-1483)。考虑到完成最大的短距离骑自行车重复所需的高负荷(0.75Nm/kg)和随后的机械力，之前研究中的超负荷刺激被认为是类似抗阻的运动，其可能会促进对蛋白质摄取的适度肥大应答。同上，然而，Breen和其合作者最近也报道了90分钟～75％VO₂最大值的稳定骑自行车后，与单独的碳水化合物供应相比，当共同摄取碳水化合物-蛋白质时，肌原纤维蛋白质部分的合成速率增加，而线粒体蛋白质部分的合成速率不增加(BreenL,PhilpA,WitardOC,JackmanSR,SelbyA,SmithK,BaarK,andTiptonKD.2011.Theinfluenceofcarbohydrate--proteinco-ingestionfollowingenduranceexerciseonmyofibrillarandmitochondrialproteinsynthesis.TheJournalofPhysiology.589:4011-4025)。虽然随着自身的收缩超负荷，未训练的/久坐的个体中的肌肉重量的一些增加很可能出现(HarberMP,KonopkaAR,UndemMK,HinkleyJM,MinchevK,KaminskyLA,TrappeTA,andTrappeSW.2012.Aerobicexercisetraininginducesskeletalmusclehypertrophyandage-dependentadaptationsinmyofiberfunctioninyoungandoldermen.JournalofAppliedPhysiology)，但是耐力运动不诱导明显的肥大(HicksonR.1980.Interferenceofstrengthdevelopmentbysimultaneouslytrainingforstrengthandendurance.Eur.J.Appl.Physiol.Occup.Physiol.45:255-263,1980；和WilsonJ,MarinP,RheaM,WilsonS,LoennekeJ,andAndersonJ.2012.Concurrenttraining:ameta-analysisexamininginterferenceofaerobicandresistanceexercises.J.StrengthCond.Res.Aug:2293-2307)，并且Breen和其同事假定长时间的耐力运动后且蛋白质摄取后肌原纤维蛋白质合成增加的潜在机制是肌原纤维的修复和重构。相反，Donges和其合作者报道了与抗阻运动和组合训练回合相比，耐力运动回合与运动后蛋白质摄取的结合未能增加肌原纤维蛋白质合成超过休息时(DongesCE,BurdNA,DuffieldR.SmithGC,WestDWD,ShortMJ,MackenzieR,PlankLD,ShepherdPR,PhillipsSM,andEdgeJA.2012.Concurrentresistanceandaerobicexercisestimulatesbothmyofibrillarandmitochondrialproteinsynthesisinsedentarymiddle-agedmen.JournalofAppliedPhysiology.112:1992-2001)。在本研究中观察到的肌原纤维合成应答是否仅仅是抗阻运动或其与耐力运动相互作用的结果依然不清楚。无论如何，因蛋白质摄取提高的蛋白质合成确实有益于维持/增大肌肉质量并且促进对组合训练的适应。

下面所描述的研究的结果表明组合训练后每种处理未能增加线粒体蛋白质合成的可变速率。未训练的或久坐的个体中的既往研究表明线粒体蛋白质合成的增加与运动的模式无关，即，抗阻、耐力或组合运动回合(BurdNA,AndrewsRJ,WestDVVD,LittleJP,CochranAJR,HectorAJ,CashabackJGA,GibalaMJ,PotvinJR,BakerSK,andPhillipsSM.2012.Muscletimeundertensionduringresistanceexercisestimulatesdifferentialmuscleproteinsub-fractionalsyntheticresponsesinmen.TheJournalofPhysiology.590:351-362；DongesCE.BurdNA,DuffieldR,SmithGC,WestDWD,ShortMJ,MackenzieR.PlankLD,ShepherdPR.PhillipsSM,andEdgeJA.2012.Concurrentresistanceandaerobicexercisestimulatesbothmyofibrillarandmitochondrialproteinsynthesisinsedentarymiddle-agedmen.JournalofAppliedPhysiology.112:1992-2001；和WilkinsonSB,PhillipsSM,AthertonPJ,PatelR,YarasheskiKE,TarnopolskyMA,andRennieMJ.Differentialeffectsofresistanceandenduranceexerciseinthefedstateonsignallingmoleculephosphorylationandproteinsynthesisinhumanmuscle.2008.TheJournalofPhysiology.586:3701-3717)。因此，建议本研究中个体的训练状态可能需要更大的超负荷刺激以产生线粒体蛋白质合成的急性增加。的确，Breen和其合作者确定了蛋白质摄取对训练有素的骑车者的肌肉蛋白质合成的影响，并且同样未能观察到对线粒体FSR的任何影响(BreenL,PhilpA,WitardOC,JackmanSR,SelbyA,SmithK,BaarK,andTiptonKD.2011.Theinfluenceofcarbohydrate--proteinco-ingestionfollowingenduranceexerciseonmyofibrillarandmitochondria’proteinsynthesis.TheJournalofPhysiology.589:4011-4025)。Rowlands和其合作者报道了耐力运动后与蛋白质摄取有关的线粒体转录组的提高，作用只在运动后时期的后期(48小时)明显，而不是前期(3小时)(RowlandsDS；ThomsonJS.TimmonsBVV；RaymondF,FuerholzA,MansourianR,ZwahlenM-C,MetaironS,GloverE,StellingwerffT,KussmannM,andTarnopolskyMA.2011.Transcriptomeandtranslationalsignalingfollowingenduranceexerciseintrainedskeletalmuscle:impactofdietaryprotein.PhysiologicalGenomics43:1004-1020)。因此，不能排除的是，对恢复后期(例如，24小时)线粒体蛋白质合成的定量可揭示对运动和蛋白质摄取的适应性应答中的差异。

提高的肌原纤维蛋白质的合成与调节翻译起始和延伸的信号转导蛋白质的磷酸化状态的增加有关。之前已表明单回合的抗阻运动和骑自行车后早期恢复期期间的Akt-mTOR-S6K磷酸化有相同的时间进程(CameraD,EdgeJ,ShortM,HawleyJ,andCoffeyV.2010.EarlytimecourseofAktphosphorylationafterenduranceandresistanceexercise.Med.Sci.SportsExerc.Oct；:1843-1852)。其他人之前也表明单独的耐力和抗阻运动使胰岛素/IGF信号转导通路激活(BenzianeB,BurtonTJ,ScanlanB,GaluskaD,CannyBJ,ChibalinAV,ZierathJR,andSteptoNK.2008.Divergentcellsignalingaftershort-termintensifiedendurancetraininginhumanskeletalmuscle.AmericanJournalofPhysiology-EndocrinologyAndMetabolism.295:E1427-E1438:和MooreDR,RobinsonMJ,FryJL,TangJE,GloverEl,WilkinsonSB,PriorT,TarnopolskyMA,andPhillipsSM.2009.Ingestedproteindoseresponseofmuscleandalbuminproteinsynthesisafterresistanceexerciseinyoungmen.TheAmericanJournalofClinicalNutrition.89:161-168)。总的来说，这些发现指示骨骼肌中具体的翻译过程不是决定训练适应的特异性的重要因素。最近，已证明组合训练回合提高Akt/mTOR-调节的信号转导应答(LundbergT,Fernandez-GonzaloR,GustafssonT,andTeschP.2012.AerobicExerciseAltersSkeletalMuscleMolecularResponsestoResistanceExercise.MedSciSportsExerc.；和WangL.MascherH,PsilenderN,BlomstrandE,andSahlinK.2011.Resistanceexerciseenhancesthemolecularsignalingofmitochondriabiogenesisinducedbyenduranceexerciseinhumanskeletalmuscle.JournalofAppliedPhysiology.111:1335-1344)。通过证明蛋白质摄取能提高组合训练后Akt-mTOR-S6K磷酸化，本研究的结果延伸了这些发现。因此，Akt-mTOR-S6K信号转导可为营养敏感性和/或肌肉超负荷的指示，但不能辨别不同的收缩刺激。运动也产生肽链延伸因子eEF2的磷酸化(激活)的降低，然而处理之间不存在差异，其指示eEF2的磷酸化对蛋白质的摄取无应答。因此，营养调节的运动后肌肉蛋白质合成的增加很可能部分是因为提高翻译起始而不是延伸。

AMPK通过抑制起始翻译的mTOR-调节信号转导参与抑制骨骼肌中合成代谢信号转导和蛋白质合成(DreyerHC,FujitaS,CadenasJG,ChinkesDL,VolpiE,andRasmussenBB.2006.ResistanceexerciseincreasesAMPKactivityandreduces4E-BP1phosphorylationandproteinsynthesisinhumanskeletalmuscle.TheJournalofPhysiology.576:613-624；和GwinnDM,ShackelfordDB,EganDF,MihaylovaMM,MeryA,VasquezDS,TurkBE,andShawRJ.2008.AMPKPhosphorylationofRaptorMediatesaMetabolicCheckpoint.MolecularCell.30:214-226)。然而，本研究中AMPKThr172磷酸化的运动后增加是适度的并且与mTOR磷酸化的增加相伴。这可反映出组合运动项目不能显著地破坏细胞能量状态至调节AMPK信号所需的水平，尽管运动后糖原代谢有变化(CoffeyVG.PilegaardH,GarnhamAP,O’BrienBJ,andHawleyJA.2009.Consecutiveboutsofdiversecontractileactivityalteracuteresponsesinhumanskeletalmuscle.JournalofAppliedPhysiology.106:1187-1197)。尽管如此，在人类研究中，既往研究未能观察到运动恢复期间翻译起始信号转导或蛋白质合成的AMPK相关抑制，并且这样的因果关系在体内人肌肉中还没有被明确地确定。

本研究的新发现是与肌肉蛋白质水解和分解代谢有关的基因的mRNA应答减弱。组合训练回合后升高MuRF1和肌萎缩素-1mRNA表达超过休息时，然而蛋白质摄取中这种增加减弱。Harber和其同事证明60分钟骑自行车后蛋白质/碳水化合物补充的摄取对MuRF1mRNA丰度有类似的影响，以及Borgenvik和其合作者表明富含氨基酸的饮料降低抗阻运动回合休息时和之后的MuRF1蛋白质的水平(HarberMP,KonopkaAR,JemioloB,TrappeSW,TrappeTA,andReidyPT.2010.Muscleproteinsynthesisandgeneexpressionduringrecoveryfromaerobicexerciseinthefastedandfedstates.AmericanJournalofPhysiology-Regulatory,IntegrativeandComparativePhysiology.299:R1254-R1262；和BorgenvikM,AproW,andBlomstrandE.2012.Intakeofbranched-chainaminoacidsinfluencesthelevelsofMAFbxmRNAandMuRF-1totalproteininrestingandexercisinghumanmuscle.AmericanJournalofPhysiology-EndocrinologyAndMetabolism.302:E510-E521)。因此，对于外源氨基酸供应的MuRF1和肌萎缩素-1表达的协同减弱可为肌肉重构/肥大提供基础，否则肌肉重构/肥大可能通过禁食阶段的运动后肌肉分解被实现。急性恢复期期间肌肉生长抑制素mRNA表达在处理之间不存在差异。已证明急性回合的耐力运动(LundbergT,Fernandez-GonzaloR,GustafssonT,andTeschP.2012.AerobicExerciseAltersSkeletalMuscleMolecularResponsestoResistanceExercise.Med.Sci.SportsExerc.)和抗阻运动(CameraD,WestD,BurdN,PhillipsS,GarnhamA,HawleyJ,andCoffeyV.2012.LowMuscleGlycogenConcentrationDoesNotSuppresstheAnabolicResponsetoResistanceExercise.J.Appl.Physiol.May24.[Epubaheadofprint]；和LundbergT,Fernandez-GonzaloRGustafssonT,andTeschP.2012.AerobicExerciseAltersSkeletalMuscleMolecularResponsestoResistanceExercise.Med.Sol.SportsExerc.)后肌肉生长抑制素的表达降低，并且似乎肌肉生长抑制素mRNA表达对收缩本身有应答而非对训练应答的特异性和/或营养有效性有应答。连续的抗阻和耐力运动回合后新陈代谢/线粒体蛋白质的mRNA丰度存在可比较的增加，但是蛋白质摄取未能诱导PGC-1α、己糖激酶或VEGFmRNA水平的任何显著的增加。因此，虽然组合训练能够产生骨骼肌中线粒体、新陈代谢和血管生成过程的适应mRNA表达支持，但是这种应答不是由氨基酸的供应提高的。

为了使肌肉蛋白质合成最大化并提高对组合运动的适应，本公开提供方法：组合训练后立即向运动员提供包含约20g至约35g，或约20g至约30g蛋白质，或26g蛋白质的产品。在一个实施方案中，运动后约0至约30分钟内消耗产品。

在一个实施方案中，组合物包括碳水化合物和蛋白质或必需氨基酸，碳水化合物与蛋白质的比值在约1：1至约3：1的范围，或约2：1的比值。

关于碳水化合物的摄入，为了使运动后糖原的再合成最大化，碳水化合物的推荐消耗量为约1至约1.5gCHO/kg。

在一个实施方案中，组合物包括约10g至约50g蛋白质、或约20g至约30g蛋白质、或约25g蛋白质的总蛋白质剂量。蛋白质或氨基酸可构成最终组合物的固体的约20重量％至约40重量％，或约30重量％。

而且，可配制组合物以便每个单次剂量存在一致的且可计算的蛋白质含量，例如，每个剂量的蛋白质在约2g至约4g之间，在一个实施方案中，组合物包含蛋白质或必需氨基酸的含量约2g至约2.5g。

组合物可为固体产品、凝胶、液体或现用现混粉末的形式。在一个实施方案中，组合物为蛋白质饮料。

基于蛋白质的组合物也可含有一种或多种产品中个别量的脂肪来为运动员提供任何合适的能量。例如，组合物的每一种可提供至多约9g/300cal量的脂肪。在另一个实施例中，组合物可提供约11g/360cal。组合物的每一种也可提供至多4g/300cal或更多量的饱和脂肪。在一个实施方案中，来自脂肪的能量百分比(例如，以卡路里的形式)可至多约25％。

在一个实施方案中，基于蛋白质的组合物包括基于蛋白质产品的约重量10％至约重量40％范围，或约重量30％的量的脂肪。

本公开的营养组合物中蛋白质和/或脂肪的存在具有在运动期间可能提供给运动员更完全的营养的优点。对于蛋白质来源，可使用任何合适的膳食蛋白质，例如，动物蛋白质(例如乳蛋白、肉类蛋白质和鸡蛋蛋白质)；膳食蛋白质，其包括但不限于乳品蛋白质(如酪蛋白，酪蛋白酸盐(例如，包括钠、钙、钾的酪蛋白酸盐的所有形式)，酪蛋白水解物，乳清(例如，包括浓缩的、分离的、去矿物质的所有形式)，乳清水解物，乳蛋白浓缩物，和乳蛋白分离物)，蔬菜蛋白质(例如大豆蛋白、小麦蛋白、水稻蛋白和豌豆蛋白)；游离氨基酸的混合物；或其组合。特别优选乳蛋白，如酪蛋白和乳清乳蛋白，以及大豆蛋白。在一个实施方案中，蛋白质来源选自乳清、鸡肉、玉米、酪蛋白酸盐、小麦、亚麻、大豆、角豆、豌豆或其组合。

蛋白质可为完整的蛋白质、或水解的蛋白质、或完整的蛋白质与水解的蛋白质的混合物。例如，为据信存在牛乳过敏风险的运动员提供部分水解的蛋白质(例如，水解度在2％和20％之间)是令人满意的。通常，至少部分水解的蛋白质更易且更快被机体新陈代谢。这对于氨基酸来说尤其正确，在一个实施方案中，基于蛋白质的产品含有单种/必需氨基酸，例如，亮氨酸、缬氨酸和/或异亮氨酸。

基于蛋白质的产品也可包括蛋白质共混物，例如其包含大豆蛋白分离物、乳清蛋白分离物和酪蛋白钙。蛋白质共混物的实例为Tri-source^TM蛋白质共混物。在一个实施方案中，然而，本组合物中的蛋白质为乳清蛋白。

在本公开的实施方案中，必需氨基酸包括添加的亮氨酸。在本申请中，亮氨酸为属于支链氨基酸(“BCAA”)家族部分的必需氨基酸(“EAA”)。必需EAA的摄取刺激骨骼肌蛋白质的合成，显示支链氨基酸亮氨酸、异亮氨酸和缬氨酸在该应答中发挥关键作用。已研究了BCAA中的亮氨酸在包括肌肉的许多不同组织中的合成代谢特性。确定了细胞培养和大鼠模型，亮氨酸增加“开始”蛋白质合成中所涉及的具体蛋白质的形成并从而将其激活。

优选地，根据本公开的组合物使用约5g至约25gEAA的共混物的必需氨基酸的总剂量(其模拟高质量蛋白质中的EAA)，或10gEAA。在一个实施方案中，组合物包括至多约25g总剂量的亮氨酸。

在一个实施方案中，基于蛋白质的组合物富含至多约10％、或至多约7％、或至多约5％、或至多约3％L-[环-13C6]苯丙氨酸。在一个实施方案中，基于蛋白质组合物富含至多约5％L-[环-13C6]苯丙氨酸。

脂肪源具有提供改善口感的优点。任何脂肪源均合适。例如，可使用动物或植物脂肪。为了增加营养价值，ω3-不饱和脂肪酸和ω6-不饱和脂肪酸可构成脂肪源。脂肪源也可含有长链脂肪酸和/或中等链脂肪酸。例如，可使用乳脂、菜籽油、杏仁黄油、花生黄油、玉米油和/或高-油酸葵花油。

本营养组合物也可包含其他有益的或功能性组分。例如，营养组合物还可包含一种或多种益生元。益生元可选自阿拉伯树胶、α葡聚糖、阿拉伯半乳聚糖、β葡聚糖、右旋糖酐、果寡糖、半乳寡糖、半乳甘露聚糖、龙胆寡糖、葡寡糖、瓜尔豆胶、菊粉、异麦芽寡糖、低聚乳果糖、乳果糖、果聚糖、麦芽糊精、部分水解的瓜尔豆胶、果胶低聚糖、回生淀粉、大豆低聚糖、糖醇类、木寡糖或其组合。

在一个实施方案中，营养组合物还包含一种或多种选自以下的益生菌：气球菌属、曲霉属、拟杆菌属、双歧杆菌属、念珠菌属、梭菌属、德巴利酵母属、肠球菌属、梭杆菌属、乳杆菌属、乳球菌属、明串珠菌属、蜜蜂球菌属、微球菌属、毛霉菌属、酒球菌属、片球菌属、青霉菌属、消化链球菌属、毕赤酵母属、丙酸杆菌属、Pseudocatenulatum、根霉菌属、酵母属、葡萄球菌属、链球菌属、球拟酵母属、魏斯氏菌属或其组合。

营养组合物也可包含纤维源、纤维或不同纤维类型的共混物。纤维共混物可含有可溶性和不溶性纤维的混合物。例如，可溶性纤维可包括果寡糖、阿拉伯树胶、菊粉等等。例如，不溶性纤维可包括豌豆外部纤维。

在一个实施方案中，任何适合的碳水化合物可被用于本营养组合物中，所述碳水化合物包括但不限于蔗糖、乳糖、葡萄糖、果糖、玉米糖浆固体、麦芽糊精、改性淀粉、支链淀粉、木薯淀粉、玉米淀粉或其组合。

在另一个实施方案中，营养组合物还包含一种或多种氨基酸。氨基酸的非限制性实例包括异亮氨酸、丙氨酸、亮氨酸、天冬酰胺、赖氨酸、天冬氨酸盐、甲硫氨酸、半胱氨酸、苯丙氨酸、谷氨酸、苏氨酸、谷氨酰胺、色氨酸、甘氨酸、缬氨酸、脯氨酸、丝氨酸、酪氨酸、精氨酸、瓜氨酸、组氨酸或其组合。

在一个实施方案中，营养组合物还包含一种或多种合益素、植物营养素和/或抗氧化剂。抗氧化剂可选自类胡萝卜素、辅酶Q10(“CoQ10”)、类黄酮、谷胱甘肽、枸杞(枸杞(wolfberry))、橘皮苷、乳枸杞、木酚素、叶黄素、番茄红素、多酚类、硒、维生A、维生素B1、维生素B6、维生素B12、维生素C、维生素D、维生素E或其组合。

在一个实施方案中，营养组合物还包含一种或多种维生素和矿物质。维生素的非限制性实例包括维生素A，复合维生素B(如B-1、B-2、B-6和B-12)，维生素C，维生素D，维生素E和维生素K，烟酸和酸性维生素(如泛酸和叶酸)，生物素或其组合。矿物质的非限制性实例包括钙、铁、锌、镁、碘、铜、磷、锰、钾、铬、钼、硒、镍、锡、硅、钒、硼或其组合。

可加入其他任选的组分使营养组合物足够美味。例如，本公开的营养组合物可任选地包含常规的食品添加剂，如任何的酸化剂、另外的增稠剂、用于pH调节的缓冲液或试剂、螯合剂、着色剂、乳化剂、赋形剂、调味剂、矿物质、渗透剂、药学上可接受的载体、防腐剂、稳定剂、糖、甜味剂、调质剂或其组合。可加入任何合适量的任选组分。

总之，申请人意外地发现连续的抗阻和耐力运动后蛋白质摄取选择性地增加早期(例如，4小时)恢复期的肌原纤维蛋白质合成的速率，而不增加线粒体蛋白质合成的速率。申请人也发现蛋白质摄取也使与肌肉蛋白质水解相关的遗传标记的运动后增加减弱。考虑到耐力运动干扰对组合训练的强度/肥大的适应性应答，本发现表明连续的抗阻和耐力运动后蛋白质的摄入是有益的，其促进肌原纤维蛋白质的合成并降低泛素连接酶的表达。因此，运动后的蛋白质摄取可改善耐力运动对肌肉肥大的潜在“干扰作用”，并且表现出用于组合训练的重要营养策略。

通过参考以下的实施例更好地理解上述内容，其出于说明的目的呈现并且不意图限制本公开的范围。

实施例

申请人进行研究证明连续的抗阻和耐力运动(即，组合训练)后乳清-蛋白质补充的摄取选择性地增加训练后早期(例如，4小时)恢复期中肌原纤维(即收缩的，而不是线粒体)蛋白质合成的速率。蛋白质摄取也使运动后肌肉分解的增加减弱。考虑到耐力运动可干扰组合训练期间的强度适应，这些结果可被用来传达摄取高质量蛋白质(例如，乳清)以改善耐力运动对肌肉肥大的潜在“干扰作用”的重要性。

方法和试验

本实验在澳大利亚皇家墨尔本理工大学进行。八位健康男性个体(年龄19.1±1.4岁，体重78.1±15.6kg，峰值氧摄取(“VO₂峰”)46.7±4.4mLkg^-1min^-1，腿部伸展一次最大重复(“1-RM”)130±14kg；数值为平均值±标准偏差]自愿参加该研究，所述个体曾参加有规律的组合抗阻和耐力训练(～3次/周；>1年)。为所有个体解释与所述研究相关的实验方法和可能的风险，参加之前签订书面知情同意书。所述研究被RMIT大学的人类研究伦理委员会批准。

研究设计

研究采用随机双盲、交叉设计，在该设计中，每个个体完成两轮急性组合的抗阻和骑自行车运动项目，接受运动后安慰剂(“PLA”)或蛋白质(“PRO”)摄取，每次测试被三周的恢复期隔开，在恢复期期间，个体保持他们习惯的身体活动模式。

初步测试

峰值氧摄取

在Lode踏车测力计上对意志疲劳的增量式测试期间测定峰值氧摄取。简言之，个体开始骑自行车，在相当于2W/kg的工作负荷下150秒。其后，每150秒增加25W工作负荷直到意志疲劳，意志疲劳界定为不能维持节奏>70转/分钟。整个测试中，个体通过附着于代谢车上的喉舌呼吸以测定氧消耗。

最大强度

在挂片式腿部伸展机上的一系列单次重复期间测定肱四头肌的强度，直到确定最大的举重负荷(1RM)。每次重复被3分钟的恢复隔开，并且被用来测定只能移动完全动作范围一次，而移动不了第二次的最大负荷/重量。动作的运动范围为85°，将完全伸展减5°设置为腿部伸展端点。

饮食/运动对照

实验研究前，命令个体至少48小时内避免运动训练和剧烈的体育活动，以及避免酒精和咖啡消耗。在进行实验研究前的晚上，提供给个体预先包装的饭菜，其由3g碳水化合物/kg体重、0.5g蛋白质/kg体重和0.3g脂肪/kg体重组成，作为最终热量摄入消耗。

实验测试项目

实验研究的早晨，经过～10小时整夜禁食后，个体到实验室报到。仰卧位休息～15分钟后，将导管插入每只胳膊的肘前(anticubital)血管，并且取本底的血液样品(～3mL)(参见，例如，图1)。然后给予L-[环-13C6]苯丙氨酸的初期恒量静脉输注(初期：2μmol·kg^-1；输注：0.05μmolkg^-1min^-1)。示踪剂输注开始后3小时，局部麻醉下(2-3mL1％利多卡因)使用改善吸力的5-mmBergstrom针从股外侧肌获取休息的活组织检查。然后个体完成运动干预(同上所述)。运动终止后，个体立即摄取500mL安慰剂(PLA：水，人造甜味剂)或蛋白质饮料(PRO：25g乳清蛋白)。蛋白质饮料富含5％L-[环-13C6]苯丙氨酸以防止由恒量输注补充的稳态同位素富集的稀释。个体休息240分钟恢复期并且运动后60和240分钟取另外的肌肉活体组织检查。对于第一次试验，每次肌肉活体组织检查取自右腿远端不同位点2-3cm，对于第二次试验，每次肌肉活体组织检查取自左腿远端2-3cm的不同位点，所有样品保存在-80℃直到进一步分析。运动后恢复期期间定期将血液样品收集在血液收集管中(例如，乙二胺四乙酸(“EDTA”)管)。

抗阻运动

标准的热身活动后(分别2组5个～50％和～60％1RM的重复)，个体进行8组5个～80％1RM的重复。每组被3分钟的恢复期隔开，在恢复期期间，个体依然坐在腿部伸展机上。在设置的约等于30°/秒的节拍器节奏下进行收缩，并且每组重复期间提供热烈的口头鼓励。在开始骑自行车方案前个体休息15分钟。

骑自行车运动

在产生～70％的个体VO₂峰值的功率输出下，个体进行30分钟的连续骑自行车。在骑的过程中个体被风扇冷却并且允许任意饮水。为个体提供关于踏板频率、功率输出和运行时间的视觉反馈。

分析方法

血液葡萄糖和血浆胰岛素的浓度

使用自动葡萄糖分析仪立即分析全血样品(5mL)的葡萄糖浓度。然后将血液样品在1000g4℃下离心15分钟，在液氮中冰冻等分血浆并保存在-80℃。然后根据制造商说明书使用放射免疫分析试剂盒测量血浆胰岛素浓度。

血浆氨基酸和富集

通过来自改进方案的高效液相色谱(“HPLC”)测定血浆氨基酸浓度(MooreDR,RobinsonMJ,FryJL,TangJE,GloverEl,WilkinsonSB,PriorT,TarnopolskyMA,andPhillipsSM.2009.Ingestedproteindoseresponseofmuscleandalbuminproteinsynthesisafterresistanceexerciseinyoungmen.TheAmericanJournalofClinicalNutrition.89:161-168)。简单地说，100μL的血浆与500μL冰冷的0.6MPCA混合，并且用250μL1.25M碳酸氢钾(“KHCO₃”)中和。然后随后将样品衍生化用于HPLC分析。

线粒体和肌原纤维蛋白质合成

将一块冰冻的湿肌肉(～100mg)用冰冷匀浆液(1M蔗糖，1MTris/HCI，1MKCI，0.5MEDTA)在冰上的Dounce玻璃匀浆器内匀浆，每10ml匀浆液补充有蛋白酶抑制剂和磷酸酶混合药片(例如；PhosSTOP,RocheAppliedScience,Mannhein,Germany)。将匀浆转移至微量离心管中并且将其离心成富含肌原纤维蛋白质和胶原的组分的小球，其被保存在-80℃用于随后提取肌原纤维组分(在下文描述)。将上清液转移至另一个微量离心管中，并且将其离心成线粒体富集蛋白质组分小球。将上清液放入单独的微量离心管中，并且保存在-80℃用于蛋白质印迹分析(在下文描述)。然后冲洗、冻干线粒体富集小球，并且通过加入1.5ml6MHCl且加热至110℃过夜来释放氨基酸。将-80℃保存的肌原纤维小球用匀浆液冲洗两次，离心并弃去上清。用0.3M氢氧化钠使肌原纤维蛋白质溶解并用lM高氯酸使其沉淀。然后通过加入2.0ml6MHCl并加热至110℃过夜将氨基酸从肌原纤维富集沉淀中释放。使用阳离子交换层析纯化来自肌原纤维和线粒体富集组分的游离氨基酸并且将其转化为它们的N-乙酰基-n-丙酯衍生物，用于通过气相色谱燃烧-同位素比值质谱分析法分析。用冰冷的0.6MPCA从不同块的湿肌肉(～20mg)提取细胞内氨基酸(“IC”)。将肌肉匀浆，并且通过阳离子交换层析纯化上清液中的游离氨基酸，并且在通过气相色谱-质谱分析法(“GC-MS”)分析前将其转化为它们的七氟丁酸(“HFB”)衍生物。

计算

使用标准的前体-产物方法计算线粒体蛋白质合成和肌原纤维蛋白质合成的速率：

FSR(％.h-1)＝[(E2b-E1b)/(EIC×t)]×100

其中“E2b-E1b”代表两个活检样品之间的结合蛋白质富集的变化，“EIC”为两个活组织检查样品之间的细胞内苯丙氨酸的平均富集，以及t为两个连续的活组织检查之间的时间。

蛋白质印迹

在-80℃冰冻的来自之前线粒体富集组分提取物的上清液被用于测定蛋白质浓度(使用BCA蛋白质分析)。随后用Laemelli样品缓冲液重悬上清液，通过SDS-PAGE将其分离，转移至聚偏氟乙烯膜并与一抗(1:1,000)在振动器上4℃下孵育过夜。将膜与二抗(1:2,000)孵育，并且通过增强化学发光法检测蛋白质，并且其通过密度测定法定量。在相同的凝胶上运行每个个体的时间点的所有样品(40μg)。多克隆抗-磷酸-AktSer473、抗-磷酸-mTORSer2448、抗-磷酸-糖原合成酶(“GS”)Ser641、抗-磷酸-eEF2Thr56，以及单克隆抗-AMPKαThr172和抗p70S6KThr389来自CellSignalingTechnology。数据以相对于α-微管蛋白质的任意单位表示。

RNA提取和定量

根据制造商的说明书用TRIzol对之前急冷的样品进行骨骼肌组织RNA的提取。简单地说，用TRIzol匀浆～20mg骨骼肌，以及加入氯仿中以形成水性的RNA相。然后通过与异丙醇混合使该RNA相沉淀，冲洗得到的小球并且用50μl无RNase水将其复溶。根据制造商的说明书使用QUANT-iT分析仪试剂盒对提取的RNA进行定量。在NanoDrop1000分光光度计上通过测量260nm和280nm下的吸光值进一步确定RNA的质量，记录所有样品的260/280比值～1.88。将RNA样品适当稀释使浓度相等并且保存在-80℃用于随后的反转录。

反转录和实时PCR

使用商业可得到的TaqMan反转录试剂进行第一链互补DNA(“cDNA”)的合成，最终反应体积为20μL。在相同反转录混合液的单轮中所有RNA和阴性对照样品被反转录成cDNA。引入模板RNA的系列稀释液以确保反转录的效率并且用于计算实时定量聚合酶链式反应(“RT-PCR”)的标准曲线。在72-孔离心实时循环仪上进行mRNA的定量(两次)。用于MuRF-1、肌萎缩素、肌肉生长抑制素、PGC-1α、己糖激酶和VEGF的Taqman-FAM-标记的引物/探针被用在最终反应体积20μL中。PCR过程为50℃2分钟的UNG激活，95℃10分钟，然后40个循环的：95℃15秒和60℃60秒。甘油醛-3-磷酸脱氢酶(“GAPDH”)被用作管家基因以使循环阈值(“CT”)标准化。使用相对定量(ΔΔCT)方法计算mRNA的相对量。

统计学分析

通过重复测量的双因素方差分析(两个因素：时间×处理)和Student-Newman-Keulsposthoc分析来分析所有的数据。当P<0.05时确定统计显著性。所有的数据被表示为任意单位±标准偏差。

结果

血浆胰岛素、氨基酸和血液葡萄糖

PRO对血浆胰岛素和总的氨基酸浓度有主要影响，而PLA没有(P<0.001；参见，例如，图2A和B)。血浆胰岛素(～535％)和氨基酸(～70％)浓度的峰值出现在运动后40分钟(P<0.001)。对于支链氨基酸(BCAA)浓度来说，相同效果是明显的(～180％，P<0.001；参见，例如，图2C)。每个处理的任何时间下血液葡萄糖没有不同。

血浆示踪剂富集

对于PRO和PLA，休息时，以及运动后60、120、180和240分钟的血浆[环13C6]苯丙氨酸的富集分别为0.0688、0.0557、0.0679、0.0673和0.0609以及示踪物与被示踪物比值:t-T-1为0.0617、0.0558、0.0616、0.0558和0.0606。线性回归分析指示了血浆富集的斜率显然等于0，其表示同位素的平衡/稳定状态。

细胞信号转导

Akt-mTOR-p70S6K-eEF2

时间和处理对AktSer473磷酸化有主要影响(P<0.05，参见，例如，图3A)。PRO的运动后1小时AktSer473磷酸化增加超过休息时(～175％；P<0.05)，而PLA摄取没有。AktSer473中的这种不同导致1小时时处理之间的显著性差异(P<0.05)。随后，运动的恢复后4小时，PRO中的磷酸化回到休息水平(P<0.05)。时间和处理对mTORSer2448磷酸化有主要影响(P<0,05，参见，例如，图3B)。PRO(～400％，P<0.001)和PLA(～100％，P<0.05)摄取后1小时mTOR磷酸化提高，并且在PRO中这种增加显著高(～300％，P<0.001)。只有PLA中mTORSer2448磷酸化在运动后4小时依然高于休息时(～130％，P<0,05)，其导致处理之间明显不一致(P<0.05)。

时间和处理均对p70S6KThr389磷酸化有主要影响(P<0.05，参见，例如，图3C)。PRO的运动后1小时p70S6KThr389磷酸化增加超过休息时(～3000％；P<0,001)，而PLA没有。p70S6KThr389中的这种不同导致1小时时处理之间的显著性差异(P<0.05)。PRO摄取后，运动恢复的4小时后p70S6K磷酸化回至休息水平(P<0.001)。时间对两个处理的eEF2Thr56磷酸化有主要影响(P<0.05，参见，例如，图3D)。运动后1小时，eEF2磷酸化降低～60％(P<0.05)(PLA)和～75％(P<0.05)(PRO)，并且在恢复期间维持在该水平(4小时)。

AMPK-GS

时间和处理均对AMPKThr172磷酸化有主要影响(P<0.05，参见，例如，图4A)。只有PRO后运动后1小时至4小时AMPKThr172磷酸化降低(～70％,P<0.05)，并且在PLA中，AMPKThr172磷酸化较高，然而posthoc分析未能显示任何各个时间点的任何差异性。时间对GSSer641磷酸化有主要影响(P<0.05，参见，例如，图4B)。对于PLA，GSSer641磷酸化在运动后1小时(～80％，P<0.05)和4小时(～70％，P<0.05)低于休息时。对于PRO，与休息时相比，GS磷酸化在1小时时同样地降低(～90％，P<0.05)，但是在4小时时没有不同。

mRNA表达

MuRF1-肌萎缩素-1-肌肉生长抑制素

时间和处理对MuRF1mRNA丰度有主要影响(P<0.05，参见，例如，图5A)。PLA和PRO后MuRF1在运动后1小时(～315％对～230％,P<0.001)和4小时(～250％对～140％,P<0.05)各自增加显著超过休息水平。在两个运动后时间点下，与PRO相比，PLA中MuRF1较高(1小时：78％，4小时：105％，P<0.05)。只有PLA中肌萎缩素-mRNA的表达在运动后1小时增加超过休息时(～50％，P<0.05；参见，例如，图5B)。在1小时时肌萎缩素-1mRNA的不同导致处理之间的显著性差异(P<0.05)。时间对肌肉生长抑制素mRNA丰度有主要影响(P<0.05，参见，例如，图5C)。PLA和PRO后肌肉生长抑制素在1小时(～40％对～55％，P<0.05)和4小时(～70％对～80％，P<0.001)时分别低于休息时。PLA后在1小时时的肌肉生长抑制素mRNA不同于4小时时的肌肉生长抑制素mRNA(～120％，P<0.05)。

PGC-1α-己糖激酶-VEGF

时间对PGC-1αmRNA丰度有主要影响(P<0.05，参见，例如，图6A)。PGC-1α表达在4小时运动后的恢复后增加超过休息时和1小时时的水平(PLA(～730％，P<0.001)和PRO(～620％，P<0.001))。时间和处理对己糖激酶mRNA表达有主要影响(P<0.05，参见，例如，图6B)。只有PLA中己糖激酶在4小时时增加超过休息时(～120％，P<0.05)，然而在PRO中己糖激酶没有变化。这种不同导致4小时时处理之间的显著性差异(P<0.05)。对于PLA，VEGFmRNA表达在1小时(～200％,P<0.001)和4小时(～210％.P<0.001)时增加超过休息时(参见，例如，图6C)。同样地，对于PRO，VEGF在1小时(～170％，p<0.05)和4小时(～180；p<0.05)时也增加。在任何运动后时间点下处理之间不存在差异性。

肌肉蛋白质合成

PLA(～75％,P<0.05)和PRO(～145％,P<0.001)后，肌原纤维蛋白质合成的速率在运动后1小时和4小时之间增加超过休息时(参见，例如，图7A)。与PLA相比，PRO中肌原纤维合成速率的这种运动后增加较高(P<0.05)。线粒体蛋白质合成的速率(n＝6)在急性运动后时期期间未改变，并且处理之间的运动后组分合成不存在差异(参见，例如，图7B)。

应理解，本文所描述的当前优选的实施方案的多种变化和修饰对本领域技术人员来说是显而易见的。可以作出这种变化和修饰而不脱离本发明主题的精神和范围，并且没有减弱它的预期优点。因此，意图这样的变化和修饰被所附的权利要求涵盖。

Claims (20)

1.提高强体力活动后肌肉蛋白质合成的方法，其包括组合训练后约0至约30分钟对个体施用包含约15g至约35g蛋白质的组合物。

2.如权利要求1所述的方法，其中所述蛋白质选自基于乳品的蛋白质、基于植物的蛋白质、基于动物的蛋白质、人工蛋白质以及其组合。

3.如权利要求1-2中任一项所述的方法，所述组合物还包含选自以下的必需氨基酸：苯丙氨酸、缬氨酸、苏氨酸、色氨酸、异亮氨酸、甲硫氨酸、亮氨酸、赖氨酸、组氨酸以及其组合。

4.如权利要求1-3中任一项所述的方法，其中所述组合物富含所述组合物的至多约10重量％的量的L-[环-13C6]苯丙氨酸。

5.如权利要求1-4中任一项所述的方法，所述组合物还包含以下的至少一种：

a)选自以下的益生元：阿拉伯树胶、α葡聚糖、阿拉伯半乳聚糖、β葡聚糖、右旋糖酐、果寡糖、岩藻糖基乳糖、半乳寡糖、半乳甘露聚糖、龙胆寡糖、葡寡糖、瓜尔豆胶、菊粉、异麦芽寡糖、乳糖新四糖、低聚乳果糖、乳果糖、果聚糖、麦芽糊精、乳中寡糖、部分水解的瓜尔豆胶、果胶低聚糖、抗性淀粉、回生淀粉、唾液低聚糖、唾液酸乳糖、大豆低聚糖、糖醇类、木寡糖、它们的水解产物以及其组合；

b)选自以下的益生菌：益生菌，包括气球菌属(Aerococcus)、曲霉属(Aspergillus)、拟杆菌属(Bacteroides)、双歧杆菌属(Bifidobacterium)、念珠菌属(Candida)、梭菌属(Clostridium)、德巴利酵母属(Debaromyces)、肠球菌属(Enterococcus)、梭杆菌属(Fusobacterium)、乳杆菌属(Lactobacillus)、乳球菌属(Lactococcus)、明串珠菌属(Leuconostoc)、蜜蜂球菌属(Melissococcus)、微球菌属(Micrococcus)、毛霉菌属(Mucor)、酒球菌属(Oenococcus)、片球菌属(Pediococcus)、青霉菌属(Penicillium)、消化链球菌属(Peptostrepococcus)、毕赤酵母属(Pichia)、丙酸杆菌属(Propionibacterium)、Pseudocatenulatum、根霉菌属(Rhizopus)、酵母属(Saccharomyces)、葡萄球菌属(Staphylococcus)、链球菌属(Streptococcus)、球拟酵母属(Torulopsis)、魏斯氏菌属(Weissella)以及其组合；

c)选自以下的植物营养素：黄酮类、酚类化合物同类物、多酚类化合物、萜类、生物碱类、含硫化合物以及其组合；

d)选自以下的抗氧化剂：虾青素、类胡萝卜素、辅酶Q10(“CoQ10”)、类黄酮类、谷胱甘肽、枸杞(枸杞(wolfberry))、橘皮苷、乳枸杞、木酚素、叶黄素、番茄红素、多酚类、硒、维生素A、维生素C、维生素E、玉米黄素以及其组合；

e)维生素，其中所述维生素选自维生素A，维生素B1(硫胺素)，维生素B2(核黄素)，维生素B3(烟酸或烟酰胺)，维生素B5(泛酸)，维生素B6(吡哆醇，吡哆醛或吡哆胺或盐酸吡哆醇)，维生素B7(生物素)，维生素B9(叶酸)和维生素B12(多种钴胺素；维生素添加剂中通常为氰钴胺素)，维生素C，维生素D，维生素E，维生素K、K1和K2(即，MK-4、MK-7)，叶酸，生物素以及其组合；

f)矿物质，其中所述矿物质选自硼、钙、铬、铜、碘、铁、镁、锰、钼、镍、磷、钾、硒、硅、锡、钒、锌以及其组合；或

g)以上的组合。

6.根据前述权利要求中任一项所述的方法，其中所述提高的蛋白质合成为肌原纤维蛋白质合成和/或线粒体蛋白质合成。

7.根据前述权利要求中任一项所述的方法，其中所述组合物的份餐量为约500mL。

8.提高由组合训练导致的肌肉适应的程序，其包括为运动员提供营养和关于训练的指南，所述程序包括：

a.提供组合物，所述组合物包含约15g至35g蛋白质；和

b.提供消耗指南，所述消耗指南包括组合训练后消耗组合物的量的推荐。

9.根据权利要求8所述的程序，其中所述程序包括

推荐每周1至3次进行组合训练1-6周；并且

组合训练后约0至约30分钟施用所述组合物。

10.根据权利要求8-9中任一项所述的程序，所述组合物还包含选自以下的必需氨基酸：苯丙氨酸、缬氨酸、苏氨酸、色氨酸、异亮氨酸、甲硫氨酸、亮氨酸、赖氨酸、组氨酸以及其组合。

11.根据权利要求8-10中任一项所述的程序，其中所述组合物富含所述组合物的至多约10重量％的量的L-[环-13C6]苯丙氨酸。

12.根据权利要求8-11中任一项所述的程序，所述组合物还包含以下的至少一种：

a)益生元：选自阿拉伯树胶、α葡聚糖、阿拉伯半乳聚糖、β葡聚糖、右旋糖酐、果寡糖、岩藻糖基乳糖、半乳寡糖、半乳甘露聚糖、龙胆寡糖、葡寡糖、瓜尔豆胶、菊粉、异麦芽寡糖、乳糖新四糖、低聚乳果糖、乳果糖、果聚糖、麦芽糊精、乳中寡糖、部分水解的瓜尔豆胶、果胶低聚糖、抗性淀粉、回生淀粉、唾液低聚糖、唾液酸乳糖、大豆低聚糖、糖醇类、木寡糖、它们的水解产物以及其组合；

b)选自以下的益生菌：益生菌，包括气球菌属、曲霉属、拟杆菌属、双歧杆菌属、念珠菌属、梭菌属、德巴利酵母属、肠球菌属、梭杆菌属、乳杆菌属、乳球菌属、明串珠菌属、蜜蜂球菌属、微球菌属、毛霉菌属、酒球菌属、片球菌属、青霉菌属、消化链球菌属、毕赤酵母属、丙酸杆菌属、Pseudocatenulatum、根霉菌属、酵母属、葡萄球菌属、链球菌属、球拟酵母属、魏斯氏菌属、以及其组合；

c)选自以下的植物营养素：黄酮类、酚类化合物同类物、多酚类化合物、萜类、生物碱类、含硫化合物以及其组合；

d)选自以下的抗氧化剂：虾青素、类胡萝卜素、辅酶Q10(“CoQ10”)、类黄酮类、谷胱甘肽、枸杞(枸杞(wolfberry))、橘皮苷、乳枸杞、木酚素、叶黄素、番茄红素、多酚类、硒、维生素A、维生素C、维生素E、玉米黄素以及其组合；

e)维生素，其中所述维生素选自维生素A，维生素B1(硫胺素)，维生素B2(核黄素)，维生素B3(烟酸或烟酰胺)，维生素B5(泛酸)，维生素B6(吡哆醇、吡哆醛、吡哆胺或盐酸吡哆醇)，维生素B7(生物素)，维生素B9(叶酸)和维生素B12(多种钴胺素；维生素添加剂中通常为氰钴胺素)，维生素C，维生素D，维生素E，维生素K、K1和K2(即，MK-4、MK-7)，叶酸，生物素，以及其组合；

f)矿物质，其中所述矿物质选自硼、钙、铬、铜、碘、铁、镁、锰、钼、镍、磷、钾、硒、硅、锡、钒、锌、以及其组合；或

g)以上的组合。

13.根据权利要求8-12中任一项所述的程序，其中所述程序用于提高由组合训练导致的蛋白质合成。

14.根据权利要求13所述的程序，其中所述提高的蛋白质合成为肌原纤维蛋白质合成和/或线粒体蛋白质合成。

15.提高肌肉适应的营养试剂盒，其包括：

多份包含约15g至约35g蛋白质的组合物，以及推荐运动员在组合训练后约0至约30分钟消耗所述组合物的指南。

16.如权利要求15所述的营养试剂盒，所述组合物还包含选自以下的必需氨基酸：苯丙氨酸、缬氨酸、苏氨酸、色氨酸、异亮氨酸、甲硫氨酸、亮氨酸、赖氨酸、组氨酸以及其组合。

17.根据权利要求15-16中任一项所述的营养试剂盒，其中所述组合物富含所述组合物的至多约10重量％的量的L-[环-13C6]苯丙氨酸。

18.根据权利要求15-17中任一项所述的营养试剂盒，所述组合物还包含以下的至少一种：

a)选自以下的益生元：阿拉伯树胶、α葡聚糖、阿拉伯半乳聚糖、β葡聚糖、右旋糖酐、果寡糖、岩藻糖基乳糖、半乳寡糖、半乳甘露聚糖、龙胆寡糖、葡寡糖、瓜尔豆胶、菊粉、异麦芽寡糖、乳糖新四糖、低聚乳果糖、乳果糖、果聚糖、麦芽糊精、乳中寡糖、部分水解的瓜尔豆胶、果胶低聚糖、抗性淀粉、回生淀粉、唾液低聚糖、唾液酸乳糖、大豆低聚糖、糖醇类、木寡糖、它们的水解产物，以及其组合；

b)选自以下的益生菌：益生菌，包括气球菌属、曲霉属、拟杆菌属、双歧杆菌属、念珠菌属、梭菌属、德巴利酵母属、肠球菌属、梭杆菌属、乳杆菌属、乳球菌属、明串珠菌属、蜜蜂球菌属、微球菌属、毛霉菌属、酒球菌属、片球菌属、青霉菌属、消化链球菌属、毕赤酵母属、丙酸杆菌属、Pseudocatenulatum、根霉菌属、酵母属、葡萄球菌属、链球菌属、球拟酵母属、魏斯氏菌属，以及其组合；

c)选自以下的植物营养素：黄酮类、酚类化合物同类物、多酚类化合物、萜类、生物碱类、含硫化合物以及其组合；

d)选自以下的抗氧化剂：虾青素、类胡萝卜素、辅酶Q10("CoQ10")、类黄酮类、谷胱甘肽、枸杞(枸杞(wolfberry))、橘皮苷、乳枸杞、木酚素、叶黄素、番茄红素、多酚类、硒、维生素A、维生素C、维生素E、玉米黄素以及其组合；

e)维生素，其中所述维生素选自维生素A，维生素B1(硫胺素)，维生素B2(核黄素)，维生素B3(烟酸或烟酰胺)，维生素B5(泛酸)，维生素B6(吡哆醇，吡哆醛或吡哆胺或者盐酸吡哆醇)，维生素B7(生物素)，维生素B9(叶酸)和维生素B12(多种钴胺素；维生素添加剂中通常为氰钴胺素)，维生素C，维生素D，维生素E，维生素K、K1和K2(即，MK-4，MK-7)，叶酸，生物素以及其组合；

f)矿物质，其中所述矿物质选自硼、钙、铬、铜、碘、铁、镁、锰、钼、镍、磷、钾、硒、硅、锡、钒、锌以及其组合；或

g)以上的组合。

19.根据权利要求15-18中任一项所述的营养试剂盒，其中所述程序用于提高由组合训练导致的蛋白质合成。

20.根据权利要求19所述的营养试剂盒，其中所述提高的蛋白质合成为肌原纤维蛋白质合成和/或线粒体蛋白质合成。