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Abstract

本发明公开了一种双重LAMP检测方法,该方法可同时检测大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌。属于分子生物学技术领域。所述LAMP检测体系中含有检测大菱鲆弧菌luxR和鱼肠道弧菌ToxR基因的引物组,该引物组分别包含luxR基因和ToxR基因的一对外引物F3、B3和一对内引物FIP、BIP;内引物BIP上分别含有EcoR?Ⅰ和EcoR?Ⅴ酶切位点。该发明方法灵敏度高,特异型好,检测成本低廉,检测速度快。

Description

一种大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的双重LAMP检测方法
技术领域
本发明涉及大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的检测方法,具体涉及大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的双重LAMP检测方法。
背景技术
大菱鲆弧菌(Vibrioscophthalmi)是一种革兰氏阴性菌,呈短杆状,现已知该菌是大菱鲆、牙鲆等重要经济鱼类的致病菌,病鱼症状为皮肤变黑、肝脏和小肠出血、并伴有腹水和腹胀;鱼肠道弧菌(Vibrioichthyoenteri)是水产养殖中新发现的一种革兰氏阴性致病菌,呈杆状,两端钝圆,散在或成双,无芽孢,可感染大菱鲆(Scophthalmusmaximus)、牙鲆(Paralichthysolivaceus)、石鲽(Kareiusbicoloratus)等多种名贵海水养殖鱼类,造成严重的经济损失。
目前,针对大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的检测技术主要是PCR法、DNA杂交法和菌落杂交法。然而,由于这些方法通常需要昂贵的仪器设备,且操作繁琐、费时费力,很难推广应用。环介导等温扩增技术(loop-mediatedisothermalamplification,LAMP)是2000年由Notomi等人发明的一种新的病原核酸检测技术,该技术根据靶序列设计四条特异性引物,可以特异性识别靶序列的六个特定区域,在等温条件下,通过BstDNA聚合酶的链置换和链延伸作用,可以在1小时内对靶序列实现109倍的扩增,扩增产物加入荧光染料SYBRGreenI后,阳性结果变为绿色,阴性无变化,可以通过肉眼直接观察,实现了大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的快速检测,且操作简便,特异性好,适合基层养殖场对病原的快速检测。
发明内容
本发明提供了一种大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的双重LAMP的检测方法,目的是实现对大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌进行特异、灵敏、快速、简便的现场检测。改善原有检测技术繁琐、费时的弊端。
为实现上述目的,本发明采用以下技术方案予以实现:
1、提供2组LAMP引物序列,大菱鲆弧菌长度分别为49bp,43bp,18bp,20bp的核苷酸序列,分别命名为luxR-FIP、luxR-BIP、luxR-F3、luxR-B3,鱼肠道弧菌长度分别为46bp,46bp,18bp,19bp的核苷酸序列,分别命名为ToxR-FIP、ToxR-BIP、ToxR-F3、ToxR-B3;
2、配置LAMP反应体系,通过LAMP反应程序对样品模板进行扩增,确定最佳反应体系和反应条件;
3、反应产物的鉴定:2%琼脂糖凝胶电泳;产物加入SYBRGreenI,观察反应管中颜色变化。
具体包括如下步骤:
1、设计LAMP引物:根据GeneBank中已知V.scophthalmi的luxR(GenBank:JN684209.1)和V.ichthyoenteri的ToxR基因(GenBank:KT265743)作为靶序列,通过PrimerExploreV4在线设计软件设计四条特异性引物,对于V.scophthalmi,在FIP的F1c和F2之间添加EcorI酶切位点,在BIP的B1c和B2之间添加-TTTT-连接子;对于V.ichthyoenteri,在FIP的F1c和F2之间在BIP的B1c和B2之间添加EcorV酶切位点,在BIP的B1c和B2之间添加-TTTT-连接子。设计以下两组引物:
2、配制LAMP反应体系
反应体系的终浓度为:总体系25μl,包括BstDNA聚合酶1μl(8000U/ml),10×BstDNABuffer2.5μl,PCR级甜菜碱4μl(5M),dNTPs(2.5mMeach)2.5μl,DNA模版1μl,FIP/BIP各1μl(0.8μM),F3/B3各1μl(0.2μM),加灭菌双蒸水使反应体系总体积达到25μl。
3、LAMP反应体系扩增:将上述反应体系进行扩增反应,反应温度58到65℃,反应时间为15到90min.。
4、扩增产物检测:2%琼脂糖凝胶电泳;产物加入SYBRGreenI,观察反应管中颜色变化。
本发明提供的大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌双重LAMP检测方法,有以下优势:
一、灵敏度高对大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的检测可低至12CFU/ml,比普通PCR高100倍。
二、特异性强所需的特异性引物分别根据大菱鲆弧菌的luxR基因和鱼肠道弧菌的ToxR基因六个不同区域进行设计,特异性比常规PCR强。
三、检测时间段1h左右即可获得检测结果,比普通PCR省时。
四、仪器设备要求低不需要PCR仪等昂贵仪器,产物可以进行电泳,也可以直接加入SYBRGreenI染料,观察颜色变化,从而确定反应与否。
五、操作简单、结果易观察:整个检测过程不涉及复杂仪器设备,产物加入SYBRGreenI染料,可以直接用肉眼观察判断。
综上所述,本发明具有比现有的PCR技术检测大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的方法,有更高的特异性、灵敏度和便捷性,并且可以在实际生产中用于现场检测,有利于及时发现鱼类养殖中的大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的感染。
附图说明
图1双重LAMP反应体系温度的优化(A:V.scophthalmi;B:V.ichthyoenteri)
反应温度温度梯度从左往右依次58℃到65℃8个梯度1,3,5,7,9,11,13,15分别为58℃,59℃,60℃,61℃,62℃,63℃,64℃,65℃的阴性对照;2,4,6,8,10,12,14,16分别为58℃,59℃,60℃,61℃,62℃,63℃,64℃,65℃加模版。M:marker。。
图2双重LAMP反应体系时间的优化(A:V.scophthalmi;B:V.ichthyoenteri)
反应时间1—6分别代表15min,30min,45min,60min,75min,90min;M为marker。
图3双重LAMP反应的琼脂糖凝胶电泳图谱及酶切分析
A:V.scophthalmi,1:酶切图谱,2:LAMP扩增产物,M:Marker;
B:V.ichthyoenteri,1:酶切图谱,2:LAMP扩增产物M:Marker。
图4大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌双重LAMP检测方法与普通PCR检测方法的灵敏度比较M:Marker;1-81.2×107CFU/ml-1.2×100CFU/mlCFU/ml;N:negativecontrol。
图5特异性结果统计只有大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌有扩增,其他菌均没有扩增。
图6双重LAMP检测方法的应用-SYBRGreenI法显色反应对人工感染的大菱鲆鱼的肝、肾、脾、血进行双重LAMP扩增,产物加入SYBRGreenI,感染组显示绿色,对照组无变化。1,3,5,7:(感染组A:感染大菱鲆弧菌;B:感染鱼肠道弧菌)脾、肾、肝、血。2,4,6,8:(健康组)脾、肾、肝、血。
图7双重LAMP检测方法的应用-平板计数法结合双重LAMP计数细菌的最低检出率。
具体实施方式:
以下结合附图实施例对本发明作进一步详细描述:
实施例1
1大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌双重LAMP方法的建立
1.1材料
dNTPs、BstDNA聚合酶(含10×缓冲液)、PCR级甜菜碱
1.2方法
1.2.1引物设计与合成
设计LAMP引物:根据GeneBank中已知V.scophthalmi的luxR(GenBank:JN684209.1)和V.ichthyoenteri的ToxR基因(GenBank:KT265743)作为靶序列,通过PrimerExploreV4在线设计软件设计四条特异性引物,对于V.scophthalmi,在FIP的F1c和F2之间添加EcorI酶切位点,在BIP的B1c和B2之间添加-TTTT-连接子;对于V.ichthyoenteri,在FIP的F1c和F2之间添加EcorV酶切位点,在BIP的B1c和B2之间添加-TTTT-连接子。引物由上海桑尼生物科技有限公司合成。
1.2.2LAMP扩增条件的优化
优化反应温度和反应时间。检测所用的模板用煮沸裂解法制备。分别在温度和时间上设置的不同梯度,进行优化。温度上从58℃到65℃每隔1℃设置一个梯度;时间上15min一个梯度,设置6个梯度。扩增产物进行2%琼脂糖凝胶电泳分析。
分析温度电泳图:大菱鲆弧菌在58℃到65℃均可发生反应,产生阶梯状扩增条带,且电泳条带亮度接近;鱼肠道弧菌在65℃均无明显阶梯状扩增条带,但在58℃到64℃有阶梯状扩增条带,且条带亮度相当(见图1-A和图1-B)。
分析时间电泳图:大菱鲆弧菌在30min时,出现明显的阶梯状条带,鱼肠道弧菌在45min时,出现明显的阶梯状扩增条带(见图2-A和图2-B)。
比较V.vulnificus和V.parahaemolyticus两种弧菌的电泳图谱,选择62℃反应45min即可产生清晰的阶梯状扩增条带。
实施例2
限制性内切酶酶切分析
为了构建双重LAMP的检测方法,在V.scophthalmi和V.ichthyoenteri两种弧菌的内在引物FIP的F1c和F2之间分别添加EcorI限制性酶切位点和EcorV限制性酶切位点(两种弧菌的靶序列中都不含该两种限制性酶切位点),利用限制性酶切分析来确定反应的正确性和特异性。在双重LAMP反应体系中只添加一种模板,并分别对扩增产物进行一种限制性酶切。结果表明:大菱鲆弧菌的扩增产物能够被EcorI限制性内切酶酶切,酶切得到的特异性条带见(图3-A1泳道);鱼肠道弧菌能够被EcorV限制性内切酶酶切,酶切得到的特异性条带(见图3-B1泳道),证明了双重LAMP扩增结果的正确性。
实施例3
大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌双重LAMP检测方法的灵敏度测定
1煮沸法提取DNA。
2为了检测LAMP方法的灵敏度,将提取大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌基因组DNA进行10倍梯度稀释,共8个梯度,各浓度级分别取1μL作为模版,进行优化条件后的LAMP扩增,扩增产物进行2%琼脂糖凝胶电泳分析。
3分别取1μL作为PCR模板,F3/B3各1μl(20mM),Taq酶0.5μl,dNTPs(2.5mMeach)1μl,Taq10×buffer2.5μl,ddH2O18μl,进行PCR扩增,94℃预变性5min;94℃变性30s,57℃退火40s,72℃延伸40s,25个循环;72℃延伸5min。扩增产物进行2%琼脂糖凝胶电泳分析。
PCR方法对2种致病菌不同稀释度的菌悬液进行灵敏度的检测,结果发现:大菱鲆弧菌最低均能检测到1.2x103CFU/ml,分别产生175bp的扩增条带(图4C);副溶血弧菌最低均能检测到1.2x103CFU/ml,分别产生223bp的扩增条带(图4D)。双重LAMP检测方法灵敏度高,创伤弧菌最低能够检测到12CFU/ml,是普通PCR方法的102倍;副溶血弧菌最低能够检测到12CFU/ml,是普通PCR方法的102倍。
实施例4
1用煮沸法制备鱼肠道弧菌(Vibrioichthyoenteri),创伤弧菌(Vibriovulnificus),副溶血弧菌(Vibrioparahaemolyticus),鳗弧菌(Vibrioanguillarum),哈维氏弧菌(Vibrioharveyi),大肠杆菌(E.coli),恶臭假单胞菌(Pseudomonasputida),藤黄微球菌(Micrococcusluteus),金黄色葡萄球菌(Staphylococcusaureus),无乳链球菌(Streptococcusagalactiae)的DNA模板,进行LAMP扩增,扩增产物进行2%琼脂糖凝胶电泳分析。结果只有大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌有扩增条带(见图5)。
实施例5
双重LAMP方法具体检测鱼体内的大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌
1选取大菱鲆作为试验动物,通过腹腔注射方式分别人工感染2种弧菌。感染12h后,无菌操作,分别取血、肾、肝及脾组织,匀浆。匀浆液进行10倍梯度稀释,选择合适的稀释度涂布LB固体培养基平板,计数。剩余血、肾、肝及脾组织的匀浆液经煮沸,进行10倍梯度稀释,双重LAMP方法检测其最低检出率,扩增产物进行2%琼脂糖凝胶分析。
结果显示,双重LAMP方法可以在所有的感染组样品中,检测到2种弧菌的存在。向双重LAMP扩增反应管中加入1μl(1:10)SYBRGreenI,目测反应管中颜色的变化。结果发现,感染组的所有组织的反应管中均发生了阳性反应,颜色变为典型的绿色;对照组健康大菱鲆的所有组织的反应管中颜色变为橙色(图6)。
2结合平板计数和双重LAMP方法,计算各细菌感染组中所取组织细菌检出率(图7)。结果表明:感染大菱鲆弧菌的大菱鲆,脾、肾、肝和血液中大菱鲆弧菌的最低检出率分别为20CFU/ml、21CFU/ml、18CFU/ml和28CFU/ml;感染鱼肠道弧菌的大菱鲆,脾、肾、肝和血液中创伤弧菌的最低检出率分别为26CFU/ml、21CFU/ml、25CFU/ml和29CFU/ml。

Claims (2)

1.大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的双重LAMP检测方法,其特征在于包括下述步骤:
(1)根据GeneBank中已知的大菱鲆弧菌luxR基因(GenBank:JN684209.1)和鱼肠道弧菌的ToxR基因(GenBank:KT265743)作为靶序列,通过PrimerExploreV4在线设计软件设计四条特异性引物,对于大菱鲆弧菌,在FIP的F1c和F2之间添加EcorI酶切位点,在BIP的B1c和B2之间添加-TTTT-连接子;对于鱼肠道弧菌,在FIP的F1c和F2之间在BIP的B1c和B2之间添加EcorV酶切位点,在BIP的B1c和B2之间添加-TTTT-连接子,设计以下两组引物:
(2)配制LAMP反应体系
反应体系的终浓度为:总体系25μl,包括BstDNA聚合酶1μl(8000U),10×BstDNABuffer2.5μl,PCR级甜菜碱4μl(5M),dNTPs(2.5mMeach)2.5μl,DNA模版1μl,FIP/BIP各1μl(0.8μM),F3/B3各1μl(0.2μM),加双蒸水使反应体系总体积达到25μl;
(3)LAMP反应体系扩增:将上述反应体系进行扩增反应,反应温度58℃到65℃,反应时间为45min到90min;
(4)扩增产物检测:2%琼脂糖凝胶电泳;产物加入SYBRGreenI,观察反应管中颜色变化。
2.如权利要求1所叙述的大菱鲆弧菌和鱼肠道弧菌的双重LAMP检测方法,其特征在于步骤3中的最适反应温度是62℃,最适反应时间45min。
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