CN104330496B - 食用植物油中9种营养物的检测方法 - Google Patents
食用植物油中9种营养物的检测方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN104330496B CN104330496B CN201410620656.3A CN201410620656A CN104330496B CN 104330496 B CN104330496 B CN 104330496B CN 201410620656 A CN201410620656 A CN 201410620656A CN 104330496 B CN104330496 B CN 104330496B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- kinds
- vegetable oil
- efflux
- edible vegetable
- nutraceutical
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Landscapes
- Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)
- Fats And Perfumes (AREA)
Abstract
本发明公开了一种食用植物油中9种营养物的检测方法,包括:一、将食用植物油溶解在体积比为1:1的环己烷和乙酸乙酯的混合溶剂中得食用植物油溶液;二、将第一步中制得的食用植物油溶液注入至制备型凝胶渗透色谱仪中进行净化,净化条件为:凝胶色谱柱300mm×20mm;进样量为5mL;流动相为体积比为1:1的环己烷和乙酸乙酯混合溶剂;流速4.7mL/min;流出液收集时间为第7’40’’?~第15’00’’,流出液吹干所得的残渣溶解后过滤得目标分析溶液;三、将第二步得到的目标分析溶液注入至液相色谱—质谱仪中进行测定,采用外标法进行分析得9种营养物—高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、菜油甾醇、岩藻甾醇、豆甾醇、胆固醇、β-谷甾醇的含量。
Description
技术领域
本发明涉及植物油中营养物检测技术领域,具体涉及食用植物油中的植物甾醇和三萜烯二醇中9种营养物的检测方法。
背景技术
食用植物油的主要成分包括甘油三脂(95-98%)和不皂化物(2-5%)。不皂化物中的主要成分为植物甾醇和三萜烯二醇,植物甾醇和三萜烯二醇中主要的9种营养物为:高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、菜油甾醇、岩藻甾醇、豆甾醇、胆固醇、β-谷甾醇,该9种营养物在食用植物油中的营养价值已得到普遍认同,添加相关营养物的营养强化植物油已经逐渐走向市场。
传统的食用植物油中的植物甾醇和三萜烯二醇的检测方法较多,检测方法中的关键一步是:将食用植物油中的甘油三脂与不皂化物进行分离后得到不皂化物,即对食用植物油进行净化前处理。如目前国内甾醇测定的标准方法GB/T25223-2010(等同ISO12228:1999)中采用气相色谱仪(GC-FID)进行检测,其前处理工作包括皂化、萃取、薄层层析、硅烷化四个步骤,这四个步骤均需要进行手工操作,操作起来繁琐、复杂,而且还容易导致重复性差等问题,并且利用该方法检测需要三天左右的时间,耗时极为漫长;此外,国际上还有一种高效液相色谱质谱法(HPLC-MS),此方法的前处理过程中虽然省去了薄层层析和硅烷化步骤,但依然需要皂化、萃取,而皂化和萃取依然需要手工操作,因此该方法操作起来仍然十分繁琐复杂。
发明内容
本发明的目的是:提供一种易操作、自动化程度高、稳定性好、灵敏度高、检测时间短的食用植物油中9种营养物的检测方法。
为实现上述目的,本发明采用的技术方案是:食用植物油中9种营养物的检测方法,所述的9种营养物为高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、菜油甾醇、岩藻甾醇、豆甾醇、胆固醇、β-谷甾醇,所述的检测方法包括以下步骤:一、将待测的食用植物油溶解在体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯的混合溶剂中制得食用植物油溶液,所述的食用植物油溶液的浓度为10~50g/L;二、将第一步中制得的食用植物油溶液注入至制备型凝胶渗透色谱仪中进行净化,所述的制备型凝胶色谱仪的净化条件为:凝胶色谱柱为300mm×20mm,进样量为5mL,流动相为体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯混合溶剂,流速4.7mL/min,流出液收集至接收管中、且收集时间为第7’40”~第15’00”,将接收管中的流出液进行吹干,吹干后所得的残渣溶解后过滤得目标分析溶液;三、将第二步得到的目标分析溶液注入至液相色谱-质谱仪中进行测定,采用外标法进行分析得到9种营养物——高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、菜油甾醇、岩藻甾醇、豆甾醇、胆固醇、β-谷甾醇的含量。
进一步地,前述的食用植物油中9种营养物的检测方法,其中,第三步中液相色谱-质谱仪的仪器条件为:色谱部分:色谱柱为EclipseXDB-C18,5μm粒径,4.6mm×150mm;柱温为30℃;进样量10μL;停止时间35min;采用乙腈、甲醇和甲酸水溶液三种物料混合形成的流动相,所述的流动相按照流动相梯度表提供的参数进行梯度洗脱,
流动相梯度表
其中:A为体积浓度为0.15%的甲酸水溶液,B为乙腈,D为甲醇,表1内A、B、D按体积百分比进行配比;质谱部分:干燥气流速6L/min;干燥气温度为350℃;雾化器压力60psi;蒸发室温度为350℃;毛细管电压3500V;电晕针电流5μA;APCI离子源;正离子扫描;选择离子监测模式,离子监测模式的具体参数按照待测物的保留时间及SIM参数表
待测物的保留时间及SIM参数表
进一步地,前述的食用植物油中9种营养物的检测方法,其中,第二步中流出液吹干过程为:将接收管内的流出液转移至全自动定量浓缩仪的浓缩管内后在35℃下氮气吹干,吹干所得的残渣用2.0mL乙腈溶解后由孔径为0.22μm的滤膜过滤得目标分析溶液。
更进一步地,前述的食用植物油中9种营养物的检测方法,其中,将接收管内的流出液转移至全自动浓缩仪中的浓缩管中后,用乙酸乙酯荡洗两次接收管,并将两次的荡洗液合并至全自动浓缩仪中的浓缩管中,然后再进行吹干。
进一步地,前述的食用植物油中9种营养物的检测方法,其中,第二步中使用的凝胶色谱柱为快速柱。
本发明的优点是:整个操作过程自动化程度高、易操作,且稳定性好、灵敏度高、检测时间大大缩短。
附图说明
图1是具体实施方式中进行检测前制备的液相色谱-质谱图,其中1-9号峰分别为:高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、胆固醇、岩藻甾醇、菜油甾醇、豆甾醇、β-谷甾醇。
具体实施方式
下面通过优选实施例对本发明作进一步的详细说明。
和常规的外标法相同,在进行检测前先配制出9种营养物-高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、菜油甾醇、岩藻甾醇、豆甾醇、胆固醇、β-谷甾醇混合的标准溶液,其液相色谱-质谱图如图1所示;并制得该9种营养物标准曲线,标准曲线的线性范围、线性方程以及相关系数,见表3。图1和表3供外标法分析时使用。
实施例1:
一、称取200mg混均的特级初榨橄榄油样品至10mL的容量瓶中,用体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯的混合溶剂溶解,并定容至容量瓶刻度线,制得橄榄油溶液;二、第一步中制得的橄榄油溶液通过制备型凝胶渗透色谱仪上的自动进样器注入至制备型凝胶渗透色谱仪中进行净化,所述的制备型凝胶色谱仪的净化条件为:凝胶色谱柱(300mm×20mm)快速柱,进样量为5mL,流动相为体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯混合溶剂,流速4.7mL/min,流出液收集至接收管中、且收集时间为第7’40”~第15’00”,将接收管中的流出液采用全自动定量浓缩仪在35℃下氮气吹干,为了尽可能使得接收管内的流出液全部转移至全自动浓缩仪中的浓缩管中,本实施例中接收管内的流出液转移至全自动浓缩仪中的浓缩管中后,再用5mL乙酸乙酯分两次荡洗接收管,并将两次的荡洗液合并至全自动浓缩仪中的浓缩管中,然后再进行吹干,吹干所得的残渣用2.0mL乙腈溶解后由孔径为0.22μm的滤膜过滤得橄榄油目标分析溶液;三、将第二步得到的橄榄油目标分析溶液注入至液相色谱-质谱仪中进行测定,液相色谱-质谱仪的仪器条件为:色谱部分:色谱柱为EclipseXDB-C18;5μm粒径;4.6mm×150mm;柱温为30℃;进样量10μL;停止时间35min;采用乙腈、甲醇和甲酸水溶液三种溶剂混合形成的流动相,所述的流动相按照表1提供的参数进行梯度洗脱,其中三种溶剂的混合由液相色谱-质谱仪按照表1提供的体积配比参数自动完成;质谱部分:干燥气流速6L/min;干燥气温度为350℃,雾化器压力60psi,蒸发室温度为350℃,毛细管电压3500V,电晕针电流5μA,APCI离子源,正离子扫描,选择离子监测模式,离子监测模式的具体参数按照表2,采用外标法进行分析得橄榄油样品中9种营养物——高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、菜油甾醇、岩藻甾醇、豆甾醇、胆固醇、β-谷甾醇的含量,具体含量见表4。
实施例2:
一、称取200mg混均的菜籽油样品至10mL的容量瓶中,用体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯的混合溶剂溶解,并定容至容量瓶刻度线,制得菜籽油溶液;二、第一步中制得的菜籽油溶液通过制备型凝胶渗透色谱仪上的自动进样器注入至制备型凝胶渗透色谱仪中进行净化,所述的制备型凝胶色谱仪的净化条件为:凝胶色谱柱为300mm×20mm快速柱;进样量为5mL;流动相为体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯混合溶剂;流速4.7mL/min;流出液收集至接收管中、且收集时间为第7’40”~第15’00”,将接收管中的流出液采用全自动定量浓缩仪在35℃下氮气吹干,为了尽可能使得接收管内的流出液全部转移至全自动浓缩仪中的浓缩管中,本实施例中接收管内的流出液转移至全自动浓缩仪中的浓缩管中后,再用5mL乙酸乙酯分两次荡洗接收管,并将两次的荡洗液合并至全自动浓缩仪中的浓缩管中,然后再进行吹干,吹干所得的残渣用2.0mL乙腈溶解后由孔径为0.22μm的滤膜过滤得菜籽油目标分析溶液;三、将第二步得到的菜籽油目标分析溶液注入至液相色谱-质谱仪中进行测定,液相色谱-质谱仪的仪器条件为:色谱部分:色谱柱为EclipseXDB-C18、5μm粒径、4.6mm×150mm、柱温为30℃;进样量10μL;停止时间35mim;采用乙腈、甲醇和甲酸水溶液三种溶剂混合形成的洗脱流动相,所述的洗脱流动相按照表1提供的参数进行梯度洗脱,其中三种溶剂的混合由液相色谱-质谱仪按照表1提供的体积配比参数自动完成;质谱部分:干燥气流速6L/min;干燥气温度为350℃;雾化器压力60psi;蒸发室温度为350℃;毛细管电压3500V;电晕针电流5μA;APCI离子源;正离子扫描;选择离子监测模式,离子监测模式的具体参数按照表2,采用外标法进行分析得菜籽油样品中9种营养物——高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、菜油甾醇、岩藻甾醇、豆甾醇、胆固醇、β-谷甾醇的含量,具体含量见表4。
实施例3:
一、称取200mg混均的大豆油样品至10mL的容量瓶中,用体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯的混合溶剂溶解,并定容至容量瓶刻度线,制得橄榄油溶液;二、第一步中制得的橄榄油溶液通过制备型凝胶渗透色谱仪上的自动进样器注入至制备型凝胶渗透色谱仪中进行净化,所述的制备型凝胶色谱仪的净化条件为:凝胶色谱柱为300mm×20mm快速柱;进样量为5mL;流动相为体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯混合溶剂;流速4.7mL/min;流出液收集至接收管中、且收集时间为第7’40”~第15’00”,将接收管中的流出液采用全自动定量浓缩仪在35℃下氮气吹干,为了尽可能使得接收管内的流出液全部转移至全自动浓缩仪中的浓缩管中,本实施例中接收管内的流出液转移至全自动浓缩仪中的浓缩管中后,再用5mL乙酸乙酯分两次荡洗接收管,并将两次的荡洗液合并至全自动浓缩仪中的浓缩管中,然后再进行吹干,吹干所得的残渣用2.0mL乙腈溶解后由孔径为0.22μm的滤膜过滤得大豆油目标分析溶液;三、将第二步得到的大豆油目标分析溶液注入至液相色谱-质谱仪中进行测定,液相色谱-质谱仪的仪器条件为:色谱部分:色谱柱为EclipseXDB-C18、5μm粒径、4.6mm×150mm、柱温为30℃;进样量10μL;停止时间35min;采用乙腈、甲醇和甲酸水溶液三种溶剂混合形成的流动相;所述的流动相按照表1提供的参数进行梯度洗脱,其中三种溶剂的混合由液相色谱-质谱仪按照表1提供的体积配比参数自动完成;质谱部分:干燥气流速6L/min;干燥气温度为350℃;雾化器压力60psi;蒸发室温度为350℃;毛细管电压3500V;电晕针电流5μA;APCI离子源;正离子扫描;选择离子监测模式,离子监测模式的具体参数按照表2,采用外标法进行分析得大豆油样品中9种营养物——高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、菜油甾醇、岩藻甾醇、豆甾醇、胆固醇、β-谷甾醇的含量,具体含量见表4。
上述检测过程,自动化程度高、操作方便、稳定性好、灵敏度高,每个样品的检测只需一天时间,大大缩短了检测时间。
上述实施例中,涉及的表1、表2、表3,表4具体如下。
表1流动相梯度表
其中:A为体积浓度为0.15%甲酸的水溶液,B为乙腈,D为甲醇,表1内A、B、D按体积百分比进行配比。
表2待测物的保留时间及SIM参数表
表3
线性范围(μg/mL) | 线性方程 | 相关系数 | |
高根二醇 | 0.05~1.00 | y=60458x-1395 | 0.9933 |
熊果醇 | 0.05~1.00 | y=74568x-3297 | 0.9946 |
麦角固醇 | 0.05~1.00 | y=55699x-305.2 | 0.9997 |
菜籽甾醇 | 0.05~1.00 | y=259026x-993.9 | 0.9998 |
胆固醇 | 0.05~1.00 | y=287046x+3032 | 0.9998 |
岩藻甾醇 | 0.10~2.00 | y=619557x-70256 | 0.9999 |
菜油甾醇 | 0.125~2.50 | y=516817x+5964 | 0.9994 |
豆甾醇 | 0.05~1.00 | y=407929x+11188 | 0.9977 |
β-谷甾醇 | 5.00~100 | y=360332x+39827 | 0.9999 |
表4三种植物油的实测结果
特级初榨橄榄油(mg/kg) | 菜籽油(mg/kg) | 大豆油(mg/kg) | |
高根二醇 | 8.65 | nd | 1.11 |
熊果醇 | 2.70 | nd | 0.72 |
麦角固醇 | 0.91 | 25.97 | 1.82 |
菜籽甾醇 | nd | 347.60 | nd |
胆固醇 | nd | 4.36 | 3.99 |
岩藻甾醇 | 7.89 | 2.02 | 3.95 |
菜油甾醇 | 27.17 | 659.10 | 403.72 |
豆甾醇 | 8.99 | 28.35 | 524.96 |
β-谷甾醇 | 838.50 | 1522.15 | 975.40 |
表4中nd表示未检出。
Claims (4)
1.食用植物油中9种营养物的检测方法,所述的9种营养物为高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、菜油甾醇、岩藻甾醇、豆甾醇、胆固醇、β-谷甾醇,所述的检测方法包括以下步骤:一、将待测的食用植物油溶解在体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯的混合溶剂中制得食用植物油溶液,所述的食用植物油溶液的浓度为10~50g/L;二、将第一步中制得的食用植物油溶液注入至制备型凝胶渗透色谱仪中进行净化,所述的制备型凝胶色谱仪的净化条件为:凝胶色谱柱为300mm×20mm,进样量为5mL,流动相为体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯混合溶剂,流速4.7mL/min,流出液收集至接收管中、且收集时间为第7’40”~第15’00”,将接收管中的流出液进行吹干,吹干后所得的残渣溶解后过滤得目标分析溶液;三、将第二步得到的目标分析溶液注入至液相色谱-质谱仪中进行测定,采用外标法进行分析得到9种营养物——高根二醇、熊果醇、麦角固醇、菜籽甾醇、菜油甾醇、岩藻甾醇、豆甾醇、胆固醇、β-谷甾醇的含量;第三步中液相色谱-质谱仪的仪器条件为:色谱部分:色谱柱为EclipseXDB-C18,5μm粒径,4.6mm×150mm;柱温为30℃;进样量10μL;停止时间35min;采用乙腈、甲醇和甲酸水溶液三种溶剂混合形成的流动相,所述的流动相按照流动相梯度表提供的参数进行梯度洗脱,
流动相梯度表
其中:A为体积浓度为0.15%的甲酸水溶液,B为乙腈,D为甲醇,表1内A、B、D按体积百分比进行配比;质谱部分:干燥气流速6L/min;干燥气温度为350℃;雾化器压力60psi;蒸发室温度为350℃;毛细管电压3500V;电晕针电流5μA;APCI离子源;正离子扫描;选择离子监测模式,离子监测模式的具体参数按照待测物的保留时间及SIM参数表
待测物的保留时间及SIM参数表
2.根据权利要求1所述的食用植物油中9种营养物的检测方法,其特征在于:第二步中流出液吹干过程为:将接收管内的流出液转移至全自动定量浓缩仪的浓缩管内后在35℃下氮气吹干,吹干所得的残渣用2.0mL乙腈溶解后由孔径为0.22μm的滤膜过滤得目标分析溶液。
3.根据权利要求2所述的食用植物油中9种营养物的检测方法,其特征在于:将接收管内的流出液转移至全自动浓缩仪中的浓缩管中后,用乙酸乙酯荡洗两次接收管,并将两次的荡洗液合并至全自动浓缩仪中的浓缩管中,然后再进行吹干。
4.根据权利要求1所述的食用植物油中9种营养物的检测方法,其特征在于:第二步中使用的凝胶色谱柱为快速柱。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410620656.3A CN104330496B (zh) | 2014-11-06 | 2014-11-06 | 食用植物油中9种营养物的检测方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410620656.3A CN104330496B (zh) | 2014-11-06 | 2014-11-06 | 食用植物油中9种营养物的检测方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN104330496A CN104330496A (zh) | 2015-02-04 |
CN104330496B true CN104330496B (zh) | 2015-12-02 |
Family
ID=52405264
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201410620656.3A Active CN104330496B (zh) | 2014-11-06 | 2014-11-06 | 食用植物油中9种营养物的检测方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN104330496B (zh) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106226429A (zh) * | 2016-07-29 | 2016-12-14 | 中华人民共和国张家港出入境检验检疫局 | 特级初榨橄榄油中掺杂有棕榈油的判定方法 |
CN107941979B (zh) * | 2017-11-13 | 2022-07-26 | 舟山市食品药品检验检测研究院 | 一种水产加工品中胆固醇氧化物含量检测方法 |
CN110333300B (zh) * | 2019-06-12 | 2022-02-22 | 舟山新诺佳生物工程有限责任公司 | 一种鱼油油脂中不皂化物和油脂酯类型检测方法 |
CN114577925B (zh) * | 2021-12-29 | 2024-02-02 | 西南大学 | 一种水样中粪甾醇类物质快速检测方法 |
CN115308341B (zh) * | 2022-09-15 | 2023-12-22 | 山东省食品药品检验研究院 | 一种非衍生化-气相色谱-串联质谱法快速测定植物油中5种植物甾醇的方法 |
-
2014
- 2014-11-06 CN CN201410620656.3A patent/CN104330496B/zh active Active
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN104330496A (zh) | 2015-02-04 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN104330496B (zh) | 食用植物油中9种营养物的检测方法 | |
Huang et al. | Fast separation of triterpenoid saponins using supercritical fluid chromatography coupled with single quadrupole mass spectrometry | |
CN102735784A (zh) | 一种超高效液相色谱-串联四级杆质谱同时测定中药中100种农药残留的方法 | |
Tang et al. | Quantitative and qualitative analysis of common peaks in chemical fingerprint of Yuanhu Zhitong tablet by HPLC-DAD–MS/MS | |
CN103698462B (zh) | 一种同时检测烟草中多种农药残留的方法 | |
Jiang et al. | Development of an analytical method for separation of phenolic acids by ultra-performance convergence chromatography (UPC2) using a column packed with a sub-2-μm particle | |
Naumoska et al. | TLC and TLC-MS screening of ursolic, oleanolic and betulinic acids in plant extracts | |
CN103399102B (zh) | 一种测定烟草及烟草制品总茄尼醇的方法 | |
CN105203654A (zh) | 一种用于测定中兽药散剂中11种非法添加药物含量的方法 | |
CN107247105A (zh) | 一种固相萃取‑高效液相色谱‑串联质谱法检测茶叶中高氯酸盐的方法 | |
Wang et al. | Isolation and purification of six iridoid glycosides from gardenia jasminoides fruit by medium‐pressure liquid chromatography combined with macroporous resin chromatography | |
CN103499658B (zh) | 一种烟草中Amadori化合物的同时测定方法 | |
CN104997840A (zh) | 一种异叶青兰五环三萜类组分的样品前处理方法及其应用 | |
CN104515821B (zh) | 一种玉米籽粒中伏马毒素的快速测定方法 | |
CN103869013B (zh) | 一种在线净化固相萃取整体柱及其制备方法和用途 | |
Shehzad et al. | Rational development of a selection model for solvent gradients in single‐step separation of ginsenosides from P anax ginseng using high‐speed counter‐current chromatography | |
Dai et al. | Comprehensive separation and analysis of alkaloids from Stephania yunnanensis by counter-current chromatography coupled with liquid chromatography tandem mass spectrometry analysis | |
Zeng et al. | On-line coupling of macroporous resin column chromatography with direct analysis in real time mass spectrometry utilizing a surface flowing mode sample holder | |
Dong et al. | Screening of lignan patterns in Schisandra species using ultrasonic assisted temperature switch ionic liquid microextraction followed by UPLC-MS/MS analysis | |
Zhou et al. | Isolation of homoisoflavonoids from the fibrous roots of Ophiopogon japonicus by recycling high-speed counter-current chromatography and online antioxidant activity assay | |
Zhong et al. | An automatic versatile system integrating solid-phase extraction with ultra-high performance liquid chromatography–tandem mass spectrometry using a dual-dilution strategy for direct analysis of auxins in plant extracts | |
CN106770829A (zh) | 一种测定金银花大鼠血清代谢产物的方法 | |
Dong et al. | Current mass spectrometry approaches and challenges for the bioanalysis of traditional Chinese medicines | |
CN106841498B (zh) | 一种测定烟草及烟草制品冷杉醇的方法 | |
CN102175793B (zh) | 一种检测塑料制品中苏丹红含量的方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant |