一种核酸内切酶Ⅷ活性测定方法
技术领域
本发明属于生化技术领域,具体来说涉及一种核酸内切酶Ⅷ活性测定方法。
背景技术
大肠杆菌EndoⅧ (Endonuclease VIII, Endo VIII) 由大肠杆菌nei基因编码。EndoVIII既有N-糖基化酶活性也有AP-裂解酶活性。N-糖基化酶活性可释放双链DNA上受损的嘧啶碱基,产生一个脱嘧啶(AP)位点。AP-裂解酶活性则分别在AP位点的3’和5’端切割磷酸二酯键,产生3’磷酸和5’磷酸末端。能被Endo Ⅷ识别并切除的受损碱基包括:尿素、5,6-二羟基胸腺嘧啶、胸腺嘧啶乙二醇、5-羟基-5-甲内酰脲、尿嘧啶乙二醇、6-羟基-5,6-二氢胸腺嘧啶和甲基羟丙二酰脲。
Endo VIII可应用于单细胞凝胶电泳或称彗星实验(Collins, A. et al.(1993). Carcinogenesis . 14, 1733-1735.)。彗星实验是简单、快捷检测DNA微损伤的方法,被广泛应用于遗传毒理、放射生物学、生物监测、癌症化疗和细胞凋亡、衰老等领域。是一个十分成熟的技术,逐渐成为快速检测DNA损伤的一种方法。
此外,在分子生物学的某些领域中,Endo VIII具有独特的作用。例如,NEB公司的USERTM酶,就是一种由尿嘧啶-DNA糖基化酶(UDG)和Endo VIII组成的混合酶。UDG识别dUTP位点,将dU碱基切除,产生脱嘧啶(AP)位点。Endo VIII进而在AP位点切割,从而将核苷酸切除。这样,只要在单链或双链的特定位置引入dUTP位点,就可以用这两种酶,将单链切断,或者在双链上产生切口(Gap)。
传统的EndoⅧ测活方法采用的是一种半定量的检测方法。首先合成一条末端荧光标记的34mer的双链寡核苷酸,其中一条链的中间有一个dUTP。用UDG将dU碱基切除后,产生AP位点。再将EndoⅧ做一系列的稀释倍数进行反应,用变性胶电泳分离单链产物。结果用电泳图谱的分析存在相当强的主观性,缺乏定量指导,不能准确测定切刻内切酶的活性,从而不能很好地保持批次之间的稳定性。
发明内容
本发明的目的在于建立一种简便、快速、非放射性且定量的EndoⅧ测活方法,其原理如图1所示。
具体来说,本发明采用以下技术方案:
一种核酸内切酶Ⅷ活性测定方法,其特征在于,所述方法包括如下步骤:首先根据单链DNA模板合成一段引物,其中所述引物由两部分构成,5’端的正常引物部分和3’端的末端封闭引物部分,该两部分之间以dUTP相连;将该合成引物与单链DNA模板退火形成复合物;随后在尿嘧啶DNA糖基化酶(UDG)和核酸内切酶Ⅷ (EndoVIII)的作用下在引物的dUTP位置产生脱嘧啶位点;接着利用具有链置换活性的聚合酶合成双链DNA,然后测定反应体系中双链DNA和单链DNA的相对量,并根据该检测结果推导出核酸内切酶Ⅷ活性程度,其中核酸内切酶Ⅷ活性程度与反应体系中双链DNA的量成正相关。
优选地,双链DNA或单链DNA的相对量是利用荧光染料,通过荧光法测得的,并且双链DNA或单链DNA的相对量是以荧光强度表示的。更优选,所采用的荧光染料是双链DNA特异性荧光染料,例如可在市面上商购获得的picogreen染料。
优选地,所采用的单链DNA模板是单链环状DNA模板,聚合反应所形成的双链DNA是在该单链环状DNA模板上形成互补链而形成的双链环状DNA。更优选,所采用的单链DNA模板是M13噬菌体单链DNA,以利于建立标准的测定方法。
作为建立标准测定方法的一个优选实例,所采用的具有链置换活性的聚合酶是大肠杆菌DNA聚合酶I。
本发明的优点:
1. 无放射性污染;
2. 操作步骤简单快速,重复性好,稳定性强;
3. 可以对EndoⅧ活性进行定量的检测分析,引物设计容易,便于操作。
附图说明
图1是本发明测定方法的原理图。
图2是采用本发明方法获得的酶活-荧光曲线图。
具体实施方式
本发明建立了一种简便、快速、非放射性且定量的EndoⅧ测活方法,其原理如图1所示。
如图1所示,合成中间有一个dUTP的末端封闭的引物,用该末端封闭引物和单链模板如M13单链环状DNA配制成模板/末端封闭引物复合物,如M13模板/末端封闭引物复合物,当用UDG(将dUTP去掉)和EndoⅧ(断裂磷酸二酯键)作用在M13模板/末端封闭引物复合物上时,可产生一个AP位点,将末端封闭引物切成两部分,形成一个前端与M13单链环状DNA匹配的正常引物和一个后端与M13单链环状DNA不匹配的引物末端封闭引物,大肠杆菌聚合酶Ⅰ可以M13单链环状DNA为模板,以正常引物为引物(加入UDG和EndoⅧ)进行聚合反应。大肠杆菌聚合酶I的链置换活性可将后面的末端封闭引物引物替换下来,继续向3’端进行延伸,生成M13双链DNA。M13双链DNA可被双链特异性的picogreen染料结合,产生荧光。而大肠杆菌聚合酶Ⅰ不能在只有末端封闭引物存在时进行聚合反应,因为引物的末端是封闭的,由此不能生成M13双链DNA,picogreen染料不能结合单链DNA,从而不能产生荧光。
在UDG酶量固定的情况下,EndoⅧ的活性在一定范围内同生成的正常引物的量成正比;而在大肠杆菌DNA聚合酶Ⅰ活性一定的情况下,正常引物的量同荧光强度成正比。因此,本发明将EndoⅧ的测活体系同大肠杆菌DNA聚合酶Ⅰ的聚合反应体系偶联起来。
本发明人进一步证明了上述假设,从而建立了非放射性、简便、快速且可以定量的EndoⅧ测活方法。
下面将结合具体实施例进一步说明本发明。
实施例1. 荧光法测定核酸内切酶VIII的内切酶活性
M13模板/末端封闭引物复合物的制备:
M13单链DNA:M13mp18单链DNA (NEB);
引物M13末端封闭引物:5’-aagccatccgcaaaaaugacctct-3’(3’包括但不限于磷酸化,氨基化,间隔子-C7,生物素化等修饰);
M13模板/末端封闭引物复合物:将M13mp18单链DNA同M13末端封闭引物按摩尔比1:1混合,在退火缓冲液(10 mM Tris-HCl pH 8.0, 50 mM NaCl)中,70℃加热5分钟后,缓慢降至室温,使模板引物退火。
M13模板/正常引物复合物的制备:
M13单链DNA:M13mp18单链DNA (NEB);
引物M13正常引物:5’-aagccatccgcaaaaa-3’
M13模板/正常引物复合物:将M13mp18单链DNA同M13正常引物按摩尔比1:1:1混合,在退火缓冲液(10 mM Tris-HCl pH 8.0, 50 mM NaCl)中,70℃加热5分钟后,缓慢降至室温,使模板引物退火。
M13模板/正常引物/末端封闭引物-短复合物的制备:
M13单链DNA:M13mp18单链DNA (NEB);
引物M13正常引物:5’-aagccatccgcaaaaa-3’
引物M13末端封闭引物-短:5’-gacctct-3’ (3’包括但不限于磷酸化,氨基化,间隔子-C7,生物素化等修饰);
M13模板/正常引物/末端封闭引物-短复合物:将M13mp18单链DNA同M13正常引物、M13末端封闭引物-短按摩尔比1:1:1混合,在退火缓冲液(10 mM Tris-HCl pH 8.0, 50 mMNaCl)中,70℃加热5分钟后,缓慢降至室温,使模板引物退火。
切刻反应:
UDG为NEB M0280L;
EndoⅧ为NEB 0299L,活性定义为在10 μl缓冲液体系中,37℃条件下,1小时内能够切割1 pmol含一个AP位点*的34 mer寡核苷酸双链所需要的酶量为1U。
UDG反应
EndoⅧ反应
DNA聚合酶反应:
*1-12号管加入对应管号的EndoVIII反应产物。
picogreen荧光检测
向反应产物中加入0.5 μl picogreen染料(invitrogen P11495);用荧光酶标仪检测,激发波长为480 nm,发射波长为520 nm。检测结果如下表:
管号 |
荧光数值 |
1 |
179 |
2 |
180 |
3 |
190 |
4 |
196 |
5 |
223 |
6 |
299 |
7 |
535 |
8 |
926 |
9 |
1458 |
10 |
1691 |
11 |
1739 |
12 |
1748 |
13 |
185 |
14 |
1731 |
这一结果表明:
a. 末端封闭引物的末端是封闭的,不能被大肠杆菌DNA聚合酶Ⅰ催化聚合反应,不能生成M13双链DNA;
b.在UDG存在的条件下,EndoⅧ可以将引物末端封闭引物切成两部分,从而生成末端不封闭的正常引物,从而可被大肠杆菌DNA聚合酶Ⅰ催化进行聚合反应,生成M13双链DNA。在一定范围内,EndoⅧ活性与正常引物的量成正相关,而正常引物的量又显然与picogreen荧光强度成正相关,因此切刻内切酶的活性与荧光强度成正相关,这点已被上表的结果所证明。
c. 1号数值与2号相比没有明显差异,说明聚合酶反应体系中的大肠杆菌DNA聚合酶Ⅰ酶量是足量的;12号数值和14号相比没有明显差异,说明EndoⅧ的稀释梯度已达到了切刻反应所需的最大酶量。
通过本实施例,我们将EndoⅧ的反应同大肠杆菌DNA聚合酶Ⅰ的聚合反应偶联起来,可以实现对EndoⅧ活性的快速、简便的表征,为后续EndoⅧ活性的精确测定奠定了基础。
本方法的原理如图1所示。
实施例2. EndoⅧ活性-荧光强度曲线的绘制及EC50计算
以2#-12#的EndoⅧ活性单位(mU)的log值为横坐标,荧光强度为纵坐标,用GraphPad Prism5做非线性回归曲线。我们发现,这些数据点可以很好地拟合出一条S型曲线,如图2所示。
通过多次重复实验并计算曲线的半最大效应浓度 (EC50),我们发现,EC50值在多次实验间保持稳定:
实验 |
EC50 (mU) |
1 |
6.550 |
2 |
6.724 |
3 |
7.139 |
4 |
6.729 |
5 |
6.903 |
平均值 (mU) |
6.81 |
标准差SD (U) |
0.22 |
变异系数 CV (%) |
3.27 |
因此,这一EC50值可作为本方法中切刻内切酶活性定义。即在实施例1的反应体系中,使荧光强度达到最大值一半的酶量定义为1个荧光法活性单位(fluorescence unit,FU);1 FU= 6.81mU (NEB unit)。
上面结合附图和具体实施例对本发明的实施方式作了详细的说明,但是本发明不限于上述实施方式,在所属技术领域普通技术人员所具备的知识范围内,还可以在不脱离本发明宗旨的前提下做出各种变化。