CN103864815A - 一种靶向结合线粒体dna上tfam的化合物及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种提供了靶向性结合线粒体DNA上的TFAM,却不被Lon蛋白酶降解的生物素标记的川芎嗪。本发明提供了一种生物素标记的川芎嗪及其制备方法,生物素标记的川芎嗪可以发挥强大的靶向监测和靶向治疗作用。本发明的TFAM靶向结合物,可以特异性与线粒体DNA上TFAM结合,保护TFAM不被Lon蛋白酶降解,保护线粒体DNA稳定,促进线粒体DNA回复,减少细胞内活性氧自由基积累,减少细胞内ROS水平和减少细胞凋亡。对有效地维持线粒体稳定具有重大的应用前景。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种靶向结合线粒体DNA上TFAM的化合物及维持线粒体功能稳定的应用。
背景技术
生物素(biotin,B)又称维生素H、辅酶R,是水溶性维生素,也属于维生素B族,分子量为244.31,基本结构为双环结构:I环为咪唑酮环,是与亲和素结合的部位;II为噻吩环,含一个戊酸侧链,其末端羧基可与生物大分子连接,形成生物素标记抗原、抗体、酶等。其化学结构中有咪唑酮环,可与亲和素(avidin,AV)和链酶亲和素(streptavidin,SA)特异性结合。生物素与亲和素之间结合的亲和力高、特异性强,各自均可以与各型大小分子结合,以及二者在结合反应时具有的多级放大作用等优越性,其相关技术被广泛应用在各种标记免疫分析技术领域中,尤其为标记免疫检测自动化分析做出了极大的贡献。
川芎嗪(Ligustrazine)是中药川芎中含有的一种有效成分,具有抗血小板聚集的作用,并有扩张血管、增加冠脉血流量、改善微循环及增加脑血流量作用。临床适用于治疗缺血性心脏血管疾病,如冠心病、脑供血不足、脑血栓形成等。
线粒体转录因子A(mitochondrial transcription factor A,TFAM)在维持线粒体功能稳定方面有着重要的作用。TFAM是由核DNA编码的25kD蛋白,TFAM蛋白包含了两个短串联的高迁移率族蛋白(high-mobilitygroup,HMG)盒域(box domains),两者之间以27个氨基酸残基连接,其后是一个25个残基的C末端尾巴。
TFAM是线粒体DNA的结合蛋白,在线粒体DNA的转录、复制和维护上处于中心地位,它在线粒体呼吸链氧化磷酸化产生ATP的过程中也是必不可少的。具体的说是TFAM通过结合在线粒体DNA轻链和重链启动子的上游来促进线粒体DNA的转录。线粒体启动子的起始由TFAM的量调节,所以TFAM可影响基因的表达和线粒体DNA的转录起始。越来越多的证据表明,TFAM在维护线粒体DNA稳定和调节它的拷贝数上发挥着重要的作用,大部分TFAM蛋白可维护线粒体DNA的高级结构。线粒体DNA的拷贝数与TFAM蛋白的量紧密相关,这也进一步表明,TFAM蛋白和线粒体DNA之间的相互关系是动态的,一种组分的存在会增加另一组分的稳定性,从调节上来说,这种相互作用或许是有益的,因为TFAM蛋白或线粒体DNA水平的微小改变可使二者快速调节到最佳比率。研究表明,只需单独增加TFAM蛋白的表达就足以增加线粒体DNA的水平,可导致线粒体DNA编码多肽的增加和呼吸链稳定。
ATP依赖的Lon蛋白酶是一种具有多种功能的酶,其分子量约为100kDa,它在进化过程中非常保守,从archaea(古生菌)到哺乳动物的线粒体都有Lon的类似物,这表明Lon对于维持线粒体体内平衡极为关键。Lon具有蛋白酶的功能,介导异常或损伤的蛋白和短暂调控蛋白的降解来维持细胞体内平衡,在蛋白质量控制和代谢调控中起着重要作用。哺乳动物Lon蛋白酶的内源性底物为TFAM,此外还包括氧化的线粒体顺乌头酸酶、类固醇合成快速调控蛋白(StAR)以及细胞色素C氧化酶(COX)等。
因此,迫切需要一种靶向结合在线粒体DNA上TFAM却不被Lon蛋白酶降解的化合物,进而维持线粒体的功能稳定,而且能够达到靶向监测治疗。但到目前为止,还没有关靶向线粒体DNA上的TFAM却不被Lon蛋白酶降解的物质报道。
发明内容
本发明目的是提供了靶向性结合线粒体DNA上的TFAM,却不被Lon蛋白酶降解的生物素标记的川芎嗪,具有维持线粒体的功能稳定,而且能够达到靶向监测治疗的作用。
本发明提供的技术方案之一是:生物素标记的川芎嗪及其制备方法。
具体的结构式为:
生物素标记的川芎嗪的制备:首先将川芎嗪氧化成2-羟基-3,5,6-三甲基吡嗪,与D-生物素、EDCI,和DMAP按照12∶29∶30∶1的质量比溶解于无水DMF中,60℃条件下搅拌反应72h,TLC监测反应完全,将反应液倒入到30mL的乙醚中,4℃搅拌4h,析出白色沉淀,过滤,乙醚洗涤,粗品经柱层析纯化后得生物素标记的川芎嗪,产率为78%左右。
(1)2-羟基-3,5,6-三甲基吡嗪的合成,即中间体
将6.8g,摩尔浓度为50mmoL的川芎嗪,即物质1、12mL冰醋酸和6mL质量浓度为30%的H2O2加入三颈瓶中,于70℃加热反应4h后,补充加入6mL质量浓度为30%H2O2,继续回流反应4h。TLC监测反应完全,冷却至室温,25%NaOH溶液调pH值至10,20mL×3CH2C12提取,合并有机层,用饱和食盐水洗,然后MgSO4干燥,过滤,蒸除得白色固体物,即中间体2。然后加入20mL醋酐,加热回流2h,TLC监测反应完全,减压蒸除过量醋酐,得黑色浆状物,即中间体3。冷却后加入25%NaOH溶液调pH值至12,20mL×3CH2C12萃取,无水MgSO4干燥,过滤,减压蒸除溶剂,所得固体经硅胶柱层析,石油醚(V):乙酸乙酯(V)=6∶1,得淡黄色结晶,2.36g质量浓度为61%的2-羟基-3,5,6-三甲基吡嗪,即中间体4;mp88-89℃;1H NMR,300MHz,δ4.68(d,J=2.7Hz,2H),4.29(s,OH),2.51(s,6H),2.41(s,3H).ESI-MS m/z:153[M+H]+,175[M+Na]+;
(2)生物素标记的川芎嗪,即目标化合物的合成
将48mg,摩尔浓度为0.316mmoL的中间体4,115mg,摩尔浓度为0.471mmoL的D-生物素,120mg,摩尔浓度为0.628mmoL的EDCI,和4mg,摩尔浓度为0.032mmol的DMAP溶解到2.5mL无水DMF中,60℃条件下搅拌反应72h,TLC监测反应完全,将反应液倒入到30mL的乙醚中,4℃搅拌4h,析出白色沉淀,过滤,乙醚洗涤,粗品经柱层析,eluent:20%MeOH/EtOAc,纯化后得93mg,质量浓度为78%白色固体,即生物素标记的川芎嗪终物质5。mp128-129℃;1H NMR(300MHz)δ6.45(s,IH),6.38(s,1H),5.14(s,2H),4.28-4.32(m,1H),4.11-4.14(m,1H),3.09(m,1H),2.83(dd,J=12.8Hz,4.9Hz,1H),2.65(d,J=14.7Hz,1H),2.44(s,6H),2.42(s,3H),2.36(t,J=7.4Hz,2H),1.67-1.59(m,2H),1.67-1.59(m,2H),1.57-1.52(m,2H),1.50-1.47(m,2H);13C NMR(75MHz)δ172.5,162.7,150.7,148.3(2×C),144.6,64.2,61.0,59.1,55.3,33.1,27.9(3×C),24.5,21.1,20.9,20.0;ESI-MS m/z:379[M+H]+,401[M+Na]+,417[M+K]+;HRMS(EI+)calc.for[C18H26N4O3SNa]+401.1623,found401.1630。
生物素标记的川芎嗪物理特性为:白色固体,熔点为128~129℃。
本发明提供的技术方案之二是:提供一种靶向结合线粒体DNA上的TFAM,而且不被Lon蛋白酶降解的化合物。
本发明提供一种提供一种靶向结合线粒体DNA上的TFAM,而且不被Lon蛋白酶降解的化合物。
本发明通过细胞实验和体外实验来证实川芎嗪确实具有保护TFAM不被降解的作用,检测了川芎嗪对降解TFAM的Lon蛋白的ATP酶活性、肽酶活性和蛋白酶活性的影响,发现川芎嗪对Lon蛋白酶没有影响,生物素标记的川芎嗪通过免疫沉淀法(IP)证实川芎嗪作用的靶标是TFAM,并不被Lon蛋白酶降解。
本发明的有益效果:
1.本发明提供了一种生物素标记的川芎嗪及其制备方法,生物素标记的川芎嗪可以发挥强大的靶向监测和靶向治疗作用,对有效地维持线粒体稳定具有重大的应用前景。
2.本发明的TFAM靶向结合物,可以特异性与线粒体DNA上TFAM结合,保护TFAM不被Lon蛋白酶降解,保护线粒体DNA稳定,促进线粒体DNA恢复,减少细胞内活性氧自由基积累,减少细胞内ROS水平和减少细胞凋亡。
附图说明
图1.生物素标记的川芎嗪的合成路线。1:川芎嗪;2:中间体2;3:中间体3;4:2-羟基-3,5,6-三甲基吡嗪;5:生物素标记的川芎嗪。I:川芎嗪合成中间体2的步骤;II:中间体2合成到中间体3的步骤;III:中间体3合成2-羟基-3,5,6-三甲基吡嗪的步骤;Ⅳ:2-羟基-3,5,6-三甲基吡嗪合成生物素标记的川芎嗪的步骤;
图2.体外川芎嗪抑制TFAM降解的Western Blotting图。TMP:川芎嗪;Velcade:硼替佐米;Inhibitor:抑制剂;Lon:Lon蛋白酶;TFAM:线粒体转录因子A;
图3.川芎嗪促进Helaρlow细胞中TFAM恢复的Western Blotting图。TMP:川芎嗪;Lon:Lon蛋白酶;Actin:肌动蛋白;TFAM:线粒体转录因子A;EB:溴化乙锭;
图4.川芎嗪作用下TFAM的恢复与对照组对比图。TMP:川芎嗪;Relative expression ofTFAM protein:TFAM蛋白的相对表达量;
图5.Helaρlow细胞用不同浓度的川芎嗪促进TFAM恢复的Western Blotting图。TMP:川芎嗪;Lon:Lon蛋白酶;Actin:肌动蛋白;TFAM:线粒体转录因子A;
图6.Helaρlow细胞用川芎嗪作用不同的时间下促进TFAM恢复的Western Blotting图。TMP:川芎嗪;Lon:Lon蛋白酶;Actin:肌动蛋白;TFAM:线粒体转录因子A;
图7.川芎嗪对Lon蛋白ATP酶活性的影响。TMP:川芎嗪;Activity:活性;
图8.CDDO对Lon蛋白ATP酶活性的的影响。CDDO:2-氰基-3,12-二氧代齐墩果烷-1,9(11)-二烯-28-羧酸;Activity:活性;
图9.川芎嗪对Lon蛋白肽酶活性的影响。TMP:川芎嗪;Activity:活性;
图10.Velcade对Lon肽酶活性的影响。Velcade:硼替佐米;Activity:活性;
图11.纯化的Lon在不同条件下对casein降解的SDS-PAGE图。TMP:川芎嗪;Velcade:硼替佐米;Inhibitor:抑制剂;Lon:Lon蛋白酶;BSA:牛血清白蛋白;Casein:酪蛋白;
图12.Casein蛋白定量分析结果。TMP:川芎嗪;Velcade:硼替佐米;Inhibitor:抑制剂;Activity:活性;
图13.生物素标记的川芎嗪与Lon结合Western Blotting图。Input:细胞裂解液;Untreated:细胞裂解液加入上样缓冲液;SA-sepharose:链酶亲和素琼脂糖;TMpbiotin:生物素标记的川芎嗪;TMP:川芎嗪;Lon:Lon蛋白酶;
图14.HeLaρ+细胞中生物素标记的川芎嗪与TFAM结合Western Blotting图。Input:细胞裂解液;Untreated:细胞裂解液加入上样缓冲液;SA-sepharose:链酶亲和素琼脂糖;TMPbiotin:生物素标记的川芎嗪;TMP:川芎嗪;Lon:Lon蛋白酶;TFAM:线粒体转录因子A:
图15.人结肠癌细胞HCT116中生物素标记的川芎嗪与TFAM结合Western Blotting图。Input:细胞裂解液;Untreated:细胞裂解液加入上样缓冲液;SA-sepharose:链酶亲和素琼脂糖;TMPbiotin:生物素标记的川芎嗪;TMP:川芎嗪;Lon:Lon蛋白酶;TFAM:线粒体转录因子A;
图16.川芎嗪促进线粒体DNA恢复的柱状图。EB:溴化乙锭;DMSO:二甲基亚砜;TMP:川芎嗪;D-loop Target:线粒体D-loop环为目的基因;Relative D-loop level in HeLa cellsnormalized toβ-Actin:HeLa细胞线粒体DNA的D-loop相对β-Actin的量;
图17.川芎嗪的作用下线粒体DNA的恢复与对照组对比图。TMP:川芎嗪;RelativeD-loop level in HeLa cells norrmalized toβ-Actin:HeLa细胞线粒体DNA的D-loop相对β-Actin的量;
图18.川芎嗪对人肾上皮细胞293T细胞内活性氧自由基(ROS)的影响。DCFH:二氯荧光素;DMSO:二甲基亚砜;TMP:川芎嗪;
图19.川芎嗪对人肾上皮细胞293T细胞凋亡的影响。DMSO:二甲基亚砜;TMP:川芎嗪;The rate ofcell apoptosis:细胞凋亡率;
具体实施方式
实施例1生物素标记的川芎嗪的制备:首先将川芎嗪氧化成2-羟基-3,5,6-三甲基吡嗪,与D-生物素、EDCI,和DMAP按照12∶29∶30∶1的质量比溶解于无水DMF中,60℃条件下搅拌反应72h,TLC监测反应完全,将反应液倒入到30mL的乙醚中,4℃搅拌4h,析出白色沉淀,过滤,乙醚洗涤,粗品经柱层析纯化后得生物素标记的川芎嗪,产率为78%左右。
(1)2-羟基-3,5,6-三甲基吡嗪的合成,即中间体
将6.8g,摩尔浓度为50mmoL的川芎嗪,即物质1、12mL冰醋酸和6mL质量浓度为30%的H2O2加入三颈瓶中,于70℃加热反应4h后,补充加入6mL质量浓度为30%H2O2,继续回流反应4h。TLC监测反应完全,冷却至室温,25%NaOH溶液调pH值至10,20mL×3CH2C12提取,合并有机层,用饱和食盐水洗,然后MgSO4干燥,过滤,蒸除得白色固体物,即中间体2。然后加入20mL醋酐,加热回流2h,TLC监测反应完全,减压蒸除过量醋酐,得黑色浆状物,即中间体3。冷却后加入25%NaOH溶液调pH值至12,20mL×3CH2C12萃取,无水MgSO4干燥,过滤,减压蒸除溶剂,所得固体经硅胶柱层析,石油醚(V):乙酸乙酯(V)=6∶1,得淡黄色结晶,2.36g质量浓度为61%的2-羟基-3,5,6-三甲基吡嗪,即中间体4;mp88-89℃;1H NMR,300MHz,δ4.68(d,J=2.7Hz,2H),4.29(s,OH),2.51(s,6H),2.41(s,3H).ESI-MS m/z:153[M+H]+,175[M+Na]+;
(2)生物素标记的川芎嗪,即目标化合物的合成
将48mg,摩尔浓度为0.316mmoL的中间体4,115mg,摩尔浓度为0.471mmoL的D-生物素,120mg,摩尔浓度为0.628mmol的EDCI,和4mg,摩尔浓度为0.032mmol的DMAP溶解到2.5mL无水DMF中,60℃条件下搅拌反应72h,TLC监测反应完全,将反应液倒入到30mL的乙醚中,4℃搅拌4h,析出白色沉淀,过滤,乙醚洗涤,粗品经柱层析,eluent:20%MeOH/EtOAc,纯化后得93mg,质量浓度为78%白色固体,即生物素标记的川芎嗪终物质5。mp128-129℃;1H NMR(300MHz)δ6.45(s,1H),6.38(s,1H),5.14(s,2H),4.28-4.32(m,1H),4.11-4.14(m,1H),3.09(m,IH),2.83(dd,J=12.8Hz,4.9Hz,1H),2.65(d,J=14.7Hz,1H),2.44(s,6H),2.42(s,3H),2.36(t,J=7.4Hz,2H),1.67-1.59(m,2H),1.67-1.59(m,2H),1.57-1.52(m,2H),1.50-1.47(m,2H);13C NMR(75MHz)δ172.5,162.7,150.7,148.3(2×C),144.6,64.2,61.0,59.1,55.3,33.1,27.9(3×C),24.5,21.1,20.9,20.0;ESI-MS m/z:379[M+H]+,401[M+Na]+,417[M+K]+;HRMS(EI+)calc.for[C18H26N4O3SNa]+401.1623,found401.1630。
生物素标记的川芎嗪物理特性为:白色固体,熔点为128-129℃。
具体的结构式
实施例2体外川芎嗪抑制TFAM的降解
用20μM的硼替佐米(Velcade)作为阳性对照,DMSO作为阴性对照,将20μL的0.4mM的川芎嗪进行倍比稀释;取离心管进行标记,依次加入反应缓冲液,Lon,BSA,TMP(DMSO或Velcade),充分混匀;置于37℃孵育1h;依次加入TFAM和ATP,使Lon,TFAM,BSA终浓度为300nM,150nM,0.1μg/μL,充分混匀,置于37℃孵育1h;在0,60min时间点,从各管中吸取20μL样品,加入5μL5X上样缓冲液;置于95℃加热5min,使蛋白充分变性;将8μl标准蛋白Maker和20μL变性的蛋白样品上样至12%SDS-PAGE,并进行蛋白印迹分析。
结果显示,在不加ATP条件下,反应1h后,TFAM保持稳定,不被Lon降解;在阳性对照组,可见Velcade抑制了Lon的活性,TFAM保持稳定;在不同浓度川芎嗪处理的反应管中,随着川芎嗪浓度的增加,TFAM信号逐渐增强,表明TFAM的降解受到抑制作用(图2)。
实施例3体内川芎嗪促进Helalow细胞中TFAM的恢复
1、用含浓度为50ng/mL的EB完全培养基培养HeLaρ+细胞8天后,去掉EB,将细胞分成两组,一组加10μM的川芎嗪处理,一组加DMSO作为阴性对照,分别在1、3、4天时间点收细胞,提取蛋白,通过BCA法测定蛋白浓度后将蛋白浓度调至1μg/μL,于95℃加热5min,将样品上样至12%的SDS-PAGE,进行蛋白印迹分析(图3,图4)。
2、利用不同浓度(2.5、5、10μM)的川芎嗪处理HeLaρlow细胞24h后,不加川芎嗪或加DMSO为阴性对照,提取蛋白,通过BCA法测定蛋白浓度后将蛋白浓度调至1μg/μL,于95℃加热5min,将样品上样至12%的SDS-PAGE,进行蛋白印迹分析。(图5)
3、利用浓度为2.5μM的川芎嗪处理HeLaρlow细胞,分别在0、24、48、72、96h的时间点收取细胞,提取蛋白,通过BCA法测定蛋白浓度后将蛋白浓度调至1μg/μL,于95℃加热5min,将样品上样至12%的SDS-PAGE,进行蛋白印迹分析(图6)。
结果显示,川芎嗪能显著促进TFAM在低水平下迅速恢复。
实施例4川芎嗪对Lon蛋白的作用
1、川芎嗪抑制Lon的ATP酶活性实验
将于-80℃储存的TMP于室温融化,用二甲基亚砜(DMSO)对TMP进行1∶4倍比稀释至20倍浓度的终浓度。相同条件操作倍比稀释2-氰基-3,12-二氧代齐墩果烷-1,9(11)-二烯-28-羧酸(CDDO)作为阳性对照;将于-80℃储存的Lon蛋白置于冰上融化,用反应缓冲液稀释到终浓度的1.18倍;用多孔加样器在96孔板中1排中加入42.5μl1.18X的Lon蛋白(别一排加入相同体积的反应缓冲液作为空白对照)和2.5μl20X的TMP溶液,充分混匀后于25℃孵育1h;在各孔中加入5μl10mM超纯ATP,充分混匀后于25℃孵育1h;用多孔加样器从各孔中吸取5μl至384孔板中,每个孔各有4个平行;于各孔中加入5μlADP-Glo反应终止液,于25℃孵育40min;于各孔中加入10μl KDR反应液,于25℃孵育1h;用酶标仪检测各孔的荧光值。
CDDO作为Lon蛋白的抑制剂,是通过抑制Lon的ATP酶活性进行作用的。本实验采用CDDO作为阳性对照,对川芎嗪是否抑制Lon的ATP酶活性进行检测,结果显示,随着CDDO浓度的增加,Lon蛋白的ATP酶活性明显降低;在200μM CDDO存在时,Lon蛋白的ATP酶活性降低至只有10%左右;反之,即使川芎嗪浓度增加到200μM时,Lon蛋白的ATP酶活性依旧没有明显受到抑制,这表明川芎嗪不通过抑制Lon蛋白的ATP酶活性进行作用(图7,图8)。
2、TMP抑制Lon的肽酶活性实验——Rho AA实验
用反应缓冲液将纯化的Lon蛋白酶稀释至1.6μM;将1mM RhoAA和400mM ATP配制成4X浓度分别为24μM和4mM的反应液;在384孔板A1-H5中加入10μl的反应缓冲液,将10μL1.6μM的Lon蛋白酶加至第一列A1-H1的孔中,从第一列中用枪吸取10μl至第二列中,依次倍比稀释,最后一列作为空白对照。每个浓度都有4个平行;分别加入5μL24μMRho AA和4mM ATP,轻轻摇晃几下;将384孔板放置在37℃培养箱中孵育3h;3小时后,取出384也培养板,酶标仪在485/535nrn波长下读取数值。
本实验利用硼替佐米(Velcade)作为阳性对照,实验结果表明Velcade随着浓度的增加,Lon蛋白酶的活性逐渐受到抑制,在较高浓度的Velcade存在时,Lon的肽酶活性受到强烈抑制,酶活性只有自然条件下的10%左右,而TMP随着浓度的增加,Lon的肽酶活性没有受到抑制作用。因而,TMP对于Lon的肽酶活性没有明显抑制作用(图9,图10)。
3、TMP抑制Lon的蛋白酶活性实验——casein体外降解实验
将1μM纯化的重组蛋白Lon加入到2只含有50mM Hepes,150mMNaCl,10mM MgCl2的反应缓冲液的离心管中;将10μM底物Casein加入到反应液中并混匀,分别加入或不加入ATP(5mM),于37℃反应1h;于0,15,30,60min时间点,取出20μL样品,加入5μl5X上样缓冲液,于95℃加热5min;将样品上样至12%的SDS-PAGE,用考马斯亮蓝染色后,脱色至条带清晰。
本实验利用Lon的蛋白底物casein检测TMP对Lon的蛋白酶活性的抑制作用。利用Velcade作为阳性对照,不加抑制剂作为阴性对照,结果显示,不加抑制剂的实验管中,casein被迅速降解;在加入Velcade的对照管中,casein的蛋白水平保持稳定,说明Velcade强烈抑制了Lon的蛋白酶活性;反之,在加入TMP的实验管中,即使TMP的浓度主1mM,casein仍然被迅速降解,说明TMP不抑制Lon对casein的降解。
结果显示川芎嗪对Lon蛋白基本没有作用(图11,图12)。
实施例5、免疫沉淀法(IP)分析川芎嗪作用底物
利用纯化的Lon蛋白、HeLaρ+或HCT116细胞裂解液和生物素标记的川芎嗪或者没有生物素标记的川芎嗪在4℃混合2h,然后将链霉亲和素琼脂糖珠子添加到反应混合物中,在4℃孵育2h后用冰浴的PBS洗4遍,将链霉亲和素琼脂糖珠子在RSB中重悬,这样目的蛋白就被拉下来,经过变性后通过免疫印迹分析。
结果显示,川芎嗪作用的靶标是TFAM,与TFAM结合形成复合物(图13,图14,图15)。
实施例6、川芎嗪促进线粒体DNA的恢复
用含浓度为50ng/mL的EB完全培养基培养HeLaρ+细胞8天后,去掉EB,将细胞分成两组,一组加10μM的川芎嗪处理,一组加DMSO作为阴性对照,分别在1、3、4天时间点收细胞,提取DNA,Actin为内参,D-Loop为目的基因,用QPCR检测线粒体DNA的水平。
结果显示,川芎嗪能显著促进线粒体DNA在低水平下的恢复,保护线粒体DNA(图16,图17)。
实施例7、川芎嗪减少细胞内活性氧自由基的积累
用含浓度为50ng/mL的EB完全培养基培养人肾上皮细胞293T细胞7天后,去掉EB,将细胞分成两组,一组加30μM的川芎嗪处理,一组加DMSO作为阴性对照处理1天,用荧光剂DCHF-DA检测细胞内活性氧自由基,活性氧自由基可以把DCHF-DA氧化成DCF,DCF的荧光较高,通过检测DCF的荧光强度来判断活性氧自由基的浓度。
结果显示,川芎嗪处理的细胞内活性氧自由基的含量少于对照组(图18)。
实施例8、川芎嗪减少细胞凋亡
用含浓度为50ng/mL的EB完全培养基培养人肾上皮细胞293T5天后,去掉EB,将细胞分成两组,一组加30μM的川芎嗪处理,一组加DMSO作为阴性对照处理1天,培养结束后收集细胞经Alexa Flour-A和Propidium Iodide(PI)细胞坏死指示剂室温处理20分钟后,用流式细胞仪计数30000次(图19)。
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