CN103740667A - 离子液体用于玉米sod酶的提取 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种超氧化物歧化酶的提取方法,特别设及一种从植物中提取超氧化物歧化酶的方法。将玉米原料预处理后,打浆。利用离子液体、磷酸氢二钾及水形成的离子液体双水相体系对玉米浆中的超氧化物歧化酶进行选择性的萃取。萃取液经磷酸盐缓冲溶液反向萃取得到超氧化物歧化酶的粗酶液。对粗酶液进行热变性法和凝胶柱层析法进行纯化,纯化后的酶液进行真空干燥得到超氧化物歧化酶精粉。离子液体双水相体系经反向萃取分离出蛋白质和酶后,可以直接应用于下一次的萃取过程,多次重复利用不影响离子液体的萃取效率。
Description
技术领域
本发明涉及一种超氧化物歧化酶的提取方法,特别设及一种从植物中提取超氧化物歧化酶的方法,属于精细化工技术领域。
背景技术
超氧化物歧化酶(SOD)是一种具有特定生物催化功能的蛋白质,为等电点偏酸性的酸性蛋白质,由蛋白质和金属离子组成,它广泛存在于自然界的动物、植物以及一些微生物体内。根据所含金属离子(辅基)的不同,SOD可分为以下四种类型:第一类为Cu/Zn-SOD,呈蓝绿色,相对分子量约为32k道尔顿,来源于动物血、猪肝、牛肝以及菠菜叶、面包酵母中,在某些原核生物中也存在;第二类为Mn-SOD,呈紫红色,相对分子量约为40k道尔顿,主要存在于原核细胞和真核细胞以及线粒体的基质中,在高等植物中的过氧化物酶体中也含有。第三类为Fe-SOD,呈黄褐色,相对分子量约为38.7k道尔顿,主要存在真核生物如藻类,部分高等植物如油菜、柠檬、菠萝、甜橙、番茄、银杏等体内也存在。第四类为Ni-SOD,是近年来才发现的一种新型SOD,目前只有从链球菌中分离得到,对其研究及报道较少。
很多研究表明,活性氧(O2 -、·OH、H2O2、1O2、ROO·)能与蛋白质、核酸和脂类发生反应,导致膜脂过氧化、碱基突变、DNA链的断裂和蛋白质的损伤等。在动物体,活性氧导致细胞坏死、过敏反应、癌变或其他病理过程。在植物体内,活性氧可导致植物代谢失活、细胞死亡、光和作用速率降低,甚至造成植物品质降低、产量下降等。超氧化物歧化酶是能够催化超氧阴离子自由基O2 -发生歧化反应,平衡机体代谢过程中产生的过多自由基,减轻或消除自由基对机体的危害,受到全世界学术界广泛关注,使之成为涉及分子生物学、微生物学、医学等学科领域及医药、化工、食品等生产行业的一个热门研究课题。超氧化物歧化酶也是近年来应用最广泛的酶,具有抗衰老、免疫调节、抑制肿瘤、调节血脂、抗辐射、消炎和美容等功效。
人们最早从动物的血液中提取SOD制成产品,由于国际上疯牛病的蔓延,从动物血中提取的SOD,给人们在使用上带来一些危险因素。从植物,特别是人们日常经常食用的蔬菜、瓜果、野生植物及粮食中提取SOD,使用安全性非常高,避免了可能发生的交叉感染。利用全新的提取技术从植物中提取SOD,具有明显的社会和经济效益,市场前景广阔。目前从植物中提取SOD的方法主要包括缓冲液提取法、超临界CO2萃取法和热变性法,其中以磷酸缓冲液法应用最为普遍。但该方法的缺点是浸出范围广,选择性相对差,容易浸出大量的无效成分,且会引起一些有效成分的水解。超临界CO2萃取法需要应用超临界流体,虽然分离粗产品较为便捷,但同样存在萃取过程选择性差,萃取后的粗产品在酶的纯化过程之前需要去除杂质。热变性法是依据SOD的热稳定性原理设计的。SOD的热稳定性高,当温度低于60℃时,短时间的热处理不会使酶活力有明显的变化,而一般的杂蛋白却在温度高于55℃时就易变性沉淀,因此,对SOD提液进行短时间的热处理可以达到去除杂蛋白的目的。热变性法作为一种初步的纯化手段,操作简便,经济实惠,但热变性过程容易导致酶的失活。
离子液体是近年来迅速发展起来的一种全新绿色介质和功能材料。离子液体具有不易挥发、不可燃、稳定性高、溶解能力强、功能可调节等优点,其应用领域正不断地扩大,使其在生物活性物质的分离上展现了十分诱人的应用前景。离子液体双水相萃取技术是近年来兴起的新的生物质分离技术,该体系一般是由亲水性离子液体、无机盐(如磷酸盐、碳酸盐、氢氧化物等)和水形成的双水相体系,它综合了离子液体和双水相体系的优点。作为一种高效的新型绿色分离体系,离子液体双水相具有分相时间短、黏度低、萃取过程不易乳化、萃取率高、分离条件温和、对生物活性物质不破坏且离子体系可以且易回收利用等优点,因此,离子液体双水相这一新的萃取分离体系,广泛用于生物活性物质的分离和纯化。如大多数酶和蛋白质等都能用双水相体系进行分离纯化。离子液体双水相萃取蛋白质机理属于液-液萃取,当蛋白质进入双水相体系后,由于表面性质、电荷作用和各种力(如憎水键、氢键和离子键等)的作用和溶液环境的影响,使其在上、下相中的浓度不同,即各成分在两相间的选择性分配,从而达到萃取分离的目的。蛋白质与离子液体作用,主要有盐析作用;与辅助盐萃取剂发生配位作用生成配合物,配合物被萃取到离子液体中;或者调节pH,使蛋白质的疏水基团暴露出来,从而萃取到离子液体中等。
在传统农作物中,玉米、大蒜、绿豆、饭豆、芝麻、黄豆这六种作物中SOD含量较高,并且以玉米中的含量最高,因此本发明以玉米为原料,采用离子液体双水相体系对玉米中SOD中分离纯化,以期建立一种简便、高效的SOD分离纯化路线。
发明内容
本发明是为解决常规SOD粗提过程中,萃取剂对酶选择性较差且酶易变性失活的缺点,提出采用离子液体双水相体系高效选择性的萃取玉米中的蛋白质与SOD。该技术生产方法简单易行,适合工业化生产过程。
本发明的技术方案由以下部分组成。
1)玉米原料的预处理。对玉米原料进行筛选、清洗、消毒、洗净,晾干备用。将玉米粒浸入水池中,以质量比1∶2的水,温度为28-32℃时浸泡18-36h,玉米粒完全溶胀后,发芽16-36h,粉碎打浆。
2)离子液体双水相萃取。将离子液体、K2HPO4按比例加入到玉米浆中,搅拌萃取30-90min,当体系出现明显分层时,萃取过程结束。过滤分离去除玉米浆中的固体,液体部分进行静置分层,下层为含有蛋白质的离子液体层。
3)蛋白质与酶的反萃取。将含有蛋白质的离子液体层进行分离后,向其中加入pH值为7.8的磷酸盐缓冲溶液,搅拌60-90min后,蛋白质溶解于缓冲溶液中,而与离子液体相分离,缓冲溶液层为粗酶液。分离后的离子液体层可以直接用于下一次的萃取过程。
4)蛋白质的分离。将粗酶液缓慢升温至60℃,保温反应15-30min。降温至0-4℃,离心分离蛋白质,其滤液为SOD酶浓缩液。
5)SOD的纯化。将SOD酶浓缩液进行超滤和纳滤处理,截留分子量大于15k道尔顿以上的物质。所得滤液继续采用Sephadex G-75凝胶柱子层析分离。层析液浓缩后进行真空干燥,得SOD酶精粉。
上述的离子液体为咪唑衍生物,其结构式如1所示。
式中R=-CH2CH2OH,-CH2CH2CH2OH,-CH2CHOHCH2OH。X为离子液体带负电荷的部分,具有如式2所示的结构。
上述的离子液体双水相体系的构成为离子液体的质量浓度为20-35%,无机盐K2HPO4的质量浓度为17-25%。
本发明所采用的离子液体双水相体系萃取玉米中的SOD酶,其在离子液体相的分配系数超过13.5,SOD能够快速的从玉米浆中进入离子液体层,获得的粗提液总活力超过5000U。在萃取过程中,离子液体只能够萃取蛋白质,对玉米浆中的脂肪、蜡质等杂质没有萃取能力,因此,离子液体双水相体系对SOD具有选择性的萃取性能。离子液体双水相体系经反萃取分离出蛋白质和酶后,可以直接应用于下一次的萃取过程,多次重复利用不影响离子液体的萃取效率。
下面结合实例对本发明内容进行描述。
具体实施例
实施例1
1)玉米原料的预处理。取玉米粒1.5kg,进行水洗,随后用1%的次氯酸钠水洗消毒、洗净消毒水,沥干水分。将玉米粒进入水池中,以质量比1∶2的水,温度为28℃时浸泡24h,玉米粒完全溶胀后,发芽24h,粉碎打浆。
2)离子液体双水相萃取。将0.7kg离子液体、0.6kgK2HPO4加入到玉米浆中,搅拌萃取90min,当体系出现明显分层时,萃取过程结束。过滤分离去除玉米浆中的固体,液体部分进行静置分层,下层为含有蛋白质的离子液体层。
3)蛋白质与酶的反萃取。将含有蛋白质的离子液体层进行分离后,向其中0.05mol/L磷酸盐缓冲溶液6.0L,搅拌60min后,蛋白质溶解于缓冲溶液中,而与离子液体相分离,得到粗酶液。
4)蛋白质的分离。将粗酶液缓慢升温至60℃,保温反应20min。降温至0-4℃,将透析液8000r/min离心20min后,离心分离蛋白质,留取上清液,即为酶的浓缩液。
5)SOD的纯化。将SOD酶浓缩液进行超滤和纳滤处理,截留分子量大于15k道尔顿以上的物质。所得滤液继续采用Sephadex G-75凝胶柱子层析分离,淋洗液为0.05mol/L磷酸盐缓冲溶液,淋洗速度为20mL/min。层析液浓缩后放入真空干燥箱,控制真空度0.09MPa、温度为35℃条件进行干燥,得SOD酶精粉。
经上述方法获得的SOD酶精粉的总活力5860U,比活力为3079U/mg,纯化倍数达到83.2。
实施例2
1)玉米原料的预处理。取玉米粒1.5kg,进行水洗,随后用1%的次氯酸钠水洗消毒、洗净消毒水,沥干水分。将玉米粒进入水池中,以质量比1∶2的水,温度为28℃时浸泡36h,玉米粒完全溶胀后,发芽24h,粉碎打浆。
2)离子液体双水相萃取。将0.7kg离子液体、0.6kgK2HPO4加入到玉米浆中,搅拌萃取90min,当体系出现明显分层时,萃取过程结束。过滤分离去除玉米浆中的固体,液体部分进行静置分层,下层为含有蛋白质的离子液体层。
3)蛋白质与酶的反萃取。将含有蛋白质的离子液体层进行分离后,向其中0.05mol/L磷酸盐缓冲溶液6.0L,搅拌60min后,蛋白质溶解于缓冲溶液中,而与离子液体相分离,得到粗酶液。
4)蛋白质的分离。将粗酶液缓慢升温至60℃,保温反应20min。降温至0-4℃,将透析液8000r/min离心20min后,离心分离蛋白质,留取上清液,即为酶的浓缩液。
5)SOD的纯化。将SOD酶浓缩液进行超滤和纳滤处理,截留分子量大于15k道尔顿以上的物质。所得滤液继续采用Sephadex G-75凝胶柱子层析分离,淋洗液为0.05mol/L磷酸盐缓冲溶液,淋洗速度为20mL/min。层析液浓缩后放入真空干燥箱,控制真空度0.09MPa、温度为35℃条件进行干燥,得SOD酶精粉。
经上述方法获得的SOD酶精粉的总活力8657U,比活力为3215U/mg,纯化倍数达到118。
实施例3
1)玉米原料的预处理。取玉米粒1.5kg,进行水洗,随后用1%的次氯酸钠水洗消毒、洗净消毒水,沥干水分。将玉米粒进入水池中,以质量比1∶2的水,温度为28℃时浸泡24h,玉米粒完全溶胀后,粉碎打浆。
2)离子液体双水相萃取。将0.7kg离子液体、0.6kgK2HPO4加入到玉米浆中,搅拌萃取60min,当体系出现明显分层时,萃取过程结束。过滤分离去除玉米浆中的固体,液体部分进行静置分层,下层为含有蛋白质的离子液体层。
3)蛋白质与酶的反萃取。将含有蛋白质的离子液体层进行分离后,向其中0.05mol/L磷酸盐缓冲溶液6.0L,搅拌60min后,蛋白质溶解于缓冲溶液中,而与离子液体相分离,得到粗酶液。
4)蛋白质的分离。将粗酶液缓慢升温至55℃,保温反应15min。降温至0-4℃,将透析液8000r/min离心20min后,离心分离蛋白质,留取上清液,即为酶的浓缩液。
5)SOD的纯化。将SOD酶浓缩液进行超滤和纳滤处理,截留分子量大于15k道尔顿以上的物质。所得滤液继续采用Sephadex G-75凝胶柱子层析分离,淋洗液为0.05mol/L磷酸盐缓冲溶液,淋洗速度为20mL/min。层析液浓缩后放入真空干燥箱,控制真空度0.09MPa、温度为35℃条件进行干燥,得SOD酶精粉。
上述方法中所用的玉米未进行发芽加工,因此获得的SOD酶精粉的总活力仅有4892U,比活力为2375U/mg,纯化倍数达到56.1。
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