CN103555746A - 重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其制备方法和应用 - Google Patents

重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其制备方法和应用 Download PDF

Info

Publication number
CN103555746A
CN103555746A CN201310470020.0A CN201310470020A CN103555746A CN 103555746 A CN103555746 A CN 103555746A CN 201310470020 A CN201310470020 A CN 201310470020A CN 103555746 A CN103555746 A CN 103555746A
Authority
CN
China
Prior art keywords
cap
virus
recombinant
gene
particle
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201310470020.0A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103555746B (zh
Inventor
谢振强
刘金凤
郑文文
吴健敏
金宏丽
覃绍敏
杨佳
陈凤莲
段旖
林俊
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
CHANGCHUN SR BIOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd
Guangxi Veterinary Research Institute
Original Assignee
CHANGCHUN SR BIOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd
Guangxi Veterinary Research Institute
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by CHANGCHUN SR BIOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd, Guangxi Veterinary Research Institute filed Critical CHANGCHUN SR BIOLOGICAL TECHNOLOGY Co Ltd
Priority to CN201310470020.0A priority Critical patent/CN103555746B/zh
Publication of CN103555746A publication Critical patent/CN103555746A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103555746B publication Critical patent/CN103555746B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开了一种重组猪圆环病毒2型病毒样粒子,将来源于HSV-1VP22的蛋白转导域通过SOE-PCR方法与形成PCV2空衣壳蛋白所需的抗原Cap基因连接起来,克隆到杆状病毒转运载体获得同源重组载体,包装产生含有PCV2Cap蛋白和HSV-1VP22蛋白转导域的重组杆状病毒,感染昆虫细胞,表达融合了PCV2Cap蛋白和HSV-1VP22蛋白转导域的重组Cap-VP22蛋白,形成病毒样粒子(VLPs)。研究表明,本发明的VLPs单独或者辅以佐剂接种动物,可有效刺激PCV2特异性抗体产生。因此,应用本发明可研制具有良好免疫效果的新型高效PCV2亚单位疫苗。

Description

重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其制备方法和应用
技术领域
本发明属于猪圆环病毒2型技术领域,尤其涉及一种重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其制备方法和应用。
背景技术
猪圆环病毒(Porcine circovirus,PCV)是作为一种猪肾细胞系PK-15培养污染物而被发现的,其基因组为共价闭合的单股环状DNA分子,基因组全长约1.7kb。PCV是迄今为止人们发现的最小动物病毒,病毒粒子表面无囊膜,呈二十面体对称,粒子直径在17-20nm之间。根据PCV的致病性、血清型和基因型特点,将其分为非致病性的PCV1和致病性的PCV2两种类型。其中,PCV2是引起猪圆环病毒病(PCVD)的主要病原。PCV2基因组全长为1767bp或1768bp,由11个开放阅读框(ORF)组成,ORFs之间差异悬殊,并且大部分ORFs都有部分重叠,ORF1和ORF2是PCV2最大的编码基因,ORF1编码与病毒基因组复制相关的Rep蛋白,而ORF2编码病毒的主要结构蛋白Cap。Cap蛋白是组成病毒衣壳的唯一结构蛋白和主要的抗原表位聚集区,其氨基末端有序列高度保守的精氨酸富集区,与病毒DNA的结合密切相关,Cap蛋白是公认的PVC2的主要保护性抗原。
众所周知,疫苗是防控传染病的最有效手段。2006年,法国梅里亚公司率先研制出经欧盟认证的首例PCV2全病毒灭活苗;在国内,刘长明等成功研制出我国首例PCV2灭活苗(LG株),此外姜平等研制的PCV2疫苗(SH株)也已注册上市,这两种疫苗的成功研制和应用一定程度上防控了我国PCV2的流行。但是,由于灭活苗具有免疫持续时间短,免疫注射副作用大,不能刺激机体产生细胞免疫等缺点,使得其免疫效果不尽人意。弱毒苗通常能诱导机体产生坚实的免疫力和持久保护力,但是弱毒苗毒力易反强、致弱毒力评价难,安全性存在隐患,因此国内外对PCV2弱毒苗的研究鲜有报道。DNA疫苗有制备简单、免疫效果好等诸多优点,但由于缺少高效的基因输送系统,外源基因在体内的表达调控及其在体细胞间的转移,可能会产生意外的免疫病理反应等瓶颈问题难以突破使得大部分DNA疫苗的研究仅局限于实验室。其它一些重组病毒疫苗、亚单位疫苗对PCV2有一定的保护效果,但都由于安全性低,免疫效果差等种种原因还处于研发阶段。因此,克服目前PCV2活苗、灭活苗以及基因工程疫苗缺点,寻找新的技术策略,研发一种安全、高效非复制的病毒疫苗是有效免疫防控PCV2的重要科学前提。
病毒样粒子(Virus-like particles,VLPs),是由病毒主要衣壳蛋白或包膜蛋白自主包装形成的衣壳结构,不含有遗传物质,其形态、大小、结构及表面抗原和多肽表位与天然病毒粒子非常相似,因而能够被宿主抗原提呈细胞所识别,能有效刺激机体产生体液免疫和细胞免疫应答,具有良好的免疫原性,并且无潜在的毒副作用。目前,国外已有部分VLPs疫苗上市,如乙肝VLPs疫苗、乳头瘤VLPs疫苗、流感VLPs疫苗等,此外还有戊型肝炎VLPs疫苗等多个品种在临床研究中,显示出该类疫苗的巨大潜力。研究证实,PCV2的Cap蛋白在体外表达过程中具有自我组装成病毒样粒子的特点,近年来,先后有利用大肠杆菌表达系统、酵母表达系统和昆虫/杆状病毒表达系统在体外制备出Cap蛋白的VLPs,在小鼠和猪体内免疫实验中,这些病毒样粒子都表现出良好的免疫原性。来源于HSV-1VP22转录因子的转导域具有强大的蛋白转导功能,能将与其偶联的外源蛋白带入细胞并通过MHC-I类分子介导的抗原提呈,激发抗原特异性CTL效应。VP22转导域的功能已广泛应用于DNA疫苗及肿瘤疫苗的研究中。
发明内容
本发明要解决的技术问题是提供一种重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其制备方法和应用。
为解决上述技术问题,本发明采用以下技术方案:Cap-VP22融合基因,该基因由融合PCV2Cap蛋白基因和VP22蛋白转导域核苷酸序列形成。
上述Cap-VP22融合基因,具有序列表SEQ.ID.No.1的碱基序列。
上述Cap-VP22融合基因在制备预防猪圆环病毒病(PCVD)的疫苗(PCV2疫苗)中的应用。
重组猪圆环病毒2型病毒样粒子,该病毒样粒子由融合PCV2Cap蛋白基因和VP22蛋白转导域核苷酸序列形成的Cap-VP22融合基因所编码。
上述重组猪圆环病毒2型病毒样粒子,具有序列表SEQ.ID.No.2的氨基酸序列。
上述重组猪圆环病毒2型病毒样粒子的制备方法,将来源于HSV-1VP22的蛋白转导域通过SOE-PCR方法与形成PCV2空衣壳蛋白所需的抗原Cap基因连接起来,克隆到杆状病毒转运载体获得同源重组载体,包装产生含有PCV2Cap蛋白和HSV-1VP22蛋白转导域的重组杆状病毒,感染昆虫细胞,表达融合了PCV2Cap蛋白和HSV-1VP22蛋白转导域的重组Cap-VP22蛋白,形成病毒样粒子(VLPs)。
上述重组猪圆环病毒2型病毒样粒子的制备方法,包括以下步骤:
(1)克隆目的基因Cap-VP22,并通过BamHI/NotI和NheI/KpnI双酶切位点分别在
pFastBac Dual转移载体P10和Ph启动子之后各插入一个拷贝的目的基因Cap-VP22,获得含双拷贝目的基因的重组杆状病毒转移载体pFastBac Dual-2Cap-VP22;
(2)用步骤(1)获得的pFastB Dual-2Cap-VP22转移载体转化DH10Bac感受态细胞,进行同源重组;
(3)筛选鉴定获得携带有目的基因Cap-VP22的重组杆状病毒DNA;
(4)用步骤(3)获得的重组杆状病毒DNA以脂质体法转染对数生长期的Sf9细胞,产生表达融合基因Cap-VP22的重组杆状病毒;
(5)用步骤(4)获得的重组杆状病毒感染对数生长期的Sf9细胞,使感染细胞表达Cap-VP22基因;
(6)收集步骤(5)获得的感染细胞培养液并裂解感染有Cap-VP22基因重组杆状病毒的宿主细胞,纯化获得重组猪圆环病毒2型病毒样粒子(Cap-VP22VLPs)。
上述重组猪圆环病毒2型病毒样粒子在制备预防猪圆环病毒病(PCVD)的疫苗(PCV2疫苗)中的应用。
针对目前缺乏安全高效防控猪圆环病毒病的疫苗(PCV2疫苗)的问题,发明人首次提出了用杆状病毒表达系统表达融合PCV2Cap与VP22融合基因,设计并制备了一种重组猪圆环病毒2型病毒样粒子,包括利用Bac-to-Bac杆状病毒表达系统在昆虫细胞中大量表达C端融合具有细胞穿膜功能的VP22蛋白转导域的PCV2重组Cap蛋白,体外组装形成嵌合病毒样粒子。具体操作是首先对PCV2Cap全基因序列进行扩增,再用SOE-PCR的方法在Cap的C端引入VP22蛋白转导域,构建包含目的基因Cap、VP22的重组杆状病毒,重组杆状病毒感染Sf9细胞获得相应的PCV2病毒样粒子。研究表明,该重组融合蛋白基因具有高度组装成病毒样粒子的能力;融合表达PCV2Cap蛋白和VP22蛋白转导域的重组杆状病毒能够对目的蛋白Cap-VP22进行有效表达,并且表达的目的蛋白免疫原性好,并形成病毒样粒子;表达的重组蛋白(即病毒样粒子,VLPs)能诱导针对PCV2的特异抗体,与单纯的Cap蛋白相比,具有增强免疫的效果;形成的VLPs可以单独或者辅以佐剂接种动物,可有效刺激PCV2特异性抗体产生。因此,应用本发明可研制具有良好免疫效果的新型高效PCV2亚单位疫苗。
附图说明
图1是Cap、VP22、Cap-VP22基因克隆电泳图。
图2是pEASY-Cap-VP22克隆载体鉴定电泳图,图中M1:DNA MarkerⅢ,1和2:pEASY-Cap PCR鉴定,3和4:pEASY-Cap酶切鉴定,5和6:pEASY-Cap-VP22PCR鉴定,7和8:pEASY-Cap-VP22酶切鉴定,M2:1kb DNA Ladder。
图3是pFastBac Dual-2Cap-VP22重组载体鉴定电泳图,图中M1:DNA MarkerⅢ,1:pFastBac Dual-Cap酶切鉴定,2和3:pFastBac Dual-2Cap酶切鉴定,4:pFastBac-2Cap PCR鉴定,5:pFastBac-Cap-VP22酶切鉴定,6和7:pFastBac-2Cap-VP22酶切鉴定,8:pFastBac-2Cap-VP22PCR鉴定。
图4是Bacmid重组子鉴定电泳图,图中M:1kb DNA Ladder,1:Bac-2Cap重组子PCR鉴定,2:Bac-2Cap-VP22重组子PCR鉴定。
图5是Sf9细胞观察图,图中A:正常培养Sf9细胞,B:转染Bac-2Cap细胞,C:转染Bac-2Cap-VP22细胞。
图6是间接免疫荧光检测图,图中A:正常Sf9,B:Bac-2Cap接种细胞,C:Bac-2Cap-VP22接种细胞。
图7是病毒样粒子电镜观察图,图中A:Cap蛋白形成病毒样粒子,B:Cap-VP22蛋白形成病毒样粒子。
图8是PCV2抗体检测图,图中1Cap为注射Cap VLPs亚单位疫苗组,2Cap-VP22为注射Cap-VP22VLPs亚单位疫苗组,3NC为阴性对照组。
具体实施方式
本发明的重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其亚单位疫苗按以下构建:
一、研究方法
1、Cap-VP22基因的扩增、克隆,根据GenBank公布的PCV2(GenBank登录号:GU450328)ORF2序列设计合成扩增Cap蛋白基因的特异性引物,并合成VP22蛋白转导域序列,以及将Cap蛋白基因序列与VP22蛋白转导域序列融合的引物。以常规方法提取PCV2病毒DNA,采用SOE-PCR方法扩增得到Cap-VP22融合基因,将融合基因测序后,通过BamHI/NotI和NheI/KpnI酶切,将两个Cap-VP22基因先后插入杆状病毒转移载体pFastBac Dual的多克隆位点中,经PCR、酶切及测序鉴定,获得阳性重组杆状病毒转移载体pFastBac Dual-2Cap-VP22。
2、重组质粒pFastBac Dual-2Cap-VP22转化E.coli DH10Bac感受态细胞,在辅助质粒作用下,重组质粒与杆状病毒骨架载体Bacmid发生同源重组,外源基因插入杆状病毒载体骨架,经两次蓝白斑筛选,挑取白色菌落培养,提取重组Bacmid质粒,经PCR鉴定后获得包含目的基因2Cap-VP22的重组Bacmid质粒。
3、提取重组Bacmid质粒Bac-2Cap-VP22,通过Lipofectamine2000转染Sf9细胞,收取上清,提取病毒DNA,以目的基因Cap-VP22基因引物鉴定重组病毒,确定重组质粒在Sf9细胞内包装产生表达融合基因Cap-VP22的重组杆状病毒。重组杆状病毒命名为cBac-2Cap-VP22。
4、重组杆状病毒感染对数生长期的Sf9细胞,并表达导入的Cap-VP22基因;收集感染细胞培养液并裂解,纯化获得Cap-VP22VLPs。
5、Cap-VP22VLPs单独或与佐剂配制制备成重组猪圆环病毒颗粒疫苗,免疫小鼠,评价其免疫效果。
二、研究实验
1、PCV2Cap-VP22融合基因扩增、克隆和鉴定
1.1引物设计合成
根据GenBank公布的PCV2(GenBank登录号:GU450328)ORF2序列设计合成扩增Cap蛋白基因特异性引物,人工合成VP22蛋白转导域序列,同时设计将PCV2Cap与VP22融合的引物。
VP22蛋白转导域序列及引物序列如下:
VP22蛋白转导域序列(序列表SEQ.ID.No.3):
GACGCGGCCACGGCGACTCGAGGGCGTTCTGCGGCGTCGCGCCCCACCGAGCGACCTCGAGCCCCAGCCCGCTCCGCTTCTCGCCCCAGACCCAGACGGCCCGTCGAGTGA
引物序列:
P1(序列表SEQ.ID.No.4):
5’-GGATCCATGACGTATCCAAGGAGGCGTTACCGGA-3’(BamHI)
P2(序列表SEQ.ID.No.5):
5’-CCCTCGAGTCGCCGTGGCCGCGTCAGGGTTAAGTGGGGGGTCTTTAAGA-3’
P3(序列表SEQ.ID.No.6):
5’-TTAATCTTAAAGACCCCCCACTTAACCCTGACGCGGCCACGGCGAC-3’
P4(序列表SEQ.ID.No.7):
5’-GCGGCCGCTCACTCGACGGGCCGTCTGGGTCT-3’(NotI)
P5(序列表SEQ.ID.No.8):
5’-GCTAGCATGACGTATCCAAGGAGGCGTTACCGGA-3’(NheI)
P6(序列表SEQ.ID.No.9):
5’-GGTACCTCACTCGACGGGCCGTCTGGGTCT-3’(KpnI)
1.2PCR扩增目的基因
采用常规方法提取PCV2病毒DNA,应用SOE-PCR技术分两次扩增得到C端引入VP22蛋白转导域序列的Cap-VP22融合基因。第一次PCR以PCV2基因组为模板,以P1\P2、P5\P2为引物,扩增出两条Cap基因片段,同时以PUCK-VP22质粒为模板,以P3\P4、P3\P6为引物,扩增VP22序列;第二次PCR以第一次PCR产物为模板,PCR反应10个循环后,再分别以P1\P4、P5\P6为引物扩增出两端分别含BamHI/NotI和NheI/KpnI酶切位点的Cap-VP22融合基因,结果见图1。
PCR体系(参照北京全式金公司Fast pfu DNAPolymerase试剂盒说明书):DNA(或质粒)模板20ng,上游引物(20μM)1μL,下游引物(20μM)1μL,dNTPs(2.5mM)3μL,5xFastBuffer5μL,DNA polymerase1μL,去离子水补足25μL。
PCR反应程序(参照北京全式金公司Fast pfu DNAPolymerase试剂盒说明书):95℃2min;95℃20s,68℃35s,30个循环;72℃7min。
1.3PCR产物的克隆
1.3.1PCR产物回收与纯化
PCR产物经琼脂糖凝胶电泳后,切下含目的条带的琼脂胶块,参照DNA快速回收纯化试剂盒(北京天根)说明书回收目的片段。
1.3.2PCR产物克隆与测序
PCR回收产物分别连接到PEASY克隆载体上,转化DH5α感受态细胞,挑取单个菌落培养,提取质粒,通过PCR、酶切及测序鉴定,结果见图2,获得PEASY-Cap质粒及含目的基因序列(序列表SEQ.ID.No.1)的PEASY-Cap-VP22质粒。
2、重组质粒pFastBac Dual-2Cap-VP22的构建
2.1酶切产物回收与纯化
将PEASY-Cap-VP22质粒及pFastBac Dual载体进行酶切,纯化回收目的片段Cap-VP22及线性化载体骨架。
2.2目的基因克隆进入pFastBac Dual载体
首先通过BamHI/NotI酶切位点,将2.1纯化的Cap-VP22基因插入供体质粒pFastBacDual中,获得重组质粒pFastBac Dual-Cap-VP22,再通过NheI/KpnI双酶切pFastBac Dual-2Cap-VP22载体,回收线性骨架,与2.1回收的Cap-VP22基因片段再连接,进而将另一个Cap-VP22基因插入pFastBac Dual载体中,最终获得含两个拷贝目的基因的重组质粒pFastBac Dual-2Cap-VP22。
2.3重组质粒的提取和鉴定
重组质粒pFastBac Dual-2Cap-VP22采用双酶切鉴定,结果如图3。
3、重组Bacmid质粒Bac-2Cap-VP22的构建与鉴定
3.1重组Bacmid质粒Bac-2Cap-VP22构建
按照Bac-to-Bac表达系统说明书,将重组质粒pFastBac Dual-2Cap-VP22转化DH10Bac感受态细胞,在辅助质粒的作用下与杆状病毒骨架载体发生同源重组,获得包含两个Cap-VP22基因的重组Bacmid质粒Bac-2Cap-VP22,最终将外源基因插入到杆状病毒骨架载体中。
3.2重组细菌的挑选和质粒提取
将转入重组质粒的DH10Bac感受态细胞以100倍稀释,取50μL涂布于新鲜的含四环素(10μg/ml)、卡那霉素(50μg/ml)、庆大霉素(7μg/ml)、β-半乳糖苷(100μg/ml)和IPTG(40μg/ml)的SOB平板中,培养48-72小时后,再挑取大的白色菌落重新接种于新的SOB平板中,37℃培养过夜,挑取白色单克隆接种于含(50μg/ml)卡那霉素,(7μg/ml)庆大霉素,(10μg/ml)四环素的LB培养液中,37℃培养8-12h。提取重组Bacmid质粒Bac-2Cap-VP22。
3.3重组Bacmid质粒Bac-2Cap-VP22的鉴定
以提取的重组Bac-2Cap-VP22质粒为模板,以M13F(序列表SEQ.ID.No.10):5’-GTTTTCCCAGTCACGAC-3’、M13R(序列表SEQ.ID.No.11):5’-CAGGAAACAGCTATGAC-3’为引物,按照Bac-to-Bac表达系统说明书进行PCR鉴定,结果见图4。
4、VLPs的获得与鉴定
4.1重组质粒转染Sf9细胞
将Sf9细胞于6孔板中培养,待细胞汇合度至60-70%时,按照Lipofectamine2000(invitrogen)说明书进行质粒转染。具体步骤如下:
(1)待转染的细胞转染前换上双无TNM-FH培养基(无双抗,无FBS);
(2)将2μg Bacmid重组质粒Bac-2Cap-VP22加入到200μL双无TNM-FH培养基中,轻轻混匀;
(3)将8μL Lipofectamine2000脂质体加入到200μL双无TNM-FH培养基中,轻轻混匀;
(4)将步骤(2)和步骤(3)液体混合均匀,室温放置15min;
(5)将步骤(4)混合液逐滴滴入细胞中,补加双无TNM-FH培养基至1.5mL,27℃培养4~6h后换成含2.5%胎牛血清培养基正常培养。
4.2重组杆状病毒的获得与增殖
转染后每天观察细胞病变情况,第三天开始细胞出现明显的病变,细胞变大,变圆或不规则,开始出现上漂,结果如图5所示;收集细胞及上清,提取细胞RNA及培养上清中的重组杆状病毒,进行PCR鉴定,检测到目的条带存在;继续培养5天后,反复冻融收集细胞及培养物上清,4℃,12000rpm,离心10min,收集上清,此为P1代重组细胞毒。将P1按照1:10接种Sf9细胞,27℃培养4-5天,细胞出现病变时收获P2代毒,按同样方法培养P3代毒。重组病毒4℃保存。
4.3重组杆状病毒滴度测定
按照Bac-to-Bac表达系统说明书进行重组病毒滴度计算。将收获的重组病毒进行10倍稀释,于24孔板中分别接种长满单层的Sf9细胞,每个稀释度进行两个重复,每孔接种100μL,27℃培养1h后,弃掉病毒液,每孔加入0.5mL琼脂,27℃培养7-10天,染色后计算孔中空斑数,计算出病毒滴度为2×107pfu/mL。
4.4重组Cap-VP22蛋白IFA鉴定
将重组杆状病毒感染96孔板培养的Sf9细胞,设置非感染组对照。27℃培养48-72h,细胞出现病变后以80%预冷丙酮固定2h。PBST洗涤3次,5%脱脂奶粉(TBST)封闭1h。加入150μL100倍稀释的针对PCV2的多克隆抗体,37℃孵育1h,PBST洗涤3次,加入150μL含有0.02%的伊文斯蓝的FITC荧光标记的IgG(1:100倍稀释),37℃孵育1h,PBST洗涤3次,荧光显微镜观察并记录结果,重组杆状病毒感染的细胞有绿色荧光出现,而对照组观测不到荧光。结果如图6所示。
4.5重组病毒样粒子形成
将重组杆状病毒接种Sf9细胞,27℃培养,表达重组蛋白,反复冻融收集细胞及培养物上清,4℃,12000rpm,离心20min,收集上清,进行电镜观察,检测病毒样粒子的形成,结果如图8所示。表明融合VP22蛋白转导域的Cap蛋白能在体外有效形成病毒样粒子。5、PCV2重组病毒样粒子疫苗制备及小鼠免疫试验
5.1重组病毒样粒子疫苗制备
将收获的第二代培养物上清接种Sf9细胞,27℃培养,3天后收取细胞上清及培养物,经反复冻融后,4℃,12000rpm,离心20min,收集上清,测定蛋白浓度。将获得的重组蛋白浓度调整为400ng/mL,按照抗原/佐剂体积比例1:1加入弗氏不完全佐剂乳化,制备成亚单位疫苗。
5.2小鼠免疫试验
选取24只8周龄的BALB/c小鼠随机分3组,每组8只,其中1、2组分别注射Cap VLPs、Cap-VP22VLPs亚单位疫苗,3组作为阴性对照。经肌肉注射(150μL/只)和皮下注射(150μL/只)免疫小鼠,间隔2周以相同途径和剂量加强免疫一次。在首免后每间隔7天进行小鼠尾尖静脉采血,收集小鼠血清测定血清PCV2抗体水平。
5.3PCV2特异性抗体检测
将重组Cap蛋白100μL/孔包被酶标板,37℃作用2h或4℃包被过夜,用PBST洗涤3次,每次5min,在吸水纸上拍干,加封闭液(10%小牛血清)200μL/孔,37℃水浴作用2h或4℃封闭过夜,同上洗涤3次,加入血清样品,进行2倍倍比稀释,37℃孵育1.5h,同上洗涤3次,加入工作浓度(l:8000稀释)的羊抗鼠HRP-IgG,50μL/孔,37℃孵育lh,同上洗涤3次,加入新鲜配制的OPD底物显色液50μL/孔,37℃反应5-10min,加入2M硫酸50μL/孔终止反应,在酶标仪上读取OD450数值,分析抗体产生情况。结果如图8所示,两种亚单位疫苗均能刺激小鼠产生特异性抗体,并且Cap-VP22VLPs组要优于Cap VLPs组。
本发明制备了含VP22蛋白转导域的PCV2重组VLPs,并将其与佐剂配制亚单位疫苗,通过免疫小鼠具有较好的免疫原性,若进一步优化接种条件、佐剂类型等,可以进一步进行猪体的免疫试验,具有更好的免疫保护效力,可用于PCV2的预防。
Figure IDA0000393274800000021
Figure IDA0000393274800000031
Figure IDA0000393274800000041
Figure IDA0000393274800000061

Claims (8)

1.Cap-VP22融合基因,其特征在于:该基因由融合PCV2Cap蛋白基因和VP22蛋白转导域核苷酸序列形成。
2.根据权利要求1所述的Cap-VP22融合基因,其特征在于具有序列表SEQ.ID.No.1的碱基序列。
3.权利要求1所述Cap-VP22融合基因在制备预防猪圆环病毒病的疫苗中的应用。
4.一种重组猪圆环病毒2型病毒样粒子,其特征在于:该病毒样粒子由融合PCV2Cap蛋白基因和VP22蛋白转导域核苷酸序列形成的Cap-VP22融合基因所编码。
5.根据权利要求4所述的重组猪圆环病毒2型病毒样粒子,其特征在于具有序列表SEQ.ID.No.2的氨基酸序列。
6.根据权利要求5所述重组猪圆环病毒2型病毒样粒子的制备方法,其特征在于:将来源于HSV-1VP22的蛋白转导域通过SOE-PCR方法与形成PCV2空衣壳蛋白所需的抗原Cap基因连接起来,克隆到杆状病毒转运载体获得同源重组载体,包装产生含有PCV2Cap蛋白和HSV-1VP22蛋白转导域的重组杆状病毒,感染昆虫细胞,表达融合了PCV2Cap蛋白和HSV-1VP22蛋白转导域的重组Cap-VP22蛋白,形成病毒样粒子。
7.根据权利要求6所述重组猪圆环病毒2型病毒样粒子的制备方法,其特征在于包括以下步骤:
(1)克隆目的基因Cap-VP22,并通过BamHI/NotI和NheI/KpnI双酶切位点分别在pFastBac Dual转移载体P10和Ph启动子之后各插入一个拷贝的目的基因Cap-VP22,获得含双拷贝目的基因的重组杆状病毒转移载体pFastBac Dual-2Cap-VP22;
(2)用步骤(1)获得的pFastB Dual-2Cap-VP22转移载体转化DH10Bac感受态细胞,进行同源重组;
(3)筛选鉴定获得携带有目的基因Cap-VP22的重组杆状病毒DNA;
(4)用步骤(3)获得的重组杆状病毒DNA以脂质体法转染对数生长期的Sf9细胞,产生表达融合基因Cap-VP22的重组杆状病毒;
(5)用步骤(4)获得的重组杆状病毒感染对数生长期的Sf9细胞,使感染细胞表达Cap-VP22基因;
(6)收集步骤(5)获得的感染细胞培养液并裂解感染有Cap-VP22基因重组杆状病毒的宿主细胞,纯化获得重组猪圆环病毒2型病毒样粒子。
8.权利要求3所述重组猪圆环病毒2型病毒样粒子在制备预防猪圆环病毒病的疫苗中的应用。
CN201310470020.0A 2013-10-10 2013-10-10 重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其制备方法和应用 Expired - Fee Related CN103555746B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310470020.0A CN103555746B (zh) 2013-10-10 2013-10-10 重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其制备方法和应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310470020.0A CN103555746B (zh) 2013-10-10 2013-10-10 重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其制备方法和应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103555746A true CN103555746A (zh) 2014-02-05
CN103555746B CN103555746B (zh) 2015-06-17

Family

ID=50010093

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201310470020.0A Expired - Fee Related CN103555746B (zh) 2013-10-10 2013-10-10 重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其制备方法和应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103555746B (zh)

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104109704A (zh) * 2014-07-09 2014-10-22 福州大学 一种重组猪圆环病毒衣壳蛋白包涵体的分离纯化方法
CN105087605A (zh) * 2015-09-08 2015-11-25 南京农业大学 一种编码重组猪圆环病毒2型Cap蛋白的基因及其应用
CN105463023A (zh) * 2015-12-24 2016-04-06 中国农业科学院兰州兽医研究所 一种猪札幌病毒抗原的制备方法
CN105821012A (zh) * 2016-05-20 2016-08-03 山东大学 鸽圆环病毒样颗粒、其制备方法与应用
CN107227311A (zh) * 2017-06-20 2017-10-03 广西壮族自治区兽医研究所 重组猪细小病毒样粒子及其制备方法和应用
CN109628491A (zh) * 2018-12-27 2019-04-16 杭州洪扬生物工程有限公司 一种PCV2型Cap蛋白重组AcNPVs的构建方法
CN113150081A (zh) * 2021-05-12 2021-07-23 河南省农业科学院动物免疫学重点实验室 猪圆环病毒2b亚型自身表位嵌合病毒样颗粒在昆虫细胞中的构建方法和应用
CN116656706A (zh) * 2023-04-18 2023-08-29 河南中医药大学第一附属医院 一种酸敏融合蛋白重组质粒及其构建、应用
CN117025680A (zh) * 2023-06-19 2023-11-10 中国检验检疫科学研究院 一种猪圆环病毒2型dna假病毒可视化快速识别系统及其应用

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102925486A (zh) * 2011-12-26 2013-02-13 武汉中博生物股份有限公司 一种猪圆环病毒2型亚单位疫苗及其制备方法和其应用

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102925486A (zh) * 2011-12-26 2013-02-13 武汉中博生物股份有限公司 一种猪圆环病毒2型亚单位疫苗及其制备方法和其应用

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
宋云峰: "猪2型圆环病毒核酸疫苗及重组伪狂犬病毒二价基因工程疫苗的研究", 《中国博士学位论文全文数据库 农业科技辑》 *
李玲,等: "猪圆环病毒衣壳蛋白在昆虫细胞中表达形成病毒样颗粒的研究", 《中国动物传染病学报》 *
王海洋: "细胞渗透肽的种类及其应用综述", 《吉林畜牧兽医》 *

Cited By (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104109704B (zh) * 2014-07-09 2016-05-04 福州大学 一种重组猪圆环病毒衣壳蛋白包涵体的分离纯化方法
CN104109704A (zh) * 2014-07-09 2014-10-22 福州大学 一种重组猪圆环病毒衣壳蛋白包涵体的分离纯化方法
CN105087605B (zh) * 2015-09-08 2018-07-27 南京农业大学 一种编码重组猪圆环病毒2型Cap蛋白的基因及其应用
CN105087605A (zh) * 2015-09-08 2015-11-25 南京农业大学 一种编码重组猪圆环病毒2型Cap蛋白的基因及其应用
CN105463023A (zh) * 2015-12-24 2016-04-06 中国农业科学院兰州兽医研究所 一种猪札幌病毒抗原的制备方法
CN105821012A (zh) * 2016-05-20 2016-08-03 山东大学 鸽圆环病毒样颗粒、其制备方法与应用
CN105821012B (zh) * 2016-05-20 2019-11-12 山东大学 鸽圆环病毒样颗粒、其制备方法与应用
CN107227311A (zh) * 2017-06-20 2017-10-03 广西壮族自治区兽医研究所 重组猪细小病毒样粒子及其制备方法和应用
CN109628491A (zh) * 2018-12-27 2019-04-16 杭州洪扬生物工程有限公司 一种PCV2型Cap蛋白重组AcNPVs的构建方法
CN113150081A (zh) * 2021-05-12 2021-07-23 河南省农业科学院动物免疫学重点实验室 猪圆环病毒2b亚型自身表位嵌合病毒样颗粒在昆虫细胞中的构建方法和应用
CN116656706A (zh) * 2023-04-18 2023-08-29 河南中医药大学第一附属医院 一种酸敏融合蛋白重组质粒及其构建、应用
CN116656706B (zh) * 2023-04-18 2024-08-20 河南中医药大学第一附属医院 一种酸敏融合蛋白重组质粒及其构建、应用
CN117025680A (zh) * 2023-06-19 2023-11-10 中国检验检疫科学研究院 一种猪圆环病毒2型dna假病毒可视化快速识别系统及其应用

Also Published As

Publication number Publication date
CN103555746B (zh) 2015-06-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103555746B (zh) 重组猪圆环病毒2型病毒样粒子及其制备方法和应用
EP0768893B1 (en) Polynucleotide vaccine for papillomavirus
CN111218459A (zh) 一种以人复制缺陷腺病毒为载体的重组新型冠状病毒疫苗
WO2022144040A1 (zh) 一种编码新型冠状病毒抗原的核苷酸序列及其应用
CN113666990B (zh) 一种诱导广谱抗冠状病毒的t细胞疫苗免疫原及其应用
CN115998856A (zh) 一种新冠流感免疫原性组合物及其制备方法和应用
CN102465144A (zh) 柯萨奇病毒a16型病毒样颗粒疫苗
CN106967748B (zh) 无需噬斑克隆和筛选标签的山羊痘病毒重组系统及双表达pprv h/f蛋白疫苗的构建
CN103451196A (zh) 密码子优化的猪圆环病毒2型Cap蛋白编码基因及其应用
CN110218706B (zh) 表达h7n9亚型高致病性禽流感病毒ha蛋白的重组火鸡疱疹病毒的构建与应用
CN104271594A (zh) 用于初免-加强疫苗的水疱性口炎病毒
CN103387996B (zh) 犬细小病毒病毒样颗粒、其制备方法及应用
Zhang et al. Protection conferred by a recombinant Marek’s disease virus that expresses the spike protein from infectious bronchitis virus in specific pathogen-free chicken
CN104962581A (zh) 一种表达非洲猪瘟病毒p72蛋白的重组病毒疫苗株
CN112500458A (zh) 鸡传染性法氏囊病病毒新型变异株亚单位疫苗、其制备方法及应用
Wang et al. Duck hepatitis A virus structural proteins expressed in insect cells self-assemble into virus-like particles with strong immunogenicity in ducklings
CN115969967A (zh) 用于预防猫鼻气管炎、猫杯状病毒病、猫泛白细胞减少症的三联mRNA疫苗及其制备方法
CN108101967B (zh) Ⅰ群血清4型禽腺病毒基因工程亚单位疫苗、制备方法及其应用
US10125175B2 (en) Method for enhancing immunogenicity of epitope peptide of HPV antigen, virus-like particle, and method for preparing HPV vaccine
CN113862284B (zh) 一种编码重组禽流感病毒ha蛋白的基因、病毒样颗粒、疫苗及制备与应用
CN114292823A (zh) 携带基因VII型新城疫病毒F和HN基因的重组LaSota疫苗株及其构建方法和应用
CN110038124A (zh) 猪瘟-猪传染性胸膜肺炎二联亚单位的疫苗及其制备方法和应用
CN110129348A (zh) 高效制备口蹄疫病毒样颗粒的重组dna载体、应用和疫苗
CN103789274A (zh) 一种兔病毒性出血症病毒重组亚单位疫苗及其制备方法
Li et al. Recombinant subgroup B avian leukosis virus combined with the subgroup J env gene significantly increases its pathogenicity

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C53 Correction of patent of invention or patent application
CB03 Change of inventor or designer information

Inventor after: Xia Zhenqiang

Inventor after: Lin Jun

Inventor after: Liu Jinfeng

Inventor after: Zheng Wenwen

Inventor after: Wu Jianmin

Inventor after: Jin Hongli

Inventor after: Qin Shaomin

Inventor after: Yang Jia

Inventor after: Chen Fenglian

Inventor after: Duan Yi

Inventor before: Xie Zhenqiang

Inventor before: Lin Jun

Inventor before: Liu Jinfeng

Inventor before: Zheng Wenwen

Inventor before: Wu Jianmin

Inventor before: Jin Hongli

Inventor before: Qin Shaomin

Inventor before: Yang Jia

Inventor before: Chen Fenglian

Inventor before: Duan Yi

COR Change of bibliographic data

Free format text: CORRECT: INVENTOR; FROM: XIE ZHENQIANG LIU JINFENG ZHENG WENWEN WU JIANMIN JIN HONGLI QIN SHAOMIN YANG JIA CHEN FENGLIAN DUAN YI LIN JUN TO: XIA ZHENQIANG LIU JINFENG ZHENG WENWEN WU JIANMIN JIN HONGLI QIN SHAOMIN YANG JIA CHEN FENGLIAN DUAN YI LIN JUN

SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20150617

Termination date: 20161010

CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee