CN103468657A - 杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白的制备 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白抗体的制备。通过设计引物克隆lef-9基因；原核表达构建重组质粒pET-28a-lef-9；将构建的重组质粒pET-28a-lef-9转化大肠杆菌BL21，构建表达LEF-9蛋白的重组菌株；对LEF-9蛋白进行诱导表达及纯化。通过本发明的方法，实现了原核表达杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白，可以用于后期制备其多克隆抗体，为进一步研究LEF-9蛋白的功能特性奠定了基础。为人们对杆状病毒RNA聚合酶有一个更全面和深入的了解，为进一步利用其构建高效的体外转录系统奠定了基础。
Description
技术领域
本发明涉及一种蛋白的制备方法，特别涉及杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白的制备方法。
背景技术
杆状病毒是昆虫的特异性病原体，是已知昆虫病毒中最大的类群，也是发现最早、研究最多且具有非常重要实用价值的昆虫病毒，杆状病毒作为高效的真核基因表达载体系统、有效的病毒杀虫剂和潜在的基因治疗载体系统受到学术界的广泛关注。
杆状病毒基因组编码多种基因，根据基因表达的时序性，杆状病毒的基因分为早期基因和晚期基因两大类。因为目前大多数证据表明，病毒基因的时序表达是通过时序之前的一组病毒基因的表达产物，直接或间接地反式激活其时序之后的一组病毒基因的转录，因而调节主要发生在转录水平上。因此作为转录病毒晚期基因的病毒RNA聚合酶就成为调节病毒早晚期基因转录表达的关键因素。
杆状病毒RNA聚合酶由病毒诱导及编码，当病毒基因组开始复制后，早期基因停止转录，病毒RNA聚合酶特异性识别含有保守序列TAAG的晚期基因启动子并开始晚期基因的转录。研究表明病毒RNA聚合酶仅由病毒编码的4个保守基因lef-4、lef-8、lef-9 和 p47组成，这四种蛋白构成的复合体可以在体外转录病毒晚期基因。虽然早在上世纪80年代科学家便发现了该酶的存在，但迄今为止我们对它的了解还非常有限。现已知在其四个基本组成成分中P47定位在细胞核内，是晚期基因转录的必需基因，LEF-4起mRNA加帽及锚定启动子的作用，LEF-8与聚合酶特异性识别晚期启动子有关,且推测与LEF-9共同构成了RNA聚合酶的催化位点。
LEF-9是病毒RNA聚合酶中第二大蛋白，如果能够解析HearNPV LEF-9亚基在病毒RNA聚合酶中的功能,将使人们对杆状病毒RNA聚合酶有一个更全面和深入的了解，为进一步利用其构建高效的真核基因表达载体系统、制备有效的病毒杀虫剂和开发基因治疗载体系统奠定基础。为了研究该蛋白，制备其多克隆抗体是一个必须的前期基础，而制备多克隆抗体的前提是要大量获得该蛋白。
发明内容
本发明的目的是原核表达杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白，用于后期制备其多克隆抗体，以便对LEF-9蛋白的功能特性进行研究，使人们对杆状病毒RNA聚合酶有一个更全面和深入的了解。
本发明采用的技术方案是：杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白的制备，步骤如下：
1) lef-9 基因的克隆：设计引物28a55F：5’-gcgggatccatgtcgaaaacacgtggctcg-3’和28a55R：5’-gcgaagctttcatattaaaaacatgtctagcaaatg-3’，以HearNPV基因组DNA为模版扩增lef-9完整阅读框，PCR反应条件为：94℃预变性5min；94℃ 30s，59℃ 30s，68℃ 30s为一个循环，进行30个循环；最后68℃延伸7min，得到lef-9基因PCR产物；
2）原核表达载体的构建：用凝胶回收试剂盒回收lef-9基因PCR产物，用HindIII和BamHI双酶切，同时用相同两酶双酶切原核表达载体pET-28a，将酶切片段和载体通过T4 DNA连接酶连接，构建重组质粒pET-28a-lef-9；
3）重组表达菌株的构建：将构建的重组质粒pET-28a-lef-9转化大肠杆菌BL21，构建表达LEF-9蛋白的重组菌株；
4）LEF-9蛋白的诱导表达及纯化：将pET-28a-lef-9阳性单菌落接种于5mL Kana抗性LB培养基中，37℃振荡培养过夜，取过夜培养物按1%体积接种于2管250mL新鲜LB培养基中，37℃振荡培养3h至OD600nm为0.6后，加IPTG至终浓度为0.4mmol/L，培养5h，离心收集菌体；
5） LEF-9蛋白的纯化：将步骤4中收集的菌体重悬于5ml裂解缓冲液中， -70℃反复冻融3次,超声波破碎，条件为功率200-300 W，超声3s停5s，总计20min，至菌悬液变澄清后12000 r/min离心15 min，重复3次，去除不溶性细胞碎片，获得含有LEF-9蛋白的上清液，将该上清液通过Ni2+亲和柱，再用5倍柱体积的250 mM咪唑浓度洗脱缓冲液洗脱，收集洗脱下来的蛋白并测A280，当有蛋白峰时开始收集样品，直至A280又恢复至基准线。收集的蛋白通过SDS-PAGE进行检测。
本发明的有益效果是：通过本发明的方法，实现了原核表达杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白，可以用于后期制备其多克隆抗体，为进一步研究LEF-9蛋白的功能特性奠定了基础。为人们对杆状病毒RNA聚合酶有一个更全面和深入的了解，为进一步利用其构建高效的体外转录系统奠定了基础。
附图说明
图1是重组质粒pET-28a-lef-9的构建图。
图2A是lef-9基因扩增结果的SDS-PAGE电泳图。
其中，M：分子标准；1：lef-9基因扩增片段。
图2B是pET-28a-lef-9鉴定的SDS-PAGE电泳图。
其中，M：分子标准；1：pET-28a-lef-9酶切结果。
图3是纯化LEF-9蛋白检测图。图中，M：分子标准；1：纯化的LEF-9蛋白。
具体实施方式
实施例1 杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白的制备
具体操作方法如下：
1. lef-9 基因的克隆
设计引物28a55F：5’-gcgggatccatgtcgaaaacacgtggctcg-3’(下划线表示BamHI位点)和28a55R：5’-gcgaagctttcatattaaaaacatgtctagcaaatg-3’(下划线表示HindIII位点)，以HearNPV基因组DNA为模版扩增lef-9完整阅读框，PCR反应条件为：94℃预变性5min；94℃ 30s，59℃ 30s，68℃ 30s为一个循环，进行30个循环；最后68℃延伸7min，得lef-9基因PCR产物。反应产物用1%琼脂糖凝胶电泳鉴定，结果显示获得1578bp片段（图2A）。
2.原核表达表达载体的构建
用凝胶回收试剂盒回收纯化lef-9基因PCR产物，用HindIII和BamHI双酶切，同时用相同两酶双酶切原核表达载体pET-28a，将酶切片段和载体通过T4 DNA连接酶连接构建重组质粒pET-28a-lef-9（图1），转化大肠杆菌DH5α，卡那霉素抗性筛选阳性菌株，提取质粒，酶切鉴定阳性克隆子(图2B)，经上海生工测序，基因序列结果为序列表SEQ ID NO.1所示,测序鉴定克隆子无突变。
3.重组表达菌株的构建
将构建成功的重组质粒pET-28a-lef-9转化大肠杆菌BL21，构建表达LEF-9蛋白的重组菌株。
4. LEF-9蛋白的诱导表达
将pET-28a-lef-9阳性单菌落接种于5mL LB培养基(Kana 50ug/mL)中，37℃振荡培养过夜。取过夜培养物按1%体积接种于2管250mL新鲜LB培养基(Kana 50ug/mL)中，37℃振荡培养3h至OD600nm为0.6后，加IPTG至终浓度为0.4mmol/L，培养5h，离心收集菌体。
5. LEF-9蛋白的纯化
将步骤4中收集的菌体重悬于5ml裂解缓冲液中， -70℃反复冻融3次,超声波破碎，条件为功率200-300 W，超声3s停5s，总计20min，至菌悬液变澄清后12000 r/min离心15 min，重复3次，去除不溶性细胞碎片，获得含有LEF-9蛋白的上清液，将该上清液通过Ni2+亲和柱，再用5倍柱体积的250 mM咪唑浓度洗脱缓冲液洗脱，收集洗脱下来的蛋白并测A280，当有蛋白峰时开始收集样品，直至A280又恢复至基准线。收集的蛋白通过SDS-PAGE进行检测。结果如图3所示，图中显示获得的杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白的分子量为63kDa，结果显示回收蛋白大小符合预测大小。该回收蛋白即为LEF-9蛋白。
制备的LEF-9蛋白可以用于后期制备其多克隆抗体，为进一步研究LEF-9蛋白的功能特性奠定了基础。
<110> 辽宁大学
<120> 杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白的制备
<160> 3
<210> 1
<211> 1560
<212> DNA
<213> lef-9
<400> 1
atgtcgaaaa cacgtggctc gattaaacgt aaattgttat gtgatcatac tgaaaaaacg tgcagcaaac gtgtgaaaag caaaattcaa tttgtaacaa aagaaccggt acaattttca ttgctcaccg atcccaatca aataaacaat gtcctcttca taaacataca caattttaaa gtgtttctca agaatttaat tgccgattta aaaaaaataa aaattaattt ttacaacagc ttgttggagc agctgatctc tgtgtactcg gactgcggtc atagaaacga gcacacaaac ttgctgagtc gaatcttggt agccaccagc gtagtcatca ctgatctacc ctcgaacgtt tttttgaaaa aactcaaaac taaccgtttc accgacaata tagactactt gattttaccg aactttgtgc tatgggatca caatttcatt atattcatga acaaagcatt taattcaaaa cacgacaatg gtctgatcga catatcgggc tcgctgcaaa aaatcaaatt aacccacggc gtaattaaag atcaactaca gagcaaaaac ggctatgccg gtcagttttt gtattcgaca ttcttgaata cggcatcgtt ctatgccaac gtgcaatgtt taaacggagc aaacgaaatt gtaccaccga aggccagtct gcgacgctat tatggacgcg atgtgaaaaa tgtacgcgcc tggacaacgc gtcatccgaa catatctcaa ttaagcacac agatatcaag cgtgcgcgaa ccggacaatt acaccgattg gaatgttaaa gtcggcttag gcacgtttac tggcgctaat cgcgactgcg acggtgacaa agaagttatt acttttttgc ctcaacccaa ttcattgata gacttggaat gtctcatgta cggagatccg cgttacaatt tcatttgttt cgacaagaac cgtttatcgt ttgtgtcgca gcaaatatat tatctgcaca aaaacaaaaa acgtatcgaa aaactattgc acagtatgcc tattttatat acactatgga agagctacaa acgttacagc tccatcaatt tggcgacaaa aattgattgg ttgttacgcg attgtgctct cttgctcagc tccaatacca gttttctgct ctacaacaaa ttggctacaa ttatagacaa tgaagaaatg acttgcggcg acgaggaaat atttaatttg gcaggacaat tcaacgacgt catcgaatgc ggagccaaag gcagcgctga tttggtagcg agtactaaaa aatatcgcaa cactcattcc gacgatatag atacaatcgc caagcgtgcc attaccggtt tgaacagcca tatcacgtca cacaatcgag tgaaaatcgg cggtggtgat atctaccaca atacgacagt attgcaaaat gtctatctaa agaacgatta catttgttat aaaaatgaca cgcgtcgtat ttcaagcgtg tgcgcgctgc cgtcgaaatt cctatttcct gaacatttgc tagacatgtt tttaatatga
<210> 2
<211> 30
<212> DNA
<213> 引物28a55F
<400> 2
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<210> 3
<211> 36
<212> DNA
<213> 引物28a55R
<400> 3
5’-gcgaagctttcatattaaaaacatgtctagcaaatg-3’
Claims (1)
1.杆状病毒HearNPV LEF-9蛋白的制备，其特征在于步骤如下：
1) lef-9 基因的克隆：设计引物28a55F：5’-gcgggatccatgtcgaaaacacgtggctcg-3’和28a55R：5’-gcgaagctttcatattaaaaacatgtctagcaaatg-3’，以HearNPV基因组DNA为模版扩增lef-9完整阅读框，PCR反应条件为：94℃预变性5min；94℃ 30s，59℃ 30s，68℃ 30s为一个循环，进行30个循环；最后68℃延伸7min，得到lef-9基因PCR产物；
2）原核表达载体的构建：用凝胶回收试剂盒回收lef-9基因PCR产物，用HindIII和BamHI双酶切，同时用相同两酶双酶切原核表达载体pET-28a，将酶切片段和载体通过T4 DNA连接酶连接，构建重组质粒pET-28a-lef-9；
3）重组表达菌株的构建：将构建的重组质粒pET-28a-lef-9转化大肠杆菌BL21，构建表达LEF-9蛋白的重组菌株；
4）LEF-9蛋白的诱导表达：将pET-28a-lef-9阳性单菌落接种于5mL Kana抗性LB培养基中，37℃振荡培养过夜，取过夜培养物按1%体积接种于2管250mL新鲜LB培养基中，37℃振荡培养3h至OD600nm为0.6后，加IPTG至终浓度为0.4mmol/L，培养5h，离心收集菌体；
5）LEF-9蛋白的纯化：将步骤4中收集的菌体重悬于5ml裂解缓冲液中， -70℃反复冻融3次,超声波破碎，条件为功率200-300 W，超声3s停5s，总计20min，至菌悬液变澄清后12000 r/min离心15 min，重复3次，去除不溶性细胞碎片，获得含有LEF-9蛋白的上清液，将该上清液通过Ni2+亲和柱，再用5倍柱体积的250 mM咪唑浓度洗脱缓冲液洗脱，收集洗脱下来的蛋白并测A280，当有蛋白峰时开始收集样品，直至A280又恢复至基准线。
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Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| CHRISTIAN H. GROSS,ET AL: "RNA 59-Triphosphatase, Nucleoside Triphosphatase, and Guanylyltransferase Activities of Baculovirus LEF-4 Protein", 《JOURNAL OF VIROLOGY》 * |
| KEIJU OKANO，ET AL: "Colocalization of Baculovirus IE-1 and Two DNA-Binding Proteins,DBP and LEF-3, to Viral Replication Factories", 《JOURNAL OF VIROLOGY》 * |
| NCBI: "GenBank: AF271059.2", 《GENBANK》 * |
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