CN102887928A - 青天葵中的黄酮类化合物及其制备方法和用途 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了青天葵中的黄酮类化合物及其制备方法和用途。该黄酮类化合物的有两个,其中:第一个黄酮类化合物的化学名称是:甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷;命名为nervilifordin I;第二个黄酮类化合物的化学名称是:甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷;命名为nervilifordin F。制备方法是以干燥的青天葵全草为原料,通过1)浸膏的制备、2)环己烷层浸膏、乙酸乙酯层浸膏正丁醇层浸膏和水层浸膏的制备和3)甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷和甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的制备步骤完成。这两种黄酮类化合物用于制备抗菌和/或抗炎药物。
Description
技术领域
本发明属于医药技术领域,具体是青天葵中的黄酮类化合物及其制备方法和用途。
背景技术
目前,用于临床的抗生素及化学合成抗菌药物虽然不少,但由于广谱抗菌药物的大量应用和介入诊疗的广泛采用,细菌耐药性问题日趋严重,药物的不良反应也不断增加。加之化学合成药物开发难度大周期长,毒副作用明显,因此,从天然药物中寻找高效、低毒、敏感的抗菌药物已引起国内外广大医药工作者的关注。2003年我国用中西医结合方法防治非典型肺炎取得了较好疗效也充分说明了这一点。同时也提示加强中药抗菌研究的重要性。
虽然中草药中具有抗菌活性的成分很多,但目前很多研究仅停留在中草药水煎剂、粗提物和挥发油、或其中某一、两种单体成分的抗菌研究水平上,对于中草药中所含有的植物化学成分的体内外抗菌实验研究并不多见,从中提取出有效单体化合物确定其化学结构,并结合适当的抗菌活性筛选体系,对中药化学成分进行抗菌活性评价的为数不多。因此,对于抗菌活性或临床应用具有明确疗效的中药有必要进一步深入开展这方面的工作。
发明内容
本发明的目的是提供一种青天葵中的黄酮类化合物及其制备方法和用途。
本发明解决上述技术问题的技术方案如下:
1.一种黄酮类化合物
1)该黄酮类化合物的化学名称是:甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷;命名为:nervilifordin I;
2)结构式 分子式:C31H36O18
分子量:696.61
3)理化性质:黄色粉末,无臭,熔点:在甲醇中结晶的熔点为154℃-156℃,溶解性:易溶于二甲基亚砜,可溶于甲醇、乙醇,难溶于乙酸乙酯、氯仿;
2.一种黄酮类化合物
1)该黄酮类化合物的化学名称是:甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷;命名为:nervilifordin F;
2)结构式 分子式:C31H36O18
分子量:696.61
3)理化性质:黄色粉末,无臭,熔点:在甲醇中结晶的熔点为170℃-171℃。溶解性:易溶于二甲基亚砜,可溶于甲醇、乙醇,难溶于乙酸乙酯、氯仿。
3.甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷和甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的制备方法,操作步骤如下:
1)浸膏的制备
取干燥的青天葵全草,加7-10倍干燥的青天葵全草量体积百分浓度为60%-80%的乙醇回流提取2-3次,每次2-3小时,合并提取液,用旋转蒸发仪在低于45℃的条件下减压回收乙醇后得浸膏;
2)环己烷层浸膏、乙酸乙酯层浸膏正丁醇层浸膏和水层浸膏的制备
将步骤1)浸膏混悬于水中,得到浸膏水混悬液,用环己烷对浸膏水混悬液萃取三次,分别合并萃取后的环己烷层和水层;再用乙酸乙酯对用环己烷萃取浸膏水混悬液后的浸膏水混悬液萃取三次,分别合并萃取后乙酸乙酯层和水层;再用正丁醇对用乙酸乙酯萃取浸膏水混悬液后的浸膏水混悬液萃取三次,分别合并萃取后正丁醇层和水层;用旋转蒸发仪分别在低于45℃的条件下减压回收环己烷层的溶剂环己烷、乙酸乙酯层的溶剂乙酸乙酯、正丁醇层的溶剂正丁醇后,分别得到环己烷层浸膏、乙酸乙酯层浸膏、正丁醇层浸膏;将以上 萃取后的水层合并后浓缩得到水层浸膏;
3)甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷和甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的制备
将正丁醇层浸膏用5-8倍蒸馏水溶解,过滤,滤液用D101大孔树脂分离,分别用水和体积百分浓度为10%、30%、50%、70%、无水乙醇梯度洗脱,得到6个流分B1、B2、B3、B4、B5、B6;
将体积百分浓度为50%乙醇洗脱流分B4减压浓缩,过滤后用一根硅胶常压柱层析,分别用氯仿∶甲醇∶水=8∶2∶0.2、7∶3∶0.5、6∶4∶0.8三种混合液梯度洗脱,得到6个流分B41、B42、B43、B44、B45、B46;
将流分B43再次用硅胶柱层析,再分别用氯仿∶甲醇∶水=8∶2∶0.2、7;3∶0.5、6∶4∶0.8三种混合液梯度洗脱,得到4个流分B431、B432、B433、B434;将流分B433溶于水,过反相C8柱,分别用水和体积百分浓度为10%、30%、50%、70%、无水甲醇洗脱,得到六个流分B4331,B4332,B4333,B4334,B4335,B4336;其中第5个流分B4335用制备液相色谱仪分离,先后得到甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷和甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷。
上述的甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷或其衍生物用于制备抗菌和/或抗炎药物。
上述的甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷或其衍生物用于制备抗菌和/或抗炎药物。
本发明的益效是:
1.提供了甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷和甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的结构鉴定方法 及其制备方法。
2.本发明得到的甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷和甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷与现有的临床合成药物相比较,不但具有低毒高效的优点,而且来自传统中药,安全可靠,具有非常良好的药用前景,可做成包括但不限于颗粒剂、片剂、注射剂等各种剂型。
附图说明
图1是本发明甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷的1H-NMR图。
图2是本发明甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷的1H-NMR局部放大图。
图3是本发明甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷的13C-NMR图。
图4是本发明甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷的13C-NMR局部放大图。
图5是本发明甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷的HMBC图。
图6是本发明甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷的HMQC图。
图7是本发明甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷的HSQC图。
图8是本发明甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷的ESI-MS图。
图9是本发明甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的1H-NMR图。
图10是本发明甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的1H-NMR局部放大图。
图11是本发明甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的13C-NMR图。
图12是本发明甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的13C-NMR局部放大图。
图13是本发明甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的HMBC图。
图14是本发明甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的HSQC图。
图15是本发明甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的ESI-MS图。
图16为分离流程图
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步描述。
实施例1
取干燥的青天葵(Nervilia fordii(Hance)Schltr.)全草5kg,加10倍量60%乙醇回流提取3次,每次2小时,合并提取液,用旋转蒸发仪在低于45℃的条件下减压回收乙醇后得浸膏600g;将浸膏混悬于水中,得到浸膏水混悬液,用环己烷对浸膏水混悬液萃取三次,合并环己烷层;再用乙酸乙酯对用环己烷萃取浸膏水混悬液后的浸膏水混悬液萃取三次,合并乙酸乙酯层;再用正丁醇对 用乙酸乙酯萃取浸膏水混悬液后的浸膏水混悬液萃取三次,合并正丁醇层;用旋转蒸发仪分别在低于45℃的条件下减压回收环己烷层溶剂环己烷、乙酸乙酯层溶剂乙酸乙酯、正丁醇层溶剂正丁醇后,各得环己烷层浸膏60g、乙酸乙酯层浸膏130g、正丁醇层浸膏165g;萃取后的水溶液浓缩后得到320g水层浸膏;
将正丁醇层浸膏用5倍蒸馏水溶解,过滤,滤液用D101大孔树脂分离,分别用水、10%乙醇、30%乙醇、50%乙醇、70%乙醇、乙醇梯度洗脱,得到6个流分(B1、B2、B3、B4、B5、B6);其中50%乙醇洗脱流分(B4)减压浓缩,过滤后用一根硅胶常压柱层析,氯仿∶甲醇∶水=8∶2∶0.2,7∶3∶0.5,6∶4∶0.8三种混合液梯度洗脱,得到6个流分(B41、B42、B43、B44、B45、B46);
流分B43再次用硅胶柱层析,得到4个流分(B431、B432、B433、B434);将流分B433溶于水,过反相C8柱,分别用水,10%甲醇,30%甲醇,50%甲醇,70%甲醇,甲醇洗脱,得到六个流分(B4331,B4332,B4333,B4334,B4335,B4336);其中第5个流分(B4335)用制备液相分离,得到甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷(60.8mg)和2甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷(27.9mg);
实施例2
取干燥的青天葵(Nervilia fordii(Hance)Schltr.)全草10kg,加7倍量80%乙醇回流提取2次,每次3小时,合并提取液,用旋转蒸发仪在低于45℃的条件下减压回收乙醇后得浸膏1200g。将浸膏混悬于水中,得到浸膏水混悬液,用环己烷对浸膏水混悬液萃取三次,合并环己烷层;再用乙酸乙酯对用环己烷萃取浸膏水混悬液后的浸膏水混悬液萃取三次,合并乙酸乙酯层;再用正丁醇对用乙酸乙酯萃取浸膏水混悬液后的浸膏水混悬液萃取三次,合并正丁醇层;用 旋转蒸发仪分别在低于45℃的条件下减压回收环己烷层溶剂环己烷、乙酸乙酯层溶剂乙酸乙酯、正丁醇层溶剂正丁醇后,各得环己烷层浸膏120g、乙酸乙酯层浸膏260g、正丁醇层浸膏330g;萃取后的水溶液浓缩后得到640g水层浸膏。
将正丁醇层浸膏用8倍蒸馏水溶解,过滤,滤液用D101大孔树脂分离,分别用水、10%乙醇、30%乙醇、50%乙醇、70%乙醇、乙醇梯度洗脱,得到6个流分(B1、B2、B3、B4、B5、B6)。其中50%乙醇洗脱流分(B4)减压浓缩,过滤后用一根硅胶常压柱层析,氯仿∶甲醇∶水=8∶2∶0.2,7∶3∶0.5,6∶4∶0.8三种混合液梯度洗脱,得到6个流分(B41、B42、B43、B44、B45、B46)。
流分B43再次用硅胶柱层析,得到4个流分(B431、B432、B433、B434)。将流分B433溶于水,过反相C8柱,分别用水,10%甲醇,30%甲醇,50%甲醇,70%甲醇,甲醇洗脱,得到六个流分(B4331,B4332,B4333,B4334,B4335,B4336)。其中第5个流分(B4335)用制备液相分离,得到甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷(121.6mg)和甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷(55.8mg)。
本发明所述的青天葵中两个新的黄酮类化合物的结构解析。
实验例1:
化合物1,黄色粉末,无臭,熔点:154℃-156℃(甲醇)。高分辨ESI-MS给出分子离子峰:[M+H+]m/z 697.2689,分子为:C31H36O18,分子量:696.61。IR光谱在3393cm-1有强宽峰,提示分子中存在羟基,1655cm-1处的强吸收峰提示结构中有羰基,1600和1499cm-1的吸收峰提示结构中有苯环。化合物1的化学名称为:(3,4,5-三羟基-6-(7-甲氧基-5-羟基-2-(3-甲氧基-4-(3,4,5-三羟基-6-羟甲基-四氢-2H-吡喃-2-酰氧基)苯基)-4-氧-4H-苯并吡喃-3-酰氧基)-四氢 -2H-吡喃)乙酸甲酯。
该化合物的1H-NMR(600MHz,DMSO-d6)中,δ12.52(1H,s)为黄酮5位羟基质子特征信号,δ6.81(1H,d,J=2.0Hz),6.40(1H,d,J=2.0Hz)为5,7二氧取代黄酮A环6、8位质子信号,δ7.24(1H,d,J=8.4Hz,5′-H),7.60(1H,dd,J=8.4,2.0Hz,6′-H),7.97(1H,d,J=2.0Hz,2′-H)构成B环的ABX偶合系统,δ5.49(1H,d,J=7.0),5.08(1H,d,J=6.8)为糖的端基质子信号,根据其偶合常数可知为葡萄糖的端基构型为β构型。δ3.871(3H,s),3.866(3H,s),为两组甲氧基质子信号,δ1.73(3H,s)为甲基质子信号。
13C-NMR(150MHz,DMSO-d6)谱中,给出31组碳信号:δ100.9,99.5,77.1,76.8,76.2,74.2,74.02,73.1,69.8,69.6,62.6,60.6,为两组葡萄糖的信号。根据δ177.6的羰基碳信号,同时结合未见3位质子信号,可知此化合物为黄酮醇类化合物。而根据δ156.4(C-2),133.7(C-3)可知有一个糖在3位成苷。δ56.2,55.7为两个甲氧基碳信号,δ20.2为甲基碳信号。
综合上述信息可得出片段3~4:
在HMBC谱中,δ6.81(92.5)的质子与δ165.3,156.1,105.3,98.1有远程相关,δ6.40(98.1)的质子与165.3,160.9,105.3,92.5有远程相关,另外δ3.87(55.7)与δ165.3有远程相关,得到结构片段A;δ7.89(113.3)的质子与156.4,148.8有远程相关,δ7.64(121.8)的质子与156.4,148.8有远程相关,δ7.23(114.5)的质子与123.4,148.1有远程相关,另外δ3.87(56.2)的质子与148.1有远程相关, δ5.08(99.5)的质子与148.8有远程相关,得到结构片段B;δ1.73(20.2)的质子与δ169.9有远程相关,δ4.06(62.6)的质子与δ169.9有远程相关,可得到片段C,δ62.6为葡萄糖6位的碳信号,由于糖苷化导致糖6位碳向低场移,而5位碳向高场移至74.0。
综合以上数据,以及与文献数据对比,化合物1的核磁数据归属如表1:
表1 化合物1的核磁数据归属(DMSO-d6)
aRecorded at 600MHz.bRecorded at 150MHz。
实验例2
化合物2,黄色粉末,无臭,熔点:170℃-171℃(甲醇)。高分辨ESI-MS给出分子离子峰:[M+COOH]+m/z741.2184,分子为:C31H36O18,分子量:696.61。IR光谱在3356cm-1有强宽峰,提示分子中存在羟基,1654cm-1处的强吸收峰提示结构中有羰基,1599和1499cm-1的吸收峰提示结构中有苯环。化合物2的化学名称为:(3,4,5-三羟基-6-(4-(7-甲氧基-5-羟基-4-氧-3-(3,4,5-三羟基-6-羟甲基-四氢-2H-吡喃-2-酰氧基)-4H-苯并吡喃)-2-甲氧苯氧基)-四氢-2H-吡喃)乙酸甲酯。
该化合物的1H-NMR(600MHz,DMSO-d6)中,δ6.81(1H,brs),6.40(1H,brs)为5,7二氧取代黄酮A环6、8位质子信号,δ7.19(1H,d,J=8.4Hz,5′-H),7.62(1H,brd,8.4Hz,6′-H),7.95(1H,brs,2′-H)构成B环的ABX偶合系统,δ5.61(1H,d,J=7.6),5.10(1H,d,J=6.1)为糖的端基质子信号,根据其偶合常数可知为葡萄糖的端基构型为β构型。δ3.87(3H,s),3.85(3H,s),为两组 甲氧基质子信号,δ1.99(3H,s)为甲基质子信号。
13C-NMR(125MHz,DMSO-d6)谱中,给出31组碳信号:δ100.6,99.3,77.6,76.5,76.40,74.3,73.8,73.1,69.8,69.8,63.4,60.6。为两组葡萄糖的信号。根据δ177.7的羰基碳信号,同时结合未见3位质子信号,可知此化合物为黄酮醇类化合物。而根据δ156.4(C-2),133.7(C-3)可知有一个糖在3位成苷。δ56.2,55.7为两个甲氧基碳信号,δ20.8为甲基碳信号。
综合上述信息可得出片段5~6:
在HMBC谱中,δ6.78(92.5)的质子与δ165.3,156.4,105.2,98.0有远程相关,δ6.41(98.0)的质子与165.3,161.0,105.2,92.5有远程相关,另外δ3.87(55.8)与δ165.3有远程相关,得到结构片段D;δ7.95(113.5)的质子与156.1,148.4,121.6有远程相关,δ7.62(121.6)的质子与113.5,148.4有远程相关,δ7.19(114.4)的质子与123.7,148.4有远程相关,另外δ3.87(56.2)的质子与148.1有远程相关,得到结构片段E;δ1.99(20.8)的质子与δ170.2有远程相关,可得到片段F。结合化合物1以及文献报道数据可知,δ63.4为葡萄糖6位的碳信号,由于糖苷化导致糖6位碳向低场移,而5位碳向高场移至73.8。
综合以上数据,以及与文献数据对比,化合物2的核磁数据归属如表2:
表2 化合物2的核磁数据归属(DMSO-d6)
aRecorded at 600MHz.bRecorded at 125MHz.
药理学实验:
1.采用微量液体稀释法测定化合物的体外抗菌活性。药理学实验:采用微量液体稀释法测定化合物的体外抗菌活性。将从青天葵中得到的化合物1、化合物2配制倍比稀释的系列浓度的溶液,分别和金葡菌标准菌株ATCC25923、流感嗜血杆菌标准菌株ATCC 10211、铜绿假单胞菌标准菌株ATCC27853,加样于含定量肉汤培养基的96孔板,37℃培养24小时。最低抑菌浓度(minimum inhibitory concentration,MIC)用液体稀释法进行测定。即按每管5mL分装试管将配置细菌液体培养基加入不同浓度的药液后可配成系列浓度梯度的培养基。再接种相同量的菌液,于37℃的恒温震荡培养箱中进行培养48h,另外取不接种任何菌种的培养基作为空白对照。MIC为肉眼看不到细菌生长的孔所对应的最高浓度。
分别从大于MIC的试管中吸取培养物0.1mL并转接在相应的培养基上,37℃中培养48h,没有细菌生长的平板所对应的最高浓度为最低杀菌浓度(minimal bactericidal concentration,MBC)。每个菌的各个稀释度在同一块96孔板上设3个平行组,实验重复两次。结果如下:
表3 化合物1对3种标准菌株的MIC和MBC(mg/ml)
表4 化合物2对3种标准菌株的MIC和MBC(mg/ml)
测定结果显示,从青天葵得到的化合物1和化合物2对多种临床常见病原菌均表现出较强的抗菌作用。在医药领域的应用有较好的前景。
2.采用MTT法测定2个化合物对巨噬细胞RAW264.7的毒性。
RAW264.7细胞按2×105/mL的单细胞悬液接种于96孔细胞培养板(100μL/孔)。贴壁24h后,每孔加入50μL终浓度为1μg/mL的LPS(空白对照组加入等体积的PBS),作用2h后,实验组加入不同浓度的样品溶液(空白对照组和模型组加入等体积的无血清培养基),每个浓度设4个复孔,培养箱内孵育24h后吸取培养上清液50μL至酶标板中,加入等体积的Griess试剂A和Griess试剂B(Griess试剂A为0.1%N-萘乙二胺盐酸盐,Griess试剂B为5%H3PO4含1%对氨基苯磺酰胺,用前1∶1混合),室温反应10min后测定540nm处的吸光值。
用浓度分别为0,1,5,10,20,50μmol/L的NaNO2绘制标准曲线,根据NaNO2标准曲线计算细胞培养上清液中NO2 -的浓度以及对NO释放的抑制率,抑制率计算公式为:
同上述加入样品处理24h后,吸取50μL上清液测定NO释放量,另外向每孔中加入MTT20μL,继续培养4h后,弃上清,每孔加入150μL DMSO,震荡5min,于490nm波长处检测吸光度(A值),计算细胞相对抑制率:细胞相对抑制率=(1-实验组A值/对照组A值)×100%。实验结果如下:
表5 化合物1、2对NO释放的抑制率(%)
3、结论:
采用MTT法测定2个化合物对巨噬细胞RAW264.7的毒性,并测定对LPS诱导的RAW264.7细胞NO生成的影响,结果发现,在对细胞正常增殖无明显影响的浓度范围内,2个新化合物对LPS诱导的小鼠巨噬细胞RAW264.7的NO释放表现出不同程度的抑制活性,其中化合物2的抑制作用明显强于化合物1。表现出很好的抗炎作用,在医药领域的应用有很好的前景。
Claims (5)
3.甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷和甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的制备方法,其特征在于,操作步骤如下:
1)浸膏的制备
取干燥的青天葵全草,加7-10倍干燥的青天葵全草量体积百分浓度为60%-80%的乙醇回流提取2-3次,每次2-3小时,合并提取液,用旋转蒸发仪在低于45℃的条件下减压回收乙醇后得浸膏;
2)环己烷层浸膏、乙酸乙酯层浸膏正丁醇层浸膏和水层浸膏的制备
将步骤1)浸膏混悬于水中,得到浸膏水混悬液,用环己烷对浸膏水混悬液萃取三次,分别合并萃取后的环己烷层和水层;再用乙酸乙酯对用环己烷萃取浸膏水混悬液后的浸膏水混悬液萃取三次,分别合并萃取后乙酸乙酯层和水层;再用正丁醇对用乙酸乙酯萃取浸膏水混悬液后的浸膏水混悬液萃取三次,分别合并萃取后正丁醇层和水层;用旋转蒸发仪分别在低于45℃的条件下减压回收环己烷层的溶剂环己烷、乙酸乙酯层的溶剂乙酸乙酯、正丁醇层的溶剂正丁醇后,分别得到环己烷层浸膏、乙酸乙酯层浸膏、正丁醇层浸膏;将以上 萃取后的水层合并后浓缩得到水层浸膏;
3)甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷和甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷的制备
将正丁醇层浸膏用5-8倍蒸馏水溶解,过滤,滤液用D101大孔树脂分离,分别用水和体积百分浓度为10%、30%、50%、70%、无水乙醇梯度洗脱,得到6个流分B1、B2、B3、B4、B5、B6;
将体积百分浓度为50%乙醇洗脱流分B4减压浓缩,过滤后用一根硅胶常压柱层析,分别用氯仿∶甲醇∶水=8∶2∶0.2、7∶3∶0.5、6∶4∶0.8三种混合液梯度洗脱,得到6个流分B41、B42、B43、B44、B45、B46;
将流分B43再次用硅胶柱层析,再分别用氯仿∶甲醇∶水=8∶2∶0.2、7∶3∶0.5、6∶4∶0.8三种混合液梯度洗脱,得到4个流分B431、B432、B433、B434;将流分B433溶于水,过反相C8柱,分别用水和体积百分浓度为10%、30%、50%、70%、无水甲醇洗脱,得到六个流分B4331,B4332,B4333,B4334,B4335,B4336;其中第5个流分B4335用制备液相色谱仪分离,先后得到甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷和甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷。
4.权利要求1所述的一种黄酮类化合物的用途,其特征在于,甲基鼠李素-3-O-β-葡萄吡喃糖基-4′-O-β-6″′-乙酰基-葡萄糖苷或其衍生物用于制备抗菌和/或抗炎药物。
5.权利要求2所述的一种黄酮类化合物的用途,其特征在于,甲基鼠李素-4′-O-β-葡萄吡喃糖基-3-O-β-6″-乙酰基-葡萄糖苷或其衍生物用于制备抗菌和/或抗炎药物。
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