CN102741429A - 对双链dna中的目标序列进行扩增的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供在PCR法中抑制非特异性扩增的方法。本发明为一种PCR法,其是利用正向引物和反向引物对模板双链DNA中的所需目标序列进行扩增的PCR法,其特征在于,在所述PCR溶液中含有寡核酸A和寡核酸B中的至少任一种,所述寡核酸A是结合在所述模板双链DNA中所述正向引物所结合的单链DNA上、其结合位置比所述正向引物更靠3′侧下游且为目标序列的外侧、不会成为利用DNA聚合酶的延伸反应的起点;所述寡核酸B是结合在所述模板双链DNA中所述反向引物所结合的单链DNA上、其结合位置比所述反向引物更靠3′侧下游且为目标序列的外侧、不会成为利用DNA聚合酶的延伸反应的起点。
Description
技术领域
本发明涉及对双链DNA中的目标序列进行扩增的方法。
背景技术
图1所示的聚合酶链反应(以下称作“PCR”)是对由第1单链DNA6和第2单链DNA7构成的双链DNA中所含的目标序列1进行扩增的代表性方法。
以下一边参照图1一边简单地说明PCR法。
第1单链DNA6由3’末端-第1非扩增序列6a-单链目标序列1a-第2非扩增序列6b-5’末端构成。第2单链DNA7由5’末端-第3非扩增序列7a-互补性单链目标序列1b-第4非扩增序列7b-3’末端构成。互补性单链目标序列1b、第3非扩增序列7a和第4非扩增序列7b分别与单链目标序列1a、第1非扩增序列6a和第2非扩增序列6b互补。
首先,将DNA聚合酶、脱氧核苷三磷酸、双链DNA1、正向引物4和反向引物5混合,制备混合液。
正向引物4由具有5~20个碱基的核酸构成、且与单链目标序列1a的3’末端部分6c互补。反向引物5由具有5~20个碱基的核酸构成、且与互补性单链目标序列1b’的3’末端部分互补。因此,正向引物4和反向引物5分别结合在3’末端部分6c和3’末端部分7c。
接着,将该混合液在94℃~100℃下从1秒钟开始加热100秒钟,之后在50~70℃下从1秒钟开始冷却100秒钟。反复进行加热和冷却,获得扩增双链DNA序列2。扩增双链DNA序列2由与单链目标序列1a相同的扩增单链目标序列6g和与互补性单链目标序列1b相同的扩增互补性单链目标序列7g构成。
专利文献1~3可以与本发明相关。
现有技术文献
专利文献
专利文献1:日本特开平5-199900号公报
专利文献2:日本特表2003-534772号公报
专利文献3:日本特表平3-508636号公报(特别是图3、图12)
发明内容
发明要解决的技术问题
如图1所示,当第1非扩增序列6a含有与单链目标序列1a的3’末端部分6c相同的序列6d时,正向引物4不仅结合在3’末端部分6c、还结合在该序列6d上。当第1非扩增序列6a含有与单链目标序列1a的3’末端部分6c相类似的序列6d时,正向引物4不仅结合在3’末端部分6c、还会错误地结合在该序列6d上。
因此,所得的扩增双链DNA序列不仅包含所期望的扩增双链DNA序列2、还包含不希望的扩增双链DNA序列3。该扩增双链DNA序列3是非特异性扩增的产物,由不希望的扩增单链DNA3a和扩增互补性单链DNA3b构成。
本发明的目的在于提供能够抑制不希望的扩增双链DNA序列3的产生的扩增方法。
用于解决技术问题的手段
解决上述课题的本发明是对由第1单链DNA和第2单链DNA构成的双链DNA中的双链目标序列进行扩增的方法,其中,
所述双链目标序列由单链目标序列(1a)和互补性单链目标序列(1b)构成,
所述第1单链DNA由3’末端-第1非扩增序列(6a)-所述单链目标序列(1a)-第2非扩增序列(6b)-5’末端构成,
所述第2单链DNA由5’末端-第3非扩增序列(7a)-所述互补性单链目标序列(1b)-第4非扩增序列(7b)-3’末端构成,
所述互补性单链目标序列(1b)、第3非扩增序列(7a)和第4非扩增序列(7b)分别与所述单链目标序列(1b)、所述第1非扩增序列(6a)和第2非扩增序列(6b)互补,
所述方法是将DNA聚合酶、脱氧核苷三磷酸、所述双链DNA(6、7)、正向引物、反向引物和第1阻碍核酸(20)混合,使用聚合酶链反应对所述双链目标序列进行扩增的工序A,
其中,所述正向引物和所述反向引物均作为用于利用所述DNA聚合酶的延伸反应的起点发挥作用,
所述正向引物与所述单链目标序列(1a)所含的3’末端侧的序列的部分互补,
所述反向引物与所述互补性单链目标序列(1b)所含的3’末端侧部分的序列互补,
所述第1阻碍核酸(20)不会作为用于利用所述DNA聚合酶的延伸反应的起点发挥作用,
所述第1阻碍核酸(20)与所述第3非扩增序列(7a)的一部分互补。
发明效果
可以抑制不希望的扩增双链DNA序列3的产生。
附图说明
[图1]表示以往PCR的图
[图2]表示本发明的PCR的图
[图3]接图2、表示本发明的PCR的图
[图4]接图3、表示本发明的PCR的图
[图5]接图4、表示本发明的PCR的图
[图6]接图5、表示本发明的PCR的图
[图7]表示以往PCR的图
[图8]接图7、表示以往PCR的图
[图9]接图8、表示以往PCR的图
[图10]接图9、表示以往PCR的图
[图11]接图10、表示以往PCR的图
[图12]表示实施例1的电泳时的结果的图表
[图13]表示比较例1的电泳时的结果的图表
[图14]对实施例1和比较例1中非特异性扩增产物的浓度进行了比较的图表
[图15]表示实施例2的电泳时的结果的图表
[图16]表示比较例2的电泳时的结果的图表
[图17]对实施例2和比较例2中非特异性扩增产物的浓度进行了比较的图表
[图18]表示实施例3的电泳时的结果的图表
[图19]表示比较例3的电泳时的结果的图表
[图20]对实施例3和比较例3中非特异性扩增产物的浓度进行了比较的图表
具体实施方式
以下一边参照图2~图11一边说明本发明的方法。
(实施方式)
本发明通过在使用聚合酶链反应扩增双链目标序列1时添加第1阻碍核酸20而被赋予特征。
第1阻碍核酸20不会作为用于利用DNA聚合酶的延伸反应的起点发挥作用。优选阻碍核酸为合成寡核酸。
第1阻碍核酸20的例子有经修饰的DNA、经修饰的锁定核酸(以下记为“LNA”)和肽核酸(以下记为“PNA”)。
核酸是由糖、磷酸基和碱基构成的核苷酸通过磷酸酯键连接而成的生物体高分子。位于经修饰的DNA和LNA的3’末端的核苷酸所含的糖的3位OH基被氢、磷酸基、氨基、生物素基、巯基或它们的衍生物取代或修饰。PNA不需要该修饰。
正向引物4与单链目标序列1a的3’末端部分6c互补。因而,如图2所示,正向引物4结合在该3’末端部分6c。进而,正向引物4包含在第1非扩增序列6a中,也可结合在与单链目标序列1a相同或类似的序列6d上。
反向引物5与互补性单链目标序列1b的3’末端部分互补。因此,如图2所示,反向引物5结合在该部分。
阻碍核酸20与第3非扩增序列7a的一部分互补。因此,如图2所示,阻碍核酸20与第3非扩增序列7a的该部分相结合。
当开始PCR时,如图3所示,DNA从正向引物4的3’末端和反向引物5的3末端’开始延伸,形成第1复制序列6e1、第2复制序列7e和第3复制序列6e2。
第1复制序列6e1与通过将单链目标序列1a和第2非扩增序列6b连续地连接所形成的序列互补。第3复制序列6e2与通过将第1非扩增序列6a的一部分、单链目标序列1a和第2非扩增序列6b连续地连接所形成的序列互补。
阻碍核酸20将反向引物5的DNA延伸停止。因此,第2复制序列7e与通过将互补性单链目标序列1b和第3非扩增序列7b的一部分连续地连接所形成的序列互补。但是,第2复制序列7e不含有与从结合有阻碍核酸20的第2单链DNA7的部分至5’末端侧的序列相互补的序列7h。
当进一步进行PCR时,如图4所示,正向引物4结合在第1单链DNA序列6和第2复制序列7e上。反向引物5结合在第2单链DNA序列7、第1复制序列6e1和第3复制序列6e2上。阻碍核酸20也结合在第3非扩增序列7a和第3复制序列6e2上。
之后,如图5所示,DNA从2个正向引物4的3’末端开始延伸,形成第1复制序列6e1和扩增互补性单链目标序列7g。DNA从3个反向引物5的3’末端开始延伸,形成1条扩增单链目标序列6g和两条第2复制序列7e。扩增单链目标序列6g和扩增互补性单链目标序列7g分别与单链目标序列1a和互补性单链目标序列1b相同。
即,由第1单链DNA序列6和正向引物4形成第1复制序列6e1。由第1复制序列6e1和反向引物5形成扩增单链目标序列6g。由第2复制序列6e2和反向引物5形成第2复制序列7e。同样地,由第2单链DNA序列7和反向引物5形成第2复制序列7e。由第2复制序列7e和正向引物4形成扩增互补性单链目标序列7g。
当进一步进行PCR时,如图6所示,通过1次循环,不仅形成在图5中形成的序列、还由扩增单链目标序列6g和正向引物4形成扩增互补性单链目标序列7g。由扩增互补性单链目标序列7g和反向引物5还形成扩增单链目标序列6g。
在进行n次循环后,获得2n个扩增单链目标序列6g和扩增互补性单链目标序列7g。另一方面,不希望的扩增双链DNA序列3是不存在的。其原因自不必说,是由于阻碍核酸20的原因。
在图2中,与通常的PCR同样,为了打开双链DNA以获得单链DNA而提高温度,进而为了使引物4、5结合而降低温度。
图7表示未使用阻碍核酸20的以往的PCR。
正向引物4与单链目标序列1a的3’末端部分6c互补。因此,如图7所示,正向引物4结合在该3’末端部分6c上。进而,当第1非扩增序列6a含有与该3’末端部分6c相同或类似的序列6d时,正向引物4不仅结合在该部分6c上、还可结合在该序列6d上。
当开始PCR时,与图2~图6不同,如图8所示,形成与通过将互补性单链序列1b和第3非扩增序列7a连续地连接所形成的序列相互补的第2复制序列7e2。该第2复制序列7e2不仅含有3’末端部分6c、还含有序列6d。
当进一步进行PCR时,如图9所示,正向引物4结合在第2复制序列7e2上。此时,正向引物4不仅结合在第2复制序列7e2所含的部分6c上、还结合在序列6d上。
因此,如图10所示,不仅形成了扩增单链目标序列6g和扩增互补性单链目标序列7g,还形成了不希望的扩增单链序列3a和不希望的扩增互补性单链序列3b。而且,当进行n次循环时,不仅形成2n个的扩增单链目标序列6g和扩增互补性单链目标序列7g,还会形成2n个不希望的扩增单链序列3a和不希望的扩增互补性单链序列3b。
由图2~图6和图7~图10可知,阻碍核酸20阻碍了会形成不希望的扩增双链DNA序列3的不希望的扩增单链序列3a和不希望的扩增互补性单链序列3b的形成。这样,本发明可以抑制不希望的扩增双链DNA序列3的产生。
如图2所示,与阻碍核酸20的5’末端互补的目标序列1b的5’末端侧的序列100优选为0个碱基以上且20个碱基以下。这是由于非常不希望序列100含有与单链目标序列1a的3’末端部分6c相同或类似的序列6d。即,当序列100含有序列6d时,正向引物4可错误地与该序列6d结合、从而如图1所示,形成不希望的扩增双链DNA序列3。
如图11所示,可使用第2阻碍核酸30。该第2阻碍核酸30与第2非扩增序列6b的一部分互补。第2阻碍核酸30与第1阻碍核酸20同样,由经修饰的DNA、经修饰的LNA或PNA构成。
与图2相比,如图11所示,2个阻碍核酸20、30可更有效地抑制不希望的扩增双链DNA序列3的产生。
本发明中可用的DNA聚合酶的一个例子是Taq DNA聚合酶和PfuDNA聚合酶。DNA聚合酶优选不具有5’->3’核酸外切酶活性。
脱氧核苷三磷酸为脱氧腺苷三磷酸(dATP)、脱氧胸苷三磷酸(dTTP)、脱氧鸟苷三磷酸(dGTP)和脱氧胞苷三磷酸(dCTP)的混合物。脱氧核苷三磷酸通常含有等量的这4种物质,其浓度为20μM~200μM。
(实施例)
以下说明本发明的实验例。
(实施例1)
实施例1表示对人的ABO式血型基因的Exon6区域进行扩增的例子。
表1示出正向引物4(以下记为“ABO-F”)和反向引物5(以下记为“ABO-R”)的序列。
表1人的ABO式血型基因扩增用的引物的序列
ABO-F | 5’-TAGGAAGGATGTCCGCG-3’(序列号1) |
ABO-R | 5’-TTCTTGATGGCAAACACAGTTAACC-3’(序列号2) |
表2示出阻碍核酸20(以下记为“ABO-Block”)的序列。
表2人的ABO式血型基因扩增用的阻碍核酸的序列
ABO-Block | 5’-GTGCGGCCACATGGAGCTGGC-3’(序列号3) |
通过由ABO-F和ABO-R构成的一对引物,ABO式血型基因中的AB型待测者的135个碱基对的目标序列被扩增。
ABO-Block由与从第3非扩增序列7a的3’末端侧开始数的第19~39个碱基相互补的21个碱基序列构成。该部分是从第2单链DNA7的3’末端侧开始数的第201~第221个的碱基序列。ABO-Block的3’末端的核苷酸所含的3位的糖通过磷酸化被修饰。
使用DNA Micro Kit(QIAGEN公司制),从AB型待测者的血液100μL中提取基因组DNA,制备10ng/μL的模板DNA。
PCR的反应溶液如下所述。
1×TITANIUM Taq PCR缓冲液(Clontech公司制)
200μM dNTP(dATP、dTTP、dGTP和dCTP混合物)、
1×TITANIUM Taq DNA聚合酶(Clontech公司制)、
1μM ABO-F
1μM ABO-R
0.5ng/μL的基因组DNA和10μM ABO-Block
总量:10μL
在以下的热循环程序进行PCR扩增:95℃下1分钟的循环进行1个、95℃下1秒钟(用于变性)和62℃下1秒钟(用于退火)和72℃下1秒钟(用于DNA延伸)的循环进行50个。
PCR反应后,使用BioAnalyzer(Agilent公司制)将PCR反应物供至电泳。图12表示电泳的结果。由图12可知,仅特异性地扩增了由135个碱基对构成的目标序列,未发生非特异性的扩增。图3中的标记物是电泳试剂盒自带的DNA标记物。
(比较例1)
除了将实施例1中的反应溶液的阻碍核酸替换成蒸馏水之外,与实施例1同样地实施PCR反应。图13表示比较例1的电泳的结果。
由图13可知,不仅扩增了由135个碱基对构成的目标序列,还非特异性地扩增了由183个~1209个碱基对构成的双链DNA。
这表示阻碍核酸20会抑制非特异性的扩增。
图14为表示实施例1和比较例1中由电泳的分析结果算出的非特异性扩增产物的浓度总和的图表。如图14可知,比较例1中发生了16.15ng/μL的非特异性扩增。而实施例1中完全地抑制了非特异性的扩增。可以认为这是通过抑制非特异性扩增所获得的协同效果。即,可以抑制过多的试剂消耗,进而反应溶液中的目标序列的比例增加,从而目标序列的优先扩增变得可能。由此表明阻碍核酸20有助于目标序列的高效扩增。
(实施例2)
实施例2表示对人的乙醛脱氢酶2基因的第12外显子区域进行扩增的例子。
表3示出正向引物4(以下记为“ALDH2-F”)和反向引物5(以下记为“ALDH2-R”)的序列。
表3人乙醛脱氢酶2基因扩增用的引物的序列
ALDH2-F | 5’-GGCTGCAGGCATACACT-3’(序列号4) |
ALDH2-R | 5’-GGCAGGTCCTGAACCTC-3’(序列号5) |
表4示出阻碍核酸20(以下记为“ALDH2-Block”)的序列。
表4人乙醛脱氢酶2基因扩增时的阻碍核酸的序列
ALDH2-Block | 5’-AGCAGTTGACCCTGTAATTTG-3’(序列号6) |
通过由ALDH2-F和ALDH2-R构成的一对引物,由乙醛脱氢酶2基因中的155个碱基对构成的目标序列被扩增。
ALDH2-Block由与从第3非扩增序列7a的3’末端侧开始数的第77~97个碱基互补的21个碱基序列构成。ALDH2-Block的3’末端的核苷酸所含的3位的糖通过磷酸化被修饰。
使用DNA Micro Kit(QIAGEN公司制)从人的血液100μL中提取基因组DNA,制备10ng/μL的模板DNA。
PCR的反应溶液如下所述。
1×LA PCR缓冲液(TaKaRa公司制)
1.5mM MgCl2
各200μM dNTP(dATP、dTTP、dGTP、dCTP混合物)
0.05U/10μL LA Taq(TaKaRa公司制)
1μM ALDH2-F
1μM ALDH2-R
0.5ng/μL的DNA和10μM ALDH2-Block
总量:10μL
在以下的热循环程序下进行PCR扩增:95℃下1分钟的循环进行1个、95℃下1秒钟(用于变性)和58℃下1秒钟(用于退火)和72℃下1秒钟(用于DNA延伸)的循环进行30个。
PCR反应后,与实施例1同样地将PCR反应物供至电泳。图15表示电泳的结果。由图15可知,仅高效地扩增了由155个碱基对构成的目标序列。
(比较例2)
除了将实施例2中的反应溶液的阻碍核酸替换成蒸馏水以外,与实施例1同样地实施PCR反应。图16表示比较例2的电泳结果。
由图16所示可知,不仅扩增了155bp的目标序列,还非特异性地扩增了由665~1252个碱基对构成的双链DNA。
图17为表示实施例2和比较例2中由电泳的分析结果算出的非特异性扩增产物的浓度的总和的图表。由图17可知,比较例2中发生了4.07ng/μL的非特异性扩增。而实施例2中该总和减少至仅0.6ng/μL。这表明与实施例1同样,阻碍核酸20有助于目标序列的高效扩增。
(实施例3)
本实施例表示对人的肌萎缩蛋白基因进行扩增的例子。
表5示出正向引物4(以下记为“Dys-F”)和反向引物5(以下记为“Dys-R”)的序列。
表5人肌萎缩蛋白基因扩增用的引物的序列
Dys-F | 5’-AGGCTTGAAAGGGCAAGTAGAAGT-3’(序列号7) |
Dys-R | 5’-GCTGATCTGCTGGCATCTTGC-3’(序列号8) |
表6示出第1阻碍核酸20(以下记为“Dys-Block-1”)和第2阻碍核酸30(以下记为“Dys-Block-2”)的序列。
表6人肌萎缩蛋白基因扩用的阻碍核酸的序列
Dys-Block-1 | 5’-GACTTTTTCTCAACACTTTTGCCATC-3’(序列号9) |
Dys-Block-2 | 5’-TGGAAGAAAATGGGATGTGGTAGAA-3’(序列号10) |
通过由Dys-F和Dys-R构成的一对引物,由肌萎缩蛋白基因中的147个碱基对构成的目标序列被扩增。
Dys-Block-1由与从第3非扩增序列7a的3’末端侧开始数的第40~65个碱基互补的26个碱基序列构成。Dys-Block-2由与从第2非扩增序列6b的3’末端侧开始数的第222~246个碱基互补的25个碱基序列构成。
Dys-Block-1和Dys-Block-2的3’末端的核苷酸所含的3位的糖均通过磷酸化被修饰。
使用DNA Micro Kit(QIAGEN公司制)从人的血液100μL中提取基因组DNA,制备10ng/μL的模板DNA。
PCR的反应溶液如下所述。
1×TITANIUM Taq PCR缓冲液(Clontech公司制)
各200μM dNTP(dATP、dTTP、dGTP、dCTP混合物)
1×TITANIUM Taq DNA聚合酶(Clontech公司制)
1μM Dys-F
1μM Dys-R、0.5ng/μL的基因组DNA
10μM Dys-Block-1和10μM Dys-Block-2
总量:10μL
在以下的热循环程序下进行PCR扩增:95℃下1分钟的循环进行1个、95℃下1秒钟(用于变性)和54℃下1秒钟(用于退火)和72℃下1秒钟(用于DNA延伸)的循环进行50个。
PCR反应后,与实施例1同样地将PCR反应物供至电泳。图18表示电泳的结果。由图18可知,高效地扩增了147bp的目标序列。
(比较例3)
除了将实施例3中的反应溶液的阻碍核酸替换成蒸馏水以外,与实施例1同样地实施PCR反应。图19表示比较例3的电泳结果。
由图19所示可知,不仅扩增了147个碱基对构成的目标序列,还非特异性地扩增了由375~712个碱基对构成的双链DNA。
图20为表示实施例3和比较例3中由电泳的分析结果算出的非特异性扩增产物的浓度总和的图表。由图20可知,比较例3中发生了26.93ng/μL的非特异性扩增。而实施例3中该总和减少至仅5.97ng/μL。这表明与实施例1和实施例2同样,第1阻碍核酸20和第2阻碍核酸30有助于目标序列的高效扩增。
产业上的可利用性
本发明可用于通常的PCR反应。本发明还可用于用以临床检查的PCR。
符号说明
1双链目标序列
1a单链目标序列
1b互补性单链目标序列
2所希望的扩增双链DNA序列
3不希望的扩增双链DNA序列
3a不希望的扩增单链DNA
3b不希望的扩增互补性单链DNA
4正向引物
5反向引物
6第1单链DNA
6a第1非扩增序列
6b第2非扩增序列
6c单链目标序列1a的3’末端部分
6e1第1复制序列
6e2第3复制序列
6g扩增单链目标序列
7第2单链DNA
7a第3非扩增序列
7b第4非扩增序列
7c互补性单链目标序列1b的3’末端部分
7e第2复制序列
7e2第2复制序列
7g扩增互补性单链目标序列
20第1阻碍核酸
30第2阻碍核酸
序列表非关键词文字
序列号1:用于对作为目标序列的人ABO式血型基因进行扩增的正向引物
序列号2:用于对作为目标序列的人ABO式血型基因进行扩增的反向引物
序列号3:用于抑制目标序列以外的非特异性扩增的寡核酸(DNA)
序列号4:用于对作为目标序列的人乙醛脱氢酶2基因进行扩增的正向引物
序列号5:用于对作为目标序列的人乙醛脱氢酶2基因进行扩增的反向引物
序列号6:用于抑制目标序列以外的非特异性扩增的寡核酸(DNA)
序列号7:用于对作为目标序列的人肌萎缩蛋白基因进行扩增的正向引物
序列号8:用于对作为目标序列的人肌萎缩蛋白基因进行扩增的反向引物
序列号9:用于抑制目标序列以外的非特异性扩增的寡核酸(DNA)
序列号10:用于抑制目标序列以外的非特异性扩增的寡核酸(DNA)
Claims (8)
1.一种对由第1单链DNA和第2单链DNA构成的双链DNA中的双链目标序列进行扩增的方法,其中,
所述双链目标序列由单链目标序列和互补性单链目标序列构成,
所述第1单链DNA由3’末端-第1非扩增序列-所述单链目标序列-第2非扩增序列-5’末端构成,
所述第2单链DNA由5’末端-第3非扩增序列-所述互补性单链目标序列-第4非扩增序列-3’末端构成,
所述互补性单链目标序列、第3非扩增序列和第4非扩增序列分别与所述单链目标序列、所述第1非扩增序列和第2非扩增序列互补,
所述方法是将DNA聚合酶、脱氧核苷三磷酸、所述双链DNA、正向引物、反向引物和第1阻碍核酸混合,使用聚合酶链反应对所述双链目标序列进行扩增的工序A,
其中,所述正向引物和所述反向引物均作为用于利用所述DNA聚合酶的延伸反应的起点发挥作用,
所述正向引物与所述单链目标序列所含的3’末端侧的序列的部分互补,
所述反向引物与所述互补性单链目标序列所含的3’末端侧部分的序列互补,
所述第1阻碍核酸不会作为用于利用所述DNA聚合酶的延伸反应的起点发挥作用,
所述第1阻碍核酸与所述第3非扩增序列的一部分互补。
2.根据权利要求1所述的方法,其中,所述第1阻碍核酸由位于3’末端的核苷酸所含的糖的3位OH基被氢、磷酸基、氨基、生物素基、巯基或它们的衍生物取代或修饰的DNA构成。
3.根据权利要求1所述的方法,其中,所述第1阻碍核酸由位于3’末端的核苷酸所含的糖的3位OH基被氢、磷酸基、氨基、生物素基、巯基或它们的衍生物取代或修饰的锁定核酸构成。
4.根据权利要求1所述的方法,其中,所述第1阻碍核酸由肽核酸构成。
5.根据权利要求1所述的方法,其中,在所述工序A中还混合第2阻碍核酸,所述第2阻碍核酸不作为用于利用所述DNA聚合酶的延伸反应的起点发挥作用,且与所述第2非扩增序列的一部分互补。
6.根据权利要求5所述的方法,其中,所述第2阻碍核酸由位于3’末端的核苷酸所含的糖的3位OH基被氢、磷酸基、氨基、生物素基、巯基或它们的衍生物取代或修饰的DNA构成。
7.根据权利要求5所述的方法,其中,所述第2阻碍核酸由位于3’末端的核苷酸所含的糖的3位OH基被氢、磷酸基、氨基、生物素基、巯基或它们的衍生物取代或修饰的锁定核酸构成。
8.根据权利要求5所述的方法,其中,所述第2阻碍核酸由肽核酸构成。
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PB01 | Publication | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
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